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吊兰生长对锌污染土壤微生物数量及土壤酶活性的影响



全 文 :第27卷第2期
2013年4月
水土保持学报
Journal of Soil and Water Conservation
Vol.27No.2
Apr.,2013
 
  收稿日期:2012-12-20
  基金项目:国家自然科学基金项目(31070401);教育部科学技术研究重点项目(212079);安徽省重点实验室基金资助项目“重要生物资源保
护与利用研究”
  作者简介:李伟(1987-),女,安徽桐城人,在读硕士,主要从事土壤重金属污染修复研究。E-mail:770245543@qq.com
  通讯作者:王友保(1974-),男,安徽肥西人,博士,教授,主要从事矿业废弃地修复与污染生态学研究。E-mail:wybpmm@126.com
吊兰生长对锌污染土壤微生物数量及土壤酶活性的影响
李 伟1,2,韦晶晶1,2,刘爱民1,2,王友保1,2,朱志鹏1,2,王兴飞1,2
(1.安徽师范大学 生命科学学院,安徽 芜湖241000;
2.安徽师范大学 生物环境与生态安全安徽省高校省级重点实验室,安徽 芜湖241000)
摘要:选用观赏植物吊兰进行盆栽试验,通过测定吊兰根际、非根际以及未栽培吊兰的空白组土壤微生物
数量、土壤酶活性及化学性质,研究吊兰对重金属锌污染土壤的修复作用。结果表明:土壤微生物数量、土
壤酶活性、有机质含量及土壤呼吸作用强度均表现为吊兰根际组>吊兰非根际组>未栽培吊兰的空白组。
而土壤锌总量、pH、电导率及氧化还原电位均表现为未栽培吊兰的空白组>吊兰非根际组>吊兰根际组。
土壤锌浓度为200mg/kg时,细菌、真菌的数量最多,土壤呼吸作用强度、脲酶及磷酸酶的活性也达到最高
值;土壤锌浓度为500mg/kg时,放线菌数量最多,且蔗糖酶活性达到顶峰。三类微生物对锌的敏感性顺
序为真菌>放线菌>细菌。土壤酶对重金属锌的敏感性顺序为蔗糖酶>脲酶>磷酸酶>过氧化氢酶。通
过微生物数量与土壤酶活性的双变量相关性分析可知,放线菌的变化对土壤酶的影响最大,其次是真菌,
细菌影响最小。吊兰生长能够有效改善土壤环境,在重金属锌污染修复方面有广阔的应用前景。
关键词:吊兰;锌;微生物数量;土壤酶活性;根际
中图分类号:X53;S154.2;S154.3   文献标识码:A   文章编号:1009-2242(2013)02-0276-06
Effects of Chlorophytum comosum Growth on
Microbial Biomass and Soil Enzymatic Activities in Zinc-poluted Soil
LI Wei 1,2,WEI Jing-jing1,2,LIU Ai-min1,2,
WANG You-bao1,2,ZHU Zhi-peng1,2,WANG Xing-fei 1,2
(1.College of Life Sciences,Anhui Normal University,Wuhu,Aihui 241000;
2.Provincial Key Laboratory of Biotic Environment and Ecological Safety in Anhui,Wuhu,Aihui 241000)
Abstract:Baesd on pot experiments by planting Chlorophytum comosum,this paper studied the microbial
biomass,soil enzymatic activities and chemical properties in rhizosphere soil,non-rhizosphere soil and the
soil of blank group which had no plants.The results showed:The microbial biomass,soil enzymatic
activities,organic matter and soil respiration in the soil showed that the rhizosphere group>the non-rhizosphere
group>the blank group.The total zinc concentration,pH,electrical conductivity and oxidation reduction
potential showed that the blank group >the non-rhizosphere group >the rhizosphere group.When the
concentration of zinc was 200mg/kg,the numbers of bacteria and fungi were the most.The soil respiration
and activities of urease and phosphatase reached their peaks.When the concentration of zinc was 500mg/kg,
the number of actinomycetes was the most and the invertase activity reached the maximum.The sensitivities
order of three categories of microorganisms with zinc was:Fungi>actinomycetes >bacteria,and the
sensitivity order of four soil enzymes with zinc was invertase>urease>phosphatase>catalase.Through
the bivariate correlation analysis of microbial biomass with soil enzymatic activities,it was found that the
effects of zinc treatments on soil enzymatic activities with actinomycetes changing were the greatest,folowed
by fungi and bacteria affected the lowest.The soil environment could be improved by planting Chlorophytum
comosum,and it had broad application prospects in remediating zinc-contaminated soil.
Key words:Chlorophytum comosum;zinc;microbial biomass;soil enzymatic activity;rhizosphere
DOI:10.13870/j.cnki.stbcxb.2013.02.003
目前,重金属污染已成为国内外普遍关注的环境问题[1],各国学者针对重金属污染问题进行了一系列的试
验研究[2]。土壤重金属污染研究,最主要的问题是控制和治理。如何有效指示和监测重金属带来的土壤污染
成为这一研究的前提。土壤微生物作为土壤的重要组成部分,可以很好地反映土壤中各种生物化学过程的动
向、强度以及土壤环境的微小变化[3],并对重金属污染有较强的敏感性。土壤酶是土壤中各种生物化学过程中
所必需的,具有特殊催化能力的一类蛋白质,并在土壤养分的转化、循环以及降解土壤中有毒物质,消除土壤污
染等方面发挥着重要作用[4]。土壤酶活性对重金属的抑制或激活作用也比较敏感,因此可以将微生物含量和
土壤酶活性作为土壤污染的重要生物活性指标。锌在土壤中易淋失、迁移或被植物吸收[5]。锌元素是动植物
生长所必需的微量元素之一,它对动植物的生长具有重要的作用。但锌浓度过高时也会对动植物造成一定的
危害。过量的锌会损坏植物根系,阻碍植物对水分和养分的吸收,抑制植物生长[6]。本文选用对重金属具有较
好耐性与积累特性的观赏植物吊兰,进行锌胁迫下的盆栽试验,研究吊兰根际、非根际土壤中微生物含量、土壤
酶活性及土壤化学性质,为利用吊兰进行锌污染土壤的植物修复提供参考。
1 材料与方法
1.1 试验材料
供试土壤于2011年6月13日取自于安徽师范大学后山。土壤类型为黄棕壤,其pH为4.775,电导率为
107.500μS/cm,氧化还原电位为-150.000mV,有机质、全氮、全磷含量分别为4.751,0.770,0.949g/kg,总
锌含量为83.530mg/kg。土壤采集后,除去动植物残体、石砾等杂物,于室内通风处风干,磨细后过3mm筛,
混匀后备用。吊兰于2011年10月1日购自芜湖市花鸟市场,预培养1周后,选取生长情况大致相同、叶片饱
满、根系丰富的吊兰幼苗作为试验材料。
1.2 试验设计
一次性加入不同体积的乙酸锌溶液,并将其与土壤充分混匀,使土壤含锌量分别为200,500,1 000,1 500,
2 000,2 500mg/kg,以不添加锌的土壤为对照(CK),共7个处理。将加有不同锌浓度的土壤混匀后风干,分别装
入对应花盆中。每盆装土700g,其中根际土300g,非根际土400g(根际是用自制的尼龙网袋分开的)。保持土壤
含水量为60%,预培养4周[7]。试验设栽种吊兰的栽培组和不栽培吊兰的空白组,每个处理3个重复。
1.3 植物培养及取样
土壤经预培养后,2011年10月8日开始栽种吊兰,每盆种2株,每天浇适量水,以保持土壤含水量。栽培
72d后,将吊兰小心地从各处理土壤中连根取出,从吊兰的根际、非根际以及未栽培吊兰的空白组中取出适量
的土风干,磨碎后过0.1mm筛,置于0~4℃保存,用于测定土壤微生物数量、土壤酶活性及相关化学性质。
1.4 测定方法
土壤微生物数量测定[8]:细菌采用牛肉膏蛋白胨琼脂平板表面涂布法;真菌采用马丁氏培养基平板表面涂
布法;放线菌采用改良高氏一号合成培养基平板表面涂布法。
土样经蒸馏水浸泡振荡(采用5∶1水土比),静置后利用校正过的pH计、电导仪测定悬浮液的pH值、电
导率及氧化还原电位。有机质含量测定采用水合热法;土壤氮含量测定采用凯氏定氮法;土壤磷含量测定采用
钼锑抗比色法[9];重金属锌总量测定采用原子吸收分光光度法。土壤呼吸强度测定采用密闭静置碱液吸收法。
土壤酶活性测定参照文献[10]:过氧化氢酶活性测定采用0.1mol/L的KMnO4 滴定法;蔗糖酶活性测定
采用3,5-二硝基水杨酸比色法;脲酶活性测定采用苯酚钠比色法;碱性磷酸酶活性测定采用比色法。
以上所用容器均用2%的 HNO3 浸泡24h后使用,以避免重金属的各种可能性污染。
采用Excel 2003和SPSS 17.0统计分析软件进行数据处理与差异显著性检验分析。
2 结果与分析
2.1 吊兰生长对锌胁迫下土壤微生物数量的影响
土壤中微生物种类繁多、数量庞大,对土壤肥力和植物生长都起着重要作用。微生物还参与土壤中污染物
的循环过程,而且作为环境载体可吸收重金属等污染物,因而对污染土壤中重金属的迁移与释放产生影响[11]。
土壤微生物的数量分布,不仅可以敏感地反映土壤环境质量的变化,也是土壤中生物活性的具体体现。
与没加重金属的CK组相比,土壤锌浓度为200mg/kg时,吊兰根际土壤中细菌、放线菌、真菌的数量都有
所增加(表1)。土壤锌浓度为500mg/kg时,细菌的数量大量减少,而当土壤锌浓度达到1 000mg/kg时,细
菌数量又有所增加,随后随着土壤锌浓度的升高逐渐减少。这可能是因为重金属锌在土壤中达到一定浓度时,
772第2期       李伟等:吊兰生长对锌污染土壤微生物数量及土壤酶活性的影响
大部分微生物死亡,而一小部分微生物在重金属锌污染下能生存下来,并自行繁殖,从而对重金属锌产生一定
的抗性。但当重金属锌浓度过高时,抗性细菌也受到了抑制,表现为微生物数量降低后又增大,然后又逐渐减
少,有时还会出现多个抗性峰[12]。放线菌数量在土壤锌浓度为500mg/kg时最多,真菌的数量在土壤锌浓度
为200mg/kg时达到最高值,但随着土壤锌浓度的增加,放线菌、真菌的数量逐渐减少。这说明低浓度的锌对
细菌、放线菌、真菌有一定的促进作用,而较高浓度的锌对土壤微生物的生长有抑制作用。非根际土壤微生物
数量随土壤锌浓度的变化趋势与吊兰根际环境的变化趋势相似。空白组土壤因受到重金属锌的胁迫,土壤中
的微生物生长受到抑制,且没有吊兰的修复,故微生物数量非常少[13]。
比较根际土壤、非根际土壤和空白组土壤的微生物数量,可以发现:土壤真菌数量比细菌数量少,比放线菌
数量多,且表现为根际土壤微生物数量>非根际土壤微生物数量>未栽培吊兰的空白组土壤微生物数量。说
明吊兰生长能够有效增加土壤微生物数量。
与CK组相比,受重金属锌影响,根际土壤中细菌数量平均降低了21.28%,放线菌数量平均降低了
40.19%,真菌数量平均降低了54.01%;而非根际土壤中,细菌数量平均降低了34.43%,放线菌数量平均降低了
35.51%,真菌数量平均降低了60.17%。由此推测三大类微生物对锌的敏感性顺序为真菌>放线菌>细菌。
表1 锌污染对土壤微生物数量的影响
锌浓度/
(mg·kg-1)
细菌数量/(×105 CFU·g-1)
根际 非根际 空白
放线菌数量/(×103 CFU·g-1)
根际 非根际 空白
真菌数量/(×103 CFU·g-1)
根际 非根际 空白
CK  37.333±1.154bA  20.333±0.577bB  0.000±0.000bC 11.333±1.154bA  7.667±0.577bB  0.667±0.577aC  26.333±0.577bA  19.667±1.527aB 2.667±0.577bC
200  40.667±1.154aA  21.667±1.154aB  1.667±0.5877aC 11.333±1.527bA  8.667±0.577bB  0.000±0.000aC  31.333±2.081aA  20.333±2.081aB 3.333±0.577aC
500  21.667±0.577eA  12.333±0.577cB  1.000±1.000abC 15.333±1.154aA  11.667±0.577aB  0.000±0.000aC  14.333±0.577cA  9.667±1.154bB 1.667±0.577cC
1000  38.667±1.154abA 20.333±0.577bB  0.000±0.000bC  6.667±1.154cA  5.000±1.000cA  0.333±0.577aB  10.333±1.527dA  8.333±1.154bA 0.000±0.000dC
1500  32.000±1.732cA  11.000±1.000dB  0.333±0.577bC  3.333±0.577dA  2.667±0.577dA 0.000±0.000aB  7.667±1.154eA  5.333±0.577cB 0.000±0.000dC
2000  24.000±2.000dA  9.333±0.577eB  0.000±0.000bC  2.333±0.577dA  1.333±0.577eB  0.000±0.000aC  5.333±0.577fA  2.667±0.577dB 0.000±0.000dC
2500  19.333±0.577fA  6.333±0.577fB  0.000±0.000bC  1.667±1.154dA  0.333±0.577fAB 0.000±0.000aB  3.667±1.154fA  0.667±0.577dB 0.000±0.000dB
  注:同列中不同小写字母表示差异显著;同行中不同大写字母表示同种微生物在3种土壤中差异显著(P<0.05)。下同。
2.2 吊兰生长对锌胁迫下土壤酶活性的影响
土壤酶是土壤肥力的一个敏感性生物指标,是最为活跃的土壤有机成分之一。土壤酶活性直接影响土壤
中进行的生物化学过程[14]。从表2可以看出:过氧化氢酶活性与土壤锌浓度呈负相关,随着锌浓度的增加,其
活性逐渐减小。与CK组相比,土壤锌浓度为200mg/kg时,土壤脲酶、磷酸酶活性有所提高;当土壤锌浓度大
于200mg/kg时,二者活性随着土壤锌浓度的增加而减小。蔗糖酶活性在土壤锌浓度为500mg/kg时达到最
高值,当土壤锌浓度大于500mg/kg时,蔗糖酶活性随着土壤锌浓度的增加而变小。这说明低浓度的锌对土
壤脲酶、磷酸酶、蔗糖活性具有一定的促进作用,而较高浓度的锌则对土壤脲酶、磷酸酶和蔗糖酶活性表现为抑
制作用。非根际组和空白组的土壤酶活性随着土壤锌浓度的变化趋势与吊兰根际环境的变化趋势相似。
表2 锌污染对土壤酶活性的影响
锌浓度/
(mg·kg-1)
过氧化氢酶活性/(ml·g-1)
根际 非根际 空白
蔗糖酶活性/(mg C6H12O6·g-1·d-1)
根际 非根际 空白
CK  0.548±0.003aA  0.513±0.006aB  0.267±0.004aC  12.327±0.226cA  8.915±0.181cB  5.012±0.077cC
200  0.527±0.008bA  0.507±0.003aB  0.255±0.005bC  20.474±0.441bA  15.590±0.133bB  6.597±0.161bC
500  0.518±0.008bcA 0.498±0.003bB  0.237±0.003cC  23.759±0.335aA  19.223±0.139aB  10.187±0.139aC
1000  0.493±0.006cA  0.485±0.005cA  0.232±0.003dB  11.737±0.192dA  7.251±0.259dB  2.033±0.075dC
1500  0.485±0.009dA  0.480±0.005cdA  0.212±0.003eB  7.529±0.119eA  6.491±0.054eB  1.671±0.109fC
2000  0.480±0.005dA  0.477±0.003dA  0.198±0.003fB  4.856±0.075fA  4.322±0.130fB  1.315±0.075eC
2500  0.465±0.009eA  0.463±0.003eA  0.182±0.008gB  4.145±0.033gA  1.948±0.117gB  1.074±0.107fC
锌浓度/
(mg·kg-1)
脲酶活性/(mg NH3-N·g-1·d-1)
根际 非根际 空白
磷酸酶活性/(mg P2O5·100g-1·2h-1)
根际 非根际 空白
CK  151.927±2.827bA  81.497±1.458cB  59.083±4.034bC 23583.589±434.333cA 17859.541±124.318cB 14382.603±149.409bC
200  165.194±1.414aA  96.408±2.943aB  75.844±1.391aC 34240.347±993.178aA 28489.178±866.546aB 18922.067±128.201aC
500  153.165±2.023bA  86.332±1.983bB  60.730±2.007bC 28914.267±657.819bA 23723.763±225.889bB 13650.143±62.654cC
1000  91.781±1.112cA  53.430±2.587dB  37.287±1.391cC 22548.183±109.637cA 16426.278±192.462dB 11479.889±109.637dC
1500  79.340±1.699dA  48.495±1.391eB  31.221±1.391dC 21300.289±192.461dA 15928.907±112.938dB 10476.141±190.541eC
2000  69.984±2.659eA  45.307±1.391eB  27.211±1.391eC 20160.903±109.637eA 14762.402±122.333eB 9562.854±190.541fC
2500  66.899±1.885eA  41.400±0.992fB  24.023±0.776eC 19310.903±71.767fA  14093.253±158.958fB  8342.082±95.267gC
872 水土保持学报       第27卷
  比较根际、非根际及空白组土壤的土壤酶活性,可以发现:根际土壤酶活性>非根际土壤酶活性>未栽培
吊兰的空白组土壤酶活性。土壤酶活性随着土壤锌浓度的变化与微生物数量的变化趋势基本相似。说明微生
物数量的变化对土壤酶的活性有一定的影响。
与不添加锌的CK组相比,土壤锌浓度为2 500mg/kg时,根际土壤中蔗糖酶活性下降了66.38%,脲酶活
性下降了55.97%,磷酸酶活性下降了18.12%,过氧化氢酶活性下降了15.19%;非根际土壤中蔗糖酶活性下
降了78.15%,脲酶活性下降了49.20%,磷酸酶活性下降了21.09%,过氧化氢酶活性下降了9.74%;空白组
土壤中蔗糖酶活性下降了78.58%,脲酶活性下降了59.34%,磷酸酶活性下降了41.99%,过氧化氢酶活性下
降了32.04%。由此推测,4种土壤酶对重金属锌的敏感性顺序为蔗糖酶>脲酶> 磷酸酶>过氧化氢酶。
表3 土壤微生物数量与土壤酶活性相关性分析
相关性 过氧化氢酶 蔗糖酶 脲酶 磷酸酶
细菌 0.566  0.275  0.441  0.419
根际 放线菌 0.857* 0.944** 0.944** 0.790*
真菌 0.904** 0.673  0.907** 0.801*
细菌 0.799* 0.443  0.649  0.515
非根际 放线菌 0.816* 0.959** 0.904** 0.803*
真菌 0.887** 0.620  0.954** 0.721*
细菌 0.447  0.719  0.789* 0.810*
空白 放线菌 0.611  0.008  0.216  0.181
真菌 0.842* 0.728  0.955** 0.933**
  注:*,**分别表示相关性显著(P<0.05)和极显著(P<0.01)。
下同。
  通过微生物数量与土壤酶活性的双变量相关性
分析(表3)可以发现,根际与非根际土壤中放线菌数
量与4种土壤酶活性呈正相关,且均达到显著水平。
蔗糖酶活性与放线菌数量相关性最强,其次是脲酶。
其相关性顺序为蔗糖酶>脲酶>过氧化氢酶>磷酸
酶。真菌数量与土壤酶活性呈正相关,且与过氧化氢
酶、脲酶、磷酸酶活性的相关性均达到显著水平。其
相关性依次为脲酶>过氧化氢酶>磷酸酶>蔗糖酶。
细菌数量与4种土壤酶活性呈正相关,但相关性不显
著。由此推测三类微生物对土壤酶的影响大小依次
为放线菌>真菌>细菌。
鉴于土壤微生物数量与土壤酶活性相关性较大,
同时二者均易受土壤环境因素影响,且对土壤污染反应敏感,因此把这二类指标结合起来作为判断土壤锌污染
程度指标更为合适。
2.3 吊兰生长对锌胁迫下土壤化学性质的影响
与CK组相比,土壤锌浓度为200mg/kg时,吊兰根际土壤呼吸作用强度有所提高,当土壤锌浓度大于
200mg/kg时,土壤呼吸作用强度随着土壤锌浓度的增加而降低(表4)。土壤有机质的含量随着土壤锌浓度
的增加上下波动,相关性不显著。非根际、空白组土壤呼吸作用强度及有机质含量随着锌浓度的变化趋势与根
际环境的变化趋势相似。比较根际、非根际和空白组土壤的呼吸强度和有机质含量可以发现:根际土壤呼吸作
用强度(或有机质含量)>非根际土壤呼吸作用强度(或有机质含量)>未栽培吊兰的空白组土壤呼吸作用强度
(或有机质含量)。这可能是因为土壤微生物丰富度和数目的差异,一定程度上影响了根际、非根际及空白组土
壤的呼吸作用强度。虽然土壤锌浓度的大小对有机质含量的影响不大,但种植吊兰却能显著增加土壤有机质
含量,说明吊兰能够有效改善锌污染的土壤基质。
土壤锌总量、pH、电导率及氧化还原电位均随着土壤锌浓度的增加而增加(表4、表5)。由于吊兰对重金
属锌的吸收和根系的吸附作用,以及吊兰根系分泌质子酸化土壤,所以提高了土壤中重金属的流动性和植物对
其的吸收[7,15]。与空白组相比,吊兰根际与非根际土壤锌总量均显著小于未栽培吊兰的空白组。由于重金属
锌是以醋酸盐离子的形式加入土壤,醋酸盐在土壤中水解产生碱性,故土壤的pH值随着土壤中锌浓度的增加
而增加,同时醋酸盐水解也增大了土壤的电导率和氧化还原电位。由于吊兰能够吸收土壤中的重金属锌,故吊
兰根际与非根际土壤的pH、电导率及氧化还原电位均小于未栽培吊兰的空白组,表现为空白组>非根际组>
根际组。土壤的pH、电导率及氧化还原电位均与土壤锌总量呈正相关,根际土壤中其相关性系数分别为
0.947,0.895,0.971;非根际土壤中其相关性系数分别为0.953,0.939,0.980;空白组土壤中其相关性系数分
别为0.979,0.968,0.988,均达到极显著相关性。
观察微生物数量与土壤化学性质的双变量相关性分析(表6),可以发现根际与非根际土壤中微生物数量
与呼吸作用强度呈正相关,且放线菌和真菌数量与呼吸作用强度的相关性均达到显著水平。其相关性大小表
现为放线菌>真菌>细菌。而重金属锌总量与微生物数量呈负相关,且达到显著水平。其相关性大小表现为
真菌>放线菌>细菌。土壤的pH、电导率及氧化还原电位均与微生物数量呈负相关,且与放线菌、真菌的相
关性均达到显著水平,其相关性大小表现为真菌>放线菌>细菌。有机质的含量与微生物数量呈正相关,但相
关性并不显著。
972第2期       李伟等:吊兰生长对锌污染土壤微生物数量及土壤酶活性的影响
表4 锌污染对土壤呼吸作用强度、有机质及锌总量的影响
锌浓度/
(mg·kg-1)
呼吸作用强度/(mg CO2·kg-1·h-1)
根际 非根际 空白
土壤有机质含量/(g·kg-1)
根际 非根际 空白
重金属锌总量/(mg·kg-1)
根际 非根际 空白
CK  9.549±1.323cdA  4.201±0.662bcB  1.528±0.662aC  5.310±0.164aA  4.931±0.164aB  4.457±0.164aC  77.333±2.309gB  80.667±1.155gA  82.667±1.155gA
200  14.514±0.662aA  6.111±0.662aB  1.528±1.323aC  4.646±0.329cdA  4.362±0.435abA  4.077±0.164abA  197.333±2.309fB  256.000±18.330fA  270.667±12.858fA
500  11.840±0.662bA  4.965±0.662abB  1.146±1.146aC  4.741±0.164bcdA  4.457±0.164abAB 4.172±0.164abB  452.000±17.436eA  456.000±80.299eA  532.000±24.980eA
1000  8.403±0.662dA  3.056±0.662cdB  0.764±0.662aC  4.931±0.164abcA  4.740±0.329abAB 4.362±0.164abB  869.333±46.705dAB  824.000±17.436dB  921.333±16.166dA
1500  7.257±0.662eA  2.292±0.000deB  0.382±0.662aC  4.457±0.164dA  4.172±0.329bA  3.983±0.285bA  1269.333±122.137cA  1270.667±124.279cA 1344.000±22.271cA
2000  5.347±0.662fA  1.528±1.323eB  0.764±0.662aC  4.931±0.329abcA  4.741±0.329abA  4.361±0.164abA  1685.333±8.327bB  1766.667±70.465bB 1932.000±38.158bA
2500  4.965±0.662fA  1.146±1.146eB  0.382±0.662aC  4.646±0.164cdA  4.172±0.164bB  4.077±0.164abB  2034.667±54.457aC  2152.000±68.282aB 2305.333±30.551aA
表5 锌污染对pH、电导率及氧化还原电位的影响
锌浓度/
(mg·kg-1)
pH
根际 非根际 空白
电导率/(μS·cm
-1)
根际 非根际 空白
氧化还原电位/mV
根际 非根际 空白
CK  4.660±0.208cB  4.723±0.208fA  4.775±0.007fA  76.000±7.211fC  98.300±1.414fB  107.5±0.707fA -154.500±8.544aA -152.000±0.707aB -150.000±0.707aB
200  4.783±0.208bcB  4.813±0.031eA  4.836±0.092eA  106.300±7.211eC  112.300±0.707eB  118.333±2.828eA -147.000±8.544bA -146.000±1.414bB -145.000±6.364bB
500  4.873±0.031bB  4.895±0.035dA  4.915±0.085dA  113.500±2.309dC  119.500±2.082dB  125.500±4.950dA -144.000±5.774bA -142.000±5.657bB -141.000±0.707bB
1000  5.095±0.035aB  5.133±0.067cA  5.170±0.035cA  126.000±2.082bcB  128.700±4.243cB  133.500±2.121cA -140.500±2.646bA -138.5000±6.364bB-136.000±0.707bB
1500  5.133±0.067aB  5.173±0.031bcAB 5.223±0.127bcA  130.700±6.429bB  133.333±2.121cB  139.000±0.000bcA -135.000±7.767cA -133.500±0.707cB -131.500±5.657cB
2000  5.185±0.131aB  5.215±0.046abB  5.320±0.028bA  136.500±11.676abB  139.300±0.577bB  146.000±4.243abA -132.000±3.464cA -129.500±2.646dB -127.000±5.657dB
2500  5.235±0.046aB  5.283±0.127aB  5.483±0.099aA  143.333±0.708aB  147.500±2.828aB  151.000±1.414aA -128.500±6.557cA -125.000±3.464dB -123.500±1.414dB
表6 土壤微生物数量与土壤基本化学性质的相关性分析
相关性 呼吸作用强度 土壤有机质 土壤锌总量 pH 电导率 氧化还原电位
细菌 0.527  0.263 -0.662* -0.535 -0.569 -0.650
根际 放线菌 0.868* 0.277 -0.896** -0.862** -0.747* -0.837**
真菌 0.856* 0.322 -0.896** -0.928** -0.856** -0.888**
细菌 0.722  0.534 -0.853* -0.728 -0.804* -0.854*
非根际 放线菌 0.902** 0.212 -0.863* -0.830* -0.756* -0.791*
真菌 0.877** 0.372 -0.921** -0.947** -0.949** -0.951**
细菌 0.541  0.480 -0.521 -0.565 -0.419 -0.439
空白 放线菌 0.454  0.747 -0.523 -0.471 -0.633 -0.619
真菌 0.938** 0.084 -0.830* -0.899** -0.879** -0.847*
3 结 论
(1)低浓度的锌对微生物有一定的促进作用,但随着土壤锌浓度的增加则对微生物表现为抑制作用。土壤
锌浓度为200mg/kg时,细菌、真菌数量最多,放线菌数量在土壤锌浓度为500mg/kg时达到最高值。根际土
壤微生物数量>非根际土壤微生物数量>未栽培吊兰的空白组土壤微生物数量。三类微生物对重金属锌的敏
感性依次为真菌>放线菌>细菌。
(2)土壤锌浓度为200mg/kg时,脲酶、磷酸酶的活性最大,而蔗糖酶活性则在土壤锌浓度为500mg/kg
时达到顶峰,表现为根际土壤酶活性>非根际土壤酶活性>未栽培吊兰的空白组土壤酶活性。4种土壤酶对
重金属锌的敏感性顺序依次为蔗糖酶>脲酶>磷酸酶>过氧化氢酶。通过微生物数量与土壤酶活性的双变量
相关性分析发现,放线菌的变化对土壤酶的影响最大,其次是真菌,细菌影响最小。
(3)根际土壤呼吸作用强度(或有机质含量)>非根际土壤呼吸作用强度(或有机质含量)>未栽培吊兰的
空白组土壤呼吸作用强度(或有机质含量)。土壤呼吸作用强度在土壤锌浓度为200mg/kg时最大。土壤锌
总量、pH、电导率及氧化还原电位均随着土壤锌浓度的增加而增加,吊兰根际与非根际土壤的锌总量、pH、电
导率及氧化还原电位均小于未栽培吊兰的空白组,表现为空白组>非根际组>根际组。土壤有机质含量与土
壤锌浓度的相关性不显著。
(4)高浓度重金属锌可抑制土壤微生物、土壤酶活性以及土壤呼吸作用强度,所以种植吊兰可促进土壤微
生物活动,提高土壤酶活性,在重金属污染修复方面有广阔的应用前景。
082 水土保持学报       第27卷
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