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顶空固相微萃取-气相色谱-质谱联用分析紫锥菊干根中挥发性成分



全 文 :[参考文献]
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[责任编辑 王亚君]
[收稿日期] 20070513
[基金项目] 中南林业科技大学科研启动经费(科研1010648项)
[通讯作者] 文瑞芝,Tel:13787121542,Email:csuft_wrz@
126.com
顶空固相微萃取气相色谱质谱联用分析
紫锥菊干根中挥发性成分
文瑞芝1,曾 栋2,袁利萍1,肖红波1
(1.中南林业科技大学 理学院,湖南 长沙 410004;
2.湖南省疾病预防控制中心 理化科,湖南 长沙 410005)
  目前作为紫锥菊药用品种开发研究的菊科紫锥
菊属植物主要有3种(紫锥菊Echinaceapurpurea、狭
叶紫锥菊E.angustifolia和淡白紫锥菊E.palida)。
紫锥菊是一种具有多种免疫功效的植物,已有综
述[1]和专业文献[25]对其活性成分及产品活性的治
疗效果与检测分析进行了报道,其提取物因具有良
好的免疫刺激性、细菌生物抑制活性、抗炎及伤口康
复等效果而被广泛用作一种免疫促进剂。其实,紫
锥菊挥发性成分在其药理学中起到重要作用,关于
该药用植物挥发性物质的分析研究鲜见报道。
固相微萃取(SPME)技术除已用于水和体液介质
中低浓度的有机污染物分析外[6,7],还被广泛应用于
样品中易挥发物的顶空分析[8,9]。有文献报道紫锥菊
根部与地上植物体间成分存在较大差异,其根部较地
上植株含有较多的挥发性成分。本研究利用 SPME
技术结合GCMS对生长在我国境内的紫锥菊干根中
挥发性成分进行了初步的分离分析研究。
1 仪器及条件
HP6890系列气相色谱仪,HP5973质量选择检
测器MSD(Hewlet-Packard,USA);HP-5MS石英
毛细管柱(250μm×300m,025μm)。进样口(不
分流模式)温度为250℃;柱温初始温度50℃维持
1min;以4℃·min-1升至250℃维持100min;载
气为高纯 He,流速为 1mL·min-1;EI源,温度为
230℃;四极杆温度150℃;MSD质量扫描范围 m/z
40~800,倍增电压 EM(V)1424。电子天平(上海
MetlerToledo集团),FZ102微型植物试样粉碎机
(天津市泰斯特仪器有限公司),PolystatCC1恒温水
浴箱(Hubur,USA)。
5-7330型SPME装置和萃取瓶均购自Supelco
公司(Belefonte,PA,USA),备有7,100μm聚二甲
基硅氧烷(PDMS)纤维涂层和 85μm聚丙烯酸酯
(PA)纤维涂层;所购涂层参照操作说明书在 GC进
样口高温活化。
整株紫锥菊干植物采集于九汇现代中药有限公
司(湖南)药材种植基地,经湖南师范大学化学研究
所陈波教授鉴定为菊科紫锥菊属植物紫锥菊 E.
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2008年6月
         
    中 国 中 药 杂 志
ChinaJournalofChineseMateriaMedica
       
Vol.33,Issue 11
June,2008
purpurea,其根经植物试样粉碎机粉碎,过20目筛,
待测。
取等量05g紫锥菊干根粉末3份,分别放入3
个25mL的密闭萃取瓶中,90℃水浴条件下预热30
min,再用配有7,100μmPDMS和85μmPA涂层的
SPME装置分别对每份萃取瓶顶空挥发性成分吸附
30min,然后将涂层插入250℃ GC进样口脱吸附5
min,GCMS分离、分析。
2 结果与讨论
紫锥菊干根中挥发性成分被固相微萃取3种涂
层吸附后,分别经GCMS分离分析,各自扣除空白,
7μmPDMS涂层所得总离子流峰最少(约 20个
峰),100μmPDMS和85μmPA涂层所得总离子流
峰数相当(约112个)。所得谱图与 Nist98标准质
谱库比较对照检索,采取匹配率大于90%的数据结
果,3种萃取头所吸附成分中总共初步鉴定出44个
化合物(表1),鉴定出的化合物按其出峰顺序在表
中列出。
表1 SPME(85μmPA,7,100μmPDMS)顶空吸附Echinaceapurpurea干根挥发性成分及其相对质量分数
No tR/min 化合物名称 分子式 相对质量分数
11) 733 苯异氰酸酯 isocyanatoBenzene C7H5NO 291
21) 795 苯胺 aniline C6H7N 951
31) 1065 2乙酰基吡咯 1(1Hpyrol2yl)ethanone C6H7NO 044
41) 1342 2,3二氢5,7二羟基6甲基4H吡喃4酮2,3dihydro3,5dihydroxy6methyl4Hpyran4oneC6H8O4 300
51) 1612 1,2苯并异噻唑1,2benzisothiazole C7H5NS 018
61) 2245 2,7二甲基萘2,7dimethylnaphthalene C12H12 014
71) 2255 2,6二甲基萘2,6dimethylnaphthalene C12H12 014
81) 2420 叔丁基4羟基苯甲醚 butylatedhydroxyanisole C11H16O2 114
91) 2501 十五烷 pentadecane C15H32 098
101) 2544 2,6二叔丁基对甲酚 butylatedhydroxytoluene C15H24O 443
111) 2566 2,3,6三甲基萘2,3,6trimethylnaphthalene C13H14 060
121) 2631 4,6,8三甲基奥苷菊环4,6,8trimethylazulene C13H14 010
131) 2638 1,6,7三甲基萘 1,6,7trimethylnaphthalene C13H14 012
141) 2680 1,4,6三甲基萘 1,4,6trimethylnaphthalene C13H14 009
151) 3071 十七烷 heptadecane C17H36 049
161) 3263 N,N′甲基四基苯胺 N,N′methanetetraylbisbenzenamine C13H10N2 140
171) 3336 1氯十八烷1chlorooctadecane C18H37Cl 052
181) 3542 环十四烷 cyclotetradecane C14H28 134
191) 3654 14甲基十五烷酸甲酯14methylpentadecanoicacidmethylester C17H34O2 208
201) 3747 n棕榈酸nhexadecanoicacid C16H32O2 113
211) 3818 棕榈酸醋酯hexadecanoicacidethylester C18H36O2 175
221) 4007 1,2二甲基环辛烯 1,2dimethylcyclooctene C10H18 065
231) 4049 亚油酸甲酯9,12octadecadienoicacid,methylester C19H34O2 540
241) 4063 3乙烯基环辛烯 3ethenylcyclooctene C10H16 230
251) 4156 二苯胍 N,N′diphenylguanidine C13H13N3 1765
262) 733 苯异氰酸酯 isocyanatobenzene C7H5NO 266
272) 796 苯胺 aniline C6H7N 1951
282) 2287 1苯基5巯基四氮唑1,2dihydro1phenyl5Htetrazole5thione C7H6N4S 157
292) 3263 N,N′甲基四基苯胺 N,N′methanetetraylbisbenzenamine C13H10N2 140
302) 4160 二苯胍 N,N′diphenylguanidine C13H13N3 5454
312) 4791 三十四烷 tetratriacontane C34H70 069
322) 5163 四十四烷 tetratetracontane C44H90 240
332) 5655 三十六烷 hexatriacontane C36H74 159
342) 5698 N,N′,N″三苯基胍N,N′,N″triphenylguanidine C19H17N3 302
353) 734 苯异氰酸酯 isocyanatobenzene C7H5NO 052
363) 797 苯胺 Aniline C6H7N 080
373) 2118 2,6,10三甲基十二烷2,6,10trimethyldodecane C15H32 019
383) 2193 十四烷 tetradecane C14H30 069
393) 2386 二十烷 eicosane C20H42 084
403) 2478 十九烯1nonadecene C19H38 019
413) 2501 十五烷 pentadecane C15H32 220
423) 2545 2,6二叔丁基对甲酚 butylatedhydroxytoluene C15H24O 500
433) 2793 十六烷 hexadecane C16H34 320
443) 3071 十七烷 heptadecane C17H36 049
453) 3086 2,6,10,14四甲基十五烷2,6,10,14tetramethylpentadecane C19H40 229
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June,2008
续表1
No tR/min 化合物名称 分子式 相对质量分数
463) 3263 N,N′甲基四基苯胺 N,N′methanetetraylbisbenzenamine C13H10N2 065
473) 3335 十八烷 octadecane C18H38 370
483) 3360 2,6,10,14四甲基十五烷2,6,10,14tetramethylhexadecane C20H42 119
493) 3544 十八烯1octadecene C18H36 112
503) 3654 甲酯 hexadecanoicacid,methylester C17H34O2 344
513) 3818 乙酯 hexadecanoicacid,ethylester C18H36O2 251
523) 3829 三十六烷 hexatriacontane C36H74 081
533) 4049 亚油酸甲酯9,12octadecadienoicacid,methylester C19H34O2 731
543) 4063 9,17十八碳二烯醛9,17octadecadienal C18H32O 321
553) 4153 二苯胍 N,N′diphenylguanidine C13H13N3 339
563) 4199 亚油酸醋酯9,12octadecadienoicacid,ethylester C20H36O2 534
  注:1)85μmPA涂层;2)7μmPDMS涂层;3)100μmPDMS涂层
  实验将3种涂层吸附的相同成分在表中加粗突
出。其实涂层对挥发性物质的吸附差异性取决于其
涂层材料性质本身。PDMS涂层是聚二甲基硅氧烷
高分子材料,呈非极性,而 PA涂层是聚丙烯酸酯高
分子材料,呈极性,理论上2种涂层材料对于极性物
质都有较好的吸附效率,实验所选85μmPA涂层
与7μmPDMS涂层对半挥发性物质亦有好的吸附,
100μmPDMS涂层对低分子量物质亦有好的吸附。
就本实验体系而言,85μmPA和100μmPDMS涂
层用于紫锥菊干根挥发性成分分析,所吸附物质明
显要比7μmPDMS涂层多,这说明前2种涂层更适
合于本实验的大部分挥发性物质的吸附分析。
从GCMS已初步鉴定出的物质来看,发现绝大
多数成分不同。那么绝大部分暂时还未能被本实验
鉴定出的色谱峰,其中必然也存在着很大的物质差
异。这表明单一材料的涂层并不能较全面地反映出
紫锥菊干根中的挥发性化学成分,即使7μmPDMS
涂层吸附的成分少也不能排除其对某些特定成分的
有效吸附分析,7μmPDMS色谱图中8~9min与
42min左右的几个色谱峰就是一好的说明。实际
上,材料性质上的互补性差异可使得实验对紫锥菊
干根药材所含挥发性成分的研究范围扩广。
植物体内挥发油的传统研究主要是利用共水蒸
馏或水蒸气蒸馏法对其提取后再进行仪器分析,一
般这种提取方式要持续好几个小时,耗时长,且很多
化合物在提取装置内长时间提取可能会发生一些未
知变化反应,有些不易挥发的物质也可能会与水成
共沸物蒸溜出来,使得分析结果不能较真实地反映
出植物体内的挥发性物质成分。本实验利用 SPME
技术在一定程度上可以避免上述问题,但所选3种
涂层材料的选择吸附性能及分析灵敏性还有限制,
每份结果仅仅只反映出该条件下的萃取情况,紫锥
菊干根内还含哪些易挥发性化合物未被分析检测
到,还需要更全面的深入研究。
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[责任编辑 王亚君]
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