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酒制瑞香狼毒对荷瘤小鼠抑瘤作用及机制的实验研究



全 文 :酒制瑞香狼毒对荷瘤小鼠抑瘤作用及机制的实验研究
马晓莉, 刘晋芝, 曹松云, 王 淼, 张新颖
(河北大学中医学院,河北 保定 071000)
收稿日期:2012-09-13
基金项目:河北省中医局项目 (2009154)
作者简介:马晓莉 (1967—) ,女,教授,博士,主要从事中药教学和科研。Tel: (0312)5075623,E-mail:ma_ xiaoli@ 163. com
摘要:目的 研究狼毒经白酒炮制后对 H22荷瘤小鼠的抑瘤作用是否增强,毒副作用是否减弱以及初步探讨其抑瘤机
制。方法 将生药狼毒用白酒炮制后分为低、中、高剂量组,分别和对荷瘤小鼠抑瘤率最高的生药狼毒组比较,检
测各组的抑瘤率、体质量、脾指数和胸腺指数;取各组肿瘤做免疫组化实验,检测 Bax 和 Bcl-2 的表达。结果 低、
中剂量组酒制瑞香狼毒肿瘤质量明显低于狼毒生药和对照组,低、中剂量酒制瑞香狼毒抑瘤率分别为 98. 40%、
87. 16%,生药狼毒组抑瘤率为 69. 45%;各组酒制瑞香狼毒体质量,脾指数、胸腺指数较正常对照组并无显著性差异
(P > 0. 05) ;与生药狼毒对照组相比较,各组酒制瑞香狼毒 Bax 灰度值升高,Bcl-2 灰度值下降,均有统计学意义
(P < 0. 05)。结论 与生药狼毒比较,酒制瑞香狼毒对荷瘤小鼠的抑瘤率提高,同时对荷瘤小鼠的体质量增长、胸腺
质量和脾脏质量无明显的降低作用;酒制瑞香狼毒的抑瘤作用机制可能使 Bax 的表达明显上调,Bcl-2 的表达逐渐
下调。
关键词:瑞香狼毒;酒制;荷瘤小鼠;抑瘤作用;作用机制
中图分类号:R285. 5 文献标志码:A 文章编号:1001-1528(2013)06-1143-05
doi:10. 3969 / j. issn. 1001-1528. 2013. 06. 008
Anti tumor effect of processing Stellera chamaejasme with liquor on tumor-bear-
ing mice
MA Xiao-li, LIU Jin-zhi, CAO Song-yun, WANG Miao, ZHANG Xin-ying
(College of Traditional Chinese Medicine,Hebei University,Baoding 071000,China)
KEY WORDS:Stellera chamaejasme;processing with liquor;tumor-bearing mice;anti tumor effect;mechanism
of action
瑞香狼毒为瑞香科狼毒属植物 Stellera chamae-
jasme L. 的干燥根,其味苦、辛,性平,有毒,入
肝、肺、脾三经,有逐水、祛痰、破积、杀虫之功
效[1]。瑞香狼毒用于治疗肿瘤在我国已有悠久的
历史。诸多文献报道生药狼毒既有明显的体外抗肿
瘤作用[2],又具有非常强的体内抗肿瘤作用[3],
其含药血清也有明显的抗肿瘤作用[4]。但瑞香狼
毒全草有毒,特别是对胸腺、脾脏等重要器官毒副
作用较大。蒙医在防病、治病的实践中,摸索出狼
毒的多种炮制方法,以达到减毒增效的目的,其中
酒制狼毒有抗肿瘤作用,但炮制机理研究较少。本
文通过 H22荷瘤小鼠体内抑瘤实验,考察了酒制对
瑞香狼毒抑瘤作用的影响,探讨其抑瘤机制,为瑞
香狼毒的进一步开发、应用提供实验依据。
1 材料与方法
1. 1 药品与试剂 狼毒购自安国市昌达中药材饮
片有限公司,留 300 g作为生药狼毒组的用药;酒
制狼毒的制备:另外取 300 g 狼毒饮片,制备酒制
狼毒,加 60°白酒 (红星二锅头,北京红星公司产
品)没过狼毒,浸泡 6 h后,用文火煮至白酒完全
被狼毒吸收,60 ℃烘干。
1. 2 实验动物与瘤株 实验动物为雄性昆明种小
鼠,体质量 (20 ± 2) g,购自河北医科大学实验
动物中心,实验动物合格证号 1112090。瘤株为
H22小鼠腹水型肝癌细胞株,由河北大学基础医学
院微生物免疫实验室惠赠。
1. 3 动物处理与分组 先从 80 只小鼠中随机取
10 只不接种肿瘤,作为空白对照组;余下的 70 只
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接种肿瘤。取接种 6 d 肿瘤生长良好的小鼠腹水,
用生理盐水稀释成 1 × 106 /mL,以每只 0. 2 mL 的
量接种于小鼠右侧腋窝皮下,接种后 24 h 随机分
为 7 组,第一组为肿瘤对照组,其余 6 组为治疗
组,即生药狼毒低、中、高剂量组 (低、中、高
剂量分别为 5、10、20 g /kg 体质量的生药狼毒药
液) ,酒制狼毒低、中、高剂量组 (低、中、高剂
量分别为 5、10、20 g /kg 体质量的酒制狼毒药
液) ,空白对照组和肿瘤对照组给 20 g /kg 体质量
的生理盐水。接种 24 h 后开始灌胃 1 mL,每天 1
次连续 8 d。于停药后次日处死小鼠,称体质量解
剖皮下瘤块,取脾脏和胸腺,分别再称定质量,计
算肿瘤抑制率和脾、胸腺指数。
1. 4 指标测定
1. 4. 1 体质量增长 将肿瘤对照组、狼毒生药对
照组和酒制狼毒低、中、高剂量各组小鼠在接种肿
瘤后 24 h称取实验动物体质量,并以苦味酸作标
记,末次给药后 24 h 再次称取体质量并减去瘤质
量,两次体质量差即为体质量增长指标。
1. 4. 2 抑瘤率 按 1978 年全国抗癌药物研究协会
制定的 《抗肿瘤药物体内筛选规程》判定肿瘤抑
制率[5]。将狼毒生药组和酒制狼毒低、中、高剂
量各组小鼠末次给药后 24 h 处死动物,剥离瘤体
电子天平称定质量,计算抑瘤率。
抑瘤率 = 对照组瘤质量 - 用药组瘤质量
对照组瘤质量
× 100%
1. 4. 3 脾指数的测定 将所有各组小鼠采用称重
法将小鼠称定质量后脱颈处死,剥离脾脏,电子天
平称定质量,计算脾指数 (mg /g)。
脾指数(mg /g)= 脾质量(mg)
体质量(g)
× 100%
1. 4. 4 胸腺指数的测定 将所有各组小鼠采用称
重法将小鼠称定质量后脱颈处死,剥离胸腺,电子
天平称定质量,计算脾指数 (mg /g)。
胸腺指数(mg /g)= 胸腺质量(mg)
体质量(g)
× 100%
1. 4. 5 Bax、Bcl-2 免疫组织化学染色 将生药狼
毒组和酒制低、中、高剂量组小鼠脱颈椎处死后很
快取出肿瘤,置于 4%多聚甲醛溶液中固定,常规
脱水、透明、包埋成石蜡切片,每张均切 4 μm 薄
的切片,准备做免疫组化。免疫组化步骤:石蜡切
片,60 ℃烤箱烤片 20 min 后,二甲苯脱蜡、不同
浓度酒精脱水,3% H2O2去离子水孵育 30 min,以
封闭内源性过氧化物酶;0. 1 mol /L 枸橼酸缓冲液
(pH 6. 0)微波修复;自然冷却至室温;分别用兔
抗鼠 Bax和 Bcl-2 抗体 (Santa cruz,1 ∶ 100)孵育
切片 (4 ℃,过夜) ;滴加试剂 1,37 ℃恒温水浴
锅湿盒内孵育 20 min;滴加试剂 2,37 ℃恒温水浴
锅湿盒内孵育 20 min;DAB 避光显色 1 至 2 min。
每步骤间用 0. 01 mol /L PBS 充分洗涤,再经过石
蜡切片的常规梯度酒精脱水、二甲苯透明、中性树
胶封片,显微镜下观察、拍摄照片。对照试验:省
去一抗或用 PBS代替一抗孵育切片,结果为阴性。
1. 5 统计分析
1. 5. 1 使用医学图像分析仪 (TN-8502) ,镜下观
察狼毒生药组和酒制狼毒低、中、高剂量各组染色
结果,并测定细胞灰度值,用该仪器自带分析软件
分析相应抗体的表达量。以上四组每组取五张切片,
每张切片选五个视野,计算其平均值即为该张切片
的灰度值,五张切片的平均值为该组的灰度值。
1. 5. 2 各组数据采用 x ± s 表示,应用 spss 11. 5
统计软件组间采用 t 检验,P < 0. 05 为有显著性
差异。
2 实验结果
2. 1 酒制狼毒各组对抑瘤率的影响 生药狼毒对
荷瘤小鼠的肿瘤生长有明显的抑制作用,20 g /kg
体质量生药狼毒灌胃抑瘤作用最好,抑瘤率为
69. 45%,5、10 g /kg 生药狼毒抑瘤率为 46. 78%、
52. 34%。经过用白酒炮制后狼毒对肿瘤的抑制作
用明显增强,酒制狼毒低、中剂量组的抑瘤率分别
高达 98. 40%、87. 16%,高剂量酒制狼毒对肿瘤
的抑制和生药狼毒比有所下降,抑瘤率为
50. 21%。见表 1。
表 1 生药狼毒和各组酒制狼毒对 H22荷瘤小鼠抑瘤率的影
响 (x ± s,n =10)
Tab. 1 Effect of tumor inhibition of liquor-saturated Stelle-
ra chamaejasme and crude Stellera chamaejasme on
H22 tumor-bearing mice (x ± s,n =10)
组 别 瘤质量 / g 抑瘤率 /%
肿瘤对照组 0. 655 6 ± 0. 416 9 -
生药狼毒低剂量组 0. 545 0 ± 0. 396 6▲ 46. 78
生药狼毒中剂量组 0. 418 9 ± 0. 527 8▲ 52. 34
生药狼毒高剂量组 0. 200 3 ± 0. 176 4▲ 69. 45
酒制狼毒低剂量组 0. 010 5 ± 0. 011 2▲■ 98. 40
酒制狼毒中剂量组 0. 084 2 ± 0. 101 4▲■ 87. 16
酒制狼毒高剂量组 0. 326 4 ± 0. 366 2▲ 50. 21
注:与肿瘤对照组比较,▲ P < 0. 05;与生药狼毒高剂量组比
较,■P < 0. 05。
2. 2 酒制狼毒各组对体质量增长、脾脏和胸腺的
影响 与空白对照组比较,生药狼毒组和酒制狼毒
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低、中、高剂量组的体质量增长均 P > 0. 05,无明
显变化;与空白对照组比较,酒制狼毒低、中、高
剂量各组对脾脏、胸腺的毒副作用小,脾指数、胸
腺指数均 P > 0. 05;生药狼毒组对脾脏、胸腺影响
较大,与空白对照组比较脾指数、胸腺指数均 P <
0. 05;与生药狼毒组比较,酒制狼毒低、中、高剂
量各组的脾指数和胸腺指数均 P < 0. 05。见表 2。
2. 3 生药狼毒和各组酒制狼毒对 Bax 及 Bcl-2 表
达的影响 与生药狼毒组比较,酒制狼毒各组明显
使 Bax表达上调,Bcl-2 的表达下调,P < 0. 05 有
统计学意义。见表 3。
表 2 生药狼毒和各组酒制狼毒对 H22荷瘤小鼠体质量增长、脾指数、胸腺指数的影响 (x ± s,n =10)
Tab. 2 Effect of body weight,thymus index,spleen index in liquor-saturated Stellera chamaejasme and groups of crude
Stellera chamaejasme on H22 tumor-bearing mice (x ± s,n =10)
组 别 体质量增长值 / g 脾指数 胸腺指数
空白对照组 3. 970 0 ± 1. 314 9 0. 452 6 ± 0. 116 9 0. 257 4 ± 0. 072 5
肿瘤对照组 3. 554 4 ± 2. 158 1 0. 403 0 ± 0. 107 4 0. 228 3 ± 0. 059 1
生药狼毒组 4. 259 6 ± 2. 120 3 0. 213 4 ± 0. 150 9■ 0. 109 3 ± 0. 084 7■
酒制狼毒低剂量组 4. 269 4 ± 2. 058 4 0. 482 0 ± 0. 103 6▲ 0. 279 6 ± 0. 435 0▲
酒制狼毒中剂量组 4. 705 8 ± 1. 178 4 0. 475 6 ± 0. 151 0▲ 0. 264 5 ± 0. 055 8▲
酒制狼毒高剂量组 2. 929 1 ± 0. 993 3 0. 413 6 ± 0. 117 4▲ 0. 253 8 ± 0. 070 5▲
注:与空白对照组比较,■P < 0. 05,与生药狼毒组比较,▲P < 0. 05。
表 3 Bax、Bcl-2 在各组酒制法狼毒和生药狼毒组中表达
的比较 (x ± s)
Tab. 3 Comparison of Bax and Bcl-2 on liquor-saturated
Stellera chamaejasme and groups of crude Stellera
chamaejasme (x ± s)
组 别 测量视野数 Bax Bcl-2
生药狼毒组 25 10. 31 ± 2. 26▲ 31. 24 ± 2. 58▲
肿瘤对照组 25 6. 23 ± 2. 18 42. 38 ± 1. 86
酒制狼毒低剂量组 25 28. 69 ± 2. 63■▲ 12. 13 ± 2. 32■▲
酒制狼毒中剂量组 25 26. 75 ± 1. 78■▲ 17. 36 ± 1. 92■▲
酒制狼毒高剂量组 25 22. 31 ± 3. 27■▲ 20. 45 ± 2. 76■▲
注:与生药狼毒组比较,■P < 0. 05;与肿瘤对照组比较,▲P
< 0. 05。
取生药狼毒组和酒制狼毒低、中、高剂量组的
肿瘤,做免疫组化常规 DAB 显色,Bax 表达阳性
的为细胞质有棕黄色颗粒,与肿瘤对照组比较,生
药狼毒和酒制狼毒棕黄色颗粒都有增加;与生药狼
毒组比较,酒制毒低、中剂量棕黄色颗粒增加较
多,高剂量增加较少 (见图 1)。
取生药狼毒组和酒制狼毒低、中、高剂量组的
肿瘤,做免疫组化常规 DAB 显色,Bcl-2 表达阳性
的为细胞质有棕黄色颗粒,与肿瘤对照组比较,生
药狼毒组和酒制狼毒棕黄色颗粒减少;与生药狼毒
组比较,酒制狼毒低、中剂量棕黄色颗粒明显减
少,高剂量亦减少,与低、中剂量比稍高 (见
图 2)。
3 讨论
因昆明种小鼠和裸鼠的荷瘤率均为 100%,本
实验目的是研究酒制狼毒抗肿瘤的作用及对胸腺、
图 1 生药狼毒和各组酒制狼毒及肿瘤对照组 Bax的表
达 (DAB ×400)
Fig. 1 Comparison of the expression of Bax among
crude Stellera chamaejasme,groups of liquor-
saturated Stellera chamaejasme and tumor con-
trast (DAB ×400)
脾脏等重要脏器的影响,所以荷瘤小鼠选的是昆明
种小鼠而非裸鼠。
中药狼毒在中国被广泛应用于治疗肿瘤,其中
有多种成分被发现有抗肿瘤的功能[6]。本实验通
过动物实验证实生药狼毒的抗肿瘤作用明显。在表
1 中可以看到生药狼毒的最大抑瘤率达到 69. 45%。
炮制后,低、中剂量酒制狼毒抑瘤率大幅提高,尤
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图 2 生药狼毒和各组酒制狼毒及肿瘤对照组 Bcl-2 的
表达 (DAB ×400)
Fig. 2 Comparsion of the expression of Bcl-2 among
groups of crude Stellera chamaejasme,liquor-
saturated Stellera chamaejasme and tumor con-
trast (DAB ×400)
其低剂量酒制狼毒的抑瘤率高达 98. 40%,中剂量
酒制狼毒也达到 87. 16%,比同剂量生药狼毒的抑
瘤率增加,这说明用白酒炮制后能显著提高生药狼
毒的疗效。狼毒又名断肠草[7],对身体的危害较
大,用白酒炮制后低剂量就能达到很好的抑瘤作
用,这样就可以减少狼毒的用量,从而能减轻狼毒
对身体的伤害。至于高剂量酒制狼毒比生药狼毒的
抑瘤率降低,需进一步做实验探讨其机理。
经白酒炮制后既提高了狼毒的疗效亦能降低其
对脾脏和胸腺的损害,从表 2 中可以看到,与正常
对照组比较,酒制低、中、高剂量组的脾指数和胸
腺指数 P > 0. 05,说明没有差异,经白酒炮制后狼
毒的毒性明显降低,对脾、胸腺没有明显损害。与
正常对照组比较,生药狼毒的脾指数和胸腺指数均
P < 0. 05,说明有显著性差异,生药狼毒对脾和胸
腺的损伤较大。从表 2 数据可以得出,与生药狼毒
组比较,酒制低、中、高剂量各组的脾指数和胸腺
指数均 P < 0. 05,说明经白酒炮制后确实减轻了狼
毒的毒性,明显降低了对这些免疫脏器的损伤。经
白酒炮制后用较低剂量的狼毒就能达到很理想的抑
瘤作用,对脾、胸腺等重要器官又没有明显的毒副
作用,为狼毒用于临床抗肿瘤提供新的思路。
酒制狼毒与生药狼毒比较能显著提高抑瘤率,
其作用机制可能是使 Bax 的表达明显上调,Bcl-2
的表达逐渐下调。抗凋亡基因编码的 Bcl-2 蛋白主
要分布在线粒体外膜、细胞膜内表面、内质网膜及
核膜等处[8]。它广泛存在于造血细胞、上皮细胞、
淋巴细胞、神经细胞及多种肿瘤细胞,体内和体外
实验都表明 Bcl-2 基因可抑制各种刺激下多种细胞
的凋亡[9]。Bcl-2 抗凋亡的机制目前认为主要有:
① 拮抗促凋亡基因 bax;② 抑制促凋亡的蛋白质
细胞色素 c 自线粒体释放到胞质;③ 阻止胞质中
的细胞色素 c 激活 caspase;④ 有抗氧化及维持细
胞内钙稳态等作用[10]。Bax 基因属于 Bcl-2 基因家
族,编码的 Bax 蛋白可与 Bcl-2 形成异二聚体,对
Bcl-2 产生阻抑作用。研究发现 Bax /Bcl-2 两蛋白
之间的比例关系是决定对细胞凋亡抑制作用强弱的
关键因素,因此认为,Bax是极重要的促细胞凋亡
基因之一[11]。Bcl-2 基因启动子具有 NF-κB的结合
位点并受其调控,故 NF-κB 可活化通过诱导 Bcl-2
及其他抗凋亡基因而阻止细胞凋亡。也可通过刺激
IL-1β转化蛋白酶、c-myc 和 TNF-α 基因表达而导
致细胞凋亡[12]。
本研究结果显示,与肿瘤对照组比较,生药狼
毒组和各组酒制狼毒小鼠肿瘤细胞 Bax蛋白表达量
高,Bcl-2 蛋白表达降低,从而促进了肿瘤细胞凋
亡,这与前面生药狼毒和各组酒制狼毒均有明显的
抑瘤作用一致;与生药狼毒组比较,酒制狼毒低、
中、高剂量各组小鼠肿瘤细胞 Bax 蛋白表达量高,
Bcl-2 蛋白有表达降低。表明酒制狼毒比生药狼毒
抑瘤作用提高可能是通过调控 Bax 和 Bcl-2 的表
达,促进了肿瘤细胞的凋亡。
本实验结果显示,生药狼毒经白酒炮制后既大
大提高了抑瘤作用,又显著降低了对胸腺、脾脏的
毒副作用,临床可考虑用酒制狼毒代替生药狼毒入
药,但其药效物质基础需进一步研究。
参考文献:
[1] 郑宝江,胡海清. 黑龙江省松嫩草地瑞香狼毒总黄酮含量
的变化[J]. 东北林业大学学报,2006,34(4) :59-60.
[2] 胡蓉蓉,王义善. 瑞香狼毒抗肿瘤作用研究进展[J]. 人
民军医,2010,53(2) :151-152.
[3] 罗慧英,王爱勤. 不同极性溶媒瑞香狼毒提取物的抗肿瘤
活性比较[J]. 中国临床药理学与治疗学,2005,10(10) :
1140-1142.
[4] 杨 柯,王义善,王莉平,等. 狼毒药理作用研究及临床
应用情况概述[J]. 临床医学,2010,23(7) :2496-2498.
6411
2013 年 6 月
第 35 卷 第 6 期
中 成 药
Chinese Traditional Patent Medicine
June 2013
Vol. 35 No. 6
[5] 曹新伟,冯卫生. 狼毒的化学成分研究进展[J]. 河南中医
学院学报,2004,19(6) :81-84.
[6] 杨 柯,张京玲,黄 谦,等. 狼毒水提液对人 A549 肺
癌细胞凋亡的影响[J]. 实用中西医结合临床,2011,11
(5) :88.
[7] 郭晓庄. 有毒中草药大辞典[M]. 天津:天津科技翻译出
版公司,1992. 446.
[8] 孙晓芳,段 斐,寇素茹,等. 低频电磁场对大鼠生精细
胞凋亡基因表达影响[J]. 中国公共卫生,2009,25(8) :
989-990.
[9] 曹志然,戎瑞雪,王 蓓,等. 马鞭草水提取物对荷瘤小
鼠抑瘤作用的实验研究[J]. 医学研究与教育,2009,26
(5) :1-3.
[10] 王 敏,贾正平,马 骏,等 . 瑞香狼毒总黄酮提取物的
抗肿瘤作用[J]. 中国中药杂志,2005,30(8) :603-606.
[11] 宋·唐慎微. 证类本草. 四库医学丛书[M]. 上海:上海
古籍出版社,1991:524-740.
[12] 江苏新医学院. 中药大辞典·下册[M]. 上海:上海人民
出版社,1977:1898.
护骨胶囊配伍和成骨细胞分化的正交设计
王晓东1, 贾欢欢2, 曾昭利3, 曾 雯3, 秦中华3, 万 超4, 陆幸妍5* , 李青南5* ,
胡 彬6
(1. 广东药学院附属第一医院骨外科,广东 广州 510080;2. 广东省实验动物监测所,广东 广州 510663;
3. 东莞万成制药有限公司,广东 东莞 523040;4. 香港中文大学医学院生物医学学院干细胞与再生医学中
心,香港;5. 广东药学院生命科学与生物制药学院新药功能研究中心,广东 广州 510006;6. 纽约大学牙
科生物材料和仿生学研究室,美国 纽约 10010)
收稿日期:2012-11-13
基金项目:广东省教育部产学研结合项目 (2009B090300024)
作者简介:王晓东 (1970—) ,男,副主任医师,研究方向:从事骨科临床及骨质疏松临床、基础研究。Tel: (020)61327037,E-mail:
wangxd0310@ 163. com
* 通信作者:李青南 (1956—) ,女,博士,教授,硕士生导师,研究方向:从事骨药理学研究。Tel: (020)39352589,E-mail:qing-
nanli@ sina. com
陆幸妍 (1963—) ,女,副教授,研究方向:从事骨药理学研究。E-mail:916934897@ qq. com
摘要:目的 以碱性磷酸酶 (AKP)为指标,采用正交模拟法分析护骨胶囊十味药不同模拟组合的药效。方法 将护
骨胶囊十味药按照正交表,分为 12 个组。血清药理学实验获取 12 个组的含药血清,AKP法检测各组血清对成骨细胞
分化的影响。通过正交模拟法与非线性混合效应模型,分析各组分在复方背景下的重要程度和相互作用。结果 护骨
胶囊各组分在复方中的药效贡献值顺序为淫羊藿 >山药 >巴戟天 =熟地黄 >杜仲 >骨碎补 >制首乌 >龟甲 >当归 >续
断。最佳药效组合为淫羊藿、巴戟天、骨碎补、杜仲、制首乌、熟地黄、山药。结论 采用正交模拟法分析的结果提
示护骨胶囊十味药中淫羊藿对成骨细胞分化起主要的作用,续断、当归及龟甲对成骨细胞分化有抑制作用。
关键词:正交模拟法;碱性磷酸酶 (AKP) ;护骨胶囊;药效模拟;原发性骨质疏松症
中图分类号:R285. 5 文献标志码:A 文章编号:1001-1528(2013)06-1147-06
doi:10. 3969 / j. issn. 1001-1528. 2013. 06. 009
Orthogonal design for compatibility of Hugu Capsules related to osteoblast dif-
ferentiation
WANG Xiao-dong1, JIA Huan-huan2, ZENG Zhao-li3, ZENG Wen3, QIN Zhong-hua3,
WAN Chao4, LU Xing-yan5* , LI Qing-nan5* , HU Bin6
(1. Orthopeadic Surgery,The First Hospital Affiliated to Guangdong Pharmaceutical University,Guangzhou 510080,China;2. Guangdong Laboratory An-
imals Monitoring Institute,Guangzhou 510663,China;3. Dongguan Wancheng Pharmacopedia Company Limited,Dongguan 523040,China;
4. Program of Stem Cell and Regenerative Medicine,School of Biomedical Sciences,Faculty of Medicine,The Chinese University of Hong Kong,Shatin,
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2013 年 6 月
第 35 卷 第 6 期
中 成 药
Chinese Traditional Patent Medicine
June 2013
Vol. 35 No. 6