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盐胁迫下沙米(Agriophyllum squarrosum)矿质离子吸收与分配特征



全 文 :盐胁迫下沙米(Agriophyllum squarrosum)
矿质离子吸收与分配特征
  收稿日期:2014-12-04;改回日期:2015-01-22
  资助项目:国家重点基础研究发展计划项目(2013CB429904);国家自然科学基金项目(41201048)
  作者简介:张继伟(1988—),男,河南郸城人,硕士研究生,研究方向为荒漠植物抗逆分子与生理学。E-mail:zhangjiwei@lzb.ac.cn
  通信作者:赵昕(E-mail:zhaox@lzb.ac.cn)
张继伟1,2,赵 昕1,石 勇1,2,陈国雄1,李新荣1
(1.中国科学院寒区旱区环境与工程研究所 甘肃省寒区旱区逆境生理生态重点实验室,甘肃 兰州730000;2.中国科学院
大学,北京100049)
摘要:沙米(Agriophyllum squarrosum)是生长在流动沙地上的植物,主要分布在中亚干旱、半干旱地区。以室内
生长3个月的沙米幼苗为材料,经0~400mmol·L-1 NaCl溶液胁迫处理7d,检测植株的含水量及主要矿质离子
在根茎叶的分布、积累和运输特征。结果表明:随着盐浓度的增加,沙米幼苗的含水量持续降低;体内 Na+、Cl-的
含量不断升高,K+在根茎中先升高后降低,Ca2+在各组织均呈下降趋势;此外,茎与叶的盐离子选择吸收系数
SK,Na先升高后降低,根与茎SK,Na先降低后升高,并且均在200mmol·L-1时达到临界值。盐浓度在0~200mmol
·L-1时,沙米根部的Na+吸收持续增加,能够有效地抑制Na+向地上部分的运输和积累;在盐浓度大于300mmol
·L-1时,Na+主要通过区隔化作用积累在茎部,即在高盐胁迫下茎部是沙米截留盐分避免其向上运输的主要
部位。
关键词:沙米(Agriophyllum squarrosum);盐胁迫;矿质离子;区隔化
文章编号:1000-694X(2016)03-0702-06   DOI:10.7522/j.issn.1000-694X.2015.00015
中图分类号:Q945.12 文献标志码:A
0 引言
据统计,全球盐渍化土壤面积正在逐年增加,严
重影响农业生产、生态环境及可持续发展[1-2]。土
壤盐渍化是限制作物生长、降低作物产量的一个主
要环境因子[3]。在盐胁迫条件下,植物种子萌发受
阻、生长受抑、光合能力下降。盐胁迫对植物的伤害
主要包括离子毒性和渗透胁迫,渗透胁迫主要是由
环境中的Na+、Cl-浓度升高、水分难以进入植物体
内造成的,离子毒害则是细胞原生质中的Na+、Cl-
过量积累而产生的毒害作用[4]。Herralde等[5]的研
究表明,盐胁迫对植物的毒害作用即使在去掉环境
中的NaCl后,其症状也不会消失。离子区隔化正
是耐盐植物应对盐胁迫的一种重要策略,盐渍条件
下,耐盐植物细胞中积累的大部分Na+被运输并贮
存在液泡中,避免了过量的 Na+ 对代谢造成的伤
害,同时使植物因为渗透势降低而吸收水分。Na+
在液泡内的区隔化是通过植物液泡膜上的 Na+/
H+逆向转运蛋白家族来实现的,该家族成员是植
物膜系统上普遍存在的一类离子转运蛋白。盐胁迫
后,具有离子区隔化能力的植物可以将细胞质中的
一些阳离子(如 H+、Na+、Ca2+等)运输到液泡中,
从而降低细胞质内的pH 值,在降低 Na+的浓度的
同时通过K+通道增加K+的吸收,恢复正常的K+/
Na+比例,提高植物耐盐性。离子区隔化作用依赖
于流动的跨膜蛋白、H+-ATPase、H+-PPase、Ca2+-
ATPase、次级转运蛋白和K+通道以及其他离子通
道[6-7]。
在人口不断增加、耕地日趋减少的情况下,全
面了解植物的耐盐机理、开发利用耐盐植物资源对
农业发展、粮食安全、生态环境等有重要意义。沙米
(Agriophyllum squarrosum)是藜科(Chenopodi-
aceae)一年生草本植物,经过长期的自然进化选择,
已经在生理和形态等各方面适应了干旱贫瘠的流动
沙丘生境。它具有耐干旱、抗盐碱、耐贫瘠、耐风蚀
沙埋等适应能力,是生长在沙漠的一种典型的先锋
物种[8],广泛分布于中国西北、华北和东北的沙漠地
带。沙米具有非常高的营养价值,其种子蛋白含量
达到23%、脂类9%、糖类45%、纤维8%和5%的蜡
质[9-10]。并且,蛋白质组分中包含了人类日常饮食
第36卷 第3期
2016年5月               
中 国 沙 漠
JOURNAL OF DESERT RESEARCH
             
Vol.36 No.3
May 2016
所有的必需氨基酸,脂质中也大多是适合人类的多
元不饱和脂肪酸。唐代的军队曾以沙米为食[7-8],
现在,甘肃省民勤县特色小吃沙米粉就是以沙米种
子磨粉精制而成。因此,沙米是一种值得驯化的非
常有潜力的沙生植物资源。
目前,国内外学者对沙米的研究主要侧重于种
子萌发[11-13]、种子大小和含水量[14-15]以及流动沙
丘上沙米生长、种群动态等[16-18]。但是对沙米抗逆
性的生理生化机制研究却鲜有报道。Zhao等[10]通
过转录组数据分析,发现沙米与甜菜(Beta vulgar-
is)拥有13 334个同源基因,其中782个盐胁迫相关
基因与甜菜的盐应答蛋白质基因同源性非常高,说
明沙米和甜菜拥有相似的耐盐基因,而且这些基因
在模式植物拟南芥中的耐盐机理都已得到验证[11]。
本文主要探讨盐胁迫下沙米的根茎叶的主要离子
K+、Na+和Ca2+的吸收分布特征,为下一步沙米抗
逆基因的克隆与功能研究积累初步的试验数据,为
干旱半干旱区植被恢复以及沙米驯化栽培提供理论
依据。
1 材料与方法
1.1 幼苗栽培方法
沙米种子于2012年10月采自甘肃省景泰小红
山腾格里沙漠边缘的盐渍化地带,2013年5月种植
在室内培养间的培养盆中(泥炭:细砂比例为3∶
1)。生长条件为白天16h光照(光照强度为300
μmol·m
-2·s-1)、温度25℃和晚上8h黑暗、温
度16℃,生长期间相对湿度维持在65%,隔天在托
盘底部加满水。沙米生长3个月后培养在不同浓度
盐溶液中进行胁迫处理。
1.2 盐分胁迫处理
按照Volkov等[18]的方法,取出长势一致的沙
米幼苗,用蒸馏水清洗根部,再将幼苗放入1/2MS
营养液中,小心加入石英砂固定根部。为避免盐冲
激效应,首先让沙米幼苗在营养液中恢复2d,然后
采用逐渐增加盐浓度的方法,每天增加100mmol·
L-1,直至预定浓度,再保持盐溶液胁迫持续7d。
每组处理3个重复。
1.3 植株含水量测定
在NaCl溶液处理7d后,收获整棵植株,用吸
水纸上吸干植株表面水分,称其鲜重(FW)后放入
烘箱,经105℃杀青10min,80℃下烘干48h至恒
重,称其干重(DW),计算植物含水量(WC)。
WC= (FW -DW)/FW ×100% (1)
1.4 各组织的主要离子含量测定
将烘干至恒重的样品用玛瑙研钵研磨粉碎,粘
贴在铝板上,迅速抽真空。在扫描电镜下确定所要
检测的样品,每个测试材料样品进行微区分析,每个
处理3次重复。使用低真空扫描电子显微镜(JS-
5600Lv,SEM,日本),按照 Vázqu等[19]的方法,配
套一个LevexX射线能量色散谱分析仪测定计算元
素百分比。检测条件为工作距离20.0cm、加速电
压20kV、射束电流150A、倾角45°。每一个样本至
少检测3个1mm2的微小区域。检测值为各元素的
相对含量,以特定样本中某种元素的原子数占测定
的所有矿质元素(K、Na、Ca、Al、Si、Mg、P、S、Cl、
Fe)的总原子数的百分比来表示。计算机在自动扣
除各元素的背景值后根据点分析图谱中各元素峰
值,通过面积积分法计算相对含量百分数。
1.5 数据处理
按照陈惠哲等[20]方法计算K+和Na+在不同部
位(根、茎、叶)的盐离子选择吸收系数。公式如下:
根与茎SK,Na=
([K+]茎/[Na+]茎)/([K+]根/[Na+]根) (2)
茎与叶SK,Na =
([K+]叶/[Na+]叶)/([K+]茎/[Na+]茎) (3)
  采用Oneway ANOVA方法比较均值之间的差
异,若差异显著,则采用Turkey’s test进行多重比
较(α=0.05)。利用 Origin8.0软件完成所有统计
分析。
2 结果与分析
2.1 NaCl胁迫下沙米含水量
如图1所示,沙米在盐胁迫7d后,其含水量呈
下降趋势,而且随着NaCl浓度的增加,其含水量下降
越明显。当盐浓度从0增加到300mmol·L-1时,沙
米的含水量从82.88%降到74.13%,降低了10.6%,
变化相对平缓,而且在表型上也没明显变化。但是盐
浓度从300mmol·L-1升到400mmol·L-1时,其含
水量从74.13%降到62.94%,含水量减少15%,变化
非常显著,并且叶片也开始出现萎蔫现象。
307 第3期 张继伟等:盐胁迫下沙米(Agriophyllum squarrosum)矿质离子吸收与分配特征    
图1 NaCl胁迫对沙米含水量的影响
(不同字母表示差异显著,P<0.05)
Fig.1 Changes of water content of Agriophyllum
squarrosumunder different NaCl stress
2.2 NaCl胁迫下各离子在沙米根茎叶中的分布
随着NaCl浓度的增加,主要矿质离子在沙米
各组织中的分布明显不同(表1)。沙米各组织的
Na+含量随着盐浓度的升高总体上呈升高趋势,尤
其是 茎 部,从 0.71% 升 高 到 2.09%,增 加 了
194.30%;Cl-含量也随盐浓度的增加而升高,在0
~100mmol·L-1时增加显著,在盐浓度为400
mmol·L-1时,Cl-主要聚集在根和茎部,分别达到
55.66%和53.59%;根和茎中的 K+含量随盐浓度
的增大先升高后降低,在200mmol·L-1时达到最
大值,叶中变化相对稳定;各组织中的Ca2+含量随
着盐胁迫增加不断减少,尤其是茎部,从42.51%
下降到11.94%,叶部仅在100mmol·L-1的低盐
表1 NaCl胁迫对沙米根、茎、叶中Na+、Cl-、K+、Ca2+含量(%)的影响
Table 1 Changes of Na+,Cl-,K+and Ca2+content(%)in root,stem and leaf of Agriophyllum squarrosumunder NaCl stress
NaCl浓度/
(mmol·L-1)
Na+
根 茎 叶
Cl-
根 茎 叶
0  0.54±0.07d  0.71±0.03d  0.92±0.02c  16.34±0.02c  12.76±0.18d  13.40±0.11d
100  0.64±0.08c  0.74±0.09d  0.94±0.17c  30.94±0.46b  30.46±0.33c  34.45±0.73c
200  1.27±0.09a 0.81±0.04c  1.44±0.22a 31.04±2.42b  32.38±0.95c  34.28±0.93c
300  1.27±0.07a 0.81±0.05c  1.44±0.19a 31.04±0.86b  32.38±0.23c  34.28±1c
400  0.91±0.05b  2.09±0.06a 1.46±0.09a 55.66±0.21a 53.59±0.37a 38.17±0.03b
NaCl浓度/
(mmol·L-1)
K+
根 茎 叶
Ca2+
根 茎 叶
0 31.43±1.13b  26.39±0.14d  34.20±0.29a 27.23±0.76a 42.51±0.28a 34.41±0.5a
100  45.13±0.22a 38.89±0.08b  28.38±0.71b  8.24±0.47b  20.67±0.45b  26.00±0.23b
200  45.95±0.68a 41.81±1.07a 29.08±0.79b  8.10±1.12b  17.75±1.1c  23.18±0.03c
300  45.95±0.24a 41.81±1.3a 29.08±0.11b  8.10±1.19b  17.75±1.04c  23.18±1.2c
400  25.60±0.81c  22.89±0.48e  25.78±0.02c  5.62±1.01d  11.94±1.02d  21.86±0.23c
  注:同一列不同字母表示差异显著,P<0.05。
浓度下变化显著,Ca2+浓度从27.23%降到8.24%,
在200~400mmol·L-1,Ca2+含量保持稳定。
2.3 NaCl胁迫对沙米不同器官矿质离子选择性吸
收和运输能力的影响
  随着盐浓度的增加,沙米根和茎的 K+/Na+比
值先升高后降低(图2),在100mmol·L-1时达到
最大值,分别达到70.52和52.79,而叶部的 K+/
Na+比值持续降低,从对照组的 37.17 下降到
17.70。另外,盐浓度在0~200mmol·L-1时,各组
织K+/Na+比值的顺序为根>茎>叶,当盐浓度为
300~400mmol·L-1时,各组织K+/Na+比值顺序
为根>叶>茎,尤其是当盐浓度为400mmol·L-1
时,大量 Na+积累在茎部,导致其 K+/Na+比值仅
为10.98。茎与叶的盐离子选择吸收系数SK,Na先升
高后降低(图3),在200mmol·L-1时达到最大值
2.57,在400mmol·L-1时又降到0.62。而根与茎
的盐离子选择吸收系数SK,Na先降低后升高,在200
mmol·L-1时达到最小值0.70,在400mmol·L-1
时又升高至2.56,且二者变化趋势恰好相反。
407                 中 国 沙 漠              第36卷 
图2 NaCl胁迫对沙米K+/Na+比值的影响
(不同字母表示差异显著,P<0.05)
Fig.2 Changes of K+/Na+ratio of Agriophyllum
squarrosumunder NaCl stress
图3 NaCl胁迫对沙米盐离子选择吸收系数SK,Na
影响(不同字母表示差异显著,P<0.05)
Fig.3 Changes of salt ion-selective absorption coefficient
SK,Naratio of Agriophyllum squarrosum
under NaCl stress
3 讨论
盐生植物主要通过渗透调节作用维持植物体内
的吸水能力。在盐胁迫条件下,沙米的含水量呈下
降趋势,这与大多数研究结果基本一致[19-20]。植物
通过降低其体内水含量来调节细胞的渗透势,使其
能在盐胁迫环境下继续吸收水分,保证植物正常的
生理代谢。随着盐胁迫程度的加剧,沙米的含水量
变化不大,即使在400mmol·L-1时,其含水量仍能
达到63%,表明沙米持水能力较强。
土壤中较高浓度的 Na+和Cl-会使植株体内
Na+和Cl-含量升高,植物体内 Na+升高的同时会
抑制根系对Ca2+、K+和 Mg2+的吸收或运输[21],造
成离子毒害及营养缺乏,破坏植株体内原有离子平
衡,这是盐胁迫导致植物中 Na+和Cl-含量升高及
Ca2+和 Mg2+降低的主要原因。本试验中,K+含量
呈先升高后下降趋势,这主要是在200mmol·L-1
后,细胞内原来的稳态被破坏,通过减少K+的吸收
和增加Cl-吸收以平衡大量 Na+进入,能使其体内
正负离子达到新的平衡。此外,K+/Na+值是衡量
植物耐盐性的重要指标之一,植物体内维持一定的
K+/Na+比值是保证其正常生命活动的必须条件,
K+/Na+值降低则反映了细胞内离子平衡遭到一定
程度的破坏。本研究中,根茎的 K+/Na+值都呈先
升高后降低的趋势,叶部虽然持续降低,但降低的速
度相对较缓慢,这正是由于根部和茎部聚集了较多
的Na+,从而保证了叶部较高的 K+/Na+比值,使
其维持正常的生命活动。这其中相关耐盐基因
Na+/H+antiporter、K+ 通道蛋白如何调控 K+、
Na+吸收与排出,需要进一步的研究揭示其内在
机制。
在较低盐胁迫下,沙米各组织所吸收Na+均呈
增加趋势,但盐浓度在300mmol·L-1后叶部的
Na+含量不再增加,根部Na+含量反而下降,Na+主
要聚集在茎部,这可能是因为沙米根部盐害加重,滞
留Na+能力下降,使茎成为主要拒盐部位。Silva
等[22]认为小麦(Triticum aestivum)主要拒 Na+部
位在根部和根茎结合部;苹果属植物主要拒Na+部
位在根部和茎基部,本研究和上述结果是类似的。
因为盐胁迫下,植物降低Na+毒害的方式之一是区
隔化在主要拒Na+部位(根茎)细胞的液泡中,以减
少盐分向叶部的运 输,从 而 表 现 出 拒 Na+ 特
性[23-24]。推测沙米为适应高盐胁迫,将 Na+ 区隔
化在茎部液泡内来降低胞质内的Na+,通过对离子
的区隔化,将过量离子限制在液泡内,从而维持细胞
内相对较低的Na+浓度,离子的动态平衡和正常的
生理代谢。下一步沙米耐盐的内在相关基因与蛋白
质调控的研究,将深入揭示离子区隔化分子生物学
机制。
沙米植株体内的离子在各器官的区隔化分布由
根系的选择性和运输性所调控,不同部位对Na+与
K+的选择运输最终会体现到不同部位的 Na+ 与
K+的积累和分布,从而影响植物的耐盐性。盐离子
选择吸收系数根与茎SK,Na和茎与叶SK,Na越高,对
K+的选择运输越强,对 Na运输越弱[25-26]。本研
究结果显示,根与茎SK,Na值先升高后降低,茎与叶
SK,Na值先降低后升高,说明盐浓度大于300mmol·
L-1之后,根部向上运输Na+的能力在增加,而茎部
向上运输Na+的效率在减弱,运输K+效率在增加,
表明此时茎部选择性的运输K+而抑制Na+进入叶
片,多余的Na+则主要聚集在茎部。针对荒漠植物
507 第3期 张继伟等:盐胁迫下沙米(Agriophyllum squarrosum)矿质离子吸收与分配特征    
的耐盐性研究结果表明,NaCl盐分胁迫下,二穗短
柄草 (Brachypodium distachyon)、红 砂 (Reau-
muria songarica)、珍珠猪毛菜(Salsola passeri-
na)、砂蓝刺头 (Echinops gmelinii)、蝶果虫实
(Corispermum patelliforme)等荒漠植物通过增加
地上部分的吸水量,根、茎部拦截 Na+减缓了对地
上部分的伤害[27-31]。荒漠植物还可通过叶片对
K+的选择性吸收保持地上部分离子平衡[32-33]。本
试验的结果与其他荒漠植物的耐盐特征相似,因此
盐胁迫下沙米具备相似的离子平衡机制。
综上所述,在0~200mmol·L-1盐胁迫时,沙
米“吸钾拒钠”的特征很明显,在浓度高于 300
mmol·L-1之后,沙米茎部局部储存Na+的能力非
常显著,阻止 Na+向上运输到叶片部位,具有较强
的耐盐能力,是未来荒漠盐碱地改良的备选沙生
植物。
参考文献:
[1] 黄昌勇.土壤学[M].北京:中国农业出版社,2000:291-312.
[2] Kenneth B M.Salinity tolerance mechanism of six C4turf
grasses[J].Journal of the American Society for Horticultural
Science,1994,119(4):779-784.
[3] Alakhverdive S I,Sakamoto A,Nishiyama Y,et al.Ionic and
osmotic effects of NaCl-induced inactivation of photosystems I
and II in Synechococcus sp[J].Plant Physiology,2000,12(3):
1047-1056.
[4] 徐晨,凌风楼,徐克章.盐胁迫对不同水稻品种光合特性和生
理生化特性的影响[J].中国水稻科学,2013,27(3):280-
286.
[5] Herralde F D,Biel C,SavéR,et al.Effect of water and salt
stresses on the growth,gas exchange and water relations in
Argyranthemum coronopifolium plants[J].Plant Science,
1998,139:9-17.
[6] Zhu J K.Regulation of ion homeostasis under salt stress[J].
Current Opinion in Plant Biology,2003,6:441-445.
[7] Zhu J K.Plant salt tolerance[J].Trends in Plant Science,
2001,6:66-71.
[8] 齐凯,安晓亮,叶世河.沙米生长特性调查[J].内蒙古林业科
技,2010,36(1):17-21.
[9] Chen G X,Zhao J C,Zhao X,et al.A psammophyte Agrio-
phyllum squarrosum (L.)Moq.:apotential food crop[J].
Genetic Resources and Crop Evolution,2014,61:669-676.
[10]Zhao P S,Salvador C G,Shi Y,et al.Transcriptomic analysis
of a psammophyte food crop,sand rice(Agriophyllum squar-
rosum)and identification of candidate genes essential for sand-
une adaptation[J].BMC Genomics,2014,15:872.
[11]Zheng Y R,Gao Y,Ping A,et al.Germination characteristics
of Agriophyllum squarrosum[J].Canadian Journal of Botany,
2004,82(11):1662-1670.
[12] Liu Z M,Yan Q L,Baskin C C,et al.Burial of canopy-stored
seeds in the annual psammophyte Agriophyllum squarrosum
Moq.(Chenopodiaceae)and its ecological significance[J].
Plant and Soil,2006,288:71-80.
[13] 王丽,闫德仁,孟显波.沙米种子萌发特性探讨[J].内蒙古林
业科技,2009,35(1):27-29.
[14] 马全林,张德魁,陈芳,等.流动沙丘先锋植物沙米的种子特征
研究[J].种子,2008,27(11):72-76.
[15] 韩向东.固沙先锋植物沙米的生物学特征研究[J].甘肃林业
科技,2007,32(4):4-9.
[16] Bai W M,Bao X M,Li L H.Effects of Agriophyllum squarro-
sumseed banks on its colonization in a moving sand dune in
Hunshandake Sand Land of China[J].Journal of Arid Envi-
ronments,2004,59:151-157.
[17] 胡生新,马俊梅,高万林.流动沙丘先锋植物沙米的空间分布
特征[J].甘肃科技,2010,26(14):46-50.
[18] Volkov V,Wang B,Doming P J,et al.Thelungiela halophile,
a salt-tolerant relative of Arabidopsis thaliana,possesses ef-
fective mechanisms to discriminate between potassium and so-
dium[J].Plant Cel and Environment,2004,27(1):1-14.
[19] Vázquz M D,Poschenrieder C,Corrales I,et al.Change in ap-
oplastic aluminumduring the initial growth response to alumi-
numby roots of a tolerant maize variety[J].Plant Physiology,
1999,119(2):435-444.
[20] 陈惠哲,Natalia L,朱德峰,等.盐胁迫下水稻幼苗期 Na+和
K+吸收与分配规律的初步研究[J].植物生态学报,2007,31
(5):937-945.
[21] Herralde F D,Biel C,SavéR,et al.Effect of water and salt
stresses on the growth,gas exchange and water relations in
Argyranthemum coronopifolium plants[J].Plant Science,
1998,139:9-17.
[22] Silva E C,Nogueira R J,Araújo F P,et al.Physiological re-
sponses to salt stress in young umbu plants[J].Environmental
and Experimental Botany,2008,63:147-157.
[23] Hasegawa P M,Bressan R A,Zhu J K,et al.Plant celular and
molecular responses to salinity[J].Annual Review of Plant
Physiology and Plant Molecular Biology,2000,51:463-499.
[24] 杨洪兵,韩振海,许雪峰.三种苹果属植物幼苗据 Na+机理的
研究[J].园艺学报,2004,31(2):143-148.
[25] 赵可夫.中国盐生植物[M].北京:科学出版社,2013:1-103.
[26] 马德源,战伟龑,杨洪兵,等.荞麦主要拒 Na部位及其 Na+/
H+逆向转运活性的研究[J].中国农业科学,2011,44(1):185
-191.
[27] 赵昕,杨小菊,石勇,等.盐胁迫下荒漠共生植物红砂与珍珠的
离子吸收与根茎叶中分配特征[J].生态学报,2014,34(4):
963-972.
[28] 杨小菊,赵昕,石勇,等.碟果虫实各器官矿质离子吸收与分配
对NaCl盐胁迫的响应[J].中国沙漠,2013,33(6):1735-
1742.
[29] 杨小菊,赵昕,石勇,等.砂蓝刺头各器官矿质离子吸收与分配
对NaCl盐胁迫的响应[J].草业学报,2013,22(4):116-122.
[30] 杨小菊,赵昕,殷恒霞,等.盐胁迫对二穗短柄草幼苗生长及不
607                 中 国 沙 漠              第36卷 
同器官中盐离子稳态的影响[J].西北植物学报,2013.33(2):
371-377.
[31] 赵昕,张继伟,杨小菊,等.盐胁迫下珍珠猪毛菜根茎叶矿质离
子的吸收与分配响应[J].干旱区研究,2014,31(6):1086-
1092.
[32] 张梅茹,马金彪,姚银安,等.盐角草(Salicornia europaea)对
NaCl处理的生理响应[J].中国沙漠,2014,34(2):441-447.
[33] 鲁艳,雷家强,曾凡江,等.NaCl处理对多枝怪柳(Tamarix
ramosissima)生长及生理的影响[J].中国沙漠,2014,34(6):
1509-1515.
Ion Absorption and Distribution of Agriophyllum squarrosum
Seedlings under NaCl Stress
Zhang Jiwei 1
,2,Zhao Xin1,Shi Yong1
,2,Chen Guoxiong1,Li Xinrong1
(1.Key Laboratory of Stress physiology and Ecology in Cold and Arid Regions of Gansu Province,Cold and Arid Re-
gions Environmental and Engineering Research Institute Chinese Academy of Sciences,Lanzhou730000,China;2.Univer-
sity of Chinese Academy of Sciences,Beijing100049,China)
Abstract:Agriophylum squarrosumis an annual desert plant adapted to mobile sand dunes in arid and semi-arid
regions of Central Asia.In this study the A.squarrosumseedlings of three months were subjected to salt stress
by soaked in 0-400 mmol爛L-1 NaCl solutions(in 1/2 MS medium)for 7 days separately.We examined
their water contents and main mineral ion contents in their roots,stems and leaves during salt stress.The ex-
periment results indicated that the water content of A.squarrosumseedlings reduced gradualy as NaCl con-
centration increased,but the Na+and Cl-content kept roes observably,the K+content increased in the be-
ginning and the Ca2+content cut down in root,stem and leaf.In addition,the salt ion-selective absorption co-
efficient SK,Naof stem and leave increased at the beginning and then decreased,the SK,Naof root and stem is
just showed on the opposite result,and both of them reaching a critical value at 200 mmol爛L-1.Which indi-
cated that A.squarrosumcould effectively inhibit the absorption and accumulation of Na+in stem and leaf at
0-200 mmol爛L-1,and Na+accumulated in the stem mainly through compartmentalization function when
the NaCl concentration was greater than 300 mmol爛L-1.Thus stem is the major tissue of A.squarrosumre-
sponse to high salt stress because of its ability to preventing Na+carrying from root to leaf.
Key words:Agriophylum squarrosum;salt stress;mineral ion;compartmentalization
707 第3期 张继伟等:盐胁迫下沙米(Agriophyllum squarrosum)矿质离子吸收与分配特征