全 文 ：薄层生物自显影技术比较新疆
2 种洋甘菊抗氧化活性
韩松林1，2，李新霞1* ，勉强辉1，兰卫1，刘岩3
( 1. 新疆医科大学，新疆 乌鲁木齐 830054; 2. 阿克苏职业技术学院，新疆 阿克苏 843000;
3. 比尔兄弟生物技术有限公司，新疆 乌鲁木齐 830011)
［摘要］ 目的:比较新疆 2 种洋甘菊———母菊和罗马洋甘菊抗氧化活性成分差异。方法:采用薄层-生物自显影技术，
以 1，1-二苯基苦基苯肼(1，1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH)自由基为实验模型，经薄层扫描获得各抗氧化成分的峰面积，从
而对 2 种洋甘菊的挥发油提取物、黄酮提取物进行抗氧化活性成分的分析，以总峰面积大小为指标比较不同提取物的抗氧化
能力，并与 2 种洋甘菊黄酮提取物总的抗氧化活性进行比较。结果:母菊挥发油提取物显现烯炔双环醚等 4 个白色抗氧化斑
点，罗马洋甘菊挥发油提取物显现 1 个白色抗氧化斑点，薄层扫描结果表明母菊挥发油提取物抗氧化斑点峰面积大于罗马洋
甘菊挥发油提取物;2 种洋甘菊黄酮提取物紫外-可见分光光度法抗氧化活性测定结果表明，母菊清除 50% DPPH 自由基的质
量浓度为 0. 66 g·L －1，罗马洋甘菊清除 50%DPPH自由基的质量浓度为 0. 33 g·L －1;2 种洋甘菊黄酮提取物薄层生物自显影
实验结果表明，母菊黄酮提取物显现芹菜素、芹苷元-7-葡萄糖苷等 7 个淡黄色抗氧化斑点，罗马洋甘菊黄酮提取物显现芹菜
素、芹苷元-7-葡萄糖苷等 8 个淡黄色抗氧化斑点，薄层扫描结果表明罗马洋甘菊黄酮提取物抗氧化斑点峰面积大于母菊黄酮
提取物。结论:2 种洋甘菊挥发油提取物抗氧化活性 TLC差异显著，母菊挥发油提取物抗氧化活性强于罗马洋甘菊挥发油提
取物;母菊挥发油提取物中已知抗氧化活性成分为烯炔双环醚，其他 3 个抗氧化活性成分以及罗马洋甘菊挥发油提取物中 1
个抗氧化活性成分均为未知化合物，有待进一步确定;鉴于 2 种洋甘菊挥发油提取物抗氧化活性斑点数差异显著，可应用于 2
种洋甘菊的鉴别区分。2 种洋甘菊黄酮提取物抗氧化活性测定结果、薄层生物自显影实验结果一致，母菊、罗马洋甘菊黄酮提
取物都具有较强的抗氧化活性，且罗马洋甘菊黄酮提取物的抗氧化活性强于母菊黄酮提取物;2 种洋甘菊黄酮提取物中均含
已知抗氧化活性成分芹菜素、芹苷元-7-葡萄糖苷，母菊黄酮提取物中其他 5 个抗氧化活性成分以及罗马洋甘菊中其他 6 个抗
氧化活性成分均为未知成分，有待进一步确定。该方法为进一步鉴定洋甘菊抗氧化活性成分奠定基础。
［关键词］ 母菊;罗马洋甘菊;DPPH;薄层生物自显影;薄层扫描;抗氧化
［稿件编号］ 20120618013
［基金项目］ 新疆维吾尔自治区自然科学基金项目(2012211A024)
［通信作者］ * 李新霞，教授，硕士生导师，Tel: (0991)4365034，
E-mail:lxx6668@ 163. com
［作者简介］ 韩松林，硕士研究生，Tel:15894622584，E-mail:
1437155839@ qq. com
新疆有 2 种常用洋甘菊，一种是德国洋甘菊，为
一年生草本植物，即母菊，学名 Matricaria chamomil-
la L. ，植物名 Matricaria recutita［1］;一种是罗马洋甘
菊，一至多年生草本，学名 Anthemis nobile L. ，植物
名 Chamaemelum nobile。母菊头状花序干燥后是一
种重要的药用植物和香料植物，在食品和饮料行业，
其精油和提取物用作调味剂成分，还可用于化妆品、
肥皂、漱口液的制造。罗马洋甘菊在民间主要以茶
饮用，工业上主要用于食品、化妆品等行业。市场上
母菊价格昂贵，罗马洋甘菊相对便宜。2 种洋甘菊
外观极为相似，肉眼难以区分，常借助显微鉴别，化
学成分分析等加以区分。2 种洋甘菊都具有药用价
值，母菊具有消炎、抑制真菌、解痉等作用［2-4］;罗马
洋甘菊具有抑制恶心、呕吐、消化不良、食欲不振等
作用［5］，但维吾尔药志记载母菊和罗马洋甘菊药物
作用基本一致［2］。母菊主要含有 α-红没药醇、芹菜
素苷、木犀草素-7-葡萄糖苷、芹苷元-7-葡萄糖苷［6］
等化学成分;罗马洋甘菊主要含有芹菜素、芹菜素
苷、槲皮素、倍半萜内酯、蓝香油薁等化学成分［7］。
在欧洲洋甘菊有很悠久的使用历史，1882 年母菊就
收入德国药典［8］。美国药典收载的品种为母菊，薄
层鉴别以龙脑、乙酸龙脑酯和愈创奥为参照物对照
鉴别其中的烯炔双环醚、没药醇和萜类化合物;含量
测定采用 HPLC 测定芹苷元-7-葡萄糖苷含量;并以
红没药醇为对照品，采用 GC 测定挥发油中没药烷
衍生物的总含量。但欧盟药典收载的品种是罗马洋
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甘菊，薄层鉴别以芹菜素、芹苷元-7-葡萄糖苷为对
照品进行鉴别。母菊在维吾尔医中是常用药材，国
家药品标准维吾尔药分册(1998 年版)就已收载该
品种的药材，同时收入的 3 种制剂:复方木尼孜其颗
粒、祖卡木颗粒、强力玛得士力阿亚特蜜膏均以母菊
为药材入药。虽然国家药品标准维吾尔药分册收载
了母菊，但只有显微鉴别，没有薄层鉴别和含量测
定，现已列为国家药品标准提高品种。
现代医学研究发现人类的多种疾病都与自由基
对机体的氧化损伤有关，自由基是机体生命活动中
产生的一种活性分子，在正常代谢情况下，自由基起
着调节细胞间的信号传递和细胞生长、抑制病毒和
细菌的作用;机体内过多自由基会损伤生物细胞的
膜结构，包括蛋白质、脂类、核酸、碳水化合物，从而
引发炎症、肺气肿、肿瘤、动脉粥样硬化等多种疾
病［9-11］。抗氧化活性是很多天然产物类化合物的药
效机制之一，目前常用抗氧化活性测定方法包括 1，
1-二苯基苦基苯肼(DPPH·)法，羟基自由基
(·OH)法，超氧自由基(O2
－·)法。近年来，DPPH
作为抗氧化模型与薄层色谱相结合，形成了薄层色
谱-生物自显影技术，国内谷丽华等首次将薄层色
谱-生物自显影技术应用于中药质量评价，发展了
基于平面色谱技术的生物检定法［12-13］，开始应用于
中药抗氧化活性成分的导向分离、鉴定和品质评价
研究，并且《中国药典》(2010 年版)［14］也引入了该
活性检测方法。DPPH 法薄层色谱-生物自显影技
术中，DPPH 与具有抗氧化活性的物质结合，生成
DPPH-H 而呈现白色或淡黄色，薄层板本身显紫色，
从而筛选出抗氧化活性组分［15］。该技术结合了比
色法(或荧光法)与色谱分离技术二者的优点，具有
操作简单、耗费低、灵敏度、专属性高等特点，是一种
集鉴定、分离、活性测定于一体的药物筛选方法［11］。
国内外关于 2 种洋甘菊的抗氧化活性仅有少量
报道，Povilaitytoee V等［16］采用紫外-可见分光光度
法对罗马洋甘菊的挥发油提取物的抗氧化活性进行
了研究，杨俊杰等［17］采用紫外-可见分光光度法研
究了母菊挥发油提取物的抗氧化活性。为进一步比
较系统地了解 2 种洋甘菊的抗氧化活性成分，本文
采用 DPPH法薄层生物自显影技术对 2 种洋甘菊的
挥发油提取物、黄酮提取物同时进行抗氧化活性成
分分析。本文中首先测定了 2 种洋甘菊黄酮提取物
的抗氧化能力，之后采用 DPPH法薄层色谱-生物自
显影技术分析了 2 种洋甘菊挥发油提取物及黄酮提
取物的抗氧化成分，为 2 种洋甘菊的鉴别区分及后
续活性成分的分离分析奠定基础。
1 材料
半自动点样仪(CAMAG LINOMAT5) ，薄层色谱
数码成像系统(CAMAG REPROSTAR3) ，薄层色谱
扫描仪(CAMAG ScannerⅢ) ，薄层板加热仪(CA-
MAG TLC PLATEHEATERⅢ) ，旋转蒸发仪(EYELA
ROTARY EVAPORA TOR N1001) ，分光光度仪(Cin-
tra 404) ，氮吹仪(HSC-12A) ，100 μL 微量进样针，
双槽展开缸(20 cm × 10 cm) ，硅胶 G 预制板
(5 cm ×10 cm，Merk) ，聚酰胺薄膜(浙江省台州市
路桥四甲生化塑料厂) ;
愈创奥(SIGMA-ALDRICH) ，龙脑(中国食品药
品检定研究院，批号 8KT6-BLVP) ，乙酸龙脑酯(中
国食品药品检定研究院，批号 NZTU-EQ63) ，芹苷
元-7-葡糖糖苷(成都普瑞科技有限公司) ，芹菜素
(成都普瑞科技有限公司) ，十二烷基硫酸钠(SIG-
MA-ALDRICH) ，香草醛(成都市科龙化工试剂厂) ，
1，1-二苯基苦基苯肼(SIGMA-ALDRICH) ，甲苯、正
庚烷、甲醇、乙醇、甲酸(分析纯，天津市富宇精细化
工有限公司) ，正丁醇(分析纯，天津市福晨化学试
剂厂) ，二氯甲烷(分析纯，天津永晟精细化工有限
公司) ，三氯甲烷、冰醋酸(分析纯，天津市化学试剂
三厂) ，浓硫酸(分析纯，北京化工厂)。
母菊，采于新疆策勒;罗马洋甘菊，采于新疆。
2 方法与结果
2. 1 2 种洋甘菊黄酮提取物抗氧化活性测定
DPPH甲醇溶液呈深紫色，其最大吸收波长为
517 nm。当有抗氧剂存在时，抗氧剂与 DPPH 单电
子配对而使其逐渐褪色，可见光区 517 nm处的吸收
逐渐消失，其褪色程度与接受的电子数成定量关系，
以清除率表示其抗氧化能力的强弱［18］:清除率 S =
1 －(Ai － Aj)/A0，其中，A0为 DPPH·与甲醇混合液
的吸光度，Ai为 DPPH·与样品反应后的吸光度(30
℃水浴 0. 5 h) ，Aj为样品与甲醇混合液的吸光度;
2. 1. 1 DPPH溶液的制备 称取 DPPH 对照品约 8
mg，置 100 mL量瓶中，甲醇定容至刻度，配成 0. 08
g·L －1的溶液。在 200 ～ 800 nm 扫描，得到 DPPH
溶液的最大吸收波长 517 nm。
2. 1. 2 母菊、罗马洋甘菊对 DPPH的清除能力测定
称取母菊花粉末 (过 3 号筛)0. 831 1 g，置于具塞
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锥形瓶中，加入甲醇 30 mL，超声处理 10 min(60 ℃
水浴) ，放至室温，滤过，取甲醇 10 mL 冲洗具塞锥
形瓶，清洗液滤过，合并滤液转移至 50 mL 量瓶中，
甲醇定容至刻度，即得 16. 62 g·L －1母菊储备液。
吸取母菊储备液 0. 05，0. 1，0. 2，0. 4，0. 6，0. 8，1. 0
mL 至 10 mL 量瓶中，得母菊系列质量浓度为
0. 083 1，0. 166 2，0. 332 4，0. 664 8，0. 997 2，
1. 329 6，1. 662 0 g·L －1;称取罗马洋甘菊花粉末
(过 3 号筛)0. 829 2 g，同法处理得罗马洋甘菊储备
液 16. 58 g·L －1及系列质量浓度 0. 082 9，0. 165 8，
0. 331 6，0. 663 2，0. 994 8，1. 326 4，1. 658 0 g·L －1。
吸取 DPPH溶液 2 mL，加入甲醇 2 mL，在 517
nm 处测定吸光度 A0为 0. 921;吸取 DPPH 溶液 2
mL，加入一系列浓度母菊溶液 1 mL，再加入甲醇 1
mL，30 ℃水浴 0. 5 h 后，在 517 nm 处测定吸光度
A i;空白对照为甲醇 3 mL 分别加相对应母菊系列
溶液 1 mL，在 517 nm 处测定吸光度 A j;同法测定
罗马洋甘菊系列液，按照清除率公式计算母菊、罗
马洋甘菊对 DPPH的清除率，结果见图 1。结果显
示，清除 50% DPPH 的母菊花质量浓度、罗马洋甘
菊花质量浓度(EC50)分别为 0. 66，0. 33 g·L
－ 1，
罗马洋甘菊黄酮提取物的抗氧化活性大于母菊黄
酮提取物。
图 1 母菊、罗马洋甘菊黄酮提取物对 DPPH的清除能力
Fig. 1 Seavenging ability toward DDPH of flavone extracts
2. 2 薄层生物自显影分析 2 种洋甘菊的抗氧化活
性成分
2. 2. 1 挥发油提取物抗氧化活性成分的分析 对
照品溶液的制备:取龙脑、乙酸龙脑酯、愈创奥对照
品，加甲苯制成每 1 mL 分别含 1，2，4 mg 的混合溶
液，作为对照品溶液。供试品溶液的制备:取 2 种洋
甘菊花粗粉各 1 g，分别置具塞锥形瓶中，加二氯甲
烷 10 mL，置室温浸泡 1 h，滤过，滤液置旋转蒸发仪
35 ℃下浓缩，然后氮吹仪吹干，残渣加甲苯 0. 5 mL
使溶解，作为供试品溶液。
母菊、罗马洋甘菊供试品溶液，龙脑、乙酸龙脑
酯、愈创奥混合对照品溶液分别点于同一硅胶 G 薄
层板(5 cm ×10 cm)上，以氯仿为展开剂，展开后取
出，晾干，喷以 1%香草醛浓硫酸溶液，在 105 ℃加
热 5 min，置可见光下检视［19］。
母菊、罗马洋甘菊供试品溶液分别点于另一
硅胶 G 薄层板(5 cm × 10 cm)上，同法展开晾干
后喷 0. 008% DPPH 甲醇溶液，30 min 后，置可见
光下检视，以及在检测波长 410 nm，参比波长
517 nm 下进行双波长扫描测定［20］。2 种洋甘菊
花挥发油提取物抗氧化活性结果见表 1。
1%香草醛浓硫酸显色可见光下检视，首先
确定参照物龙脑、乙酸龙脑酯、愈创奥的相对位
置，根据参照物 Rf 确定供试品中 3 种成分没药
醇、烯炔双环醚、萜类化合物的位置。喷以
0. 008% DPPH 甲醇溶液后置可见光下检视及薄
层扫描，母菊挥发油提取物抗氧化活性成分的峰
面积为 3 038、罗马洋甘菊挥发油提取物抗氧化
活性成分的峰面积为 632，母菊挥发油提取物显
现 4 个白色斑点，罗马洋甘菊挥发油提取物显现
1 个白色斑点，说明 2 种洋甘菊挥发油提取物都
含有清除 DPPH 自由基的抗氧化活性成分，且母
菊挥发油提取物抗氧化活性强于罗马洋甘菊挥
发油提取物;根据 Rf 确定母菊挥发油提取物中
含有烯炔双环醚等 4 个抗氧化活性成分，罗马洋
甘菊挥发油提取物中含有 1 个未知的抗氧化活
性成分，母菊中其他 3 个白色斑点属于具有抗氧
化活性的未知化合物。1%香草醛浓硫酸显色条
件下，2 种洋甘菊薄层色谱差异性较小，DPPH 显
色后，2 种洋甘菊薄层色谱斑点数目差异明显，可
应用于 2 种洋甘菊的鉴别区分。
2. 2. 2 黄酮类成分抗氧化成分的分析 对照品溶
液的制备:取芹菜素对照品、芹苷元-7-葡萄糖苷
对照品，加甲醇制成每 1 mL 各含 0. 25 mg 的混
合溶液，作为对照品溶液。供试品溶液的制备:
取 2 种洋甘菊花粗粉各 0. 5 g，分别置具塞锥形
瓶中，加甲醇 10 mL，超声处理 5 min(60 ℃ 水
浴) ，放至室温，滤过，取续滤液作为供试品
溶液。
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表 1 2 种洋甘菊挥发油提取物抗氧化活性
Table 1 Results of antioxidative activity of the essential oil extracts from two species of Chamomiles Flos
Rf
1%香草醛浓硫酸显色 DPPH显色
参照物 可鉴定化合物(USP) 母菊 罗马洋甘菊 母菊 罗马洋甘菊
0. 06 白色 +
0. 13 龙脑棕黄色→灰紫色
0. 15 白色 +
0. 25 白色
0. 32 没药醇 紫红色 紫红色
0. 42 白色 +
0. 46 ～0. 47 乙酸龙脑酯浅棕黄色→灰色 烯炔双环醚 浅棕色 白色
0. 86 ～0. 87 愈创奥深红色带蓝色边缘 萜类化合物 红色 红色
母菊、罗马洋甘菊供试品溶液，芹菜素、芹苷元-
7-葡萄糖苷混合对照品溶液，分别点于同一聚酰胺板
(5 cm ×10 cm)上。称取十二烷基硫酸钠(表面活性
剂)6. 7 g，正丁醇(助表面活性剂)15. 8 g，正庚烷(油
相)2. 5 g，水 75 g，放置 24 h 制得 75%O/W微乳液;
以 75%O/W微乳液-甲酸(9∶ 2)为展开剂，展开后取
出，晾干，喷以 0. 008%DPPH甲醇溶液，置紫外光灯
(254 nm)和可见光下检视以及对其峰面积进行双
波长扫描测定(λ1 = 410 nm，λ2 = 517 nm)。2 种洋
甘菊花黄酮提取物抗氧化活性结果见表 2。
表 2 2 种洋甘菊黄酮提取物抗氧化活性
Table 2 Results of antioxidative activity of the flavone extracts from two species of Chamomiles Flos
可鉴定化合物 Rf 对照品 母菊 罗马洋甘菊
芹菜素 0. 07 淡黄色 淡黄色 + 淡黄色
0. 12 淡黄色 淡黄色
0. 17 淡黄色 淡黄色
0. 24 淡黄色 + 淡黄色 +
0. 35 淡黄色 淡黄色
0. 39 淡黄色 +
0. 43 淡黄色 +
芹苷元-7-葡萄糖苷 0. 46 ～ 0. 47 淡黄色 淡黄色
0. 56 淡黄色 淡黄色
以 DPPH 紫外光灯(254 nm)检视结果确定芹
苷元-7-葡萄糖苷、芹菜素的位置;可见光下检视及
薄层扫描，母菊黄酮提取物抗氧化活性成分的峰面
积为 11 554(其中芹菜素 727，芹苷元-7-葡萄糖苷
4 442) ，罗马洋甘菊黄酮提取物抗氧化活性成分的
峰面积为 16 277(其中芹菜素 3 061，芹苷元-7-葡萄
糖苷 2 453) ，母菊黄酮提取物显现芹菜素、芹苷元-
7-葡萄糖苷等 7 个淡黄色斑点，罗马洋甘菊黄酮提
取物显现芹菜素、芹苷元-7-葡萄糖苷等 8 个淡黄色
斑点，说明 2 种洋甘菊黄酮提取物都含有较强清除
DPPH自由基作用的抗氧化活性成分，且罗马洋甘
菊黄酮提取物的抗氧化活性强于母菊黄酮提取物;
根据 Rf 确定 2 种洋甘菊黄酮提取物中都含有芹菜
素、芹苷元-7-葡萄糖苷等抗氧化活性成分，母菊黄
酮提取物中其他 5 个淡黄色斑点及罗马洋甘菊黄酮
提取物中其他 6 个淡黄色斑点属于具有抗氧化活性
的未知化合物。该薄层色谱条件下，2 种洋甘菊黄
酮提取物能较好分离。
3 讨论
1%香草醛浓硫酸显色结果确定参照物龙脑、乙
酸龙脑酯、愈创奥的相对位置［19］;DPPH 显色后，根
据参照物 Rf 确定供试品挥发油提取物中的抗氧化
活性成分为烯炔双环醚等。DPPH 薄层生物自显影
分析 2 种洋甘菊黄酮提取物抗氧化活性成分除芹菜
素、芹苷元-7-葡萄糖苷外，还含有其他结构的化学
成分。
薄层生物自显影筛选结果显示，2 种洋甘菊挥
发油提取物都具有一定的抗氧化活性，母菊白色斑
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点数多于罗马洋甘菊，且母菊挥发油提取物抗氧化
斑点峰面积大于罗马洋甘菊挥发油提取物，说明母
菊挥发油提取物抗氧化活性强于罗马洋甘菊挥发油
提取物;2 种洋甘菊黄酮提取物都具有较强的抗氧
化活性，薄层生物自显影筛选结果显示罗马洋甘菊
黄酮提取物抗氧化斑点峰面积大于母菊黄酮提取
物，并与总黄酮提取物抗氧化能力的测定结果一致。
本实验在分析 2 种洋甘菊挥发油提取物抗氧化
活性过程中，考察了欧洲药典中冰醋酸-水-正丁醇
(17∶ 17∶ 66)展开系统［21］，但 DPPH显色后供试品中
斑点成白色条带状，拖尾严重，分离度差;然后采用
微乳展开系统含水量 75% O /W 微乳液-甲酸(9∶ 2)
优化后，斑点清晰，分离效果较好，但微乳条件下抗
氧化斑点为淡黄色，可能与聚酰胺板作为薄层固定
相有关。
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Vol. 38，Issue 2
January，2013
Comparison of antioxidant activity between two species of chamomiles
produced in Xinjiang by TLC-bioautography
HAN Song-lin1，2，Li Xin-xia1* ，MIAN Qiang-hui1，LAN Wei1，LIU Yan3
(1． Xinjiang Medical University，Urumqi 830054，China;2． Aksu Vocational and Technical College，Aksu 843000，China;
3． Bill Brother Biotechnology Co．，Ltd．，Urumqi 830011，China)
［Abstract］ Objective:To compare the antioxidant active components from two species of chamomile-matricaria and Roman
chamomile produced in Xinjiang． Method:The TLC-bioautography was used，with 1，1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH)radical as
the experimental model． The peak areas of various antioxidant components were obtained by TLC-scanning for analyzing antioxidant ac-
tive components contained in volatile oil extracts and flavone extracts from the two species of chamomiles． The total peak area was taken
as the indicator for comparing the antioxidant capacities of the two types of extracts，and comparing them with the total antioxidant ac-
tivity of flavone extracts of the two species of chamomiles． Result:According to the result of TLC-bioautography in volatile oil extracts
from the two species of chamomiles，volatile oil extracts from chamomile showed four white antioxidant spots，including en-yne-dicycl-
oether，and volatile oil extracts from Roman chamomile showed only one white antioxidant spot． The TLC-scanning result showed that
the peak area of antioxidant spots of volatile oil extracts from chamomile was significantly larger than that of volatile oil extracts from Ro-
man chamomile． According to the test on the antioxidant activity of the two species of chamomiles with ultraviolet-visible spectrophotom-
etry，the concentration of chamomile after scavenging 50% of DPPH radicals was 0． 66 g·L －1，whereas the figure for Roman chamo-
mile was 0． 33 g·L －1 ． According to the result of TLC-bioautography in flavone extracts from the two species of chamomiles，flavone
extracts from chamomile showed seven yellowish antioxidant spots，including apigenin and apigenin-7-glucoside，and flavone extracts of
Roman chamomile showed eight yellowish antioxidant spots，including apigenin and apigenin-7-glucoside． The TLC-scanning results
showed that the peak area of antioxidant spots of flavone extracts from Roman chamomile was significantly larger than that of flavone ex-
tracts from chamomile． Conclusion:Volatile oil extracts from the two species of chamomiles have significant difference in the antioxi-
dant activity in TLC-bioautography． Specifically，the antioxidant activity of volatile oil extracts from chamomile is stronger than volatile
oil extracts from Roman chamomile;the known antioxidant active components in volatile oil extracts from chamomile is en-yne-dicycl-
oether，while all of the other three antioxidant active components as well as antioxidant active components in volatile oil extracts from
Roman chamomile are unknown components and remain to be further determined． Considering the significant difference in the number
of antioxidant active spots in volatile oil extracts from the two species of chamomiles，the result can be applied to distinguish the two
species of chamomiles． The antioxidant activity determination result for flavone extracts from two species of chamomiles was consistent
with the result of TLC-bioautography，showing that flavone extracts from chamomile and Roman chamomile are more antioxidant active，
while that of Roman chamomile is stronger than chamomile． Flavone extracts from both of the two species of chamomiles contain apige-
nin and pigenin-7-glucoside，which are known，while all of the other five antioxidant active components contained in flavone extracts
from chamomile and the other six antioxidant active components contained in flavone extracts from Roman chamomile are unknown and
remain to be further identified． The method lays a foundation for further identification of antioxidant active components contained in
chamomile．
［Key words］ chamomile;Roman chamomile;DPPH;TLC-bioautography;TLC-scanning;antioxidant activity
doi:10． 4268 /cjcmm20130210
［责任编辑 曹阳阳］
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第 38 卷第 2 期
2013 年 1 月
Vol. 38，Issue 2
January，2013