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Seed characters and genetic variation of Oxytenanthera abyssinica

锐药竹的种子性状及分子遗传变异



全 文 :  Guihaia  Aug. 2016ꎬ 36(8):943-948
http: / / journal.gxzw.gxib.cn
http: / / www.guihaia-journal.com
DOI: 10.11931 / guihaia.gxzw201411038
廉超ꎬ 张国武ꎬ 冯云ꎬ 等. 锐药竹的种子性状及分子遗传变异 [J]. 广西植物ꎬ 2016ꎬ 36(8):943-948
LIAN Cꎬ ZHANG GWꎬ FENG Yꎬ et al. Seed characters and genetic variation of Oxytenanthera abyssinica [J]. Guihaiaꎬ 2016ꎬ 36(8):943-948
锐药竹的种子性状及分子遗传变异
廉  超1ꎬ 张国武2ꎬ 冯  云1ꎬ 冉  洪1ꎬ 张  莹1ꎬ 郭起荣1∗
( 1. 国际竹藤中心 国家林业局竹藤科学与技术重点实验室ꎬ北京 100102ꎻ 2. 国家林业局桉树研究开发中心ꎬ广东 湛江 524022 )
摘  要:锐药竹(Oxytenanthera abyssinica)是非洲竹区最重要的竹种ꎬ对当地民众生活、生产和环保具有重要作
用ꎬ也是保护当地环境的重要组成成分ꎮ 然而ꎬ对这样重要的竹种ꎬ非洲内、外均少见其遗传研究报道ꎮ 该研
究对采自埃塞俄比亚的同一居群锐药竹少见的开花结实种子ꎬ采用“林木种子检验规程”国家标准ꎬ测定种子
的主要性状ꎬ并对其遗传品质进行了分析ꎮ 结果表明:锐药竹的种子长度为 18.2 mmꎬ宽度为 3.3 mmꎬ千粒重
为 117.5 gꎬ室内发芽率为 66.5%ꎮ 性状变异与其他竹类相近ꎬ变异不大ꎮ 将这批种子育苗 15 000多株ꎬ随机选
择 39株ꎬ典型选择 25个叶片大的植株ꎬ共 64个单株ꎬ采集叶样ꎬ运用扩增片段长度多态性(AFLP)分子标记
技术进行遗传多样性检测ꎮ 筛选 E ̄ACA / M ̄CAA等 8对引物对样品经行扩增ꎬ电泳分离ꎬ利用 GeneScan 3.1软
件共统计到 1 728条谱带ꎬ计算出其多态位点百分率 90.28%ꎬNei’ s基因多样性指数 0.246 3ꎬShannon 多样性
指数 0.362 3ꎬ为遗传多样性大的类型ꎻ采用单匹配相似系数法对样品谱带进行 UPGMA聚类ꎬ取 SM= 0.76ꎬ可
将分析样品聚为 3类ꎬ结合表型进一步进行种质挖掘研究ꎮ 该研究结果为其生物多样性保育及选育优良品种
提供了科学依据ꎮ
关键词: 非洲竹区ꎬ 种子性状ꎬ 种子批ꎬ AFLPꎬ 种质资源
中图分类号: Q943    文献标识码: A    文章编号: 1000 ̄3142(2016)08 ̄0943 ̄06
Seed characters and genetic variation of
Oxytenanthera abyssinica
LIAN Chao1ꎬ ZHANG Guo ̄Wu2ꎬ FENG Yun1ꎬ RAN Hong1ꎬ
ZHANG Ying1ꎬ GUO Qi ̄Rong1∗
( 1. International Center for Bamboo and Rattanꎬ SFA Key Laboratory of Bamboo and Rattan Science and Technologyꎬ Beijing
100102ꎬ Chinaꎻ 2. China Eucalyptus Research Centreꎬ State Forestry Administrationꎬ Zhanjiang 524022ꎬ China )
Abstract: Oxytenanthera abyssinica is the most important indigenous bamboo in Africa. It plays an important role in local
lifeꎬ production and environment protection. Howeverꎬ the study of its genetic variation is little. We studied seed charac ̄
ters and its variationꎬ as well as the genetic variation of its seedlings abide by GB2772 ̄1999. The length of seeds was
18.2 mmꎬ width was 3.3 mmꎬ 1 000 seed mass was 117.5 g and germination percentage was 66.5%. The results showed
that little variation occurred in its seed charactersꎬ and variation degree was similar to that of other bamboos. More than
15 000 seedlings was culturedꎬ leaves of 64 individuals were chosen as test material typicallyꎬ 39 of them were chosen
randomly and 25 individuals with big leaves. AFLP was applied to test its genetic variationꎬ eight pair of primers are
used. After electrophoretic separationꎬ 1 728 lines was calculated by GeneScan 3. 1. It occurred that its PPB was
收稿日期: 2014 ̄11 ̄27    修回日期: 2015 ̄03 ̄20
基金项目: 国家“948”项目 (非洲重要特有经济竹子种质资源引进) (2012 ̄4 ̄48) [Supported by the National Program of Introducing Advanced Agri ̄
cultural Science and Technology from Africa (2012 ̄4 ̄48)]ꎮ
作者简介: 廉超(1990 ̄)ꎬ男ꎬ山东费县人ꎬ在读硕士研究生ꎬ主要从事竹类种质资源繁育与利用研究ꎬ(E ̄mail)lianchaolinyi@ 163.comꎮ
∗通讯作者: 郭起荣ꎬ博士ꎬ教授ꎬ博士生导师ꎬ主要从事竹子种质资源研究ꎬ(E ̄mail)qrguo@ icbr.ac.cnꎮ
90.28%ꎬ Nei’s gene diversity index was 0.243 6ꎬ Shannon index was 0.362 3. The result showed that the genetic varia ̄
tions was abundant in O. abyssinica. Based on simple matching coefficient(SM)ꎬ the individuals were clustered by UPG ̄
MA cluster analysis. It indicated that the SM index ranged from 0.73 to 0.85. The samples can be clustered into three
classes when SM similarity coefficient is 0.76. Combine phenotypic and physiological indicators systematic germplasm ex ̄
aviation is further needed. This study will provide scientific information for biodiversity breeding and improved breeds.
Key words: African bamboo areaꎬ seed charactersꎬ seed lotꎬ AFLPꎬ germplasm resource
    锐药竹(Oxytenanthera abyssinica)隶属禾本科竹
亚科(PoaceaeꎬBambusoideae)ꎬ为非洲特产ꎬ是非洲
最主要的乡土竹种之一(Ohrnbergerꎬ1999ꎻ廉超等ꎬ
2014)ꎬ具有多种经济、社会和生态价值(Kelbessa et
alꎬ2000ꎻKigomoꎬ2007)ꎮ 由于缺乏有效群体ꎬ竹类
植物遗传育种学研究举步维艰ꎮ 而在探究物种遗传
变异结构的基础上ꎬ进行种质资源发掘、系统评价ꎬ
开展品种选育是提高植物产量和品质的重要途径ꎮ
种子性状的表型差异是环境或遗传共同作用的的结
果ꎬ研究种子的表型性状是探究植物遗传变异结构
的重要部分(Divakara et alꎬ2010ꎻRawatꎬ2011ꎻ武冲
等ꎬ2014)ꎮ 由于竹类植物长期进行无性繁育ꎬ开花
结实难为可见ꎬ仅见料慈竹(Bambusa distegia) (段
春香ꎬ2008)、筇竹(Chimonobambusa tumidissinoda)
(董文渊ꎬ2002)、吊丝竹(Dendrocalamus minor) (徐
振国ꎬ2013)、毛竹(Phyllostachys edulis) (蔡春菊等ꎬ
20008)等少数竹种的种子性状的变异研究ꎮ
目前ꎬ利用分子标记手段研究竹类植物种内遗
传变异也有少量报道ꎬ孝顺竹(Bambusa multiplex)
(袁金玲ꎬ2010)、麻竹(Dendrocalamus latiflorus) (杨
秀艳ꎬ 2007 )、版纳甜龙竹 ( D. parishii) (杨清ꎬ
2006)、毛竹(沈晓婷ꎬ2012ꎻ杨春生等ꎬ2014)等几个
竹种一定居群范围内的分子遗传多样性已有研究ꎬ
对非洲这个最重要竹种的遗传变异研究报道较少ꎮ
本文研究了锐药竹种子性状ꎬ并播种育苗ꎬ分析了种
子有性后代的遗传变异ꎬ为生物多样性保育ꎬ选育优
良品种提供科学依据ꎮ
1  材料与方法
1.1 材料
锐药竹种子于 2012 年 3 月采自埃塞俄比亚的
Afar sezem kebeles 地区的同一居群内ꎬ种子清理干
净后ꎬ贮藏于 4 ℃冰箱中ꎮ 于 2013 年 6 月ꎬ在国家
林业局南方种苗基地(隶属国家林业局桉树研究与
开发中心ꎬ广东湛江)采用轻基质营养袋育苗ꎬ营养
袋规格 14 cm × 17 cmꎬ温汤浸种ꎬ高锰酸钾消毒ꎬ轻
基质按照细土 ∶ 泥炭土 ∶ 椰壳粉 = 6 ∶ 3 ∶ 1 配置ꎬ
进行日常管理ꎮ
播种后 1周苗木出齐ꎬ8月初停止高生长ꎬ 开始
出现分蘖苗ꎬ11月底ꎬ完成第一代分蘖苗高生长ꎬ此
时苗木高 33.2~50.0 cmꎬ木质化程度较好ꎬ即可出圃
定植ꎮ 本研究育成竹苗 15 000 多株ꎬ发现叶片变异
较大ꎬ为了分析这批种子苗的遗传多样性ꎬ采用类似
超级苗选择的方法ꎬ目测挑选 25 株叶片较大者ꎬ挂
牌编号 O1 ̄O25ꎬ同时从每床苗中均匀随机取样 4~5
正常植株ꎬ共 39 株ꎬ编号 O26 ̄O64 用于分子分析ꎮ
采集的叶片采用硅胶快速干燥法ꎬ带回实验室ꎬ置于
4 ℃冰箱保存、备用ꎮ
1.2 方法
锐药竹种子性状按照国家标准«林木种子检验
规程»(GB / T 2772 ̄1999)进行长度、宽度、千粒重、
发芽率等形态和质量指标测定ꎮ
种子苗选定叶样采用改良 CTAB 法提取 DNAꎬ
使用 0.8%的琼脂糖凝胶电泳检测ꎮ 酶切体系:200
ng DNAꎬ1 μL Adapterꎬ 2 μL EcoRI / MseIꎬ 2. 5 μL
10 × reaction bufferꎬ2.5 μL 10 mmol􀅰L ̄1 ATPꎬ1 μL
T4 Ligaseꎬ用 ddH2O补充至 20 μLꎮ 混匀离心 10 sꎬ
37 ℃保温 5 hꎬ然后 8 ℃保温 4 hꎬ4 ℃过夜ꎮ 预扩增
时取 100 ng DNAꎬ0.5 μL dNTPsꎬ2.5 μL 10 × PCR
bufferꎬ0.5 μL Taq 酶ꎬddH2O 补充至 25 μLꎬ离心后
进行 PCR扩增ꎮ 预扩产物 1 ∶ 20 稀释后作为选扩
模板ꎬ按以下体系混匀:2 μL 预扩稀释样品ꎬ2.5 μL
10 × PCR bufferꎬ0.5 μL dNTPꎬ EcoRI 和 MseI 引物
各 1 μL(共 8对)ꎬ0.5 μL Taq 酶ꎬddH2O 补充至 25
μLꎮ 离心数秒后进行 PCR 扩增ꎬ第一轮扩增参数:
94 ℃ 30 sꎬ65 ℃ 30 sꎬ72 ℃ 80 sꎮ 以后每轮循环温
度递减 0.7 ℃ꎬ扩增 12轮ꎮ 然后根据 94 ℃ 30 sꎬ55
℃ 30 sꎬ72 ℃ 30 s ꎬ23 个循环ꎬ70 ℃ 5minꎬ4 ℃保
温ꎮ 6%变性聚丙烯酰胺胶电泳分离ꎬ银染检测ꎮ
电泳图用凝胶成像系统 ( ProteinSimple ) 拍
照ꎬ 利用GeneScan3.1读取谱带、转化并统计数据ꎮ采
449 广  西  植  物                                  36卷
表 1  8对引物列表及其扩增的多态性条带率
Table 1  List of primer combination and the percentage of polymorphic bands
编号
No.
引物组合
Primer combination
多态性条带率
PPB (%)
编号
No.
引物组合
Primer combination
多态性条带率
PPB (%)
1 E ̄ACA / M ̄CAA 98.61 5 E ̄ACT / M ̄CTT 83.80
2 E ̄ACA / M ̄CTC 87.50 6 E ̄ACC / M ̄CAA 91.67
3 E ̄ACA / M ̄CTT 92.59 7 E ̄ACG / M ̄CTC 88.89
4 E ̄ACT / M ̄CTG 90.74 8 E ̄AGG / M ̄CAG 91.67
  注: E表示 EcoRI接头 5′>CTC GTA GAC TGC GTA CC<3′ꎻ M表示 MseI接头 5′>GAC GAT GAG TCC TGA G<3′ꎮ
  Note: E represents EcoRI 5′>CTC GTA GAC TGC GTA CC <3′ꎻ M represents MseI 5′>GAC GAT GAG TCC TGA G<3′.
用 PopGene32软件经行 Shannon 指数( I)、Nei’ s 基
因多样性(H)参数计算ꎻNTSYS ̄pc 2.1 软件基于 SM
相似性系数进行 UPGMA聚类ꎮ 选用的外类群为锐
药竹属的酒竹 ( Oxytenanthera braunii) (廉超等ꎬ
2014)ꎬ标识为 OYꎮ
2  结果与分析
2.1 种子性状及其变异
经测定ꎬ该批锐药竹的种子长度平均为 18. 2
mmꎬ变化范围为 13.25 ~ 21.48 mmꎬ变异系数8.8%ꎻ
种子宽度平均 3.3 mmꎬ变化范围在 2.63 ~ 4.12 mm
之间ꎬ变异系数 6.0%ꎻ千粒重均值117.5 gꎬ变化范围
为 103.0 ~ 135.1 gꎬ变异系数 10.5%ꎻ室内发芽率平
均 66.5%ꎬ变化在 62% ~ 74%之间ꎬ变异系数 7.9%ꎮ
从外观上看ꎬ锐药竹种子类似爆米花般大小ꎬ在竹类
植物中属较大粒种子ꎬ其主要性状的变异系数与已
有研究的料慈竹(段春香ꎬ2008)、筇竹(董文渊等ꎬ
2002)、吊丝竹(徐振国等ꎬ2013)等的相近ꎬ而高于
沙罗单竹 ( Schizostachyum funghomii) (徐振国等ꎬ
2013)的种子表型变异ꎮ
2.2 锐药竹的分子遗传多样性
目前ꎬ竹类大多长期依靠自然扩鞭、母竹移栽、
侧枝扦插等无性繁殖方式造林ꎬ在遗传上ꎬ限制了其
多样性变化ꎮ 而经过有性繁殖的植物种子ꎬ经过了
染色体配对ꎬ可能有基因重组或突变的过程ꎬ后代具
有更丰富的遗传变异ꎬ可以形成为具有不同遗传基
础的不同种质ꎬ丰富了遗传多样性ꎬ也为特异 /优异
种质的发掘奠定了遗传基础 ( Ehrlich & Ravenꎬ
1969ꎻ娄永峰ꎬ2010)ꎮ
本研究采集的 64份试验叶样ꎬ利用筛选出 8 对
多样性高、清晰度好的引物进行扩增ꎬ统计得扩增出
表 2  锐药竹与部分竹种的遗传变异对比
Table 2  Ggenetic variation of O. abyssinica and
several kinds of bamboos
竹种名称
Name of bamboo
Nei’s基因
多样性(H)
Nei’s gene
diversity index
Shannon
多样性指数(I)
Shannon
diversity index
锐药竹
Oxytenanthera abyssinica
0.246 3 0.362 3
孝顺竹
Bambusa multiplex
0.040 6~0.179 4 0.060 1~0.265 6
麻竹
Dendrocalamus latiflorus
0.544 2 0.365 5
版纳甜龙竹
D. parishii
0.068 8 0.103 1
毛竹
Phyllostachys edulis
0.004 8 0.007 5
  注: 孝顺竹(袁金玲ꎬ2010)ꎻ麻竹(杨秀艳ꎬ2007)ꎻ版纳甜龙竹(杨清ꎬ2006)ꎻ毛
竹(沈晓婷ꎬ2012)ꎮ
  Note: Bambusa multiplex(Yuanꎬ2010)ꎻ Dendrocalamus latiflorus(Yangꎬ2010)ꎻ
D. parishii(Yangꎬ2010)ꎻ Phyllostachys edulis(Shenꎬ2012).
的多态性条带率(PPB)在 83.80% ~98.61%间ꎬ其中
E ̄ACA / M ̄CAA引物对扩增的多态性位点百分率达
到 98.61%ꎬ多态性为 8对引物中最高(表 1)ꎮ 所得
凝胶图谱如图 1 所示ꎬ利用 GeneScan3.1 软件转换
数据ꎬ共统计了 1 728 条扩增谱带ꎬ利用 PopGene32
软件计算得出ꎬ其多态性条带 1 567 条ꎬ其多态性条
带率为 90. 28%ꎬ Nei’ s 基因多样性指数 (H) 为
0.246 3ꎬShannon多样性指数( I)为 0.362 3ꎮ
基于张德全等(2008)研究的植物遗传多样性
AFLP 分析ꎬ发现植物居群水平平均 PPB = 51.9%ꎬH
平均值为 0.174ꎬI 平均值为 0.262ꎮ 可见ꎬ锐药竹具
有更丰富遗传多样性ꎮ
在多处于小居群的竹类植物中ꎬ锐药竹也表现
出丰富的遗传变异ꎮ 其 Shannon 多样性指数、Nei’ s
基因多样性指数高于孝顺竹(袁金玲ꎬ2010)、版纳
甜龙竹 (杨清ꎬ2006)、毛竹 (沈晓婷ꎬ2012)ꎬ仅低于
5498期                      廉超等: 锐药竹的种子性状及分子遗传变异
图 1  引物对 E ̄ACG / M ̄CTC扩增产物的部分电泳图谱  右侧红色荧光标记的分子量内标ꎬ从小到大(从下至上)ꎬ片段大小依次为
70、80、90、100、120、140、160、180、190、200、220、240、260、280、300、320、340、360、380、400、425、450、475、490、500(bp)ꎬ共 25条带ꎮ
Fig. 1  Part of electrophoresis pattern of the products amplified by E ̄ACG / M ̄CTC  Twenty ̄five red interior labels on the right are ranked
as follows from small to big (from bottom to top): 70ꎬ 80ꎬ 90ꎬ 100ꎬ 120ꎬ 140ꎬ 160ꎬ 180ꎬ 190ꎬ 200ꎬ 220ꎬ
240ꎬ 260ꎬ 280ꎬ 300ꎬ 320ꎬ 340ꎬ 360ꎬ 380ꎬ 400ꎬ 425ꎬ 450ꎬ 475ꎬ 490 and 500 bp.
表 3  锐药竹样品聚类结果
Table 3  Clustering results of Oxytenanthera abyssinica
聚类编号
Cluster code
各类内样品的编号
Code of sample
Ⅰ O1、O2、O3、O5、O6、O7、O8、O9、O10、O11、O12、O13、O14、O15、O16、O17、O18、O19、O20、O21、O22、O23、O24、O25、O26、O27、O28、O29、O30、O61、O62、O63、O64
Ⅱ O31、O32、O33、O34、O35、O36、O37、O38、O39、O40、O41、O42、O43、O44、O45、O46、O47、O48、O49、O50、O51、O52、O53、O54、O55、O56、O57、O58、O59、O60
Ⅲ O4
亲本来自多个不同地区的麻竹杂交子代遗传多样性
(杨秀艳ꎬ2007)(表 2)ꎮ
2.3 锐药竹的种质发掘
AFLP 等显性分子标记ꎬ常采用 SM 相似系数来
表征亲缘关系较近的不同种质间的遗传相似性、变
异度(明军等ꎬ2002)ꎮ 其在葡萄(张旭丹ꎬ2012)、大
蒜(陈淑霞等ꎬ2012)及一些禾本科植物(杨文轩等ꎬ
2012)的种质资源研究中均有应用ꎬ是种质鉴别的
良好参数ꎮ
故此ꎬ基于 AFLPꎬ对这批种子选择的 64个单株
样品的 SM系数聚类结果见图 1ꎮ 图 1结果显示ꎬ本
批锐药竹种内的 SM 遗传相似性在 0.73 ~ 0.85 之
间ꎬ在 SM值 0.76 处明显聚为 3 类ꎮ 聚集在 I 类的
样品 33个ꎬ包括 O4 以外的所有 24 个大叶类型ꎬ以
及随机选择的 O26 ̄O30、O61 ̄O64ꎻⅡ类中包括了随
机选择的 30 份样品ꎻ只有 1 份标号为 O4 的样品单
独聚为第 III 类(表 3)ꎬ宜作为特异种质重点关注ꎬ
进行种质性状系统测定ꎮ
3  讨论与结论
由于经济、科技等原因ꎬ即使锐药竹作为非洲大
陆最重要的经济竹种ꎬ但尚未见有包括居群、种实的
遗传变异的研究报道ꎬ从而限制了锐药竹的遗传保
护和产业发展ꎮ 本研究采用国家标准ꎬ首次报道锐
药竹种子性状ꎬ种子长 18.2 mmꎬ变异系数 8.8%ꎻ种
649 广  西  植  物                                  36卷
图 2  基于 AFLP 的锐药竹样品聚类图
Fig. 2  Cluster dendrogram of Oxytenanthera
abyssinica seed lot based on AFLP
子宽3.3 mmꎬ变异系数 6.0%ꎻ千粒重 117.5 gꎬ变异
系数 10.5%ꎻ室内发芽率 66. 5%ꎬ变异系数 7. 9%ꎮ
锐药竹有性种子性状的获得为锐药竹繁育及科学利
用奠定了科学基础ꎮ
典型选择了 25个大叶单株ꎬ随机选择 39 单株ꎬ
共 64株的叶片样品ꎬ采用 AFLP 分子标记技术测定
锐药竹的分子遗传多样性ꎬ结果显示其多态位点百
分率( PPB)为 90. 28%ꎬNei’ s 基因多样性(H)为
0.246 3ꎬShannon多样性指数( I)为 0.362 3ꎮ 植株表
型取决于遗传与环境的共同作用ꎬ该批种子采集于
同一个地区ꎬ其实生苗在形态、生理或分子方面存在
的差异主要来自于其遗传性ꎮ Ndiaye et al(2013)采
自非洲西部塞内加尔的 4 个不同地区ꎬ利用 SSR 方
法研究了锐药竹的物种分布地的多样性ꎬ其测得的
锐药竹 H在 0.22~ 0.92 之间ꎬ本研究材料主要辅以
分子手段ꎬ进行种质资源挖掘ꎬ相对于锐药竹现实分
布而言ꎬ实验取材只是埃塞俄比亚的一个地区ꎬ并且
是开花有种子植株ꎬ以探测经过有性杂交阶段的子
代遗传变异情况ꎻ另据张德全等(2008)的研究发
现ꎬSSR 所得遗传参数值明显高于 AFLPꎬ说明两种
分子遗传多样性不宜简单进行数字比较ꎮ
种子和幼苗的补充ꎬ保证了物种维持其更丰富
的遗传变异 (Zhao et alꎬ2006)ꎮ 综合比较 H、I两个
指标发现ꎬ该批锐药竹的遗传多样性大于小居群内
长期保持无性繁殖的孝顺竹、版纳甜龙竹、毛竹等ꎬ
孝顺竹等因为长期进行无性繁殖ꎬ缺少基因重组过
程ꎬ缺乏基因补充途径ꎬ导致了它们的遗传变异度偏
低(Ren et alꎬ2005)ꎮ 正是由于开花结实形成了种
子ꎬ所以这批锐药竹表现出丰富的遗传变异ꎮ 如果
收集更大地理区域范围内的材料(活株或种子)ꎬ可
以探测锐药竹在整个物种分布区的遗传和遗传格
局ꎬ揭示其开展遗传保育的科学基础ꎮ
根据育成的一万多株苗木ꎬ选择的 64个单株遗
传相似性系数在 0.76 ~ 0.85 之间ꎬ以 SM 相似性系
数 0.76处明显聚为 3类ꎬ反映出该批种子的遗传格
局ꎮ 聚类结果显示ꎬ全部样品自成一组ꎬ区别于外类
群酒竹ꎬ表现出锐药竹物种的遗传稳定性ꎻ大叶型的
植株与随机挑选植株基本能明显分开ꎬ表现出了锐
药竹选择育种的潜力ꎬ特别是 O4 植株单独聚为一
类ꎬ表现出有性生殖后代较大的遗传变异性ꎬ拟作为
特异种质重点关注ꎮ 对 AFLP 分析聚类结果分成的
3种类型ꎬ结合生长量、竹材产量、品质、抗性等产业
性状等开展种质性状系统测定ꎬ挖掘特异 /优异种
质ꎬ选育良种ꎬ更好地服务竹产业发展ꎮ
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