全 文 :·996· 中草菊 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第7期2006年7月
制剂与质量
大孔吸附树脂纯化红花提取物的研究
宋洪涛1,初 阳2,张 倩2,郭 涛3,陈大为2,李可鑫1,刘伟1,颜 呜3
(1.南京军区福州总医院药学科,福建福州 350025;2.沈阳药科大学药学院,辽宁沈阳110016;
3.沈阳军区总医院药剂科,辽宁沈阳 110016)
摘要:目的探讨大孔吸附树脂对红花提取物的纯化条件及纯化效果。方法通过红花黄色素(SY)在树脂上的
吸附量和解吸率筛选树脂的种类;以SY的保留率和转移率为指标考察药液的pH值、上柱吸附体积流量、树脂药
材比、树脂柱径高比、清洗液的pH值及体积流量、洗脱液的种类及体积流量等纯化条件。与乙醇沉淀法进行纯化效
果的比较。结果优化后的纯化条件为采用HPD400A作为吸附树脂,树脂药材比为4:1,树脂柱径高比为l:6,
上柱药液和清洗液pH值为2.0,50%乙醇作为洗脱液,上柱吸附体积流量为4BV/h,清洗和洗脱体积流量为10
Bv/h。在该纯化条件下,SY的转移率为88.8%,与乙醇沉淀法相当,固形物中SY的质量分数约为乙醇沉淀法的
2.6倍,固形物的质量(固形物得率)仅为乙醇沉淀法的38.5%。结论通过纯化条件的优化大大提高了SY的转移
率,大孔吸附树脂法对红花提取物的纯化效果优于乙醇沉淀法。
关键词:红花;红花黄色素;大孑L吸附树脂;纯化
中图分类号:R284.2;R286.02文献标识码:B 文章编号:0253—2670(2006)07—0996—05
PurificationofCarthamustinctoriusextractwi hmacroporousadsorptionresi s
SONGHong—ta01,CHUYan92,ZHANGQian2,GUOTa03,CHENDa—wei2,
LIKe—xinl,LIUWeil,YANMin93
(1.DepartmentofPharmacy,FuzhouGeneralH spitalofNanjingMilitaryRegion,Fuzhou350025,China;2.School
ofPharmacy,ShenyangPharm ceuticalUniversity,Shenyang110016,China;3.DepartmentofPharmacy,
GeneralHospitalofShenyangMilitaryRegion。Shenyang110016,China)
Abstract:ObjectiveTos udytheconditionsandeffectsofpurificationofCarthamustinctorius
extractbyadoptingmacroporuosadsorptionresin.MethodsThekindsofresinweres lectedthroughthe
determinationof ds rptionratioa delutionratioofsaffloweryellow(SY)inresin.Thereservationratio
andtransferingratioofSYwereusedasindextOinvestigatethepurificationconditions,suchasthepH
valueofwaterxtract,theflowspeedforadsorption,theratiooftheresintOcruderug,theratioof
diametertOheightofresincolumn,thepHvalueandflowspeedofcleaningagent,andthekindsandflow
speedofthelutionagent,etc.Thepurificationresultsofmacroporuosadsorptionresiwerecompared
withthealcoholsedimentation.ResultsThoptimumpurificationconditionswerea follows:HPD400A
Macroporuosadsorptionresiwaselectedastheadsorbedresin,theratioofresintOcruderugwas4:
1,theratioofdiametertOheightofresincolumnwasI:6,thepHvalueofwaterxtractndcleaning
agentwasadjustedto2.0,50%alcoholwaschosenaselutionagent,theflowspeedofadsorptionwas4
BV/h.theflowspeedofcleaninga delutionagentwas10BV/h.Underthepurificationcondition,the
transferingratioofSYwas88.8%,approximatedtoth bythealcoholsedimentationme h d.Compared
withthealcoholsedimentationmethod,themacroporousadsorptionresinpurificationmethodcould
increasetheSYcontenti driedsolidabout2.6times,whilebethweightofdriedsolidabout38.5%.
ConclusionThetransferingratioofSYisgreatlyimprovedthroughtheoptimizationof hepurification
conditions.ThemethodofmacroporousadsorptionresipurificationiSsuperiortothemethodofalcohol
sedjmentatjon.
Keywords:CarthamustinctoriusL.; affloweryellow(SY);macroreticularresin;purification
收稿日期:2005—10一i5
基金项目:国家自然科学基金资助项目(30200363);辽宁省博士启动基金资助项目(2001102042)
作者简介:宋洪涛(1968一),男,山东肥城人,博士,主任药师,主要从事药剂学方面的研究。
Tel:(0591)83707254E—mail:sohoto@sohu.com
万方数据
中草芮 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第7期2006年7月·997·
红花为菊科植物红花CarthamustinctoriusL.
的干燥花,具有活血通经、祛瘀止痛的功效,是传统
的活血化瘀中药。红花活血的有效成分主要集中于
水溶性的红花黄色素(saffloryellow,SY),SY为查
耳酮类化合物,具有抑制血小板聚集、抑制血栓形
成、扩张血管、改善心肌缺血、降血压、抗氧化、抗炎
镇痛等作用[】’2]。虽然已有研究报道了红花中SY的
提取纯化方法[3~5],但尚存在不少问题。本实验采用
大孑L吸附树脂法对红花提取物进行了纯化富集,并
对纯化条件进行了筛选优化。
1仪器与材料
UV--2501PC型紫外一可见分光光度计(日本岛
津);ZFQ85A型旋转式蒸发仪(上海医械专机厂);
HZQ—C型空气浴振荡器(哈尔滨市东联电子技术发
展有限公司);668型真空干燥箱Ck连第四仪表厂)。
红花购自沈阳市药材公司,经鉴定为菊科植物
红花C.tinctoriusL.的干燥花;红花黄色素A对照
品(中国药品生物制品检定所);红花黄色素(日本旭
化成株式会社);大孑L吸附树脂(D一101、D一201、D一
301型购自天津农药股份有限公司,HPD系列及
D900型购自河北省沧州宝恩化工有限公司);聚酰
胺薄膜(浙江台州市路桥四青生化材料厂);a一萘酚
(中国医药集团上海化学试剂公司);其他试剂均为
分析纯。
2方法与结果
2.1 标准曲线的建立:精密称取红花黄色素A对
照品10mg,置于100mL量瓶中,加水溶解并稀释
至刻度,摇匀。精密吸取该液适量,加水配成一系列
质量浓度的对照品溶液,在401nm波长处测定吸
光度。以吸光度(A)对红花黄色素A质量浓度(C,
tMg/mL)进行线性回归,结果表明,红花黄色素A在
2.5~15p.g/mL与吸光度线性关系良好,回归方程
为C一23.07A一0.1256,r一0.9999。
2.2红花水提液的制备:称取红花药材100g,加
14倍量水,浸泡30min,加热提取,药渣再加12倍
水提取,每次20min[3]。合并提取液,滤过,将滤液减
压浓缩至提取液含生药0.1g/mL,滤过,滤液备用。
临用前,于401am波长处测定吸光度,计算红花黄
色素(SY)的质量分数。
2.3清洗终点与洗脱终点的判断
2.3.1清洗终点的判断:采用Molish反应。吸取1
mL清洗液,加5%a一萘酚乙醇溶液3滴,摇匀。沿试
管壁缓缓加入0.5mL浓硫酸,如在试液与硫酸的
交界面处,很快形成紫色环,表明有还原糖类、多糖
或苷类的存在。以Molish反应阴性作为清洗终点。
2.3.2洗脱终点的判断:采用TLC检查法[5]。吸取
洗脱液,点样于聚酰胺薄膜上,以醋酸乙酯一甲醇一
3.6%盐酸(1:3:6)为展开剂于密闭容器内上行展
开,以在254am紫外灯下观察无荧光斑点作为洗
脱(SY解吸)终点。
2.4吸附条件的选择
2.4.1树脂的选择:精密称取各种干树脂0.5g,置
锥形瓶中,加入SY水溶液(5mg/mL)40mL,放入
恒温(25‘C)摇床中振荡24h。取滤液于401am处
测定溶液中SY质量浓度。将吸附平衡后的树脂转
移至色谱柱中,用50%乙醇解吸,测定解吸液中SY
质量浓度。按下式计算吸附量和解吸率。结果(表
1)表明,各种大孔吸附树脂的吸附量与解吸率均不
同,其中HPD400A型吸附量较大,且解吸率较高。
故本实验选用HPD400A型大孔吸附树脂。
吸附量一溶液体积×(吸附前溶液质量浓度一吸附后溶
液质量浓度)/干树脂质量
解吸率一(洗脱液的平衡质量浓度×洗脱液体积)/(吸
附量×树脂质量)×100%
表1 不同类型大孔树脂对SY的静态吸附量及解吸率
Table1 Adsorptionratioa delutionratio
ofSYinvariouskindsofresin
树脂 吸附量/ 解吸 树脂 吸附量/ 解吸
型号(mg·g_1)率/%型号(mg·g。)率/%
D—101 193 84.2 HPD450185 89.9
D一201 152 95.1 HPD500194 86.3
D一301 179 93.4 HPD600149 92.1
HPDl00222 88.0 HPD700179 78.7
HPD300229 94.2 HPD750207 97.0
HPD400206 90.3 HPD800168 94.6
HPD400A237 96.1 D900 28l 6.9
2.4.2 药液pH值对SY泄漏曲线的影响:取
HPD400A型干树脂3.0g湿法装柱(内径7mm),
将2mg/mLSY水溶液分别调pH值为1.0、2.0、
3.0、5.0、7.0,然后分别以6BV/h的流速通过树脂
柱,分段收集流出液。以流出液的相当于床体积的倍
数(倍床体积,BV)与流出液中SY的浓度作图,结
果(图1)表明,溶液pH值对SY的吸附有显著影
响,随着pH值的增加,SY在树脂上的吸附力及吸
附速度显著减小,当pH值大于5.0时,SY水溶液
极易穿透树脂床,当pH值为2.0时,SY即可在树
脂床上产生较好的吸附。
2.4.3上柱吸附体积流量对SY保留率的影响:将
红花水提液调节pH值为2.0,精密吸取7.5mI。分
别以2、4、6、8、10BV/h的体积流量上柱吸附,收集
万方数据
·998· 中草芮ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第7期2006年7,el
20 40 60
流出液倍床体积/BV
图1溶液pH值对SY泄漏曲线的影响
Fig.1EffectsofsolutionpHvalue
onSYleakagecurves
流出液,静置1h。然后用16BV的pH2.0水溶液
以loBV/h进行清洗,收集流出液。合并2次的流
出液,测定SY的质量浓度,计算SY在树脂柱上的
保留率。结果(表2)表明,上柱吸附体积流量过快,
SY损失较大,当吸附体积流量小于4BV/h时,SY
保留率较高。
表2上柱吸附体积流量对sY保留率的影响
Table2 Effectsofadsorptionflowspeed
onSYreservationratio
上柱吸附体积流量/(BV·h一) SY保留率/%
2.4.4树脂药材比对SY转移率的影响:调整红花
水提液的上柱量,使树脂药材比(干树脂与水提液中
红花药材的质量比)分别为4:1、2:1、1:1、
0.5:1、0.25:1,以50%乙醇溶液作为洗脱溶液,
在10BV/h下进行解吸,收集洗脱液,测定SY的质
量浓度,计算SY的转移率。结果(表3)表明,树脂药
材比在4:1~2:1时,SY保留率较高,考虑到树脂
药材比越小,上柱时间越长,为减少上柱时间,确定
树脂药材比为4:1。
表3树脂药材比对SY转移率的影响
Table3 Effectsofratioofresintocrude
drugonSYtransferingratio
树脂药材比 SY转移率/% 树脂药材比 SY转移率/%
4 l 1 90.2 0.5 :1 81.1
2 l 1 90.O 0.25:1 68.2
1 l 1 87.4
2.4.5树脂径高比对SY转移率的影响:取不同量
的干树脂湿法装柱,使径高比分别为1:3、1:6、
1:9、1:12,按树脂药材比为4:1,精密吸取红花
提取液上柱,清洗后洗脱,收集洗脱液,测定SY的
质量浓度,计算SY的转移率。结果(表4)表明,树脂
柱径高比在1:6~1:12时,SY的转移率均较高,
考虑到工业化生产的可行性,径高比确定为1:6~
1:9较为妥当。
表4树脂径高比对sY的转移率的影响
Table4 Effectsofratioofdiametertoheightof
resincolumnonSYtransferingratio
树脂径高比 SY转移率/% 树脂径高比 SY转移率/%
1:3 85.3 1:9 91.2
1:6 90.5 1 l 12 90.1
2.5清洗条件的选择
2.5.1清洗液pH值对SY保留率的影响:取3.0g
干树脂湿法装柱,将红花水提液调节pH值为2.0,
精密吸取7.5mL以4BV/h的体积流量上树脂柱
吸附,静置1h。然后,分别用16BV/h的pH2.0、
4.0、6.0和8.0的水溶液以10BV/h进行清洗,收
集流出液,测定SY的质量浓度,计算SY在树脂柱
上的保留率,结果(表5)表明,随着清洗液pH值的
提高,SY的损失越大,采用pH2.0水溶液清洗杂
质较为合适。当pH2.0清洗液用量为16BV时,即
可将多糖等杂质基本清洗除净。
表5清洗液pH值对SY保留率的影响
Table5 EffectsofcleaningagentpHvalue
onSYreservationratio
清洗液pH值SY保留率/%清洗液pH值SY保留率/%
2.O 93.1 6.0 49.2
4.0 64.0 8.0 29.1
2.5.2清洗液体积流量SY保留率的影响:装柱及
上样方法同2.5.1项下方法。用16BV的pH2.0
水溶液分别以2.5、5、10、20、30BV/h的流速进行
清洗,收集流出液。测定SY的质量浓度,计算SY在
树脂柱上的保留率。结果(表6)表明,清洗体积流量
在2.5~20BV/h时,SY的保留率均较高。具体操
作时,为加快实验进程,可在清洗液流速控制范围内
适当增大清洗流速。
表6清洗液体积流量对sY的保留率的影响
Table6 Effectsofcleaningagentflowspeed
onSYreservationratio
清洗液体积流量/(BV·h。) SY保留率/%
90.1
91.4
92.3
91.0
88.4
2.6洗脱条件的选择
2.6.1不同洗脱液对SY转移率及其洗脱曲线的
影响:装柱、上样及清洗方法同2.5.2项下方法。分
0
6
2
8
4
O
2
l
1
O
O
一.白Ⅱ.∞g)/谜蛏蛹蜒≯∞子饕订1媛
万方数据
中草药ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第7期2006年7月·999·
别用15%、30%、50%、70%乙醇溶液以10BV/h的
流速进行解吸,收集洗脱液,测定SY的质量浓度,
计算SY的转移率。结果(表7,图2)表明,当乙醇体
积分数大于50%时,对SY具有较高的洗脱能力,但
随着乙醇体积分数的增加,溶液颜色明显变深,说明
已将许多有色杂质洗下。因此以50%乙醇作为洗脱
液较为妥当。
衰7不同体积分数乙醇溶液对SY转移率的影响
Table7 EffectsofvariousalcoholcOncentratiOn
onSYtransferingratio
洗脱液 SY转移率/% 洗脱液 SY转移率/%
15%乙醇 51.2 50%乙醇 91.7
30%乙醇84.2 70%乙醇 91.6
80
0 2 4 6 8 10
洗脱液倍床体积/BV
图2不同体积分数乙醇溶液对SY洗脱曲线的影响
Fig.2Effectsofvariousalcoholc ncentration
onSYelutioncurves
2.6.2洗脱液体积流量对SY转移率及其洗脱曲
线的影响:装柱、上样及清洗方法同2.5.2项下方
法,50%乙醇溶液作为洗脱溶液,分别以5、10、20、
30BV/h的流速进行解吸,收集洗脱液,测定,计算
SY的转移率。结果(表8,图3)表明,SY的洗脱流速
控制在10BV/h以下较好。
表8洗脱液体积流量对SY转移率的影响
Table8 Effectsofelutionagentflowspeed
onSYtransferingratio
洗脱体积流量/(BV·h-1) SY转移率/%
2.7 大孔吸附树脂法与乙醇沉淀法的比较
2.7.1传统的水提乙醇沉淀法:将红花水提液减压
浓缩至质量浓度约为1g生药/mL,调pH值至
2.0,缓慢搅拌下加入一定量95%乙醇,使药液乙醇
体积分数升为65%,抽滤。滤液再加一定量95%乙
醇,使药液乙醇体积分数升为85%,抽滤。减压浓缩
,
皇
面
喜
型
避
蚓
蟮
磊
岳
键
翟
螺
2 4 6 8 10
沈脱液倍床体积/BV
1-5BV/h2-10BV/h3-20BV/h4—30BV/h
图3洗脱液流速对SY洗脱曲线的影响
Fig.3Effectsofelutionagentflowspeed
onSYelutioncurves
后置真空干燥箱内干燥,称质量,精密称取适量测定
SY的质量分数。计算固形物收率,固形物中SY的
质量分数,SY的转移率,结果见表9。
表9 乙醇沉淀法与大孔吸附树脂法纯化效果的比较
Table9 Comparisonofpurificationeffectsbetween
macroporousresinmethodandalcohol
sedimentationme hod
方法 SY转移率/%固形物中SY/%固形物得率/%
2.7.2大孔吸附树脂纯化法:取100g干树脂湿法
装柱,树脂径高比为1:6,将红花水提液(o.1g生
药/mL)调节pH值为2.0,按树脂药材比为4:1精
密量取适量,以4BV/h的流速上柱吸附,静置1h
后,用pH2.0水溶液以10BV/h的流速进行清洗。
然后,用50%乙醇溶液以10BV/h的体积流量进行
解吸,收集洗脱液,减压浓缩后置真空干燥箱内干
燥,称质量,精密称取适量测定SY的质量分数。计
算固形物收率,固形物中SY的质量分数,SY的转
移率。结果(表9)表明,采用大孔吸附树脂法纯化,
SY的转移率稍高于乙醇沉淀法,固形物中SY的质
量分数约为乙醇沉淀法的2.7倍,固形物的质量(固
形物得率)仅为乙醇沉淀法38.5%。可见,大孔吸附
树脂法使红花提取物得到了更好地富集和纯化。
3讨论
3.1 不同厂家不同型号的大孔吸附树脂对SY的
吸附量与解吸率均不同,其中HPD400A型吸附量
较大,且解吸率较高。本实验选用HPD400A型大孔
吸附树脂作为红花中SY的吸附纯化树脂。
3.2红花水提液的pH值约为5,在该pH值下,溶
∞
∞
∞
如
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加
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0
∞
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加
。
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万方数据
·1000· 中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第7期2006年7月
液中的SY极性较强,在树脂上吸附较慢,且吸附力
较弱,极易穿透树脂床,造成SY的泄漏。pH值越
赢,泄漏越严重。因此,上样前需调节pH值至2.0,
以降低SY的极性,增加SY在树脂上的吸附,减少
泄漏。此外,SY在树脂床上的吸附需要有一个过
程,若药液的上柱吸附体积流量过快,部分SY未及
吸附就会泄漏,因此,应适当控制吸附体积流量。本
实验结果表明,当吸附体积流量为4BV/h时,即可
保证SY较高的保留率。具体实验时,由于红花水溶
液具有颜色,也可通过肉眼观察,调节流速,控制大
孔树脂柱色带在整个树脂柱的2/3以内,也可保证
SY具有较高的保留率。
3.3由于pH值会显著影响SY的极性,因此,在用
水溶液清洗杂质时,应调节其pH值至2。0为宜,以
保证在清洗杂质的同时不至于造成SY的过多流
失。清洗液的体积流量亦不宜太快,以在10~20
BV/h为宜。
3.4树脂药材比是影响SY转移率的重要因素,树
脂药材比值过小,会引起药量超载,使药物泄露流
失,降低保留率。树脂药材比值越大,保留率越高,但
过大会造成上柱时间的延长,增加成本。本实验结果
表明,树脂药材比为2;1~4:1即可。
3.5 树脂的径高比对SY的转移率亦有较大影响,
在树脂柱直径一定的条件下,树脂高度越高,柱效越
高;太低则柱效过低,SY的吸附路径短,容易造成
泄漏。本实验结果表明,树脂柱径高比在1:6--1:
12时,SY的转移率均较高,考虑到工业化生产的可
行性,径高比确定为1:6~1:9较为妥当。
3.6随着洗脱用乙醇体积分数的提高,SY的洗脱
率与洗脱速率逐渐增大,但杂质也随着增加,说明高
体积分数乙醇对SY的分离效果较差。因此,在保证
洗脱率较高的条件下,应选用较低体积分数的乙醇
溶液,以减少脂溶性杂质,提高洗脱液的纯度。但体
积分数太低,洗脱速度过慢,洗脱液用量大,同时鉴
于洗脱终点检查的灵敏度,可能会造成洗脱不完全,
因此,应选择一个适中的体积分数。本实验结果表
明,以50%乙醇作为洗脱液即可达到较好的洗脱效
果。洗脱液流速对SY的洗脱亦有显著影响,过快会
导致SY来不及解吸附而造成损失,本实验结果表
明,洗脱流速控制在10BV/h以下较好。
3.7在优化条件下,采用大孔吸附树脂法纯化红花
提取物,SY的转移率为88.8%,与乙醇沉淀法相
当,固形物中SY的质量分数约为乙醇沉淀法的2.6
倍,固形物的质量(固形物得率)仅为乙醇沉淀法
38.5%。可见,大孔树脂法对SY的富集与纯化效果
远优于乙醇沉淀法,值得在生产中推广使用。
3.8 大孔吸附树脂由于具有良好的分离纯化性能
及稳定性,在中药成分精制纯化中的应用越来越广
泛[6]。有文献采用大孑L树脂法对红花中的SY进行
过纯化研究[46],但由于纯化条件考察的不够全面,
特别是未对上柱药液及清洗液的pH值进行考察,
造成SY在上柱及清洗过程中的损失,致使SY的转
移率不够理想。因此,在实际应用大孔树脂纯化的过
程中,应详细了解待分离成分的理化性质,对树脂的
种类,药液的pH值,上柱吸附体积流量,树脂药材
比,树脂柱径高比,清洗液的pH值、用量及体积流
量,洗脱液的种类、用量及体积流量,清洗终点与洗
脱终点的判断等纯化条件进行具体研究,以期提高
其纯化效果和目标成分的转移率。
3.9 大孑L树脂法对多糖和蛋白多肽类成分的除去
效果较好,但对鞣质的除去效果较差。在本实验的纯
化条件下,SY质量分数只有27.5%,尚不太高,有
待于进一步优选纯化条件或与其他纯化方法联合应
用,以期在保证获得较高转移率的前提下进一步提
高其纯度。
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作者更正:本刊2006年第6期第848页表2中野黄芩苷的校正因子为1.8549。
万方数据
大孔吸附树脂纯化红花提取物的研究
作者: 宋洪涛, 初阳, 张倩, 郭涛, 陈大为, 李可鑫, 刘伟, 颜鸣, SONG Hong-tao,
CHU Yang, ZHANG Qian, GUO Tao, CHEN Da-wei, LI Ke-xin, LIU Wei, YAN Ming
作者单位: 宋洪涛,李可鑫,刘伟,SONG Hong-tao,LI Ke-xin,LIU Wei(南京军区福州总医院,药学科,福
建,福州,350025), 初阳,张倩,陈大为,CHU Yang,ZHANG Qian,CHEN Da-wei(沈阳药科大学
药学院,辽宁,沈阳,110016), 郭涛,颜鸣,GUO Tao,YAN Ming(沈阳军区总医院药剂科,辽宁
,沈阳,110016)
刊名: 中草药
英文刊名: CHINESE TRADITIONAL AND HERBAL DRUGS
年,卷(期): 2006,37(7)
被引用次数: 9次
参考文献(6条)
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本文读者也读过(10条)
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用红花提取物纯化方法优选[期刊论文]-中草药2007,38(12)
2. 陈燕忠.张纪兴.吕竹芬 红花中红花黄素A的分离工艺研究[期刊论文]-中药材2004,27(9)
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5. 张帆.曾斌芳.ZHANG Fan.ZENG Bin-fang 红花黄色素的综合提取[期刊论文]-时珍国医国药2007,18(7)
6. 蔡薇.黄罗生.金雪锋.孔令义.CAI-Wei.HUANG Luo-sheng.JIN Xue-feng.KONG Ling-yi 红花提取工艺探讨[期刊
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7. 廖彬.杨瑛.杨永华.蔡光先 粒度对红花水提工艺的影响研究[期刊论文]-中成药2008,30(12)
8. 张亮.林鹏程.李虎业.马学华 大孔吸附树脂纯化羟基红花黄色素A的研究[期刊论文]-安徽农业科学2010,38(17)
9. 赵维亮.孙明珍.石秀伟 大孔树脂纯化红花黄色素的影响因素考察[期刊论文]-中成药2008,30(10)
10. 刘玉杰.年春红 红花中红花黄色素的提取与纯化工艺研究[期刊论文]-中国民族医药杂志2008,14(4)
引证文献(9条)
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2.于美玲.邓传良.高武军.卢龙斗 红花研究进展概述[期刊论文]-生物学教学 2009(11)
3.刘晶.张会宗.邸子真.于绍军 大孔吸附树脂纯化红花黄色素研究[期刊论文]-中成药 2009(6)
4.付妍.宋洪涛.毕开顺.陈晓辉 不同干燥方法对红花中有效成分的影响[期刊论文]-医药导报 2009(5)
5.张吉祥.白晓杰.周秋香.欧来良.孔德领 大孔吸附树脂分离纯化红花黄色素的研究[期刊论文]-时珍国医国药
2009(8)
6.王俊永.梁生旺.南海军 RP-HPLC法测定脑得生片中羟基红花黄色素A的含量[期刊论文]-广东药学院学报 2007(6)
7.初阳.宋洪涛.李丹.陈大为.刘丹.刘任 注射用红花提取物纯化方法优选[期刊论文]-中草药 2007(12)
8.黄明发.郭莉.苏学素.焦必宁.付陈梅 红花黄色素的研究进展[期刊论文]-中国调味品 2008(6)
9.杨艳红.戴富华.李湘洲.刘慎 红花黄色素的提取研究[期刊论文]-安徽农业科学 2008(25)
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