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川楝子对大鼠肝组织超微结构和原代培养肝细胞的影响



全 文 :川楝子对大鼠肝组织超微结构和原代培养肝细胞的影响
齐双岩1,谷颖敏1,金若敏1,刘红杰1,2,梅彩霞1
(1.上海中医药大学 药物安全评价研究中心,上海 201203;
2.暨南大学 医学院 中医系,广州 510632)
[摘要] 目的:研究川楝子对大鼠肝组织超微结构和原代培养肝细胞的影响。方法:大鼠口服川楝子提取液(生药)90g
·kg-1,2h后取肝组织,电镜下观察肝组织超微结构变化。分离培养原代大鼠肝细胞,加入川楝子含药血清共同孵育,分别于
1,2,8,24h时检测培养上清液中LDH,ALT,AST水平。结果:大鼠口服川楝子提取液后2h,肝细胞体积增大,线粒体肿胀变
性,内质网扩张,胞浆内脂滴比正常组略有增多。5%或10%川楝子含药血清均可导致肝细胞上清液中LDH,ALT,AST水平不
同程度的升高(P<005或P<001),在24h最为显著。结论:川楝子口服能被机体吸收,其原型药物或代谢产物对肝细胞产
生直接的损伤作用。
[关键词] 川楝子;大鼠;肝组织;超微结构;原代肝细胞
[收稿日期] 20090410
[通信作者]  金若敏,Tel:(021)51322401,Email:rmj801@
126com
  川楝子(《中国药典》2005年版)为楝科植物川
楝的干燥成熟果实,性味苦寒,有小毒,现代关于川
楝子的实验研究较少,关于其毒性的研究则更少。
已有的研究结果表明,川楝子可致大鼠或小鼠急性
肝损伤,主要表现为血清ALT,AST的显著升高[12],
其导致肝损伤的机制与炎症反应关系密切[3],为进
一步明确川楝子致肝毒性的特点,进行本实验研究。
1 材料
1.1 药材及制备
药材购于上海养和堂张江分店,产地四川,批号
060526,060825,经上海中医药大学中药学院赵志礼
教授鉴定系为楝科植物川楝MeliatoosendanSieb.et
Zucc.的干燥成熟果实。
川楝子提取液(水提醇沉):将药物粉碎至颗粒
状,水煎3次,3次加水量与药物质量比分别为3∶1,
2∶1,1∶1。每次先以武火煮沸,再以文火煮30min,
过滤,合并3次药液,加95%乙醇至含量为70%,4
℃冰箱放置过夜,滤去沉淀,回收乙醇,将上述水提
醇沉液浓缩至10g·mL-1,置4℃冰箱,避光保存
备用。临用前,用蒸馏水分别配成所需浓度的溶液
(以下简称“川楝子”)。
1.2 试剂
Ⅳ型胶原酶,Sigma公司,批号 C5138。大豆胰
蛋白酶抑制剂,Sigma公司,批号D4291。MEM,PAA
公司,批号 E825061105。492%Ficol液,PAA公
司,批号 J004061002。小牛血清,PAA公司,批号
B001040786。青霉素链霉素浓缩液,PAA公司,批
号K925391008。1640培养液,GIBCO公司,批号
1384135。乳酸脱氢酶(LDH)试剂,批号 M608279;
丙氨酸转移酶(ALT)试剂,批号M609142;天冬氨酸
转移酶(AST)试剂,批号 M608073,均为 BECKMAN
公司生产。其他试剂均为分析纯,由国药集团化学
试剂有限公司提供。
1.3 动物
SD大鼠,雄性,体重100~120g,180~200g及
300~350g,清洁级,上海斯莱克实验动物有限公司
购买,合格证号 SCXK(沪)20030002。上海中医药
大学实验动物中心清洁级环境饲养。
1.4 仪器
TECNAI12型透射电镜,荷兰菲利浦公司。
LXJⅡ离心沉淀机,上海医用分析仪器厂。BX51/
BX52型正置系统显微镜及图像分析系统,日本奥林
巴斯光学株式会社。5804REppendorf冷冻离心机,
Ependof公司。全自动生化仪 SYNCHRONLxi725
型,BECKMAN公司。
2 方法
2.1 川楝子对肝脏微观病理形态的影响
取SD大鼠,体重180~200g,分为正常组、川楝
子组,每组3只,实验前禁食不禁水,过夜。单次灌
胃给予川楝子(含生药)90g·kg-1,正常组给蒸馏
水后,取正常组及川楝子组大鼠肝组织,按电镜要求
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取材,25%戊二醛固定,经1%锇酸固定2h,丙酮
乙醇逐级脱水,环氧树脂包埋,醋酸铀和柠檬铅染
色,超薄切片后,透射电镜下观察。
2.2 川楝子含药血清对原代大鼠肝细胞的直接毒
性作用
2.2.1 川楝子含药血清的制备[4] 取 SD大鼠,体
重300~350g,实验前禁食不禁水,过夜。灌胃给予
川楝子(生药)150g·kg-1,共2次,间隔6h,末次
给药后2h,大鼠麻醉,消毒,打开腹腔,无菌取血后
静置2h,3000r·min-1离心10min,分离血清;56
℃灭活30min,022μm微孔滤膜过滤除菌,分装;
-20℃冰箱保存备用。另取体重300~350g大鼠,
同法制备空白血清(大鼠给等量的蒸馏水)。
2.2.2 原代肝细胞的分离、培养[56] 器械高温消
毒。取体重 100~120g大鼠 1只,禁食不禁水过
夜。处理前禁水4h。麻醉,消毒腹壁,打开腹腔,留
置穿刺针于门静脉,采用两步法灌流肝脏,分离、精
制肝细胞密度约为 5×105个/mL,以 1640培养液
(含L谷氨酰胺、青霉素链霉素浓缩液、10%小牛血
清)悬浮,接种于70mm培养皿中,每皿2mL。37
℃,5%CO2的环境下,CO2恒温培养箱中孵育培养。
约2h细胞贴壁,3~5h后换培养液1次,而后24h
换培养液1次,细胞呈板状成长。
2.2.3 川楝子含药血清对原代大鼠肝细胞的影响
 将222培养的肝细胞随机分为空白组(加空白
血清),川楝子5%含药血清组(川楝子含药血清正
常血清1∶1),川楝子10%含药血清组(仅加川楝子
含药血清),每组3皿,每皿加样200μL。同222
法孵育培养1,2,8,24h后,每皿分别取上清液100
μL,以全自动生化仪检测 LDH,ALT,AST。该实验
重复2次。
2.3 统计方法
计量资料以 珋x±s表示,使用 SPSS130软件进
行统计处理,两组间比较采用t检验,多组间比较采
用单因素方差分析。P<005为差异有显著性。
3 结果
3.1 川楝子对肝脏微观病理形态的影响
大鼠灌胃给予川楝子提取液后2h,肝脏病理组
织学检查结果显示肝细胞水肿或轻度脂肪变性。电
镜下,正常组肝细胞呈多面形,线粒体,内质网等细
胞器丰富,细胞核位于细胞中央,卵圆形,有明显核
仁,核膜清晰,胞浆内偶见脂滴;川楝子组肝细胞体
积增大,线粒体肿胀变性,内质网扩张,胞浆内脂滴
比正常组略有增多(图1)。
A,B.正常对照组;C,D,E.川楝子组(给药后2h)。
图1 川楝子对肝脏病理形态的影响
3.2 川楝子含药血清对原代大鼠肝细胞的直接毒
性作用
与正常组比较,川楝子5%,10%含药血清均可
导致肝细胞上清液中ALT,AST,LDH水平不同程度
的升高(P<005或 P<001),1h即显效,在24h
最为显著,且呈明显的量效关系。结果见表1~3。
4 讨论
本实验研究川楝子对肝组织的急性毒性作用,
既采用整体实验,也采用了体外的细胞实验。
研究结果显示,在整体实验中,川楝子口服
给药可以造成大鼠急性肝损伤,表现为血清
ALT,AST显著升高,肝细胞体积增大,线粒体肿
胀变性,内质网扩张,胞浆内脂滴比正常组略有
增多;体外实验中,川楝子含药血清可使大鼠离
体肝细胞培养上清液中ALT,AST,LDH水平不同
程度的升高,与文献报道一致[7],且川楝子含药
血清对大鼠离体肝细胞的损伤呈现一定的量效
关系,即随着药物在血清中浓度的升高,肝细胞
的损伤程度加深,表明川楝子口服经吸收后,其
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   表1 川楝子含药血清不同时间点对大鼠肝细胞LDH的影响(珋x±s,n=3) U·L-1 
组别 含药血清/% 1h 2h 8h 24h
正常  - 145±31 113±65 125±33 233±95
川楝子 5 290±442) 300±712) 370±1132) 355±115
  10 505±872) 470±322) 650±772) 675±542)
  注:与正常组比较1)P<005,2)P<001(表2,3同)。
表2 川楝子含药血清不同时间点对大鼠肝细胞ALT的影响(珋x±s,n=3) U·L-1 
组别 含药血清/% 1h 2h 8h 24h
正常  - 45±058 43±05 45±058 48±096
川楝子 5 58±15 58±052) 53±05 55±058
  10 65±0582) 60±002) 63±052) 70±0821)
表3 川楝子含药血清不同时间点对大鼠肝细胞AST的影响(珋x±s,n=3) U·L-1 
组别 含药血清/% 1h 2h 8h 24h
正常  - 215±39 225±39 235±48 275±35
川楝子 5 230±29 248±38 260±41 245±49
  10 315±401) 315±371) 348±551) 378±461)
原型药物或代谢产物可对肝细胞产生直接的损伤作
用。至于川楝子产生肝损伤的物质基础,尚有待于
进一步研究。
[参考文献]
[1] 熊彦红,齐双岩,金若敏,等.川楝子对大鼠肝毒性的时效和量
效关系研究[J].江苏中医药,2008,40(7):83.
[2] 齐双岩,熊彦红,金若敏,等.川楝子对小鼠肝毒性的时效和量
效关系研究[J].时珍国医国药,2008,19(11):2694.
[3] 齐双岩,金若敏,刘红杰,等.川楝子致大鼠肝毒性机制研究
[J].中国中药杂志,2008,16:2045.
[4] 李仪奎.中药药理实验方法学[M].2版,上海:上海科技出版
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[5] SeglenPO.Preparationofisolatedratlivecels[J].MethodsCel
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[6] 邓颖,陈杰,毕惠嫦,等.原代肝细胞培养及其在药物代谢和毒
理学研究中的应用[J].中国药理学通报,2006,22(8):900.
[7] 江和基,杨丽英,陈强,等.复方茵芩制剂血清对小鼠体外肝细
胞损伤的保护作用[J].福建农林大学学报:自然科学版,
2008,37(1):84.
[责任编辑 古云侠]
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