全 文 ：※工艺技术 食品科学 2012, Vol.33, No.22 27
明日叶叶水溶性总黄酮提纯工艺
郭晓青1，吴金鸿2,*，周焱富3，王正武2，杨科峰4
(1.贵阳护理职业学院，贵州 贵阳 550081；2.上海交通大学农业与生物学院，陆伯勋食品安全研究中心，
上海 200240；3.福州大学生物科学与工程学院，福建 福州 350108；4.上海交通大学医学院，上海 200092)
摘 要：比较水浴加热、直接加热煮沸、微波辅助浸提3种水浸提取方法，确定明日叶叶总黄酮提取率最高的水浸
提工艺条件，得到粗提液，并进一步考察大孔树脂类型、粗提液上样量、乙醇洗脱液pH值、乙醇体积分数、洗脱
液用量等条件对水溶性总黄酮提纯结果的影响。结果表明：水浴加热浸提的提取率最高，其最佳浸提条件为水浴温
度95℃，加热时间10min。HP-20大孔树脂对明日叶叶中总黄酮具有较好吸附与解吸性能，最佳提纯工艺条件为质
量浓度为2.445mg/mL的粗提液上样量为40mL，洗脱液乙醇体积分数70%、pH2、洗脱用量为8BV。提纯产物总黄酮
含量比明日叶叶干粉的含量提高了约6.8倍。
关键词：明日叶；水溶性总黄酮；大孔树脂；水浸提；提纯
Extraction and Purification of Water-Soluble Flavonoids from Angelica keiskei Koidzumi Leaves
GUO Xiao-qing1，WU Jin-hong2,*，ZHOU Yan-fu3，WANG Zheng-wu2，YANG Ke-feng4
(1. Guiyang Nursing Vocational College, Guiyang 550081, China；2. School of Agriculture and Biology, BorLuh Food Safety
Center, Shanghai Jiao Tong University, Shanghai 200240, China；3. College of Biological Science and Technology, Fuzhou
University, Fuzhou 350108, China；4. School of Medicine, Shanghai Jiao Tong University, Shanghai 200092, China)
Abstract：In the present study, three aqueous extraction techniques, water bath extraction, direct heating extraction and
microwave-assisted extraction were compared to determine the most suitable one for maximum extraction yield of water-
soluble flavonoids from Angelica keiskei Koidzumi leaves. The water bath extraction method provided maximum extraction
of water-soluble flavonoids and the optimal extraction conditions were heating at 95 ℃ for 10 min. Further investigations
were carried to explore the purification of the resulting crude extract under various conditions of macroporous resin type,
sample loading amount, and elution solvent (ethanol) pH, ethanol concentration and elution volume. HP-20 type resin was
found to have higher adsorption and desorption capacities for flavonoids and the optimal conditions for purifying water-
soluble flavonoids from Angelica keiskei Koidzumi leaves using the resin were determined as follows: 40 mL of crude
extract sample at 2.445 mg/mL were loaded onto HP-20 type resin and then desorbed with 8 BV of 70% acidified ethanol (pH
2), resulting in a purification factor of approximately 6.8.
Key words：Angelica keiskei Koidzumi；water-soluble fl avonoids；macroporous resin；water extraction；purifi cation
中图分类号：R284.2 文献标识码：A 文章编号：1002-6630(2012)22-0027-06
收稿日期：2012-07-13
基金项目：国家自然科学基金青年科学基金项目(31000814；31000800)；国家自然科学基金面上项目(31171642)；
科技部农业成果转化项目(2011GB2C000008)；上海市科学技术委员会项目(10DZ0504000；1052NM06700)；
上海交通大学医工交叉项目(YG2011MS64)
作者简介：郭晓青(1964—)，女，副教授，本科，研究方向为食品化学。E-mail：gyguoxiaoqing@163.com
*通信作者：吴金鸿(1978—)，女，助理研究员，博士，研究方向为功能食品和食品加工。E-mail：wujinhong@sjtu.edu.cn
明日叶(Angelica keiskei Koidzmi)又名八丈草，属芹
科类，为多年生草本植物，原产于日本八丈岛[1]。明日叶
含有多种天然活性物质，其天然有机锗含量高于名贵人
参、灵芝，还含有一般食用植物很少有的维VB12以及十
多种人体所需氨基酸及黄酮、泛酸等物质，营养丰富而
均衡，是一种多功能的药食兼用稀有植物[2-4]。近年来的
一些研究报道表明，明日叶富含黄酮类物质，尤其含有
查儿酮类物质，具有抗肿瘤、抗糖尿病、抗糖尿病、抗
血小板凝集、抗氧化、及抗菌作用等[5-7]。
近年来，明日叶黄酮的研究大多数集中在查尔酮类
的提取及功效研究。其提取工艺主要是应用一些有机溶
剂萃取方法，如采用乙酸乙酯与乙醇[8]等有机溶剂进行提
取。本实验在研究过程发现采用有机溶剂提取的明日叶
黄酮类物质水溶性较差，限制了其在一些功能性液态食
28 2012, Vol.33, No.22 食品科学 ※工艺技术
品，如饮料开发中的应用。同时在实验中发现，明日叶
水溶性黄酮含量较高，即明日叶中易溶于水的黄酮苷类
含量较高。如果直接把水溶性总黄酮提取液作原料生产
制剂或饮料等，因消耗溶剂的费用比其他方法低，是一
种较经济的提取方法，更适合进行生产转化应用。
资料表明目前对明日叶中黄酮苷类的提取工艺及
相关理化与功效研究还少有报道。由于水的极性大，
易把蛋白质、糖类等溶于水的成分浸提出来，从而使
提取液存放时，易腐败变质，并需要结合后续的分离
对粗提液进行提纯。因此，本实验探讨了水溶液加热
浸提及大孔树脂进一步分离明日叶叶水溶性总黄酮的
提纯工艺，并对提纯产物进行初步理化性质分析，为
进一步深入研究明日叶叶水溶性黄酮的性质及以明日
叶叶水溶性黄酮提纯产物为原料进行更合理的功能食
品开发利用提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
明日叶 上海交通大学农业与生物学院种植实验基地。
AB-8大孔树脂、DM130大孔树脂、HP-20大孔树脂、
芦丁标准品(纯度＞98%) 上海融禾医药科技有限公司；
95%乙醇、硝酸铝、亚硝酸钠、氢氧化钠均为分析纯。
1.2 仪器与设备
RT-25粉碎机 北京兴时利和科技发展有限公司；
DK-S26电热恒温水浴锅 上海精宏实验设备有限公
司；AG823LC7-NRHE微波炉 广东美的微波炉制造有
限公司；EPPENDOF 5810R离心机 上海肯强仪器有限
公司；DU 800 uv/vis 分光光度计 美国Beckman Coulter
公司；SHA-B双功能水浴恒温振荡器 金坛市科析仪器
有限公司；DHL-B电脑恒流泵、旋转蒸发器水浴槽 上
海青浦沪西仪器厂；FD-1A-50冷冻干燥机 北京博医康
实验仪器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 明日叶叶水溶性总黄酮含量测定
1.3.1.1 标准曲线绘制
准确秤取芦丁标准品5mg，用95%乙醇溶液溶解，
并定量转移至25mL棕色容量瓶中，配成0.20mg/mL的
芦丁标准溶液。准确取芦丁标准溶液(0.2mg/mL) 0.00、
0.20、0.40、0.60、1.00、1.20mL，分别置于10mL容量
瓶中，加入5% NaNO2溶液 0.4mL，摇匀，放置6min，再
加入10% Al(NO3)3 0.4mL，摇匀，放置6min，再加入5%
NaOH溶液 4mL，加水至刻度，摇匀，放置15min，以试
剂空白作为参比，在510nm处测定吸光度(A)，以芦丁质
量浓度(mg/mL)为横坐标，吸光度为纵坐标绘制标准曲
线[9-10]，得到芦丁吸光度与质量浓度的标准曲线回归方
程y = 6.7558x－0.0036，R2=0.9942。芦丁质量浓度在0～
0.024mg/mL范围内呈现良好线性关系。
y = 6.7558x－0.0036
R2 = 0.9942
0.00
0.04
0.08
0.12
0.16
0.20
0.000 0.004 0.008 0.012 0.016 0.020 0.024
咘䝂䋼䞣⌧ᑺ/(mg/mL)
A
51
0
图 1 黄酮含量测定标准曲线
Fig.1 Standard curve for determination of water soluble flavonoids
1.3.1.2 明日叶叶水溶性总黄酮含量测定
取1mL样品液，稀释10倍，再取1mL稀释液，按标
准曲线建立的方法测定吸光度，根据式(1)求出样品液总
黄酮含量。
10C V
W
× ×
=ᘏ咘䝂৿䞣/ mg/g )) (1)
式中：C为总黄酮质量浓度/(mg/mL)，由标准曲线吸
光度换算而得，10为样品液稀释倍数，V为样品液体积/
mL，W为样品质量/g。
1.3.2 明日叶叶水溶性总黄酮粗提液制备
将干燥明日叶粉碎至80目以下。明日叶粉按料液比
1:10与去离子水混合，搅拌均匀，采用水浴加热浸提、
直接加热煮沸浸提、微波辅助浸提3种方法浸提，浸提液
冷却至室温后8000r/min离心10min，应用1.3.1.2节测定方
法测定上清液总黄酮含量，按式(2)计算相应提取率。比
较结果，选择最佳浸提方法。
100%/ ×=
ḋક䋼䞣
ḋક⍌ᦤ⎆咘䝂ᘏ䞣ᦤপ⥛ (2)
1.3.2.1 树脂预处理
用95%乙醇溶液将大孔树脂浸泡24h，充分膨胀后，
用乙醇洗至洗出液加适量的水无白色浑浊，再用去离子
水洗去乙醇；然后用5% HCl溶液浸泡5h，再用去离子水
洗至中性；最后用5% NaOH溶液浸泡5h，再用去离子水
洗至中性，然后浸泡在去离子水中备用[11]。
1.3.2.2 大孔树脂筛选
对AB-8、DM130与HP-20三种大孔树脂[11-12]，进行静
态吸附及解吸试验，比较确定较理想的大孔树脂。具体
试验步骤如下：
分别取2g经预处理的树脂置于锥形瓶中，加入质量
浓度为1.557mg/mL样液50mL，置于18℃水浴恒温振荡器
上振荡12h，充分吸附后将样液静置10min，按1.3.1.2节
测定上清液中的水溶性总黄酮质量浓度，再根据式(3)与
式(4)分别计算总黄酮吸附量和吸附率。
※工艺技术 食品科学 2012, Vol.33, No.22 29
将上述吸附饱和的大孔树脂用蒸馏水洗至洗脱液
无色，滤纸吸干树脂表面残留溶液，加入95%乙醇溶液
50mL，置35℃水浴恒温振荡器振荡12h，充分解吸后将
样液静置10min，测定洗脱液中总黄酮质量浓度，根据公
式(5)计算解吸率。
C C V0 1－ × Q
W
=
( )
਌䰘䞣 / mg/g )) (3)
= ×% 100
0 1
0
C C
C
－
਌䰘⥛/ (4)
= ×% 100

2
0 1
C
C C－
㾷਌⥛/ (5)
式中：Q为吸附量/(mg/g)；C0为初始质量浓度/(mg/
mL)；C1为平衡质量浓度/(mg/mL)；C2为洗脱液质量浓度/
(mg/mL)；V为吸附液体积/mL；W为树脂质量/g。
1.3.2.3 大孔树脂提纯工艺的优化
用湿法将10mL树脂装入层析柱(1.6cm×20cm)中，
取质量浓度为2.445g/mL、一定体积的明日叶叶水溶性总
黄酮粗提液，以1mL/min流速上样，每1BV收集一份流出
液，测定每份流出液中总黄酮含量，绘制泄露曲线，确
定最佳上样量。并以最佳上样量上样，测定洗脱液最佳
pH值、最佳洗脱浓度以及最佳洗脱用量。
1.3.3 明日叶叶水溶性总黄酮提纯产物分析
在最佳的提纯工艺条件下，收集大孔树脂洗脱
液，将其旋转蒸馏浓缩，冷冻干燥，得到提纯产物。
测定提纯产物样品中紫外吸收光谱(波长测定范围200～
510nm)、总黄酮含量、总糖含量[13]，并分析测定其特征
性显色反应[14]以初步判断其所含的黄酮类别。
1.3.4 数据处理
实验数据以3个独立重复实验的平均值表示，结果采
用t检验进行统计分析，P＜0.05时具有显著性差异，P＜
0.01时具有极显著性差异。
2 结果与分析
2.1 明日叶叶水溶性总黄酮浸提方法
2.1.1 水浴加热浸提对明日叶叶水溶性总黄酮提取率的
影响
由图2A可知，水浴加热浸提10min，随着温度升高
浸提液中水溶性总黄酮提取率升高，温度达到75℃，总
黄酮提取率显著增加(P＜0.05)，95℃时总黄酮提取率达
到最大值，为2.52%。由图2B可知，在水浴95℃条件下
浸提，随着加热时间增加，总黄酮提取率先增加，浸提
10min时浸提液总黄酮提取率达到最大值(P＜0.05)，随后
总黄酮提取率逐渐降低。因此，水浴加热浸提的最佳条
件是95℃水浴加热10min。
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0 A
35 45 55 65 75 85 95
⍌ᦤ⏽ᑺ /ć
ᘏ
咘
䝂
ᦤ
প
⥛

/%
B
⍌ᦤᯊ䯈 /min
ᘏ
咘
䝂
ᦤ
প
⥛

/%

1.6
1.8
2.0
2.2
2.4
2.6
2.8
5 10 15 20 25 30 35 40
图 2 水浴加热浸提温度(A)和浸提时间(B)对明日叶叶水溶性总黄酮
提取率的影响
Fig.2 Effects of water bath temperature (A) and heating time (B) on
the extraction yield of water-soluble flavonoids
2.1.2 加热煮沸浸提对明日叶叶水溶性总黄酮提取率的
影响
/
ᘏ
咘
䝂
ᦤ
প
⥛

/%
1.6
1.8
2.0
2.2
2.4
2.6
0 3 6 9 12 15
❂⊌ᯊ䯈 min
图 3 加热煮沸浸提时间对明日叶叶水溶性总黄酮提取率的影响
Fig.3 Effect of boiling time on the extraction yield of water-soluble
flavonoids
由图3可知，随着煮沸浸提时间延长，总黄酮含量
先增加，沸腾状态浸提5min时浸提液总黄酮含量显著增
加(P＜0.05)，随后增加趋缓，5～10min(P＞0.05)，浸提
10min后总黄酮含量显著降低(P＜0.05)。因此，直接加热
煮沸最佳浸提时间是5min。由图3可以看出，95℃水浴加
热10min浸提提取率最大。同时，两种方法浸提10min后
浸提液中总黄酮提取率反而降低。这是因为黄酮苷元本
身难溶于水或不溶于水，但当引入羟基或糖苷变成黄酮
苷类物质后后极性增大，在水中溶解度增加[14]。明日叶
中含有较多的水溶性黄酮糖苷类物质，但在较高加热温
度下，加热时间过长时容易使黄酮糖苷类发生了水解，
30 2012, Vol.33, No.22 食品科学 ※工艺技术
转化为黄酮苷元，从而降低了在水中的溶解度，导致水
溶性黄酮含量减少。同时黄酮苷类的水解情况根据糖的
种类和链接在糖的母核上的位置不同而不同，有的水解
只需几分钟，而有的则需几小时[14]，这也是浸提时间不
同，水溶性黄酮提取率不同的主要原因。
2.1.3 微波辅助浸提对明日叶叶水溶性总黄酮提取率的
影响
据有关文献报道，加热浸提后再进行微波辅助提
取，黄酮提取率会大幅度增加[15]。95℃水浴加热10mim
后，进行微波辅助浸提，结果见图4。
ᘏ
咘
䝂
ᦤ
প
⥛

/%

2.2
2.4
2.6
2.8
0 1 2 3
ᖂ⊶ࡽᦤ⃵᭄
图 4 微波助提次数对明日叶叶水溶性总黄酮提取率的影响
Fig.4 Effect of microwave irradiation number on the extraction yield
of water-soluble flavonoids
由图4可知，95℃水浴加热10mim后，再进行微波辅
助提取，总黄酮提取率没有明显增加(P＞0.05)，而且助
提3次后总黄酮含量还明显降低了(P＜0.05)。综合以上实
验结果，结合经济效益与提取率等因素，本实验确定最
适的浸提方法为水浴加热浸提，最佳浸提条件为浸提温
度95℃、浸提时间10min。
2.2 明日叶叶干粉水溶性总黄酮测定
称取5g明日叶粉末放入烧杯中，加入50mL去离子
水，搅拌混合均匀，将烧杯置于水浴锅中，然后在95℃
的浸提温度下搅拌水浴浸提10min，冷却至室温，在
8000r/min离心10min，取离心上清液。再将沉淀洗3次，
同样条件离心，合并上清液，测定总黄酮含量，得出明
日叶总黄酮含量为3.74%。
2.3 大孔树脂提纯化明日叶叶水溶性总黄酮的工艺
2.3.1 树脂筛选
表 1 树脂对明日叶叶水溶性总黄酮吸附量、吸附率与解吸率的结果
Table 1 Adsorption capacity, adsorption rate and desorption rate of
different types of macroporous resin for water soluble flavonoids
树脂
类型
初始质量浓度/
(mg/mL)
平衡质量浓度/
(mg/mL)
洗脱液质量浓度/
(mg/mL)
吸附量/
(mg/g)
吸附率/
% 解吸率/%
DM130 1.557 0.427 0.314 28.25 73% 28%
HP-20 1.557 0.305 0.401 31.30 80% 32%
AB-8 1.557 0.393 0.285 29.10 75% 24%
选取文献[16-18]中对分离黄酮类化合物作用较好的3种
大孔树脂DM130、HP-20、AB-8，按1.3.2.2节方法，对明
日叶水溶性总黄酮粗提液进行静态吸附及解吸试验，结
果见表1。
从表1可知，与其他两种树脂比较，HP-20大孔树脂
对明日叶叶水溶性总黄酮的吸附量和吸附率都最高，提
取量达31.30mg/g，吸附率达到80%，解吸率也最大，达
到32%，因此选择HP-20大孔树脂对明日叶水溶性总黄酮
进行提纯。
2.3.2 最佳上样量确定
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
⌕
ߎ
⎆
↣
Ͼ
᷅
ԧ
⿃
ᘏ
咘
䝂
৿
䞣
/m
g
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
⌕ߎ⎆᷅ԧ⿃/BV
图 5 最佳上样量测定
Fig.5 Determination of optimum sample loading volume
由图5可知，第1BV和第2BV泄露较少，第3BV开始
泄露较多，但此时树脂吸附较少，第4BV后样液泄露明
显增加，且含量超过5mg。因此综合泄露情况和树脂吸
附情况，确定当粗提液质量浓度为2.445mg/mL时，最佳
上样量为4BV(即40mL)比较合适。
2.3.3 洗脱液pH值测定
最佳上样量(4BV)上样，用100mL 80%乙醇溶液洗
脱，调节洗脱液pH值，测定在pH值分别为2、3、4、5、
6时洗脱液中总黄酮含量，测定结果见图6。

20
25
30
35
40
45
50
55
60
2 3 4 5 6
ᘏ
咘
䝂
ಲ
ᬊ
⥛
/%
⋫㜅⎆pH
图 6 洗脱液最佳pH值测定
Fig.6 Determination of optimum elution solvent pH
由图6可知，随着pH值的降低，洗脱液中总黄酮含量
明显提高，当pH3时，洗脱液总黄酮回收率急剧增加(P＜
0.01)，当pH2时达到最大值59.9。但如果pH值再降低，
即洗脱液酸性过强，可能会对黄酮苷类物质性质产生影
响，如发生酸水解等。因此洗脱液最适pH2。
2.3.4 洗脱液体积分数测定
最佳上样量上样，用100mL乙醇洗脱，pH值调至2，
※工艺技术 食品科学 2012, Vol.33, No.22 31
调节乙醇体积分数，测定不同乙醇体积分数的洗脱液中
总黄酮含量，结果见图7。
35
40
45
50
55
60
65
30 40 50 60 70 80 90
ᘏ
咘
䝂
ಲ
ᬊ
⥛
/%
⋫㜅⎆Э䝛ԧ⿃ߚ᭄/%
图 7 洗脱液最佳体积分数测定
Fig.7 Determination of optimum ethanol concentration
由图7可知，洗脱液乙醇体积分数达到70%时洗脱
液总黄酮含量最大，洗脱液总黄酮回收率为61.85%(P＜
0.05)。所以确定乙醇洗脱液最适体积分数为70%。
2.3.5 洗脱液用量测定
最佳上样量上样，用70%乙醇溶液(pH2)洗脱，1BV
收集一份，测出每份洗脱液中总黄酮含量，测定结果见
图8。
0
5
10
15
20
25
⋫
㜅
⎆
↣
Ͼ
᷅
ԧ
⿃
ᘏ
咘
䝂
৿
䞣
/m
g
1 2 3 4 5 6 7 8
⋫㜅⎆᷅ԧ⿃/BV
图 8 洗脱液最佳用量测定
Fig.8 Determination of optimum elution volume
由图8可知，第1份柱体积总黄酮含量最大，然后逐
渐降低，第8份洗脱液已经几乎不含有总黄酮含量，所以
最佳洗脱用量为8BV。
2.3.6 最佳提纯工艺条件
综上所述，应用HP-20大孔树脂对明日叶叶水溶性
总黄酮进行动态的提纯，其最佳提纯工艺条件为质量浓
度为2.445mg/mL的样液的最适上样量4BV、乙醇洗脱液
pH2、最适体积分数70%、脱用量8BV。
2.4 明日叶叶水溶性总黄酮提纯产物分析
在最佳提纯工艺条件制备明日叶叶水溶性总黄酮提
纯产物，即取2.445mg/mL样液40mL(4BV)，总黄酮含量
97.8mg。以2mL/min上样，用60mL(6BV)水洗涤，再用
80mL(8BV)70%乙醇溶液(pH值调至2)洗脱，测定洗脱液
总黄酮含量。重复3次取平均值，测得洗脱液总黄酮含量
为60.76mg，回收率达到62%。将洗脱液旋转蒸馏，冷冻
干燥，得到明日叶叶水溶性总黄酮提纯产物，按1.3.1.2节
方法测定其所含总黄酮含量，计算得到提纯后的样品中含
量为29.2%，比明日叶干粉的含量(3.74%)提高了约6.8倍。
提纯产物进行了紫外-可见波长扫描，结果图9所
示。从结果可见，提纯产物在200～350nm范围有黄酮类
物质特征性两个吸收带，在200～280nm区域吸收带与黄
酮物质中苯甲酰生色团有关，在300～400nm区域吸收带
与肉桂酰生色团有关。
0
1
2
3
4
5
200 250 300 350 400 450 500
਌
ܝ
ᑺ
⊶䭓/nm
图 9 提纯产物200～500nm波段扫描图
Fig.9 UV absorption spectrum of purified water-soluble flavonoids
应用苯酚 -硫酸法测定总糖，粗提物中总糖含量
15.57%，而提纯产物中总糖相对含量提高到35.57%。
结果说明提纯产物中的黄酮苷类可能含黄酮糖苷。对提
纯产物与三氯化铝、三氯化铁、醋酸铅试剂进行显色反
应，显色结果见表2。
表 2 提纯产物特征性显色结果
Table 2 Color reaction results for structural identification of purified
water-soluble flavonoids
试剂 显色现象 结构特征
三氯化铝 溶液显黄色 结构中含有邻二酚羟基或3-OH、4-酮基，5-OH、4-酮基
三氯化铁溶液显蓝黑色 结构中含酚羟基的黄酮
醋酸铅 产生黄色沉淀 结构中含有邻二酚羟基或3-OH、4-酮基，5-OH、4-酮基
根据表2显色结果可以推断出提纯产物所含有的黄
酮类物质可能含有酚羟基、邻二酚羟基或3-OH、4-酮
基，5-OH、4-酮基等结构[14]。
3 结 论
3.1 本实验对水浴加热浸提、直接加热煮沸浸提、微波
辅助提取3种方法进行比较，确定明日叶叶水溶性总黄酮
提取最佳方法是水浴加热浸提，最佳浸提条件为水浴温
度95℃、加热时间10min。
3.2 本实验利用大孔树脂对明日叶叶水溶性总黄酮粗
提液进行提纯。通过静态吸附-解吸实验，结果表明，
HP-20大孔树脂对明日叶叶水溶性总黄酮具体良好的提
纯效果；动态实验下，其最佳的提纯工艺条件为上样量
4BV、洗脱液乙醇体积分数70%、pH 2、洗脱用量8BV。
32 2012, Vol.33, No.22 食品科学 ※工艺技术
3.3 在最佳的提纯工艺条件下制备的产物中黄酮的含量
由明日叶干粉的3.74%总黄酮含量提高到29.2%，提高了
约6.8倍，说明提纯效果很好。提纯产物在200～400nm范
围有黄酮类物质特征性两个吸收带，总糖含量由粗提物
的15.57%提高到35.57%，同时与三氯化铝、三氯化铁、
醋酸铅试剂进行显色反应分别显示黄色、蓝黑色和黄
色沉淀，说明提纯产物可能含有酚羟基、邻二酚羟基或
3-OH、4-酮基，5-OH、4-酮基等结构特点的黄酮糖苷类
物质。
参考文献：
[1] 韩曙, 张云选, 张宏, 等．珍稀蔬菜: 明日叶[J]. 长江蔬菜, 2002(2): 11.
[2] 韩嘉义. 长寿菜: 明日叶[J]．植物杂志, 2001(4): 16．
[3] TOSHIHIRO A, HARUKUNI T, MOTOHIKO U. Chalcones,
coumarins, and flavanones from the exudate of Angelica keiskei and
their chemopreventive effects[J]. Cancer Letters, 2003, 201(2): 133-137.
[4] OGAWA H, OKADA Y, KAMISAKO T, et al. Beneficial effect of
xanthoangelol, a chalcone compound from Angelica keiskei, on lipid
metabolism in stroke-prone spontaneously hypertensive rats[J]. Clin
Exp Pharmacol Physiol, 2007, 34(3): 238-243.
[5] SUGAMOTO K, MATSUSHITA Y, MATSUI T, et al. Chalcones
from Angelica keiskei induce apoptosis in stomach cancer cells[J]．
Journal of Herbs, Spices & Medicinal Plants, 2008, 14(3/4): 166-174.
[6] JING Hui, ZHOU Xinglu, DONG Xiaowu, et al. Abrogation of akt
signaling by isobavachalcone contributes to its anti-proliferative
effects towards human cancer cells[J]. Cancer Letters, 2010, 294(2):
167-177.
[7] HSU Y L, KUO P L, TZENG W S, et al. Chalcone inhibits the
proliferation of human breast cancer cell by blocking cell cycle
progression and inducing apoptosis[J]. Food and Chemical Toxicology,
2006, 44(5): 704-713.
[8] 邓锐, 邹毓兰, 单虎, 等. 明日叶中总黄酮的提取工艺优化和检测方
法的对比研究[J]．食品工业, 2012(2): 44-47.
[9] 李强．莲叶中总黄酮的浸提工艺研究[J]．江苏调味副食品, 2007,
24(3): 24-26.
[10] 蔡健, 姚芹, 黄胜惠, 等. 荸荠黄酮提取技术研究[J]. 食品科学, 2008,
29(8): 181-183.
[11] 李晓芬, 周学进, 张公信, 等. 大孔吸附树脂对竹叶兰中总黄酮的分
离纯化[J]. 湖北农业科学, 2011, 50(4): 2939-2942.
[12] 李盈蕾, 陈建华, 陈丽娟, 等. 大孔吸附树脂纯化大米草总黄酮的研
究[J]. 时珍国医国药, 2011, 22(5): 1182.
[13] 刘志明, 唐彦君, 吴海舟, 等. 苯酚-硫酸法测定葡萄酒中总糖含量的
样品处理[J]. 中国酿造, 2011, 2(227): 159.
[14] 张培成．黄酮化学[M]. 北京: 化学工业出版社, 2009: 228-235.
[15] 董华强, 宁正祥, 崔志新, 等. 微波辅助提取多穗柯嫩叶黄酮工艺研
究[J]. 农业工程学报, 2007, 23(2): 213-216.
[16] 魏元锋, 刘新国, 韩建伟, 等. PH-20树脂纯化黄芩总黄酮的研究[J].
湖北中医杂志, 2007, 29(2): 50-51.
[17] 董江涛, 李燕, 徐慧强, 等. 大孔树脂纯化柿叶总黄酮的工艺研究[J].
湖南农业科学, 2010(11): 85-89．
[18] 杨庆利, 毕洁, 禹山林, 等. 应用大孔树脂纯化花生壳总黄酮[J]. 食
品科学, 2009, 30(20): 44-48.