全 文 ：青岛市秋季空气微生物群落多样性∗
王　 琳　 宋志文∗∗　 徐爱玲　 吴等等　 夏　 岩
（青岛理工大学， 山东青岛 ２６６０３３）
摘　 要　 采用 ＫＣ⁃６１２０空气综合采样器采集空气微生物样品，通过构建 １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ 克隆
文库方法分析青岛市市区街道秋季空气微生物群落结构特征．结果表明： 空气细菌分布在 ６
大类，分别为变形菌门（７８．８％）、厚壁菌门（１４．６％）、放线菌门（４．０％）、浮霉菌门（１．３％）、蓝
藻门（０．７％）和栖热菌门（０．６％），优势菌属为不动杆菌属（３９．７％）、葡萄球菌属（１１．３％）、鞘
脂单胞菌属（８． ６％）和副球菌属（６． ０％） ．空气真菌分布在子囊菌门（９７． ５％）和担子菌门
（２．５％），优势菌属为核腔菌属（７６．５％）、炭角菌属（１３．６％）和外瓶霉属（２．５％） ．空气微生物中
存在不动杆菌属、鞘脂单胞菌、葡萄球菌等致病菌或条件致病菌，以及引发多种农作物枯萎死
亡的麦类核腔菌、团炭角菌和角状平脐疣孢等真菌．
关键词　 克隆文库； 空气细菌； 空气真菌； 群落结构； 微生物多样性
文章编号　 １００１－９３３２（２０１５）０４－１１２１－０９　 中图分类号　 Ｘ１７２　 文献标识码　 Ａ
Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｍｉｃｒｏｂｅｓ ｉｎ Ｑｉｎｇｄａｏ ｄｏｗｎｔｏｗｎ ｉｎ ａｕｔｕｍｎ． ＷＡＮＧ Ｌｉｎ，
ＳＯＮＧ Ｚｈｉ⁃ｗｅｎ， ＸＵ Ａｉ⁃ｌｉｎｇ， ＷＵ Ｄｅｎｇ⁃ｄｅｎｇ， ＸＩＡ Ｙａｎ （ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ａｎｄ Ｍｕｎｉｃｉｐａｌ
Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ， Ｑｉｎｇｄａｏ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， Ｑｉｎｇｄａｏ ２６６０３３， Ｓｈａｎｄｏｎｇ， Ｃｈｉｎａ） ． ⁃Ｃｈｉｎ． Ｊ．
Ａｐｐｌ． Ｅｃｏｌ．， ２０１５， ２６（４）： １１２１－１１２９．
Ａｂｓｔｒａｃｔ： Ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｍｉｃｒｏｂｅｓ ｉｎ Ｑｉｎｇｄａｏ ｄｏｗｎｔｏｗｎ ｉｎ ａｕ⁃
ｔｕｍｎ， ｔｈｅ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ ｆｕｎｇｉ ｗｅｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ＫＣ⁃６１２０ ａｉｒ ｓａｍｐｌｅｒ ａｎｄ ａｎａｌｙｚｅｄ ｕｓｉｎｇ
ｔｈｅ １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ ｃｌｏｎｅ ｌｉｂｒａｒｙ ｍｅｔｈｏｄ． Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｓｈｏｗｅｄ
ｔｈａｔ ｔｈｅｙ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｓｉｘ ｍａｊｏｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｇｒｏｕｐｓ： Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ （ ７８． ８％）， Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ
（１４．６％）， Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ （４．０％）， Ｐｌａｎｃｔｏｍｙｃｅｔｅｓ （１．３％）， Ｃｙａｎｏｂａｃｔｅｒｉａ （０．７％）， ａｎｄ Ｄｅｉｎｏ⁃
ｃｏｃｃｕｓ⁃Ｔｈｅｒｍｕｓ （ ０． ７％）． Ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｇｅｎｅｒａ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎｃｌｕｄｅｄ Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ
（３９．７％）， Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ （１１．３％）， Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ （８．６％）， Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ （６．０％） ａｎｄ Ｍａｓｓｉｌｉａ
（５．３％）． Ｔｈｅ ｍａｉｎ ｔｙｐｅｓ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｆｕｎｇｉ ｗｅｒｅ Ａｓｃｏｍｙｃｏｔａ （９７．５％） ａｎｄ Ｂａｓｉｄｉｏｍｙｃｏｔａ （２．５％）．
Ｄｏｍｉｎａｎｔ ｇｅｎｅｒａ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｆｕｎｇｉ ｉｎｃｌｕｄｅｄ Ｐｙｒｅｎｏｐｈｏｒａ （７６．５％）， Ｘｙｌａｒｉａ （１３．６％） ａｎｄ Ｅｘｏｐｈｉａｌａ
（２．５％）． Ｔｈｅ ｐａｔｈｏｇｅｎｓ ｏｒ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｐａｔｈｏｇｅｎｓ， ｓｕｃｈ ａｓ Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ， Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ， ｏｒ Ｓｐｈｉｎ⁃
ｇｏｍｏｎａｓ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ， ｗｈｅｒｅａｓ ｃｅｒｔａｉｎ ｋｉｎｄｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉ， ｓｕｃｈ ａｓ Ｐ． ｇｒａｍｉｎｅａ，
Ｘ． ｈｙｐｏｘｙｌｏｎ ａｎｄ Ｚａｓｍｉｄｉｕｍ ａｎｇｕｌａｒｅ ｔｈａｔ ｃｏｕｌｄ ｃａｕｓｅ ａ ｖａｒｉｅｔｙ ｏｆ ｃｒｏｐ ｄｉｓｅａｓｅｓ ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｄｅｔｅｃｔｅｄ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ： ｃｌｏｎｅ ｌｉｂｒａｒｙ； ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ； ａｉｒｂｏｒｎｅ ｆｕｎｇｉ； ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ； ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｄｉｖｅｒ⁃
ｓｉｔｙ．
∗国家自然科学基金项目（３１１７０５０９）资助．
∗∗通讯作者． Ｅ⁃ｍａｉｌ： ｓｏｎｇｚｈｉｗｅｎ＠ ｑｔｅｃｈ．ｅｄｕ．ｃｎ
２０１４⁃０５⁃２４收稿，２０１５⁃０１⁃１５接受．
　 　 大气环境具有干燥、营养贫瘠、高辐射和扩散能
力强等特点，不适合微生物生长繁殖［１］ ．但研究表明
空气中不仅存在一定数量的微生物，而且代谢活
跃［２－７］ ．空气微生物主要附着在灰尘颗粒物上，以生
物气溶胶形式存在，包括细菌、真菌、病毒、原生动物
和其他微小动植物［８］ ．生物气溶胶可以传播或产生
过敏原和毒素［９］，导致人体患呼吸性疾病、过敏反
应、传染病等［１０－１２］ ．生物气溶胶还可以作为冰核和
云凝结核，导致云滴和冰晶的形成，从而间接影响全
球气候［１３］ ．
空气微生物研究方法主要包括传统培养法和非
培养法．传统培养法通常采用自然沉降法或空气采
样器采集空气微生物，培养后进行菌落计数，分离和
纯化后，鉴定菌种．非培养法主要包括基于 ＰＣＲ 技
术的分子生物学法、单一碳源利用法、荧光原位杂交
技术等［１４－１５］ ．传统培养法虽然快速有效，但由于空
气微生物中只有大约 １％的微生物能够在培养基上
应 用 生 态 学 报　 ２０１５年 ４月　 第 ２６卷　 第 ４期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　
Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｅｃｏｌｏｇｙ， Ａｐｒ． ２０１５， ２６（４）： １１２１－１１２９
形成菌落，因此对群落结构的判定误差较大，不能全
面反映空气微生物群落结构信息［１６］ ．采用分子生物
学技术建立克隆文库进行 ＲＦＬＰ 分析，能有效避免
这一弊端［１７－１９］ ．
近年来，分子生物学技术在研究水体、土壤微生
物群落结构方面已发展成为一种成熟有效的技术，
但对空气样品的研究只有少量报道［２０－２２］ ．国内学
者［２３－２５］对于城市空气微生物多样性研究大多采用
传统培养方法，国外学者［２６－２９］则主要开展室内空气
微生物检测以及废水处理厂、植物堆肥、饲养场等空
气微生物的研究．青岛位于黄海之滨，空气微生物受
内陆与海洋双重影响，研究空气微生物群落多样性，
对于了解沿海城市空气微生物组成以及对大气环
境、人体健康的影响具有重要意义．本文采用 ＫＣ⁃
６１２０空气综合采样器采集空气微生物样品，通过构
建 １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ克隆文库和 ＲＦＬＰ 方法，分析青岛
市秋季空气微生物群落结构和特征．
１　 材料与方法
１􀆰 １　 采样地点和采样时间
采样地点选取青岛市市北区抚顺路（３６．１０° Ｎ，
１２０．３７° Ｅ）．抚顺路是青岛市的交通要道，人流量和
车流量较大，汽车尾气和扬尘污染较严重．采样时间
为 ２０１３ 年 １０ 月 ２４—２５ 日，分两次连续采样 ２０ ｈ．
采样期间天气晴朗，温度 ２０ ℃左右，采样前一周无
降雨．
１􀆰 ２　 样品采集方法
将两台 ＫＣ⁃６１２０ 空气综合采样器固定于三脚
架上，高度为 １．５ ｍ（人体平均呼吸高度），将无菌滤
膜置于采样器中（滤膜材质为玻璃纤维，直径 ８０
ｍｍ），空气流量为 １００ Ｌ·ｍｉｎ－１，采集后用 ０．８５％灭
菌生理盐水冲洗滤膜，将滤膜上沉积颗粒物溶于
其中．
１􀆰 ３　 研究方法
１􀆰 ３􀆰 １ ＤＮＡ提取和目的片段 ＰＣＲ 扩增 　 将溶有颗
粒物的生理盐水在离心机中 １２０００ ｒ·ｍｉｎ－１离心 ２０
ｍｉｎ，浓缩于 ２ ｍＬ离心管中，浓缩物用土壤 ＤＮＡ 提
取试剂盒（ＯＭＥＧＡ）提取 ＤＮＡ．以提取 ＤＮＡ为模板，
采用细菌 １６Ｓ ｒ ＤＮＡ扩增通用引物 ２７ｆ ／ １５００Ｒ［３０］和
真菌 １８ Ｓ ｒＤＮＡ 扩增通用引物 ＥＦ４ｆ ／ ＥＦ３ｒ［３１］（引物
序列见表 １）进行 ＰＣＲ扩增．细菌扩增条件：９４ ℃预
变性 ５ ｍｉｎ；９４ ℃变性 ４５ ｓ；５８．５ ℃退火 ４５ ｓ；７２ ℃
延伸 ９０ ｓ；完成 ３６ 个循环；７２ ℃延伸 １０ ｍｉｎ；４ ℃
保存．真菌扩增条件与细菌唯一区别是退火温度为
表 １　 引物序列
Ｔａｂｌｅ １　 Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｏｆ ｐｒｉｍｅｒｓ
名称
Ｎａｍｅ
序列
Ｓｅｑｕｅｎｃｅ
２７ｆ ５′⁃ＡＧＡＧＴＴＴＧＡＴＣＣＴＧＧＣＴＣＡＧ⁃３′
１５００Ｒ ５′⁃ＡＧＡＡＡＧＧＡＧＧＴＧＡＴＣＣＡＧＣＣ⁃３′
ＥＦ４ｆ ５′⁃ＧＧＡＡＧＧＧＧＴＧＴＡＴＴＴＡＴＴ Ａｇ⁃３′
ＥＦ３ｒ ５′⁃ＴＣＣＴＣＴＡＡＡＴＧＡＣＣＡＧＴＴＴＧ⁃３′
５３ ℃ ．ＰＣＲ反应体系：超纯水（ｄｄＨ２Ｏ） １９ μＬ、上游
引物（５ μｍｏｌ·Ｌ－１）２ μＬ、下游引物（５ μｍｏｌ·Ｌ－１）２
μＬ、ＤＮＡ ２ μＬ、ＰＣＲ预混液 （Ｍａｓｔｅｒ ｍｉｘ） ２５ μＬ，总
体积 ５０ μＬ．用 １％琼脂糖凝胶电泳检测 ＰＣＲ产物．
１􀆰 ３􀆰 ２构建 １６Ｓ ｒＤＮＡ和 １８Ｓ ｒＤＮＡ克隆文库　 选取
均一且较亮的目的条带进行胶回收，用琼脂糖凝胶
回收纯化试剂盒（ＯＭＥＧＡ）进行纯化，纯化后用 Ｔ４
连接酶克隆试剂盒（ＭＢＩ Ｆｅｒｍｅｎｔａｓ）将目的片段与
载体连接，之后转化到 Ｔｏｐ１０ 感受态细胞中［３２］，涂
板在具有 Ｘ⁃ｇａｌ ／ ＩＰＴＧ 抗性筛选的 ＬＢ 平板培养基
上［３３］，选取具有氨苄青霉素抗性的白色转化子进行
转板培养构建克隆文库．
１􀆰 ３􀆰 ３ ＲＦＬＰ 序列分析与测序　 通过菌落 ＰＣＲ 重新
获得 １６Ｓ ｒＤＮＡ和 １８Ｓ ｒＤＮＡ，１％琼脂糖凝胶电泳检
测，然后分别用限制性内切酶（ＨｈａＩ、ＲｓａＩ）对细菌菌
落和真菌菌落 ＰＣＲ产物进行酶切［３４］，用 ３％琼脂糖
凝胶电泳检测，获得 ＲＦＬＰ 图谱．分析酶切图谱［３５］，
在各 ＯＴＵ中任选一个克隆子制备穿刺管经 １６ ｈ 培
养后送生工生物工程（上海）股份有限公司测序．
１􀆰 ３􀆰 ４系统发育与克隆文库分析 　 在 ＮＣＢＩ 中将测
序结果输入 ＢＬＡＳＴ 程序与数据库中序列进行比
对［３６］，依据相似度最高的已知菌种序列，运用
ＭＥＧＡ ５．０软件构建系统发育树，建树模型为 Ｋｉｍｕ⁃
ｒａ２⁃ｐａｒａｍｅｔｅｒ，Ｂｏｏｔｓｔｒａｐ值为 １０００．计算克隆文库覆
盖度 （ ｃｏｖｅｒａｇｅ ｖａｌｕｅ， Ｃ ）、 Ｓｈａｎｎｏｎ 多样性指数
（Ｓｈａｎｎｏｎ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎｄｅｘ， Ｈ′）、辛普森指数（Ｓｉｍｐｓｏｎ
ｉｎｄｅｘ， Ｄ）、丰富度（ｓｐｅｃｉｅｓ ｒｉｃｈｎｅｓｓ）和均匀度（ｓｐｅ⁃
ｃｉｅｓ ｅｖｅｎｎｅｓｓ， Ｅ）．具体方法见参考文献［３７］．
２　 结果与分析
２􀆰 １　 目的基因的提取及 １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ扩增
利用土壤 ＤＮＡ 提取试剂盒（ＯＭＥＧＡ）提取总
ＤＮＡ，ＤＮＡ产率和纯度能够满足 ＰＣＲ 扩增要求．以
总 ＤＮＡ为模板，利用细菌、真菌通用引物进行 ＰＣＲ
扩增，图 １为 １６Ｓ ｒＤＮＡ 和 １８Ｓ ｒＤＮＡ 琼脂糖凝胶电
泳图谱．可以看出，１６Ｓ ｒＤＮＡ和 １８Ｓ ｒＤＮＡ ＰＣＲ扩增
产物片段大小分别为１６００和１７００ ｂｐ左右，与预期
２２１１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷
图 １　 １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ ＰＣＲ琼脂糖凝胶电泳图谱
Ｆｉｇ．１　 Ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ⁃
ＰＣＲ ｒｅｓｕｌｔ
Ｍ：分子标记 ＤＮＡ ｍａｒｋｅｒ （ＢＭ２０００）． 下同 Ｔｈｅ ｓａｍｅ ｂｅｌｏｗ． １）真菌
Ｆｕｎｇｉ； １′）真菌平行样 Ｐａｒａｌｌｅｌ ｓａｍｐｌｅ ｏｆ ｆｕｎｇｉ； ２）细菌 Ｂａｃｔｅｒｉａ； ２′）
细菌平行样 Ｐａｒａｌｌｅｌ ｓａｍｐｌｅ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ； ３）空白样 Ｂｌａｎｋ ｓａｍｐｌｅ．
大小符合，且亮度高，均一性较好．
２􀆰 ２　 转化子的鉴定
在具有 Ｘ⁃ｇａｌ ／ ＩＰＴＧ抗性筛选的细菌和真菌 ＬＢ
平板上分别随机选取 ２００和 １００个具有氨苄青霉素
抗性的白色转化子，转板标记培养后进行菌落
ＰＣＲ，１％琼脂糖凝胶电泳分离．空气细菌和空气真
菌 ＰＣＲ扩增产物片段大小与总 ＤＮＡ 的 ＰＣＲ 结果
一致，亮度均一度较高，但也有部分克隆子亮度较弱
且不均一，挑取大小符合要求并且条带均一、亮度高
的克隆子进行酶切反应．
２􀆰 ３　 ＲＦＬＰ 分析和克隆文库分析
将符合要求的空气细菌和空气真菌菌落 ＰＣＲ
产物分别经限制性内切酶 ＨｈａＩ、ＲｓａＩ酶切后，用 ３％
琼脂糖凝胶电泳分离，电泳图谱见图 ２．
从图 ２可以看出，酶切条带较丰富，条带位置差
异性较大且亮度高，说明选用的限制性内切酶可以
对空气微生物种类进行划分．通过对酶切图谱分析，
将空气细菌 １５１个克隆子分为 ４３个 ＯＴＵ，空气真菌
８１个克隆子分为 １７ 个 ＯＴＵ，序列多样性分析结果
见表 ２．从划分的 ＯＴＵ数看，青岛市空气细菌与空气
真菌的群落多样性非常丰富．１６Ｓ ｒＤＮＡ和 １８Ｓ ｒＤＮＡ
克隆文库覆盖度分别为 ９３．４％和 ９３．８％，可包含大
部分空气细菌和空气真菌，比较真实地反映了空气
中微生物的群落特征．构建的 １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ 克隆
文库的Ｓｈａｎｎｏｎ指数、Ｓｉｍｐｓｏｎ指数、丰富度、均匀度
图 ２　 １６Ｓ （Ａ） ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ（Ｂ）菌落 ＰＣＲ 产物酶切琼脂糖凝
胶电泳图谱
Ｆｉｇ．２　 Ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ １６Ｓ （Ａ） ／ １８Ｓ
ｒＤＮＡ （Ｂ） ｃｏｌｏｎｉｅｓ ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ．
较高，空气细菌 １６Ｓ ｒＤＮＡ 克隆文库多样性指数均
大于空气真菌．
空气细菌 １６Ｓ ｒＤＮＡ、空气真菌 １８Ｓ ｒＤＮＡ 克隆
文库分析结果见表 ３、表 ４．构建空气细菌、空气真菌
系统发育树，结果见图 ３、图 ４．
１６Ｓ ｒＤＮＡ克隆文库中克隆子与 ＮＣＢＩ中已知菌
种相似性在 ８１％ ～ ９９％，其中相似度大于 ９７％的克
隆子 ７１ 个，占总数的 ４７．０％，相似度低于 ９３％的克
隆子 ２５个，占总数的 １６．６％．空气细菌分布在 ６ 大
类，分别为变形菌门（Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ， ７８．８％）、厚壁
菌门（ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ， １４． ６％）、放线菌门 （ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅ⁃
ｒｉａ， ４．０％）、浮霉菌门（Ｐｌａｎｃｔｏｍｙｃｅｔｅｓ， １．３％）、蓝藻
门（Ｃｙａｎｏｂａｃｔｅｒｉａ， ０．７％）和栖热菌门（Ｄｅｉｎｏｃｏｃｃｕｓ⁃
Ｔｈｅｒｍｕｓ， ０．７％）．变形菌门为优势菌群，其中 α⁃变形
菌纲（Ａｌｐｈａｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ， ２９．８％）、β⁃变形菌纲（Ｂｅ⁃
ｔａｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ， ８． ０％）、 γ⁃变形菌纲 （ Ｇａｍｍａｐｒｏ⁃
ｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ， ４１．１％）占较大比例，此外还有厚壁菌门
中芽孢杆菌纲（Ｂａｃｉｌｌｉ， １４．６％），放线菌门放线菌纲
（Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ， ４． ０％）、浮霉菌纲 （ Ｐｌａｎｃｔｏｍｙｃｅｔａ⁃
ｃｉａ， １．３％）、蓝藻门蓝藻纲（Ｃｙａｎｏｂａｃｔｅｒｉａ， ０．７％）和
表 ２　 克隆文库多样性指数分析
Ｔａｂｌｅ ２　 Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎｄｅｘ ｏｆ １６Ｓ ／ １８Ｓ ｒＤＮＡ ｃｌｏｎｅ ｌｉｂｒａｒｉｅｓ
克隆文库
Ｃｌｏｎｅ ｌｉｂｒａｒｙ
克隆子数
Ｃｌｏｎｅ
ｎｕｍｂｅｒ
ＯＴＵｓ 覆盖度
Ｃｏｖｅｒａｇｅ ｖａｌｕｅ
Ｓｈａｎｎｏｎ指数
Ｓｈａｎｎｏｎ ｉｎｄｅｘ
Ｓｉｍｐｓｏｎ指数
Ｓｉｍｐｓｏｎ ｉｎｄｅｘ
丰富度
Ｓｐｅｃｉｅｓ ｒｉｃｈｎｅｓｓ
均匀度
Ｅｖｅｎｎｅｓｓ
１６Ｓ ｒＤＮＡ １５１ ４３ ９３．４％ ２．９ ０．９ ８．４ ０．８
１８Ｓ ｒＤＮＡ ８１ １７ ９３．８％ １．９ ０．７ ３．８ ０．６
３２１１４期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 王　 琳等： 青岛市秋季空气微生物群落多样性　 　 　 　 　 　
表 ３　 空气细菌 １６Ｓ ｒＤＮＡ克隆文库分析
Ｔａｂｌｅ ３　 Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｃｌｏｎｅ ｌｉｂｒａｒｙ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ
最相似菌（ＮＣＢＩ登录号）
Ｍｏｓｔ ｓｉｍｉｌａｒ（ＮＣＢＩ ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ）
相似性
Ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ
（％）
ＯＴＵｓ 丰度
Ａｂｕｎｄａｎｃｅ
（％）
类群
Ｇｒｏｕｐ
类群百分比
Ｇｒｏｕｐ ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ
Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｏｒｙｚａｅ ｐｖ． ｏｒｙｚａｅ ＫＡＣＣ １０３３１ （ＮＲ＿０７４９３８．１） ９７ １ ０．７ γ⁃变形菌纲 ４１．１
Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｍａｎｄｅｌｉｉ （ＮＲ＿０２４９０２．１） ９２ ５ ３．３
Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｌｗｏｆｆｉｉ （ＮＲ＿０２６２０９．１） ９４ ２ １．３
Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｈａｅｍｏｌｙｔｉｃｕｓ （ＮＲ＿０２６２０７．１） ９８～９９ ３８ ２５．２
Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｂａｕｍａｎｎｉｉ ＡＴＣＣ １７９７８ （ＮＲ＿０７４７３７．１） ９１～９３ １５ ９．９
Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｏｌｅｉｖｏｒａｎｓ ＤＲ１ （ＮＲ＿１０２８１４．１） ９３ １ ０．７
Ａｍａｒｉｃｏｃｃｕｓ ｍａｃａｕｅｎｓｉｓ（ＮＲ＿０２９２０２．１） ９７ ２ １．３ α⁃变形菌纲 ２９．８
Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｋａｉｓｔｅｎｓｉｓ （ＮＲ＿０４３１７１．１） ９７ １３ ８．６
Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ ｓｔｙｇｉｕｍ（ ＮＲ＿０４０８２６．１） ９６ １ ０．７
Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ ｎａｐｈｔｈａｌｅｎｉｖｏｒａｎｓ （ＮＲ＿０４１０４６．１） ９８ ５ ３．３
Ｃａｕｌｏｂａｃｔｅｒ ｓｅｇｎｉｓ （ＮＲ＿０７４２０８．１） ８９ １ ０．７
Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ ｃａｒｏｔｉｎｉｆａｃｉｅｎｓ （ＮＲ＿０２４６５８．１） ９９ ９ ６．０
Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｓｕｂｖｉｂｒｉｏｉｄｅｓ （ＮＲ＿０７４１３６．１） ９２ １４ ９．３
Ｒｕｂｅｌｌｉｍｉｃｒｏｂｉｕｍ ｍｅｓｏｐｈｉｌｕｍ （ＮＲ＿０４４２７５．１） ９１～９２ ４ ２．７
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ ＲＰ６２Ａ （ＮＲ＿０７４９９５．１） ９９ １７ １１．３ 芽孢杆菌纲 １４．６
Ｃａｒｎｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ． １７⁃４ （ＮＲ＿０７４９６４．１） ９３ ４ ２．７
Ｅｘｉｇｕｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｕｒａｎｔｉａｃｕｍ （ＮＲ＿０４３４７８．１） ９１ １ ０．７
Ｍｅｔｈｙｌｉｂｉｕｍ ｐｅｔｒｏｌｅｉｐｈｉｌｕｍ （ＮＲ＿０４１７６８．１） ８９ ４ ２．７ β⁃变形菌纲 ８．０
Ｍａｓｓｉｌｉａ ａｕｒｅａ（ ＮＲ＿０４２５０２．１） ９５～９９ ４ ２．７
Ｍａｓｓｉｌｉａ ｔｉｍｏｎａｅ （ＮＲ＿０２６０１４．１） ９６～９９ ４ ２．７
Ｂｒａｃｈｙｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆａｅｃｉｕｍ （ＮＲ＿０７４６５５．１） ９５ ４ ２．７ 放线菌纲 ４．０
Ｐｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｃｎｅｓ ＫＰＡ１７１２０２ （ＮＲ＿０７４６７５．１） ９９ ２ １．３
Ｓｃｈｌｅｓｎｅｒｉａ ｐａｌｕｄｉｃｏｌａ （ＮＲ＿０４２４６６．１） ８１ ２ １．３ 浮霉菌纲 １．３
Ｏｓｃｉｌｌａｔｏｒｉａ ｎｉｇｒｏ⁃ｖｉｒｉｄｉｓ ＰＣＣ ７１１２（ＮＲ＿１０２４６９．１） ９０ １ ０．７ 蓝藻纲 ０．７
Ｔｒｕｅｐｅｒａ ｒａｄｉｏｖｉｃｔｒｉｘ （ＮＲ＿０７４３８１．１） ８８ １ ０．７ 异常球菌纲 ０．７
表 ４　 空气真菌 １８Ｓ ｒＤＮＡ克隆文库分析结果
Ｔａｂｌｅ ４　 Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ １８Ｓ ｒＤＮＡ ｃｌｏｎｅ ｌｉｂｒａｒｙ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｆｕｎｇｉ
最相似菌（ＮＣＢＩ登录号）
Ｍｏｓｔ ｓｉｍｉｌａｒ（ＮＣＢＩ ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ）
相似性
Ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ
（％）
ＯＴＵｓ 丰度
Ａｂｕｎｄａｎｃｅ
（％）
类群
Ｇｒｏｕｐ
类群百分比
Ｇｒｏｕｐ ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ
Ｚａｓｍｉｄｉｕｍ ｃｅｌｌａｒｅ（ＮＧ＿０１６５４０．１） ９９ １ １．２ 座囊菌纲 ７７．７
Ｐｙｒｅｎｏｐｈｏｒａ ｐｈａｅｏｃｏｍｅｓ （ＮＧ＿０１３１９０．１） ９９ ６２ ７６．５
Ｂｏｍｂａｒｄｉａ ｂｏｍｂａｒｄａ ｖｏｕｃｈｅｒ Ｆ：ＳＭＨ ３３９１（ＮＧ＿０１３１８７．１） ９６ ３ ３．７ 粪壳菌纲 １６．１
Ｘｙｌａｒｉａ ｈｙｐｏｘｙｌｏｎ ｖｏｕｃｈｅｒ ＯＳＣ：１００００４（ＮＧ＿０１３１３６．１） ９５～９６ １０ １２．４
Ｇｒｉｆｏｌａ ｓｏｒｄｕｌｅｎｔａ ｖｏｕｃｈｅｒ ＴＥＮＮ：５５０５４ （ＮＧ＿０１３１７２．１） ８８～９０ ２ ２．５ 伞菌纲 ２．５
Ｅｘｏｐｈｉａｌａ ｐｉｓｃｉｐｈｉｌａ ｖｏｕｃｈｅｒ ＤＵＫＥ： Ｗ． Ｕｎｔｅｒｅｉｎｅｒ ＷＵＣ １３７ （ ＮＧ ＿
０１３１９２．１） ９７ ２ ２．５ 散囊菌纲 ２．５
Ｃｈｅｉｌｙｍｅｎｉａ ｓｔｅｒｃｏｒｅａ ｖｏｕｃｈｅｒ ＯＳＣ：１０００３４ （ＮＧ＿０１３１４３．１） ９２ １ １．２ 盘菌纲 １．２
异常球菌纲（Ｄｅｉｎｏｃｏｃｃｉ， ０．７％）所占比例较小．克隆
文库中与 ＮＣＢＩ中已知菌种相似度大于 ９３％的克隆
子主要分布在不动杆菌属（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ， ３９．７％）、
葡萄球菌属（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ， １１．３％）、鞘脂单胞菌属
（ Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ， ８． ６％）、 副球菌属 （ Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ，
６􀆰 ０％）和马赛菌属（Ｍａｓｓｉｌｉａ， ５． ３％），新鞘脂菌属
（Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ， ４． ０％）、肉杆菌属（Ｃａｒｎｏｂａｃｔｅｒｉ⁃
ｕｍ， ２􀆰 ７％）、丙酸杆菌属（Ｐｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ，１􀆰 ３％）、
Ａｍａｒｉｃｏｃｃｕｓ（１．３％）和黄色单胞菌属（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ，
０􀆰 ７％）所占比例较小．
１８ ｒＤＮＡ 克隆文库中克隆子与 ＮＣＢＩ 中已知菌
种的相似性在 ８８％ ～ ９９％，相似度大于 ９７％的克隆
子 ６５个，占总数的 ８０．３％，相似度低于 ９３％的克隆
子 ３个，占总数的 ３．７％．克隆子分布子囊菌门（Ａｓｃｏ⁃
ｍｙｃｏｔａ， ９７．５％）和担子菌门（Ｂａｓｉｄｉｏｍｙｃｏｔａ， ２．５％）．
文库中的克隆子与 ＮＣＢＩ 中已知菌种相似度大于
９３％的菌株主要分布在核腔菌属 （ Ｐｙｒｅｎｏｐｈｏｒａ，
７６􀆰 ５％）、炭角菌属（Ｘｙｌａｒｉａ， １３．６％），外瓶霉属（Ｅｘ⁃
ｏｐｈｉａｌａ， ２．５％）、平脐疣孢属（Ｂｉｐｏｌａｒｉｓ， １．２％）、蚪
孢壳属（Ｂｏｍｂａｒｄｉａ， ２．５％），核腔菌属占绝对优势．
４２１１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷
图 ３　 青岛市秋季空气细菌系统发育树
Ｆｉｇ．３　 Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅ ｂａｓｅｄ ｏｎ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｃｌｏｎｅｓ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎ Ｑｉｎｇｄａｏ ｉｎ ａｕｔｕｍｎ．
图 ４　 青岛市秋季空气真菌系统发育树
Ｆｉｇ．４　 Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅ ｂａｓｅｄ ｏｎ １８Ｓ ｒＤＮＡ ｃｌｏｎｅｓ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｆｕｎｇｉ ｉｎ Ｑｉｎｇｄａｏ ｉｎ ａｕｔｕｍｎ．
３　 讨　 　 论
青岛市秋季空气细菌主要集中在变形菌门，说
明变形菌门细菌比较适合生活在大气环境，与同样
采用分子生物学方法的国内外学者的研究结果一
致［２０－２２，３８－３９］ ．Ｂｏｗｅｒｓ等［４０］在美国科罗拉多州采集空
气样本，研究发现变形菌门占优势，厚壁菌门和放线
菌门比例也较大，并且空气微生物群落结构结果与
天气状况无关．变形菌门细菌属革兰氏阴性菌，分布
广，对低温、辐射等具有很强的抵抗力［４０－４２］ ．国外学
者［４３－４５］在研究空气微生物来源时发现，如果气溶胶
气团的来源为海洋，则革兰氏阴性菌占主导地位，而
当气团来自内陆时则表现为革兰氏阳性菌占优势．
从属水平看，青岛市秋季空气细菌优势菌属不动杆
菌属、鞘脂单胞菌属、葡萄球菌属和马赛菌属，革兰
氏阴性菌远大于革兰氏阳性菌．不动杆菌属为好氧
嗜中温细菌［４６］，广泛分布在水体和土壤环境中，该
类细菌粘性大，当空气中颗粒物较多时，易粘附于颗
粒物上大量繁殖，潮湿环境下更易生存．鞘脂单胞菌
属在土壤、水体以及各种极端环境中均可以生
存［４７－４９］ ．鞘脂单胞菌属可以适应多变的环境，尤其
是营养缺乏环境，可抵抗高温、紫外线、严寒等，与植
物关系密切，说明植被也是青岛市空气微生物的重
要来源［５０］ ．葡萄球菌在自然界分布广泛，主要在哺
乳动物和鸟类的皮肤、皮肤腺体和黏膜上．马赛菌属
以易降解有机物质为底物，属于生长速度较快的富
营养菌，是许多植物土壤根际的优势菌群［５１］ ．
研究发现，采用分子生物学方法和传统培养方
法研究空气微生物，所得结果差别较大．方治国
等［２３－２４］采用传统培养方法研究表明，北京市空气细
菌优势菌属为芽孢杆菌属、葡萄球菌属、微球菌属．
徐文兵等［２５］对青岛市近海秋季生物气溶胶研究表
５２１１４期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 王　 琳等： 青岛市秋季空气微生物群落多样性　 　 　 　 　 　
明，考克氏菌属 （Ｋｏｃｕｒｉａ）、短杆菌属 （Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉ⁃
ｕｍ）和巨大芽孢杆菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）为优势菌
属，革兰氏阳性菌多于革兰氏阴性菌． 国外学
者［５２－５９］对城市、农村、沿海、森林等空气微生物群落
结构采用传统培养方法和分子生物学法研究，传统
培养法得到的细菌 ７０％ ～ ９０％为革兰氏阳性菌，主
要为芽孢杆菌属、微球属、葡萄球菌属和假单胞菌属
（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）细菌，但采用分子生物学方法得到的
结果为革兰氏阴性菌为优势菌种，尤其以 α⁃变形菌
纲、β⁃变形菌纲、γ⁃变形菌纲及拟杆菌纲较多，常见
菌属为鞘脂单胞菌属和假单胞菌属．
空气真菌优势菌群为子囊菌门，与国内外的研
究结果相同［６０－６１］，从属水平来看，座囊菌纲中的核
腔菌属、粪壳菌纲中的炭角菌属为优势菌属．核腔菌
属主要寄生在植物树叶上，对农作物及果树危害很
大．炭角菌属菌群种类多，分布广，在春末或秋初时
繁殖较快，主要在植物表面产生，说明除水体、土壤
以外，植被也是空气微生物的来源．方治国等［２３－２４］
采用传统培养方法得到北京空气真菌优势菌属为枝
孢属（Ｃｌａｄｏｓｐｏｒｉｕｍ） 、链格孢属（Ａｌｔｅｒｎａｒｉａ）和无孢
菌（Ｓｔｅｒｉｌｅ ｍｏｎｉｌｉａｃｅｏｕｓ）；凌琪等［６２］对合肥空气真菌
多样性研究显示优势菌属为曲霉属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）和
青霉属（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）；符春兰等［６３］对北京、上海、广
州、成都 ４城市空气真菌研究表明，优势菌属为枝孢
属、链格孢属、青霉属和曲霉属；国外文献中空气真
菌优势菌属为枝孢菌属、链格孢属、无孢菌、青霉属
以及曲霉属［６４－６５］，与采用分子生物学方法的研究结
果差别较大．
青岛市秋季空气中存在部分致病菌或条件致病
菌．不动杆菌属是条件致病菌，可以引起肺炎、皮肤
和软组织感染、创面感染、泌尿系统感染、继发性脑
膜炎和败血症等疾病［６６］ ．鞘脂单胞菌属可以通过感
染伤口进入人体引起炎症和败血症［６７］ ．葡萄球菌是
常见的化脓性细菌，是医院交叉感染的重要来源．真
菌孢子被发现与人们的过敏有关，其中可导致人体
过敏的真菌主要在子囊菌门中［６８］ ．此外，麦类核腔
菌（Ｐ． ｇｒａｍｉｎｅａ）、团炭角菌（Ｘ． ｈｙｐｏｘｙｌｏｎ）、角状平
脐疣孢（Ｚ． ａｎｇｕｌａｒｅ）与农作物疾病有关，可引起多
种农作物枯萎死亡．
在构建的克隆文库中，细菌克隆子和真菌克隆
子相似度低于 ９３％的分别占总数的 １６．６％和 ３．７％．
一般认为，序列相似度若低于 ９７％即属于不同
种［６９］，序列相似度小于 ９３％，则可以认为属于不同
属［２３－２４］ ．说明空气中存在部分未知细菌和真菌种类．
另外，在本研究中，１６Ｓ ｒＤＮＡ和 １８Ｓ ｒＤＮＡ 克隆文库
的覆盖度分别为 ９３．４％和 ９３．８％，虽然已包含大部
分空气细菌和空气真菌，但仍有部分菌种无法涵盖．
此外，我们课题组采用实时荧光定量 ＰＣＲ技术检测
空气 ＤＮＡ样品，发现可检测出大肠杆菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ
ｃｏｌｉ）、粪肠球菌（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆａｅｃａｌｉｓ），但这些类群
未在克隆文库中出现，说明克隆文库方法对低含量
微生物灵敏度不够，今后还将采用高通量测序和实
时荧光定量 ＰＣＲ等方法进行深入研究．
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６２１１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷
Ａ ｒｅｖｉｅｗ ｗｉｔｈ ｓｐｅｃｉａｌ ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｔｏ ｒｅｓｉｄｅｎｔｉａｌ ａｎｄ ｏｃｃｕ⁃
ｐａｔｉｏｎａｌ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ． Ｏｐｅｎ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ Ｊｏｕｒｎａｌ， ２０１１， ４： ８３－９６
［１３］　 Ｂａｕｅｒ Ｈ， Ｇｉｅｂｌ Ｈ， Ｈｉｔｚｅｎｂｅｒｇｅｒ Ｒ， ｅｔ ａｌ． Ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃ⁃
ｔｅｒｉａ ａｓ ｃｌｏｕｄ ｃｏｎｄｅｎｓａｔｉｏｎ ｎｕｃｌｅｉ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｇｅｏｐｈｙｓｉ⁃
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ｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ ｓｐｐ． ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｎｉｔｒｏｉｍ⁃
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ｒｕｒａｌ， ａｎｄ ｈｉｇｈ⁃ａｌｐｉｎｅ ａｉｒ ｂｙ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎｄ ｒｅｓｔｒｉｃ⁃
ｔｉｏｎ ｆｒａｇｍｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＲＮＡ ｇｅｎｅｓ． Ｂｉｏｇｅｏ⁃
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Ｆ （胡利锋）， ｅｔ ａｌ． Ｔｈｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｏｆ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏ⁃
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ｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ （生态学报）， ２００４， ２４（２）： ３１５ － ３２２
（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［２４］　 Ｆａｎｇ Ｚ⁃Ｇ （方治国）， Ｏｕｙａｎｇ Ｚ⁃Ｙ （欧阳志云）， Ｈｕ Ｌ⁃
Ｆ （胡利锋）， ｅｔ ａｌ． Ｔｈｅ ｓｕｍｍｅｒ ａｉｒ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉ⁃
ｔｙ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｅｉｊｉｎｇ． Ａｃｔａ
Ｅｃｏｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ （生态学报）， ２００５， ２５（１）： ８３－８８
（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
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川）， ｅｔ ａｌ． Ｑｉｎｇｄａｏ ｏｆｆｓｈｏｒｅ ｓｕｍｍｅｒ， ａｕｔｕｍｎ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
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ｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｙｘｏｂａｃｔｅ⁃
ｒｉａ． Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，
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ｇａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｗｈｅａｔ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｂｙ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｏｆ
ｃｌｏｎｅｄ ＰＣＲ⁃ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｇｅｎｅｓ ｅｎｃｏｄｉｎｇ １８Ｓ ｒＲＮＡ ａｎｄ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｇｒａｄｉｅｎｔ ｇｅｌ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ． Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ
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ｏｆ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ｉｎｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒ ｒｅ⁃
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（６）： １７６５－１７７２ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３７］　 Ｗａｎｇ Ｙ （王 　 英）， Ｔｅｎｇ Ｑ⁃Ｈ （滕齐辉）， Ｃｕｉ Ｚ⁃Ｌ
（崔中利）， ｅｔ ａｌ． Ｎｏ⁃ｔｉｌｌａｇｅ ｐａｄｄｙ ｓｏｉｌ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｄｉｖｅｒｓｉ⁃
ｔｙ ａｎｄ ｓｐａｔｉａｌ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ． Ａｃｔａ Ｐｅｄｏｌｏｇｉ⁃
ｃａ Ｓｉｎｉｃａ （土壤学报）， ２００７， ４４（１）： １３７－ １４３ （ ｉｎ
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ｂｒａｒｙ． Ａｔｍｏｓｐｈｅｒｉｃ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， ２００５， ３９： ３６８７－３６９５
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ｅｖａｔｉｏｎ ｓｉｔｅ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｔｏ ａｃｔ ａｓ ａｔｍｏｓｐｈｅｒｉｃ ｉｃｅ
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ａｌ． Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｆｒｏｍ ａｎｃｉｅｎｔ ｇｌａｃｉａｌ ｉｃｅ． Ｅｎｖｉｒｏｎ⁃
ｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， ２００３， ５： ４３３－４３６
［４３］　 Ｃｈｏ ＢＣ， Ｈｗａｎｇ ＣＹ． Ｐｒｏｋａｒｙｏｔｉｃ ａｂｕｎｄａｎｃｅ ａｎｄ １６Ｓ
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［４４］　 Ｆａｈｌｇｒｅｎ Ｃ， Ｈａｇｓｔｒöｍ Å， Ｎｉｌｓｓｏｎ Ｄ， ｅｔ ａｌ． Ａｎｎｕａｌ ｖａｒｉ⁃
ａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｔｈｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ， ｖｉａｂｉｌｉｔｙ， ａｎｄ ｏｒｉｇｉｎ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ
ｂａｃｔｅｒｉａ． Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，
２０１０， ７６： ３０１５－３０２５
［４５］　 Ｕｒｂａｎｏ Ｒ， Ｐａｌｅｎｉｋ Ｂ， Ｇａｓｔｏｎ ＣＪ， ｅｔ ａｌ． Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｃｏａｓｔａｌ ｂｉｏａｅｒｏｓｏｌｓ ｕｓｉｎｇ ｃｕｌｔｕｒｅ
ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ａｎｄ ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ． Ｂｉｏｇｅｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，
２０１１， ８： ３０１－３０９
［４６］　 Ａｉ Ｍ⁃Ｑ （艾明强）， Ｌｉ Ｈ （李 　 慧）， Ｌｉｕ Ｘ⁃Ｂ （刘晓
波）， ｅｔ ａｌ． Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｉｎ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ
ｗａｔｅｒ ｆｒｏｍ ｏｉｌ ｒｅｓｅｒｖｏｉｒｓ ｉｎ Ｄａｑｉｎｇ Ｏｉｌｆｉｅｌｄ． Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｅｃｏｌｏｇｙ （应用生态学报）， ２０１０， ２１
（４）： １０１４－１０２０ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［４７］　 Ｂｅｒｇ Ｇ， Ｂａｌｌｉｎ Ｇ． Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｓ ｔｏ Ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ
ｄａｈｌｉａｅ Ｋｌｅｂ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ， １９９４， １４１：
９９－１１０
［４８］　 Ａｄｈｉｋａｒｉ ＴＢ， Ｊｏｓｅｐｈ ＣＭ， Ｙａｎｇ Ｇ， ｅｔ ａｌ． Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ
ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｒｉｃｅ ｆｏｒ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ｐｒｏｍｏｔｉｏｎ ａｎｄ
ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｉｓｅａｓｅ ｏｆ ｒｉｃｅ． Ｃａｎａｄｉａｎ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， ２００１， ４７： ９１６－９２４
［４９］　 Ｐｉｎｈａｓｓｉ Ｊ， Ｂｅｒｍａｎ Ｔ． Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｏｆ
ｃｏｌｏｎｙ ｆｏｒｍｉｎｇ ａｎｄ ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎ ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｃｕｌｔｕｒｅ ａｎｄ
ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｄｄｉｔｉｏｎ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ ｆｒｏｍ Ｌａｋｅ Ｋｉｎｎｅｒｅｔ （ Ｉｓｒａ⁃
ｅｌ）， ｔｈｅ ｅａｓｔｅｒｎ Ｍｅｄｉｔｅｒｒａｎｅａｎ Ｓｅａ， ａｎｄ ｔｈｅ Ｇｕｌｆ ｏｆ
Ｅｉｌａｔ． Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， ２００３，
６９： １９９－２１１
［５０］　 Ｌｉ Ｙ， Ｋａｗａｍｕｒａ Ｙ， Ｆｕｊｉｗａｒａ Ｎ， ｅｔ ａｌ． Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ
ｙａｂｕｕｃｈｉａｅ ｓｐ． ｎｏｖ． ａｎｄ Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｎａｓｄａｅ ｓｐ．ｎｏｖ．，
ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ Ｒｕｓｓｉａｎ Ｓｐａｃｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍｉｒ． Ｉｎｔｅｒｎａ⁃
ｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏ⁃
ｇｙ， ２００４， ５４： ８１９－８２５
［５１］ 　 Ｏｆｅｋ Ｍ， Ｈａｄａｒ Ｙ， Ｍｉｎｚ Ｄ． Ｅｃｏｌｏｇｙ ｏｆ ｒｏｏｔ ｃｏｌｏｎｉｚｉｎｇ
Ｍａｓｓｉｌｉａ （Ｏｘａｌｏ⁃ｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ）． ＰＬｏＳ Ｏｎｅ， ２０１２， ７（７）：
ｅ４０１１７
［５２］　 Ｂｒｏｄｉｅ ＥＬ， ＤｅＳａｎｔｉｓ ＴＺ， Ｐａｒｋｅｒ ＪＰＭ， ｅｔ ａｌ． Ｕｒｂａｎ
ａｅｒｏｓｏｌｓ ｈａｒｂｏｒ ｄｉｖｅｒｓｅ ａｎｄ ｄｙｎａｍｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐｏｐｕｌａ⁃
ｔｉｏｎｓ． Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ
ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ， ２００７， １０４： ２９９－３０４
［５３］　 Ｓｈａｆｆｅｒ Ｂ， Ｌｉｇｈｔｈａｒｔ Ｂ， ｅｔ ａｌ． Ｓｕｒｖｅｙ ｏｆ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ａｉｒ⁃
ｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｔ ｆｏｕｒ ｄｉｖｅｒｓｅ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｏｒｅｇｏｎ：
Ｕｒｂａｎ， ｒｕｒａｌ， ｆｏｒｅｓｔ， ａｎｄ ｃｏａｓｔａｌ． Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｅｃｏｌｏｇｙ，
１９９７， ３４： １６７－１７７
［５４］　 Ｂｏｖａｌｌｕｓ Ａ， Ｂｕｃｈｔ Ｂ， Ｒｏｆｆｅｙ Ｒ， ｅｔ ａｌ． Ｔｈｒｅｅ⁃ｙｅａｒ ｉｎｖｅｓ⁃
ｔｉｇａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｎａｔｕｒａｌ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｆｌｏｒａ ａｔ ｆｏｕｒ ｌｏ⁃
ｃａｌｉｔｉｅｓ ｉｎ Ｓｗｅｄｅｎ． Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ⁃
ｏｇｙ， １９７８， ３５： ８４７－８５２
［５５］　 Ｆａｎｇ ＺＧ， Ｏｕｙａｎｇ ＺＹ， Ｚｈｅｎｇ Ｈ， ｅｔ ａｌ． Ｃｕｌｔｕｒａｌ ａｉｒ⁃
ｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎ ｏｕｔｄｏｏｒ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ ｉｎ Ｂｅｉｊｉｎｇ， Ｃｈｉ⁃
ｎａ． Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｅｃｏｌｏｇｙ， ２００７， ５４： ４８７－４９６
［５６］　 Ｚｗｅｉｆｅｌ ＵＬ， Ｈａｇｓｔｒöｍ Å， Ｈｏｌｍｆｅｌｄｔ Ｋ， ｅｔ ａｌ． Ｈｉｇｈ ｂａｃ⁃
ｔｅｒｉａｌ １６Ｓ ｒＲＮＡ ｇｅｎｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｂｏｖｅ ｔｈｅ ａｔｍｏｓｐｈｅｒｉｃ
ｂｏｕｎｄａｒｙ ｌａｙｅｒ． Ａｅｒｏｂｉｏｌｏｇｉａ， ２０１２， ２８： ４８１－４９８
［５７］　 Ｍａｒｏｎ ＰＡ， Ｍｏｕｇｅｌ Ｃ， Ｌｅｊｏｎ ＤＰＨ， ｅｔ ａｌ． Ｔｅｍｐｏｒａｌ ｖａｒ⁃
ｉａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｉｎ ａｎ
ｕｒｂａｎ ａｒｅａ． Ａｔｍｏｓｐｈｅｒｉｃ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， ２００６， ４０： ８０７４－
８０８０
［５８］　 Ｆａｈｌｇｒｅｎ Ｃ， Ｂｒａｔｂａｋ Ｇ， Ｓａｎｄａａ ＲＡ， ｅｔ ａｌ． Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ
ａｉｒｂｏｒｎｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎ ｓａｍｐｌｅｓ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｕｓｉｎｇ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｄｅ⁃
ｖｉｃｅｓ ｆｏｒ ａｅｒｏｓｏｌ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ． Ａｅｒｏｂｉｏｌｏｇｉａ， ２０１１， ２７：
１０７－１２０
［５９］　 Ｄｉ Ｇｉｏｒｇｉｏ Ｃ， Ｋｒｅｍｐｆｆ Ａ， Ｇｕｉｒａｕｄ Ｈ， ｅｔ ａｌ． Ａｔｍｏｓｐｈｅｒ⁃
ｉｃ ｐｏｌｌｕｔｉｏｎ ｂｙ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ｉｎ ｔｈｅ ｃｉｔｙ ｏｆ
Ｍａｒｓｅｉｌｌｅｓ． Ａｔｍｏｓｐｈｅｒｉｃ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， １９９６， ３０： １５５ －
１６０
［６０］　 Ｓａｆａｔｏｖ ＡＳ， Ｔｅｐｌｙａｋｏｖａ ＴＶ， Ｂｅｌａｎ ＢＤ， ｅｔ ａｌ． Ａｔｍｏｓ⁃
ｐｈｅｒｉｃ ａｅｒｏｓｏｌ ｆｕｎｇｉ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ
ｓｏｕｔｈ ｏｆ ｗｅｓｔｅｒｎ Ｓｉｂｅｒｉａ． Ａｔｍｏｓｐｈｅｒｉｃ ａｎｄ Ｏｃｅａｎｉｃ Ｏｐ⁃
ｔｉｃｓ， ２０１０， ２３： ７３－７９
［６１］　 Ｓｕｎｇｈｅｅ Ｌ， Ｂｏｒａ Ｃ， Ｓｅｕｎｇ ＭＹ， ｅｔ ａｌ． Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ
ｏｆ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｄｕｒｉｎｇ Ａｓｉａｎ ｄｕｓｔ ｅｖｅｎｔｓ ｉｎ
Ｋｏｒｅａ． Ｓｃｉｅｎｃｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｔｏｔａｌ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， ２００９， ４０７：
５３０８－５３１４
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莉）， ｅｔ ａｌ． Ｔｈｅ ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ
８２１１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷
ｆｅａｔｕｒｅ ｏｆ Ｈｅｆｅｉ ａｉｒ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｅｎｖｉｒｏｎ⁃
ｍｅｎｔ ａｎｄ Ｈｅａｌｔｈ （环境与健康杂志）， ２００７， ２４（１）：
４０－４３ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［６３］　 Ｆｕ Ｃ⁃Ｌ （符春兰）， Ｈｅ Ｗ⁃Ｈ （何文华）， Ｊｉａ Ｊ⁃Ｈ （贾建
华）， ｅｔ ａｌ． Ｆｕｎｇｉ ｓｐｅｃｉａｌ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ ｆｏｕｒ ｃｉｔｉｅｓ ｉｎ ｏｕｒ
ｃｏｕｎｔｒｙ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ （微生物学通报），
２０００， ２７（４）： ２６４－２６９ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［６４］ 　 Ｃｈａｎｇ ＣＷ， Ｃｈｕｎｇ Ｈ， Ｈｕａｎｇ ＣＦ， ｅｔ ａｌ． Ｅｘｐｏｓｕｒｅ ｏｆ
ｗｏｒｋｅｒｓ ｔｏ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ｉｎ ｏｐｅｎ⁃ａｉｒ ｓｗｉｎｅ
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［６５］　 Ｓｈｅｌｔｏｎ ＢＧ， Ｋｉｒｋｌａｎｄ ＫＨ， Ｆｌａｎｄｅｒｓ ＷＤ， ｅｔ ａｌ． Ｐｒｏｆｉｌｅｓ
ｏｆ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｆｕｎｇｉ ｉｎ ｂｕｉｌｄｉｎｇ ａｎｄ ｏｕｔｄｏｏｒ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ ｉｎ
ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｓ Ｓｔａｔｅｄ． Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏ⁃
ｇｙ， ２００２， ６８： １７４３－１７５３
［６６］　 Ｄｉｊｋｓｈｏｏｒｎ Ｌ， Ｎｅｍｅｃ Ａ， Ｓｅｉｆｅｒｔ Ｈ， ｅｔ ａｌ． Ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ
ｔｈｒｅａｔ ｉｎ ｈｏｓｐｉｔａｌｓ： Ｍｕｌｔｉｄｒｕｇ⁃ｒｅｓｉｓｔａｎｔ Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ
ｂａｕｍａｎｎｉｉ． Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， ２００７， ５：
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［６７］　 Ｈｕ Ｊ （胡 　 杰）， Ｈｅ Ｘ⁃Ｈ （何晓红）， Ｌｉ Ｄ⁃Ｐ （李大
平）， ｅｔ ａｌ． Ｔｈｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｏｆ Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ． Ｃｈｉ⁃
ｎｅｓｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ （应
用与环境生物学报）， ２００７， １３（３）： ４３１ － ４３７ （ ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［６８］　 Ｃｈｅｗ Ｆ， Ｌｉｍ Ｓ， Ｓｈａｎｇ Ｈ， ｅｔ ａｌ． Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ａｌｌｅｒ⁃
ｇｅｎｉｃｉｔｙ ｏｆ ｔｒｏｐｉｃａｌ ｐｏｌｌｅｎ ａｎｄ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｓｐｏｒｅｓ ｉｎ Ｓｉｎｇａ⁃
ｐｏｒｅ． Ａｌｌｅｒｇｙ， ２０００， ５５： ３４０－３４７
［６９］　 Ｂｒｏｄｉｅ ＥＬ， ＤｅＳａｎｔｉｓ ＴＺ， Ｐａｒｋｅｒ ＪＰ， ｅｔ ａｌ． Ｕｒｂａｎ ａｅｒｏ⁃
ｓｏｌｓ ｈａｒｂｏｒ ｄｉｖｅｒｓｅ ａｎｄ ｄｙｎａｍｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ．
Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ
Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ， ２００７， １０４： ２９９－３０４
作者简介　 王　 琳，女，１９８８ 年生，硕士研究生．主要从事环
境微生物研究． Ｅ⁃ｍａｉｌ： １５４３１６７０１＠ ｑｑ．ｃｏｍ
责任编辑　 肖　 红
９２１１４期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 王　 琳等： 青岛市秋季空气微生物群落多样性