免费文献传递   相关文献

Effect of nutrient status on the kinetics of cyanophage PP infection in Phormidium.

营养条件对噬藻体PP感染席藻动力学的影响


本试验设计了从正常的AA培养基(CK组)到N和P含量只有正常AA培养基1/600的6种培养基.在25 ℃、2000 lx条件下将宿主席藻在6种培养基中培养8个月后,用显微直接计数法测定了席藻的生长曲线以及噬藻体PP感染宿主席藻的裂解周期与致死率,用离心法测定了噬藻体PP对宿主席藻的吸附率,用一步生长曲线法测定了噬藻体PP的释放量和裂解周期.结果表明: 提高N和P含量会促进宿主席藻的生长,统计分析也显示,在对数中期(第6天),高营养盐浓度中细胞密度显著高于低营养盐浓度中的密度;提高营养盐浓度噬藻体PP的吸附率会显著增高,主要表现为在AA中噬藻体PP的吸附率极显著高于其他组;同时6种培养基条件下噬藻体PP对席藻的致死率变化不大;随着营养水平的升高,噬藻体PP的潜伏期和裂解周期明显缩短,平均释放量显著增加,但裂解宿主的效率却没有显著变化.上述结果说明噬藻体PP对宿主藻的感染力会随着营养水平的提高而明显增强,并可能在水体富营养化进程中发挥着调控藻类种群更替的作用.

In this study, the cyanobacterium Phormidium was grown under six different nutrient concentrations, ranging from standard AA medium to a 600× dilutions of that media. After incubation at 25 ℃ and 2000 lx for 8 months, the growth curve for each treatment was measured by direct counting of cell numbers. Additionally, the lytic cycle and mortality rate were determined by monitoring the lytic effect of the host cells using microscopy. The adsorption rate of cyanophage PP was measured using the centrifugation method, where the burst size and lytic cycle were confirmed by measuring the one-step growth curve. Results indicated that elevated TN and TP could significantly promote the growth of Phormidium. Statistical analysis showed that during the mid-log phase (day 6th) cell densities were significantly higher under high nutrient conditions. Additionally, the adsorption rate in standard AA medium was significantly higher than that in the other five dilution media. Although nutrient conditions did not affect mortality rate significantly, the latent period and lytic cycle of cyanophage PP were obviously shortened. Moreover, the average burst size of cyanophage PP increased significantly with increasing the nutrient concentration. These results not only proved that high nutrient concentration could promote cyanophage infectivity, but also implied that cyanophage might play an important ecological role in adjusting the succession of algal populations in the progress of eutrophication.


全 文 :营养条件对噬藻体 PP感染席藻动力学的影响
尚时雨  马  慧  赵以军  程  凯∗
(湖北工业大学资源与环境工程学院河湖生态修复与藻类利用湖北省重点实验室, 武汉 430068)
摘  要  本试验设计了从正常的 AA 培养基(CK 组)到 N 和 P 含量只有正常 AA 培养基
1 / 600的 6种培养基.在 25 ℃、2000 lx条件下将宿主席藻在 6种培养基中培养 8 个月后,用显
微直接计数法测定了席藻的生长曲线以及噬藻体 PP 感染宿主席藻的裂解周期与致死率,用
离心法测定了噬藻体 PP 对宿主席藻的吸附率,用一步生长曲线法测定了噬藻体 PP 的释放
量和裂解周期.结果表明: 提高 N和 P 含量会促进宿主席藻的生长,统计分析也显示,在对数
中期(第 6天),高营养盐浓度中细胞密度显著高于低营养盐浓度中的密度;提高营养盐浓度
噬藻体 PP 的吸附率会显著增高,主要表现为在 AA 中噬藻体 PP 的吸附率极显著高于其他
组;同时 6种培养基条件下噬藻体 PP 对席藻的致死率变化不大;随着营养水平的升高,噬藻
体 PP 的潜伏期和裂解周期明显缩短,平均释放量显著增加,但裂解宿主的效率却没有显著变
化.上述结果说明噬藻体 PP 对宿主藻的感染力会随着营养水平的提高而明显增强,并可能在
水体富营养化进程中发挥着调控藻类种群更替的作用.
关键词  营养盐浓度; 噬藻体; 吸附率; 裂解周期; 释放量; 致死率
Effect of nutrient status on the kinetics of cyanophage PP infection in Phormidium. SHANG
Shi⁃yu, MA Hui, ZHAO Yi⁃jun, CHENG Kai∗ (Hubei Key Laboratory of Ecological Restoration for
River⁃Lakes and Algal Utilization, College of Resources and Environmental Engineering, Hubei Uni⁃
versity of Technology, Wuhan 430068, China) .
Abstract: In this study, the cyanobacterium Phormidium was grown under six different nutrient
concentrations, ranging from standard AA medium to a 600× dilutions of that media. After incuba⁃
tion at 25 ℃ and 2000 lx for 8 months, the growth curve for each treatment was measured by direct
counting of cell numbers. Additionally, the lytic cycle and mortality rate were determined by moni⁃
toring the lytic effect of the host cells using microscopy. The adsorption rate of cyanophage PP was
measured using the centrifugation method, where the burst size and lytic cycle were confirmed by
measuring the one⁃step growth curve. Results indicated that elevated TN and TP could significantly
promote the growth of Phormidium. Statistical analysis showed that during the mid⁃log phase (day
6th) cell densities were significantly higher under high nutrient conditions. Additionally, the ad⁃
sorption rate in standard AA medium was significantly higher than that in the other five dilution
media. Although nutrient conditions did not affect mortality rate significantly, the latent period and
lytic cycle of cyanophage PP were obviously shortened. Moreover, the average burst size of cyanoph⁃
age PP increased significantly with increasing the nutrient concentration. These results not only
proved that high nutrient concentration could promote cyanophage infectivity, but also implied that
cyanophage might play an important ecological role in adjusting the succession of algal populations
in the progress of eutrophication.
Key words: nutrient concentration; cyanophage; adsorption rate; lytic cycle; burst size; mortality
rate.
本文由国家自然科学基金项目(31370148,31200385)资助 This work
was supported by the National Natural Science Foundation of China
(31370148,31200385).
2015⁃09⁃08 Received, 2016⁃01⁃24 Accepted.
∗通讯作者 Corresponding author. E⁃mail: chengkaicn@ 163.com
    中国地域广阔,湖泊众多,湖泊的营养水平差异
较大,富营养化问题突出[1-3] .蓝藻是我国富营养化
湖泊中的优势藻类[4],而噬藻体则是特异性感染蓝
藻的病毒,其在水体中的含量高、分布广,是海洋及
湖泊中初级生产力的最主要控制因子之一,能够影
响蓝藻的种群结构并调控水华与赤潮的消长过
程[5-7] .
基于对海洋中聚球藻噬藻体的研究表明,噬藻
应 用 生 态 学 报  2016年 4月  第 27卷  第 4期                                            http: / / www.cjae.net
Chinese Journal of Applied Ecology, Apr. 2016, 27(4): 1271-1276                  DOI: 10.13287 / j.1001-9332.201604.028
体的感染力(包括对宿主的吸附率、裂解周期、释放
量等)在很大程度上受到宿主的生长状态影响,即
宿主生长迅速时,噬藻体的感染力也更强,如 Wilson
等[8]发现,当噬藻体 S⁃PM2感染生长受限的宿主海
洋聚球藻时,其感染力会下降 9% ~ 41%.而造成这
一现象的原因,一方面是因为在磷限制驱动下噬藻
体从裂解状态转变为溶源状态[8],另一方面,也可
能是由于充足的营养条件有利于宿主积累大量的
RNase III,而 RNase III能够通过提高蛋白的合成效
率来促进烈性病毒的大分子合成[9] .相对于海洋而
言,淡水水体的营养水平差别更大,且有充分的证据
表明营养水平会明显影响淡水浮游植物的生长状
态[3],而蓝藻是淡水富营养化水体中形成有害藻类
水华的优势物种[1],那么,淡水营养水平的改变(特
别是富营养化)是否也会影响淡水噬藻体对其宿主
蓝藻的感染力呢? 目前,还缺乏相关的报道.
本文以“噬藻体 PP⁃野生席藻”的病毒宿主系统
作为研究对象,其中噬藻体 PP 是我国首次分离得
到的淡水噬藻体,该类噬藻体在我国富营养化水体
中的分布广泛且效价较高,而野生席藻(Phormidi⁃
um)为从武汉东湖分离得到,是噬藻体 PP 在该湖中
的宿主,该病毒宿主系统具有裂解迅速、感染稳定、
效价测定方便等特点,是研究淡水噬藻体感染动力
学的理想材料[10] .噬藻体的吸附率、释放量和裂解
周期是研究其感染动力学的重要指标,很多重要的
生态功能指标如噬藻体在生态系统中对宿主的致死
率、种群维持的阈浓度等都需要使用上述指标来加
以推算[11-12] .因此测定噬藻体的吸附率、释放量及
裂解周期对于预测噬藻体 PP 的生态功能具有重要
的意义.
基于以上原因,研究营养水平变化对淡水噬藻
体感染其野生宿主的吸附率、释放量和裂解周期的
影响,有助于深入认识噬藻体在水体富营养化进程
中的生态功能,具有重要的生态学意义.
1  材料和方法
1􀆰 1  供试材料
将保存在 4 ℃冰箱的噬藻体 PP [10]加入到浓缩
的对数期野生席藻藻液中,放在 25 ℃条件下培养
5 d,再加入氯仿轻微震荡吸取上层清液作为噬藻体
PP 裂解液,保存在 4 ℃冰箱中.
野生席藻(Phormidium)分离自武汉东湖[13],分
别用 6种培养基培养:AA 培养基[14] [总氮(TN)浓
度 280 mg·L-1,总磷(TP)浓度 48.3 mg·L-1]和 N、
表 1  6种培养基中 TN和 TP的含量
Table 1  Contents of TN and TP in the 6 mediums
培养基
Medium
总氮 TN
(mg·L-1)
总磷 TP
(mg·L-1)
TN、TP 所对应的
地表水标准a
Reference standard
of TN and TP
AA 280.00 48.30 劣Ⅴ
1 / 7AA 40.00 6.90 劣Ⅴ
1 / 22AA 13.60 2.20 劣Ⅴ
1 / 67AA 4.18 0.72 劣Ⅴ
1 / 200AA 1.40 0.24 Ⅳ
1 / 600AA 0.47 0.08 Ⅱ
a)参照《地表水环境质量标准》GB3838—2002 Referred to “ environ⁃
mental quality standards for surface water” GB3838-2002[15] .
P 含量分别只有 AA 培养基 1 / 7、1 / 22、1 / 67、1 / 200
和 1 / 600的另外 5种培养基(这 5 种培养基除 N、P
外,其他成份均与 AA 培养基相同),各培养基 TN
和 TP 含量如表 1所示.
1􀆰 2  研究方法
1􀆰 2􀆰 1席藻的培养   分别用 6 种培养基在 250 mL
的锥形瓶中培养席藻,AA、1 / 7AA 和 1 / 22AA 培养
的席藻每隔 15 d传代 1 次,1 / 67AA、1 / 200AA和 1 /
600AA培养基培养的席藻每隔 5 d 传代 1 次,每次
传代时培养基与藻液比例均为 9 ∶ 1,光周期为 14 ∶
10 (L ∶ D),温度 25 ℃,光强为 2000 lx.
为使宿主藻充分适应上述各营养条件,本研究
所用的席藻均在上述条件下培养 8 个月,使各组的
初始藻细胞密度均为 3.0×106cell·mL-1,继续培养,
采用显微直接计数法每天测定席藻的细胞密度以绘
制生长曲线,并取对数期藻用于以下试验.
1􀆰 2􀆰 2噬藻体 PP 感染席藻的裂解周期与致死率试
验  取在不同条件下培养的藻计数,分别稀释到 1×
107 cell·mL-1,各取样 4 mL,加入 2 mL 效价为 2×
107 viruses·mL-1的噬藻体 PP 裂解液,使感染复数
(multiplicity of infection,MOI)为 1 ∶ 1.将混合液于
18000 ×g离心 10 min,弃上清液并用相应的培养基
定容至 4 mL.该过程重复 3次,以彻底去除未吸附到
席藻上的噬藻体 PP.于相应条件下继续培养至 60、
90、120、150、180、210、240、270 和 300 min 取样,用
显微直接计数法分别绘制藻细胞密度和藻丝浓度的
变化曲线,并据此推测噬藻体 PP 的裂解周期.致死
率为裂解的细胞密度占初始藻细胞密度的百分比,
其中,裂解的细胞密度的计算方法为用初始的细胞
密度减去刚完成裂解周期时的细胞密度.
1􀆰 2􀆰 3噬藻体 PP 对席藻的吸附率试验   取对数期
的席藻,用相应的培养基将其藻细胞密度均调整为
1.2×107 cell·mL-1 .将已知效价为 1.2×104 viruses·
2721 应  用  生  态  学  报                                      27卷
mL-1的噬藻体 PP,按照 MOI 比为 1 ∶ 104比例加入
藻液中,立即混匀,于 25 ℃的光照培养箱中静置培
养,分别在 0、15、30、45 和 60 min 时取 1 mL混合液
于 12000 ×g离心 5 min,取上清液采用 96孔板法(6
平行 4梯度)测定效价 P i [16] .将 0 min测得的上清液
效价 P0定为初始效价,此时吸附率为 0.其他时间点
的吸附率=(P0-P i) / P0×100%[16] .
1􀆰 2􀆰 4噬藻体 PP 增殖的一步生长曲线试验   取不
同培养条件下的对数期席藻,用相应的培养基将其
藻细胞密度均调整为 7.5×107 cell·mL-1 .将已知效
价为 1.2×104 viruses·mL-1的噬藻体 PP,按照 MOI
比为 1 ∶ 105比例加入藻液中,将藻液与病毒液混合
均匀,放在 25 ℃光照箱中静置吸附 30 min.将混合
液于 18000 ×g离心 10 min,弃上清液并用相应的培
养基定容至原体积.该过程重复 3 次,以彻底去除未
吸附到席藻上的噬藻体 PP.将样品放在摇床上 120
r·min-1振荡培养,以防止已释放的子代噬藻体 PP
吸附到临近的藻丝上,并分别在 0、60、90、120、150、
180、210、240、270 和 300 min 时取样,于 96 孔板中
梯度稀释并测定效价 P i,P i即为每个时间点噬藻体
PP 的效价.根据各个时间点的效价,绘制噬藻体 PP
的一步生长曲线,并据此测算噬藻体 PP 的潜伏期
(静置吸附的 30 min和操作时间约 50 min不计算在
内)、裂解周期及释放量.
1􀆰 3  数据处理
上述试验均为 3 次重复,作图采用 GraphPad
Prism 5完成(误差用 SD表示);数据分析采用 SPSS
软件完成,其中宿主藻生物量、致死率及噬藻体平均
释放量采用单因素方差分析(多重比较采用 S⁃N⁃K
法),吸附率曲线采用单变量一般线性模型分析(多
重比较采用 S⁃N⁃K法).
2  结果与分析
2􀆰 1  营养水平对席藻生长的影响
由图 1可见,在不同的营养盐浓度条件下,野生
席藻延迟期的长度明显不同,AA、1 / 7AA和 1 / 22AA
培养基中席藻的延迟期仅为 2 ~ 3 d,而在 1 / 67AA、
1 / 200AA和 1 / 600AA培养基中的延迟期则长达 4~
5 d.此外,藻细胞密度会随着营养盐浓度的降低而
依次递减,统计分析也表明,在对数期中期(第 6
天)时,除 1 / 67AA 和 1 / 200AA 组之间无显著性差
异外(P>0.05),其他各组均表现为高营养物浓度组
的藻细胞密度显著高于低营养物浓度组(P<0.05).
图 1  不同营养水平下的席藻生长曲线
Fig.1  Growth curves of Phormidium at different nutrient levels.
2􀆰 2  营养水平对噬藻体 PP 裂解周期和致死率的
影响
由图 2可见,不论是藻细胞密度(随裂解而减
少)、还是藻丝浓度(随裂解而增加),均表现为噬藻
体 PP 感染席藻的裂解周期会随着营养物浓度的逐
步降低而逐步延长:AA 和 1 / 7AA 组的裂解主要发
生于 150~180 min,1 / 22AA 和 1 / 67AA 组的裂解则
推迟至 180~210 min,而 1 / 200AA和 1 / 600AA组的
裂解则进一步推迟至 210 ~ 240 min.此外,6 组的噬
藻体 PP 的致死率平均高达 77.6%,6 组的致死率分
别为 79.6%、82.1%、59.7%、82.1%、69.7%和 93.3%,
但各组之间并无显著性差异(P>0.05),说明营养条
件不能决定裂解是否发生.
图 2  宿主席藻被裂解过程的变化
Fig.2  Change of lytic process of Phormidium.
37214期                          尚时雨等: 营养条件对噬藻体 PP 感染席藻动力学的影响           
2􀆰 3  不同营养水平下噬藻体 PP 的吸附率
从图 3可见,在 6 种条件下 0 ~ 15 min 噬藻体
PP 的吸附率均快速增加,15~60 min 吸附率的增速
明显变缓.总体而言,各组的吸附曲线存在极显著差
异(P<0.01),主要表现为 AA 组的吸附率显著高于
其他 5组(P<0.05),说明充足的营养有利于噬藻体
PP 的吸附.
2􀆰 4  不同营养水平下噬藻体 PP 的一步生长曲线
从图 4 可见,不同营养条件下噬藻体 PP 的一
步生长曲线差异明显,根据图 5,将潜伏期、裂解周
期和释放量归纳见表 2.
从表 2 可见,随着营养盐浓度的降低,噬藻体
PP 的潜伏期和裂解周期均明显延长,在 AA 和 1 / 7
AA 培养基中的潜伏期和裂解周期最短,而在
1 / 200AA和 1 / 600AA 培养基中最长,这一结果与
2.2中对藻细胞和藻丝浓度计数的结果完全吻合,
进一步确认营养盐浓度的增加可以加速宿主的裂
解.此外,各营养条件下的噬藻体 PP 的释放量也存
在极显著差异(P<0.01),主要表现为 AA 和 1 / 7AA
中的释放量显著高于其他4组(P<0.05),而1 / 22AA
图 3  噬藻体 PP 吸附率的变化
Fig.3  Change of adsorption rate of cyanophage PP.
图 4  噬藻体 PP 一步生长曲线的变化
Fig.4  Change of one⁃step growth curves of cyanophage PP.
表 2  噬藻体 PP潜伏期、裂解周期和释放量的变化
Table 2  The changes of latentperiod, lytic cycle and burst
size of cyanophage PP
处理
Treatment
潜伏期
Latent period
(min)
裂解周期
Lytic cycle
(min)
平均释放量
Average burst size
(viruses·mL-1)
AA 120 180 182±32
1 / 7AA 120 180 166±28
1 / 22AA 120~180 210 28±4
1 / 67AA 180 210 23±3
1 / 200AA 180~210 240 14±5
1 / 600AA 180~210 240 5±7
和 1 / 67AA 组的释放量又显著高于 1 / 200AA 和
1 / 600AA组(P<0.05).
3  讨    论
本试验中,高营养水平下的宿主藻的生长速度
明显高于低营养水平,这与很多学者的研究结论相
符,如李夜光等[17]和许海等[18]的研究表明,磷是限
制藻类生长的关键因素之一;刘健康等[19]也发现,
武汉东湖中氮、磷浓度的持续上升会对藻类的演替
产生影响,而本试验的宿主藻正是从该湖中分离得
到的.除了生长速度外,本研究还观察到,将 6 种不
同营养条件下的对数期藻细胞密度调成一致时,藻
液的颜色会明显随着营养浓度的降低而变浅,说明
藻细胞的生理状态也会受到 N、P 等营养元素的影
响[20] .
吸附是噬藻体感染宿主的第一步,可细分为非
特异性吸附和特异性吸附两个阶段[21],其中非特异
性吸附是指噬藻体与宿主发生接触,其效率可以用
接触率数学模型来进行表征[21] .根据接触率数学模
型,接触率主要受宿主细胞的浓度和细胞大小、噬藻
体的浓度、水温、水的粘度等影响,但在本次吸附试
验中,各宿主的细胞浓度、噬藻体浓度、水温、粘度等
均相同,细胞大小也无明显差异(数据未列出),故
各组的接触率应无明显差别.因此,本试验所观察到
的吸附率差异是由吸附的第二阶段(即特异性吸附
阶段)的差异所主导的:当鲍氏织线藻(Plectonema
boryanum)的生长速度较快时,噬藻体 PP 对其的吸
附率也较高[22],其原因可能是营养条件变化会改变
宿主细胞表面的病毒受体密度[23] .此外,还需要说
明的,本次试验观察到的吸附率差异主要体现在
AA组与其他各组之间,而 1 / 7AA 至 1 / 600AA 组之
间的各组均无显著差异,考虑到自然条件下水体中
的 N、P 浓度很难达到 AA 培养基中的水平,因此仍
难以确定在自然淡水水体中噬藻体的吸附率是否会
4721 应  用  生  态  学  报                                      27卷
随营养水平的降低而下降.
研究表明,病毒的感染力往往会随着宿主生理
状态的活跃程度的增加而提高[24-25],而裂解周期和
释放量正是指征病毒感染力的重要指标.对海洋噬
藻体的研究表明,在较低的磷酸盐浓度下,噬藻体的
裂解速度和释放量都会大幅减小,而在磷酸盐浓度
较高时,噬藻体可以使被感染宿主的死亡率达到
100%,说明磷酸盐浓度是决定噬藻体裂解能力的关
键因素[8];对噬菌体的研究也表明,当宿主细胞处
于饥饿状态时,噬菌体感染的潜伏期就会延长,其释
放量也会减少,甚至出现感染被抑制的情况[26] .类
似的,本研究中也观察到,当各试验组的 TN 和 TP
浓度逐步从 II类水标准升高到劣 V类水标准时,噬
藻体 PP 的裂解周期明显缩短,释放量也显著增加,
这一现象也与富营养化水体中病毒释放量要高于中
营养水体的野外观测结果相吻合[27] .
席藻广泛存在于中营养至富营养水平的淡水湖
泊中[28-30],但是随着 N、P 等营养元素浓度的升高,
在中营养湖泊中占优势的席藻[31],会逐步被富营养
化水体中占优势的微囊藻[32]所取代,即在富营养化
进程中,席藻对比微囊藻并不占优势.多数研究将富
营养化进程中丝状蓝藻逐步被微囊藻取代的原因归
结于微囊藻对过量营养元素吸收的能力明显高于丝
状蓝藻[33]或蓝藻间化感物质的相互作用[34],而本
次研究的发现却提出了另一种可能的解释:在较高
的营养水平下,噬藻体种群对丝状蓝藻宿主种群的
感染力会大幅度提升(主要原因是裂解周期缩短和
释放量增加),导致丝状蓝藻的生物量下降,而野外
条件下微囊藻噬藻体感染微囊藻的致死率却很
低[35],从而有助于微囊藻逐步成为优势种.
综上所述,本试验发现,营养物浓度的升高会通
过影响淡水席藻的生理状态而使噬藻体 PP 的吸附
加速、裂解周期提前,并使其释放量大幅增加,这一
结果有助于解释淡水富营养化进程中,丝状蓝藻逐
步被微囊藻所取代的现象.
致谢  特别感谢荷兰国立皇家科学与艺术院⁃生态研究所
(KNAW⁃NIOO)的 Thijs Frenken协助修改英文摘要.
参考文献
[1]  Jin X⁃C (金相灿), Liu H⁃L (刘鸿亮), Tu Q⁃Y (屠
清瑛), et al. Eutrophication of Chinese Lakes. Beijing:
China Environmental Science Press,1990 (in Chinese)
[2]  Lu K⁃H (陆开宏), Yao L⁃Y (姚礼一), Zhou S⁃Q
(周少勤). Population variation of phytoplankton in
West Lake of Hangzhou before and afrter diluting
sewages with empting into river water and effect of con⁃
trolling eutrophication. Chinese Journal of Applied Ecolo⁃
gy (应用生态学报), 1992, 3(3): 266-272 ( in Chi⁃
nese)
[3]  Li Q⁃Q (李钦钦), Deng J⁃C (邓建才), Hu W⁃P (胡
维平), et al. Community structure of phytoplankton and
its relationships with environmental factors in drinking
water source of Jinshu Bay, Taihu Lake. Chinese Journal
of Applied Ecology(应用生态学报), 2010, 21(7):
1844-1850 (in Chinese)
[4]  Xie P (谢  平). A Review on The Causes of Cyanobac⁃
terial Blooms from an Evolutionary, Biogeochemical and
Ecological View of Point. Beijing: Science Press, 2007
(in Chinese)
[5]  Suttle CA. Viruses in the sea. Nature, 2005, 437: 356-
361
[6]  Suttle CA, Chan AM, Cottrell MT. Infection of phyto⁃
plankton by viruses and reduction of primary productivi⁃
ty. Nature, 1990, 347: 467-469
[7]  Tucker S, Pollard P. Identification of cyanophage Ma⁃
LBP and infection of the cyanobacterium Microcystis
aeruginosa from an Australian subtropical lake by the vi⁃
rus. Applied and Environmental Microbiology, 2005, 71:
629-635
[8]  Wilson WH, Carr NG, Mann NH. The effect of phos⁃
phate status on the kinetics of cyanophage infection in
the oceanic cyanobacterium Synechococcus sp. WH7803.
Journal of Phycology, 1996, 32: 506-516
[9]  Wilson HR, Yu D, Peters HK, et al. The global regula⁃
tor RNase III modulates translation repression by the
transcription elongation factor N. The EMBO Journal,
2002, 21: 4154-4161
[10]  Zhao Y⁃J (赵以军), Cheng K (程  凯), Shi Z⁃L (石
正丽), et al. The first report of the isolation and identi⁃
fication of cyanophage in P. R. China. Progress in Natu⁃
ral Science (自然科学进展), 2002, 12(9): 923-927
(in Chinese)
[11]  Suttle CA, Chan AM. Dynamics and distribution of cya⁃
nophages and their effect on marine Synechococcus spp.
Applied and Environmental Microbiology, 1994, 60:
3167-3174
[12]  Proctor LM, Okubo A, Fuhrman JA. Calibrating esti⁃
mates of phage induced mortality in marine bacteria: Ul⁃
trastructural studies of marine bacteriophage development
from one⁃step growth experiments. Microbial Ecology,
1993, 25: 161-182
[13]  Zhou Q⁃C (周起超), Zhou F (周   飞), Liao M⁃J
(廖明军), et al. The photoreactivation ratio of cya⁃
nophage PP in wild host under different light or tempera⁃
ture conditions. Acta Ecologica Sinica (生态学报),
2010, 30(7): 1868-1874 (in Chinese)
[14]  Castenholz RW. Culturing methods for cyanobacteria.
Methods in Enzymology, 1988, 167: 68-93
[15]  State Environmental Protection Administration (国家环
境保护总局). Environment Quality Standards for Sur⁃
face Water. GB 3838- 2002. Beijing: China Standards
Press, 2002 (in Chinese)
57214期                          尚时雨等: 营养条件对噬藻体 PP 感染席藻动力学的影响           
[16]  Middelboel M, Chan AM, Bertelsen SK. Isolation and
life cycle characterization of lytic viruses infecting hete⁃
rotrophic bacteria and cyanobacteria / / Wilhelm SW,
Weinbauer MG, Suttle CA, eds. Manual of Aquatic Vi⁃
ral Ecology, Chapter: 13. New York: American Society
of Limnology and Oceanography, 2010: 118-133
[17]  Li Y⁃G (李夜光), Li Z⁃K (李中奎), Geng Y⁃H (耿
亚红), et al. Effect of N, P concentration on growth
rate and biomass of phytoplankton in eutrophical water.
Acta Ecologica Sinica (生态学报), 2006, 26 ( 2):
317-325 (in Chinese)
[18]  Xu H (许  海), Qin B⁃Q (秦伯强), Zhu G⁃W (朱
广伟). Nutrient limitation of cyanobacterial growth in
different regions of Lake Taihu in summer. China Envi⁃
ronmental Science (中国环境科学), 2012, 32(12):
2230-2236 (in Chinese)
[19]  Liu J⁃K (刘健康), Huang X⁃F (黄翔飞). Summary of
studies on the ecology of Lake Donghu. Enviromental
Science (环境科学), 1997, 18(1): 51-53 ( in Chi⁃
nese)
[20]  Zhang X⁃C (张学成), Meng Z (孟   振), Shi Y⁃X
(时艳侠), et al. The effect of light, temperature and
nutrition on growth and pigment accumulation of three
strains of Dunaliella salina. Periodical of Ocean Universi⁃
ty of China (中国海洋大学学报), 2006, 36 ( 5):
754-762 (in Chinese)
[21]  Murray AG, Jackson GA. Viral dynamics: A model of
the effects of size, shape, motion and abundance of sin⁃
gle⁃celled planktonic organisms and other particles. Ma⁃
rine Ecology Progress Series, 1992, 89: 103-16
[22]  Wang C⁃Y (王春艳), Guo Y⁃X (郭亚新), Cheng K
(程  凯), et al. The correlation of host’s growth stage
with enlargement of plaque and adsorption rate of cya⁃
nophage. Acta Hydrobiologica Sinica (水生生物学报),
2003, 27(6): 660-663 (in Chinese)
[23]  Schwartz M. The adsorption of coliphage lambda to its
host: Effect of variations in the surface density of recep⁃
tor and in phage⁃receptor affinity. Journal of Molecular
Biology, 1976, 103: 521-536
[24]  Parada V, Herndl GJ, Weinbauer MG. Viral burst size
of heterotrophic prokaryotes in aquatic systems. Journal
of the Marine Biological Association of the United King⁃
dom, 2006, 86: 613-621
[25]   Gnezda⁃Meijer K, Mahne I, Poljsak⁃Prijatelj M, et al.
Host physiological status determines phage⁃like particle
distribution in the lysate. FEMS Microbiology Ecology,
2006, 55: 136-145
[26]  Propst⁃Ricciuti C. Host⁃virus interactions in Escherichia
coli: Effect of stationary phase on viral release from
MS2⁃infected bacteria. Journal of Virology, 1972, 10:
162-165
[27]  Weinbauer MG, Fuks D, Peuzzi P. Distribution of viru⁃
ses and dissolved DNA along a coastal trophic gradient
in the northern Adriatic Sea. Applied and Environmental
Microbiology, 1993, 59: 4074-4082
[28]  Gu J⁃P (谷金普), Ge J⁃W (葛继稳), Tang J (唐
佳), et al. Niche analysis of dominant species of
periphytic algae in Gufu River. Resources and Environ⁃
ment in the Yangtze Basin (长江流域资源与环境),
2014, 23(10): 1456-1462 (in Chinese)
[29]  Wang J⁃L (王俊莉), Liu D⁃Y (刘冬燕), Gu B⁃H
(古滨河), et al. Environmental assessment of Lake
Taiping ( Anhui Province) based on a phytoplankton
community analysis. Journal of Lake Sciences (湖泊科
学), 2014, 26(6): 939-974 (in Chinese)
[30]  Li H (李   红), Ma Y⁃W (马燕武), Qi F (祁
峰), et al. Phytoplankton in Bosten Lake: Community
characteristics and driving factors. Acta Hydrobiologica
Sinica (水生生物学报), 2014, 38(5): 921-928 (in
Chinese)
[31]  Meng R (孟  睿), He L⁃S (何连生), Guo L⁃G (过
龙根), et al. Canonical correspondence analysis be⁃
tween phytoplankton community and environmental fac⁃
tors in macrophtic lakes of the middle and lower reaches
of Yangtze River. Environmental Science (环境科学),
2013, 34(7): 2588-2596 (in Chinese)
[32]  Wang Z⁃C (汪志聪), Rao B⁃Q (饶本强), Li Y⁃X
(李印霞), et al. Primary study on cyanobacteria bloom
in Shiziling Reservoir of Zhijiang, Hubei Province. Chi⁃
na Environmental Science (中国环境科学), 2012, 32
(10): 1875-1881 (in Chinese)
[33]  Tan X (谭  香), Shen H (沈  宏), Song L⁃R (宋立
荣). Comparative studies on physiological responses at
phosphorus stress of three waterbloom⁃forming cyanobac⁃
teria. Acta Hydrobiologica Sinica (水生生物学报),
2007, 31(5): 693-699 (in Chinese)
[34]  Zhang T (张  婷), Song L⁃R (宋立荣). Allelopathic
effect between Microcystis aeruginosa and three filamen⁃
tous cyanobacteria. Journal of Lake Sciences (湖泊科
学), 2006, 8(2): 150-156 (in Chinese)
[35]  Yoshida M, Yoshida T, Yoshida⁃Takashima Y, et al.
Real⁃Time PCR detection of host⁃mediated cyanophage
gene transcripts during infection of a natural Microcystis
aeruginosa population. Microbes and Environments,
2010, 25: 211-215
作者简介  尚时雨,男,1988年生,硕士研究生. 主要从事环
境微生物研究. E⁃mail: 1004555418@ qq.com
责任编辑  肖  红
尚时雨, 马慧, 赵以军, 等. 营养条件对噬藻体 PP 感染席藻动力学的影响. 应用生态学报, 2016, 27(4): 1271-1276
Shang S⁃Y, Ma H, Zhao Y⁃J, et al. Effect of nutrient status on the kinetics of cyanophage PP infection in Phormidium. Chinese Journal
of Applied Ecology, 2016, 27(4): 1271-1276 (in Chinese)
6721 应  用  生  态  学  报                                      27卷