全 文 ：·贮藏保鲜加工· 北方园艺２０１３（０９）：１５４～１５９
第一作者简介：张瑜瑜（１９８３－），女，云南人，硕士，讲师，现主要从
事观赏园艺植物栽培的教学与科研工作。Ｅ－ｍａｉｌ：ｚｙｚｙｗｗｏ＠
ｑｑ．ｃｏｍ．
收稿日期：２０１２－１２－２５
金鱼草切花瓶插生理和保鲜效应研究
张 瑜 瑜１，２，李 　 晶１，２，吴 　 旭１，２，姚 丽 媛１，２，华 金 珠１，２
（１．昆明学院 农学院，云南 昆明６５０２１４；２．云南省高校都市型现代农业工程研究中心，云南 昆明６５０２１４）
　　摘　要：以金鱼草切花为试材，以羟基喹啉、柠檬酸、盐、蔗糖、磷酸二氢钠混合液、硝酸银为保
鲜剂，研究了不同保鲜剂配方对金鱼草鲜切花瓶插寿命、花径、鲜重、吸水量、蒸腾量等外观品质
和花色素苷含量、细胞膜透性、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、维生素Ｃ含量等内含物质的影
响，以期为切花保鲜提供参考。结果表明：在瓶插保鲜试验中，以２００ｍｇ／Ｌ　８－羟基喹啉柠檬酸
盐＋３％蔗糖＋１５０ｍｇ／Ｌ柠檬酸＋７５ｍｇ／Ｌ磷酸二氢钠混合液的保鲜效果最好；与对照相比，该
保鲜液可延长切花寿命９ｄ；达盛开期晚４ｄ；到瓶插的第２１天，切花鲜重比对照增加２６ｇ、水分平
衡值高１．９ｇ；在细胞膜透性变化方面，瓶插后期的第２１天，导电率为８３．６％，比对照少８．１％；其
可溶性糖含量的最大值比对照高０．１ｇ／１００ｇ样品；可溶性蛋白含量在第１３天达到最大值，且后
期以该处理的下降幅度较为缓慢；在瓶插后期的第２１天，维生素Ｃ含量比对照高４４．２８３９ｍｇ／１００ｇ
样品。
关键词：金鱼草；外观品质；内含物质；保鲜；生理
中图分类号：Ｓ　６８１．９　文献标识码：Ａ　文章编号：１００１－０００９（２０１３）０９－０１５４－０６
　　随着我国经济的快速发展和人们生活水平的不断
提高，人们对花卉的消费量日益增加。我国加入 ＷＴＯ
后，经济、社会各个方面均产生了深刻而广泛的影响，尤
其是对我国农村和农业各个产业都产生了巨大冲击，中
国花卉业作为优势极为明显的产业之一，目前面临的挑
战更为巨大［１］。切花的采后保鲜是切花生产销售中的
一个重要环节，国外自２０世纪５０年代后期至今已进行
了大量研究，并形成了商品化的配套技术，切花采后的
保鲜研究也已经成为园艺学科中的一个新兴领域。在
荷兰、德国、丹麦、波兰等国，鲜切花保鲜技术已经普及。
目前，鲜切花保鲜处理是发达国家花卉采后处理的必要
步骤。而目前我国对切花采后处理技术简易落后，在一
定程度上限制了我国鲜切花的出口。同时，每年由于采
后保鲜措施不当造成的损耗，给我国花卉业带来了巨大
损失。因此，为进一步适应市场发展，鲜切花保鲜技术
必将得到越来越多的重视和应用［２］。
切花脱离母枝后，仍然是一个活的有机生物体，依
然进行着一系列的生命活动，但同时也在不断地衰老。
引起切花花蕾衰老的因素主要包括温度、光照、湿度、营
养等外界因子和切花自身的水分代谢、呼吸代谢、糖类、
蛋白质类、营养元素和激素的变化等内部因子，但内部
因子在衰老过程中起着主导作用。目前，对切花衰老机
理的研究也主要集中在对内部因子的研究上，而对外部
影响因子的研究相对较少［２］，特别是以金鱼草切花为试
验材料的切花衰老机理中的外部因子研究更是鲜见报
道。现以金鱼草切花为试材，以羟基喹啉、柠檬酸、盐、
蔗糖、磷酸二氢钠混合液、硝酸银为保鲜剂，研究了不同
保鲜剂对金鱼草鲜切花外观品质（瓶插寿命、花径、鲜
重、吸水量、蒸腾量）和内含物质（花色素苷含量、细胞膜
透性、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、维生素Ｃ含量）
的影响，以期为切花保鲜提供参考。
１　材料与方法
１．１　试验材料
供试金鱼草购自昆明芊卉种苗有限公司现代化温
室，选无病虫害、发育程度一致且每支切花至少有３个
花头、每个花头上有３～５朵小花的金鱼草鲜切花备用。
１．２　试验方法
瓶插前将鲜切花放置在容积为１．０Ｌ的预处理
液（１０ｇ／Ｌ蔗糖＋１００ｍｇ／Ｌ　Ｃｏ（ＮＯ３）２＋１５０ｍｇ／Ｌ
Ａｌ２（ＳＯ４）３＋１００ｍｇ／Ｌ　ＧＡ３［３］中处理３０ｍｉｎ，设４种保
鲜液对金鱼草鲜切花进行瓶插，以自来水为对照，试验
设计见表１。在整个试验过程中，将瓶插容器放置于阴
凉处，控制瓶插环境温度在２０℃左右。以瓶插寿命为期
限，每隔３ｄ，分别对金鱼草鲜切花的瓶插寿命、花径、切
花鲜重、水分平衡变化等的变化及花色素苷含量、细胞
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北方园艺２０１３（０９）：１５４～１５９ ·贮藏保鲜加工·
膜透性、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、维生素Ｃ含量
等内在生理生化变化进行测定。
表１ 试验设计
　　Ｔａｂｌｅ　１ Ｔｅｓｔ　ｄｅｓｉｇｎ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ　 ５００ｍＬ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
保鲜液配方
Ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ
ＣＫ 自来水
１
２００ｍｇ／Ｌ　８－羟基喹啉柠檬酸盐＋３％蔗糖＋１５０ｍｇ／Ｌ柠檬酸＋
７５ｍｇ／Ｌ磷酸二氢钠混合液
２　 ２５０ｍｇ／Ｌ硝酸银＋１５０ｍｇ／Ｌ柠檬酸＋５０ｍｇ／Ｌ磷酸二氢钠混合液
３　 ２５０ｍｇ／Ｌ　８－羟基喹啉柠檬酸盐＋１．５％蔗糖混合液
４　 １０ｇ／Ｌ食盐＋１０ｇ／Ｌ蔗糖（相当于１％的蔗糖）
１．３　项目测定
１．３．１　外观品质测定　瓶插寿命（ｄ）以外层花瓣明显萎
蔫、失去观赏价值的天数记录；花径（ｃｍ）的变化用游标
卡尺测量，固定一朵切花，作上标记，每隔３ｄ用十字法
测这朵鲜切花开放的直径，取二者的平均值记录为鲜切
花的直径；切花鲜重（ｇ）、吸水量（ｇ）、蒸腾量（ｇ）的变化用
分析天平称重，吸水量取前后２次（瓶＋溶液）重量之差；
蒸腾量取前后２次（瓶＋溶液＋切花）重量之差，最后以
（吸水量－蒸腾量）计算切花的水分平衡值（ｇ）［４］。
１．３．２　内含物质的测定　花色素苷含量的测定参照
Ｗｅｉｓｓ等的方法［５］；细胞膜透性测定：将不同处理的切花
花瓣用打孔器打２０个小圆片，先用蒸馏水清洗，再将其
放入小烧杯中，加入２０ｍＬ蒸馏水，用封口膜封口，室温
下静置３ｈ，用数字电导仪测定初电导值（Ｃ１），然后将烧
杯置于沸水浴中煮沸２０ｍｉｎ，待组织死亡和电解质释
放完全后测定终电导值（Ｃ２），以式子Ｃ１／Ｃ２×１００％计
算出的相对电导率（Ｃ）来表示细胞膜透性（％）［６］。可溶
性糖含量参照蒽酮法［７］测定；可溶性蛋白含量参照考马
斯亮蓝Ｇ２５０法测定［７］；维生素Ｃ含量测定参照２，６－二
氯酚靛酚还原法测定［７］。
２　结果与分析
２．１　不同配方瓶插液对金鱼草切花瓶插寿命及保鲜效
果的影响
由表２可知，对照、处理４的总保鲜天数最短，分别
为１５ｄ和１６ｄ，以处理１的总保鲜天数最长，达到了２４ｄ；
处理２和处理３的总保鲜天数居中；从第１朵切花的萎
蔫时间来看，以对照萎蔫的最早，在第５天，其余处理以
处理１的第１小朵切花萎蔫最迟，在第１３天才出现萎
蔫，且处理１的整体瓶插效果最好，保鲜液吸收最快，花
朵达盛开期最晚，花茎挺直、保持花色、叶片翠绿时间最
长，与观察结果一致，且处理１也比其余处理花瓣脱落
少，叶片不易脱落，处理１、２相对于对照、处理３、４来说
都延长了金鱼草切花寿命，而对照、处理４的保鲜效果
较差，瓶插中后期保鲜液发霉，且几乎未被吸收，相对于
保鲜效果最差的对照而言，处理１、２的瓶插寿命分别延
长了３７．５％和３１．８％，在金鱼草的整个瓶插过程中，不
同处理保鲜液对金鱼草瓶插寿命及瓶插期间形态表现
的保鲜效果为处理１＞处理２＞处理３＞处理４＞对照。
　　表２ 不同瓶插液对金鱼草瓶插寿命及保鲜效果的影响
　　Ｔａｂｌｅ　２ Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ　ｖａｓｅ－ｌｉｆｅ　ａｎｄ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ｅｆｅｃｔ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ
总保鲜天数
Ｔｏｔａｌ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ｄａｙ／ｄ
第１朵萎蔫天数
Ｗｉｌｔｉｎｇ　ｄａｙｓ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｆｉｒｓｔ　ｆｌｏｗｅｒ／ｄ
瓶插期形态表现
Ｆｏｒｍ　ｉｎ　ｖａｓｅ　ｐｅｒｉｏｄ
ＣＫ　 １５　 ５
总保鲜天数最短，第１朵小切花萎蔫最早，第３天部分小切花边缘开始发黄、枯萎，花瓣凋谢速度最
快，后期花瓣脱落严重，叶片发黄，自来水吸收不好，几乎未被吸收，且瓶插中后期保鲜液发霉
１　 ２４　 １３
总保鲜天数最长，第１朵小切花萎蔫时间最迟，第１０天花朵边缘才出现枯黄，花朵达盛开期最晚，花
瓣不易脱落，花茎挺直、叶片保持翠绿时间最长，保鲜液吸收最快，吸收效果最好
２　 ２２　 １１
总保鲜天数稍短，第１朵小切花萎蔫天数较处理１短，花朵达盛开期稍晚，后期花瓣极少脱落，瓶插后
期部分叶片发黄，保鲜液吸收效果较好
３　 １８　 ９
与处理２基本相同，总保鲜天数稍短于处理２，在瓶插中期达盛开期，瓶插后期花瓣部分脱落，部分叶
片发黄，保鲜液吸收效果一般
４　 １６　 ７
花朵开放速度慢，达盛开期早，花瓣凋谢速度快，瓶插后期花瓣易脱落，保鲜液吸收较少，吸收效果不
好，且瓶插后期保鲜液发霉
２．２　不同瓶插液对金鱼草切花花径的影响
花径是考察切花保鲜效果的重要指标。从鲜切花
保鲜及观赏的角度来讲，其盛开期来得越晚，盛开状态
保持的越久，其保鲜效果就越好。由图１可知，对照和
所有处理的金鱼草切花花径的变化趋势基本一致，都呈
先增大后缩小的趋势，这主要是由于后期花瓣逐渐衰老
萎蔫失水造成的。其中对照、处理３、４前期花径增加较
快，且开花迅速，达盛开期早，但后期凋萎也较快，特别
是对照，后期凋萎尤为迅速，并且上述３个处理保持盛
开状态的时间也不长，约在９ｄ左右，约短于处理１、２的
盛开状态３ｄ，而处理１、２前期虽开花慢，但花径的增加
幅度较为平稳，二者的盛开期都出现在第１３天左右，在
达到盛开期后，切花开始凋萎，但花径萎缩幅度都较为
平稳，这说明处理１、２的保鲜液相对于其余处理而言更
有利于金鱼草切花花径的增加，可以推迟切花盛开期，
保持花朵新鲜，从而提高了切花的观赏价值，延长了切
花小花的开放时间，延长了金鱼草切花的瓶插寿命。
２．３　不同瓶插液对金鱼草切花鲜重的影响
切花鲜重也是衡量切花保鲜效果的另一重要指标，
切花鲜重增加越多，变化幅度越平稳，说明切花对保鲜
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·贮藏保鲜加工· 北方园艺２０１３（０９）：１５４～１５９
图１　不同瓶插液对金鱼草花径的影响
Ｆｉｇ．１　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ
ｆｌｏｗｅｒ　ｄｉａｍｅｔｅｒ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
液的吸收越好，保鲜效果也就越佳。由图２可知，瓶插
后，对照的切花的鲜重逐渐下降，而其它处理的切花鲜
重都有所增加，在瓶插后若干天鲜重继续增加，待增加
到最大值又逐渐下降。不同处理的切花鲜重变化幅度
不同，说明各处理的保鲜液对金鱼草切花均有一定的保
鲜效果，其中，以处理１和处理３的切花的鲜重增加幅度
较大，到第９天测定时分别增加了１３ｇ和１５ｇ，处理２、
处理４的切花由于保鲜液吸收不好，几乎未被吸收，因
此也是造成切花前期鲜重增加较少的一个原因。
图２　不同瓶插液对金鱼草鲜重的影响
Ｆｉｇ．２　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ
ｆｒｅｓｈ　ｂａｓｉｓ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
２．４　不同瓶插液对金鱼草切花水分平衡的影响
有研究认为，切花体内的细胞只有保持一定的膨
压，即体内水分大致平衡，才能维持其正常的生理代
谢［８］。由图３可知，整个瓶插过程中，对照和处理４的切
花的水分平衡值呈先下降再上升的趋势，处理１、处理２
及处理３的切花水分平衡值的变化趋势基本一致，都表
现为先下降再上升的趋势，其中，对照和处理４的切花
的水分平衡值分别在第６、７天趋近于０，处理２、３的切
花的水分平衡值都约在第１５天趋近于０，处理１的切花
的水分平衡值约在第１６天趋近于０。
处理１、处理２及处理３的切花在瓶插后花蕾吸水
开放，吸水量＞蒸腾量，随着花朵的开放，切花蒸腾不断
增加，蒸腾量＞吸水量；后期切花接近衰老时，花瓣开始
萎蔫，萎蔫导致的气孔关闭大大降低了水分蒸腾量，吸
水量与蒸腾量之间的差值绝对值变小［９］，所以水分平衡
值到了瓶插中后期又呈现上升的趋势。而对照和处理４
在瓶插前期花蕾迅速开放，该设计是每隔３ｄ测１次数
据，第５天测定时，切花已开始开放，蒸腾不断增加，因而
水分平衡值一开始就有明显的下降趋势，也许在下降之
前可能已经出现过一个上升的过程，只是测定从第５天
开始，之前的数据没有测到，而此时，这２个处理的切花
的水分平衡值已经开始下降了，说明这２个处理的切花
盛开期早，这与该试验的观察结果一致，此后，瓶插中后
期水分平衡值与处理１、处理２及处理３的切花瓶插中
后期的水分平衡值的变化趋势基本一致。
图３　不同瓶插液对金鱼草切花水分平衡的影响
Ｆｉｇ．３　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ
ｍｏｉｓｔｕｒｅ　ｂａｌａｎｃｅ　ｖａｌｕｅ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
２．５　不同瓶插液对金鱼草切花花色素苷含量的影响
图４　不同瓶插液对金鱼草切花花色素苷含量的影响
Ｆｉｇ．４　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ　ｇｅｎｉｐｏｓｉｄｅ　ｉｎ
ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｄｉｎ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
不同种类的切花中，花色素苷含量的变化不同。其
含量在有些花中会保持不变，在有些花中明显降低，甚
至消失；还有的在花瓣衰老时，花色素苷急剧合成，颜色
加深［１０］。从图４可以看出，对照和所有处理的切花的花
色素苷含量都存在一定波动，其中以处理４和对照的切
花的花色素苷含量的波动幅度最大。从图４的变化趋
势来说，处理４的切花的花色素苷含量稍高，该组切花
达盛开期早，后期衰老也较快，所以为了维持其生长的
需要，以及随着后期花瓣的衰老，切花花色素苷合成量
稍大，这与瓶插保鲜效果的观察一致，其余处理以处理１
的切花的花色素苷含量最低，说明，处理１的保鲜效果
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北方园艺２０１３（０９）：１５４～１５９ ·贮藏保鲜加工·
较其它处理好。然而，虽然所有处理的切花的花色素苷
含量在瓶插过程中都有所变化，但测定数据时发现其含
量都不高，这可能与试验所用的金鱼草切花的颜色有
关，试验使用金鱼草颜色为白色，花色素苷又是维持切
花颜色的重要物质，在试验过程中花色变化不是太明显
是导致其含量不高的原因之一。
２．６　不同瓶插液对金鱼草切花细胞膜透性的影响
由图５可知，随着切花的衰老，对照和所有处理的
切花的相对电导率基本呈逐渐上升的趋势。但对照、处
理３及处理４的相对电导率在上升的过程中呈现波动，
其中，对照的相对电导率的波动幅度较大，在快速上升
之后，有一个明显的下降，然后又逐渐上升到最高值，相
对电导率最高值达到９１．７％，其次，处理３和处理４的
切花的相对电导率的波动幅度较对照稍缓，相对电导率
最高值分别达到８８．２％和８９．３％，说明对照、处理３、４
的切花的细胞膜的结构和功能都受到损伤严重，以对照
尤为突出，这与瓶插寿命稍短的观察结果一致，处理１、２
的切花的相对电导率呈逐渐上升的趋势，中间未出现波
动，最后分别达到８３．６％和８７．２％，处理１相对于处理２
而言，相对电导率上升的幅度又较缓，其保鲜效果优于
处理２，说明保鲜剂在一定程度上能维持细胞膜透性，可
以防止电解质渗漏，具有延缓细胞膜破坏、延长瓶插寿
命的作用。
图５　不同瓶插液对金鱼草切花细胞膜透性
（相对电导率）的影响
Ｆｉｇ．５　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ　ｃｅｌ　ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
２．７　不同瓶插液对金鱼草切花可溶性糖含量的影响
有研究认为，切花在贮运与瓶插过程中，总糖含量
呈下降趋势［１１］。切花体内含糖量的高低与切花品质密
切相关，唐菖蒲采收时含糖量越高，瓶插时观赏品质就
越好［１２］。瓶插前用蔗糖预处，其小花开放率和观赏品质
与其净吸糖量呈正相关［１３］。该试验在瓶插前用含有蔗
糖的预处理液对切花进行预处理，也在一定程度上补充
了切花的外源糖分，在提高切花的观赏品质和延长其瓶
插寿命方面有不可忽视的作用。由图６可知，除处理２
的切花的可溶性糖含量呈先上升后下降的趋势外，对照
和其余处理的切花的可溶性糖含量的变化趋势都基本
一致，都呈现先下降再上升再下降的趋势，并且对照和
所有处理达到可溶性糖含量最高值的时间都为第１３
天。其中，处理２和处理４的切花的可溶性糖含量在上
升过程中达到的最高值为４．０８和４．０２ｇ／１００ｇＦＷ，对
照、处理１和处理３的切花的可溶性糖含量的上升和下
降的趋势缓于处理２和处理４，且较为平稳，这３个处理
又以处理１的切花的可溶性糖含量稍高，而处理４的切
花的可溶性糖含量虽然在上升后达到最高点时的值较
大，但后期下降的也较快，下降幅度较大，这与处理４的
切花前期开花早，盛开期早，但后期萎蔫、凋谢也较快的
观察结果一致。说明切花体内的可溶性糖含量的高低
与切花保鲜效果、瓶插寿命、观赏品质密切相关。
图６　不同瓶插液对金鱼草切花可溶性糖含量的影响
Ｆｉｇ．６　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ
ｓｏｌｕｂｌｅ　ｓｕｇａｒ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
２．８　不同瓶插液对金鱼草切花可溶性蛋白含量的影响
图７　不同瓶插液对金鱼草切花可溶性蛋白含量的影响
Ｆｉｇ．７　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ
ｓｏｌｕｂｌｅ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
有研究表明，切花采后呼吸增强。养分分解加速，
过氧化物酶、核糖核酸酶及蛋白酶活性增强，引起蛋白
质合成减弱，水解加强。因而，蛋白质含量的变化是衡
量切花衰老的重要指标［１４－１５］。从图７可以看出，处理１
和处理２切花的可溶性蛋白含量呈先上升后下降再上
升的趋势，对照、处理３及处理４的切花的可溶性蛋白含
量呈先下降再上升的趋势，说明处理１和处理２的保鲜
液在一定程度上可以减缓可溶性蛋白的分解速度，从而
可以延缓切花的衰老。到了瓶插后期的第１７天，对照
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和所有处理切花的可溶性蛋白含量又都出现了一个明
显的上升趋势，到第２１天时，切花的可溶性蛋白含量由
高到低依次为处理１＞处理２＞处理３＞处理４＞对照，
说明各保鲜液配方对切花可溶性蛋白含量的影响优劣
依次为处理１＞处理２＞处理３＞处理４＞对照。
２．９　不同瓶插液对金鱼草切花维生素Ｃ含量的影响
由图８可知，对照和所有处理的切花的维生素Ｃ含
量的变化趋势都基本一致，都呈先下降后上升再下降的
趋势，其中处理１、２、３的切花的维生素Ｃ含量的下降
幅度缓于处理４和对照，第１３天测定时，处理１、２、３
的切花的维生素Ｃ的含量分别下降了９６．０１、１１６．７６、
９２．３３ｍｇ／１００ｇ样品。切花体内维生素Ｃ含量越高，抗
氧化能力就越强，越不容易衰老，其瓶插寿命相对也就
越长，这与上述３个处理的瓶插寿命相对较长的观察结
果基本一致，第２１天时，对照和所有处理的切花的维生
素Ｃ含量又都有所下降，但仍以处理１的维生素Ｃ含量
最高，说明处理１的切花衰老最缓，综合上述数据可以
说明，在整个瓶插过程中，切花不仅能够自身合成维生
素Ｃ，而且它在切花的抗氧化方面、光合作用、细胞代谢、
细胞分裂等的代谢过程中起着重要的作用，特别是在一
定程度上延缓了切花的衰老。
图８　不同瓶插液对金鱼草切花维生素Ｃ含量的影响
Ｆｉｇ．８　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｖａｓｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｎ
ｖｉｔａｍｉｎ　Ｃ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ
３　讨论与结论
高琼等［１６］以金鱼草切花为供试材料，选用蔗糖、
８－ＨＱ、柠檬酸作为瓶插保鲜液的基本成分，进行了不同
浓度ＳＴＳ预处理液的组合配方对比，结果表明，ＳＴＳ作
为乙烯拮抗剂，以浓度为０．２ｍｍｏｌ／Ｌ的ＳＴＳ预处理液
效果最佳，它可显著延长金鱼草切花瓶插寿命，提高观
赏品质，保持切花水分平衡，抑制乙烯的合成。孙正海
等［１７］通过对金鱼草切花在天麻、桂皮和甘草等３种中
草药不同浓度浸提液中保鲜效果进行研究，结果表明，
它们对金鱼草切花的瓶插寿命均有影响，以浓度为
３７．５ｍＬ／５００ｍＬ的桂皮浸提液保鲜效果最好，可延长切
花瓶插寿命３～４ｄ，并且在提高花瓣ＰＯＤ活性、保护细
胞膜完整性和控制瓶插液ｐＨ值方面存在优势。
在花色素苷含量的测定过程中，处理１、２、３在第１３
天出现１个高峰，可以说明金鱼草切花在采摘时娇嫩，
在瓶插后还在继续生长发育，其趋势趋于旺盛，才会出
现这个高峰。
金鱼草切花的可溶性糖含量变化同样出现波动，也
呈先上升后下降趋势，有研究表明［１１］，可溶性糖含量与
切花光合作用密切相关，也可以说明切花采摘时可能较
嫩，因此在瓶插后才会出现一个生长发育发育的高峰，
此后才逐渐衰老。
有研究表明，切花采后呼吸增强，养分分解加速，过
氧化物酶、核糖核酸酶及蛋白酶活性增强，引起蛋白质
合成减弱，水解加强。因而，蛋白质含量的变化是衡量
切花衰老的重要指标［１４－１５］。安华明等［１９］的电泳分析表
明，瓶插时，随着月季花瓣衰老，有些蛋白质始终保持稳
定，有些蛋白质逐渐减少，但也有部分蛋白质增加，衰老
后期尤其明显，表明在花瓣衰老过程中，蛋白质的降解
和合成可能是同时存在的，且后２类蛋白质很可能与衰
老有关。该研究表明，ＣＫ和所有处理的切花在瓶插后
期可溶性蛋白含量都出现明显的上升，此结论可以用上
述研究结果来解释。
维生素Ｃ又称抗坏血酸（ＡＳＡ），有研究表明［１９］，切
花在栽培和瓶插的过程中都能合成维生素Ｃ，而维生素
Ｃ也是植物体自身代谢过程中必不可少的能源物质，而
它们在植物的抗氧化作用、光合作用以及生长代谢等方
面具有非常重要的生理功能。该研究结果表明，在整个
瓶插过程中，切花不仅能够自身合成维生素Ｃ，而且它在
切花的抗氧化方面、光合作用、细胞代谢、细胞分裂等的
代谢过程中起着重要的作用，特别是在一定程度上延缓
了切花的衰老。
在金鱼草切花的保鲜试验中，以２００ｍｇ／Ｌ　８－羟基
喹啉柠檬酸盐＋３％蔗糖＋１５０ｍｇ／Ｌ柠檬酸＋７５ｍｇ／Ｌ
磷酸二氢钠混合液的保鲜效果最好。与对照比较，该保
鲜液延长切花寿命９ｄ，约为６０％；达盛开期晚４ｄ；到瓶
插的第２１天，增加鲜重比对照多２６ｇ、水分平衡值高
１．９ｇ；除保鲜效果较差的对照和处理４外，该处理的花
色素苷含量相对稍低；在细胞膜透性变化方面，瓶插后
期的第２１天，导电率为８３．６％，比对照少８．１％；其可溶
性糖含量的最大值比对照高０．１ｇ／１００ｇ样品；可溶性蛋
白含量在第１３天达到最大值，且后期以该处理的下降
幅度较为缓慢；在瓶插后期的第２１天，维生素Ｃ含量比
对照高４４．２８３９ｍｇ／１００ｇ样品。
金鱼草切花作为目前新颖的切花材料，大多采用温
室栽培，近年来备受人们的青睐，通过该试验研究筛选
出２００ｍｇ／Ｌ　８－羟基喹啉柠檬酸盐＋３％蔗糖＋１５０ｍｇ／Ｌ
柠檬酸＋７５ｍｇ／Ｌ磷酸二氢钠混合液的保鲜剂最适合
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北方园艺２０１３（０９）：１５４～１５９ ·贮藏保鲜加工·
金鱼草的瓶插保鲜。切花的品质是制约切花市场发展
的瓶颈，而切花采后保鲜又是影响切花市场推广的关键
问题，这些都与切花产业的发展前景密切相关，因此，要
想获得高品质的切花，在注重切花采后保鲜的基础上还
必须提高切花的栽培管理水平。
该文从金鱼草切花在不同保鲜液的处理下的外观
品质（瓶插寿命、花径、鲜重、吸水量、蒸腾量）和内含物质
（花色素苷含量、细胞膜透性、可溶性糖含量、可溶性蛋
白含量、维生素Ｃ含量）的动态变化进行深入研究，总结
了适宜该切花采后保鲜的保鲜液，从而改善金鱼草的切
花品质，延长市场供应时间，为切花生产提供了一定的
技术保障。由于试验条件的限制，只分析了瓶插寿命、
花径、鲜重、吸水量、蒸腾量、花色素苷含量、细胞膜透性、
可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、维生素Ｃ含量的动态
变化，对切花的ＳＯＤ活性、ＭＤＡ含量、呼吸速率、乙烯释
放、内源植物生长调节物质（ＧＡ３、ＣＫ、ＢＡ、ＩＡＡ、ＡＢＡ、
ＣＴＫ）以及温度、湿度、光照等环境因子对切花采后保鲜
的影响等方面未做深入研究，因而还需要在以后的试验
中继续开展此方面的研究。
参考文献
［１］　杨先芬．花卉施肥技术手册［Ｍ］．北京：中国农业出版社，２００１．
［２］　赵梦．提高鲜切花品质的关键—鲜切花保鲜处理［Ｊ］．温室园艺，２００１
（３）：５１－５３．
［３］　刁留彦，刘军．几种预处理液对马蹄莲切花的保鲜效应［Ｊ］．四川农
业大学学报，２００７，２５（１）：１１３－１１６．
［４］　谷战英，王润．香石竹鲜切花家庭常用保鲜液配方的筛选［Ｊ］．中南
林业科技大学学报，２００９，２９（６）：１４５－１４８．
［５］　Ｗｅｉｓｓ　Ｄ，Ｈａｌｅｖｙ　Ａ　Ｈ．Ｓｔａｍｅｎｓ　ａｎｄ　ｇｉｂｂｅｒｅｌｉｎ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ
ｃｏｒｏｌａ　ｐｉｇｍｅｎｔａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｇｒｏｗｔｈ　ｉｎ　Ｐｅｔｕｎｉａｈｙｂｒｉｄ［Ｊ］．Ｐｌａｎｔａ，１９８９，１７９（１）：
８９－９６．
［６］　ＲｙｙｐｐＡ，Ｒｅｐｏ　Ｔ，Ｖａｐａａｖｕｏｒｉ　Ｅ．Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ　ｏｆ　ｆｒｅｅｚｉｎｇ　ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ｉｎ
ｒｏｏｔｓ　ａｎｄ　ｓｈｏｏｔｓ　ｏｆ　ｓｃｏｔｓ　ｐｉｎｅ　ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ　ａｔ　ｎｏｎｆｒｅｅｚｉｎｇ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ［Ｊ］．
Ｃａｎａｄｉａｎ　Ｊ　Ｆｏｒｅｓｔ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９８，２８：５５７－５６５
［７］　高俊凤．植物生理学实验指导［Ｍ］．北京：中国农业出版社，２００６．
［８］　薛秋华，林如．月季切花衰老与含水量、膜脂过氧化及保护酶活性的
关系［Ｊ］．福建农业大学学报，１９９９，２８（３）：３０４－３０８．
［９］　冯晓迎．百子莲切花保鲜及低温贮藏的研究［Ｄ］．哈尔滨：东北林业
大学，２００８．
［１０］陈丹生，王精明，丁有雄．鲜切花的衰老与保鲜（综述）［Ｊ］．亚热带植
物科学，２００４，３３（１）：７３－７６．
［１１］姜微波，孙自然，于梁，等．低温贮藏结合蔗糖处理对唐菖蒲切花的
影响［Ｊ］．园艺学报，１９８９，１６（１）：６３－６７．
［１２］姜微波，孙自然，于梁，等．采收时花序的发育程度对唐菖蒲切花的
影响［Ｊ］．植物生理学通讯，１９８８（５）：１８－２１．
［１３］姜微波，孙自然，于梁，等．蔗糖溶液对唐菖蒲切花保鲜的影响［Ｊ］．北
京农业大学学报，１９８８，１４（４）：４３５－４４０．
［１４］李宪章．花的衰老与切花保鲜［Ｊ］．植物学通报，１９９４，２１（４）：２６－３２．
［１５］高勇．月季切花瓶插期生理变化与衰老关系的研究［Ｊ］．园艺学报，
１９９０，１７（１）：７１－７５．
［１６］高琼，吕炯璋．ＳＴＳ预处理对切花金鱼草瓶插生理的影响［Ｊ］．山西农
业大学学报，２０１１（１）：５９－６２．
［１７］孙正海，黄海泉，辛培尧，等．中药材浸提液对金鱼草瓶插寿命的影
响［Ｃ］．中国园艺学会２０１０年学术年会论文摘要集，２０１０．
［１８］胡绪兰编译．切花保鲜新技术［Ｍ］．北京：中国农业出版社，１９９６：
７８－８０．　
［１９］安华明，陈力耕，樊卫国，等．高等植物中维生素Ｃ的功能、合成及代
谢研究进展［Ｊ］．植物学通报，２００４，２１（５）：６０８－６１７．
Ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　Ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ　Ｃｕｔ　Ｆｌｏｗｅｒ
ＺＨＡＮＧ　Ｙｕ－ｙｕ１，２，ＬＩ　Ｊｉｎｇ１，２，ＷＵ　Ｘｕ１，２，ＹＡＯ　Ｌｉ－ｙｕａｎ１，２，ＨＵＡ　Ｊｉｎ－ｚｈｕ１，２
（１．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，Ｋｕｎｍｉｎｇ　Ｃｏｌｅｇｅ，Ｋｕｎｍｉｎｇ，Ｙｕｎｎａｎ　６５０２１４；２．Ｕｒｂａｎ　Ｍｏｄｅｒｎ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｃｅｎｔｅｒ　ｉｎ
Ｙｕｎｎａｎ　Ｐｒｏｖｉｎｃｅ，Ｋｕｎｍｉｎｇ，Ｙｕｎｎａｎ　６５０２１４）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔａｋｉｎｇ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ　ｃｕｔ　ｆｌｏｗｅｒ　ａｓ　ｍａｔｅｒｉａｌ，ｕｓｉｎｇ　８－ｈｙｄｒｏｘｙｑｕｉｎｏｌｉｎｅ　ｃｉｔｒａｔｅ，ｃｉｔｒｉｃ　ａｃｉｄ，ｓａｌｔ，ｓｕｃｒｏｓｅ，
ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｏｄｉｕｍ　ｄｉｈｙｄｒｏｇｅｎ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅ，ｓｉｌｖｅｒ　ｎｉｔｒａｔｅ　ａｓ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｖｅｓ，ｔｈｅ　ｅｆｅｃｔ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｖｅｓ　ｏｎ　ｔｈｅ
ｅｘｔｅｒｉｏｒ　ｑｕａｌｉｔｉｅｓ（ｖａｓｅ－ｌｉｆｅ，ｆｌｏｗｅｒ　ｄｉａｍｅｔｅｒ，ｆｒｅｓｈ　ｂａｓｉｓ，ｗａｔｅｒ　ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ，ｔｒａｎｓｐｉｒａｔｉｏｎ）ａｎｄ　ｉｎｔｅｒｉｏｒ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓ
（ｇｅｎｉｐｏｓｉｄｅ　ｉｎ　ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｄｉｎ，ｃｅｌ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ，ｓｏｌｕｂｌｅ　ｓｕｇａｒ　ｃｏｎｔｅｎｔ，ｓｏｌｕｂｌｅ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｃｏｎｔｅｎｔ，ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ
ｖｉｔａｍｉｎ　Ｃ）ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ　ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ，ｉｎ　ｏｒｄｅｒ　ｔｏ　ｐｒｏｖｉｄｅ　ａ　ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ　ｆｏｒ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｃｕｔ　ｆｌｏｗｅｒ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ
ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ　ｏｆ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ　ｃｕｔ　ｆｌｏｗｅｒ，ｔｈｅ　ｍｉｘｔｕｒｅ　ｏｆ　８－ｈｙｄｒｏｘｙｑｕｉｎｏｌｉｎｅ　ｃｉｔｒａｔｅ
（２００ｍｇ／Ｌ）＋ｓｕｃｒｏｓｅ（３％）＋ｃｉｔｒｉｃ　ａｃｉｄ（１５０ｍｇ／Ｌ）＋ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｏｄｉｕｍ　ｄｉｈｙｄｒｏｇｅｎ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（７５ｍｇ／Ｌ）ｃｏｕｌｄ
ｐｒｏｄｕｃｅ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ｅｆｅｃｔ；ｃｏｍｐａｒｅｄ　ｗｉｔｈ　ＣＫ，ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ｃｏｕｌｄ　ｐｒｏｌｏｎｇ　ｔｈｅ　ｌｉｆｅ　ｏｆ　ｃｕｔ－ｆｌｏｗｅｒ　９ｄａｙｓ　ｍｏｒｅ
（ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ　６０％）；４ｄａｙｓ　ｄｅｌａｙｅｄ　ｔｏ　ｂｌｏｏｍ　ｓｔａｇｅ；ａｔ　ｔｈｅ　２１ｔｈ　ｄａｙ　ｏｆ　ｖａｓｅ，ｆｒｅｓｈ　ｂａｓｉｓ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　２６ｇ　ｍｏｒｅ；ｅｑｕｉｌｉｂｒｉｕｍ
ｖａｌｕｅ　ｏｆ　ｍｏｉｓｔｕｒｅ　ｗａｓ　１．９ｇ　ｈｉｇｈｅｒ．Ｉｎ　ｔｈｅ　ａｓｐｅｃｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｃｈａｎｇｅ　ｏｆ　ｃｅｌ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ，ａｔ　ｔｈｅ　２１ｔｈ　ｄａｙ　ｏｆ　ｖａｓｅ，
ｃｏｎｄｕｃｔｉｖｉｔｙ　ｗａｓ　８３．６％ｗｈｉｃｈ　ｗａｓ　８．１％ｌｅｓｓ，ｍａｘｉｍｕｍ　ｖａｌｕｅ　ｏｆ　ｓｏｌｕｂｌｅ　ｓｕｇａｒ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｗａｓ　０．１ｇ／１００ｇ（ｓａｍｐｌｅ）ｈｉｇｈｅｒ
ａｎｄ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｖｉｔａｍｉｎ　Ｃ　ｗａｓ　４４．２８３９ｍｇ／１００ｇ（ｓａｍｐｌｅ）ｈｉｇｈｅｒ　ｗｈｅｎ　ｃｏｍｐａｒｅｄ　ｗｉｔｈ　ＣＫ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ；ｅｘｔｅｒｉｏｒ　ｑｕａｌｉｔｙ；ｉｎｔｅｒｎａｌ　ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ；ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ；ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ
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