全 文 ：北方园艺２０１２（０２）：１２１～１２４ ·生物技术·
第一作者简介：郭庆（１９６８－），女，四川泸州人，硕士，副教授，现从
事细胞学与动物学研究工作。Ｅ－ｍａｉｌ：ｇｑｂｉｏｉｎｆｏｍａｔｉｃ＠１２６．ｃｏｍ。
基金项目：云南省教育厅科学研究基金资助项目（２０１０Ｃ２１１）；云
南省自然科学基金资助项目（２０１０ＺＣ１６５）。
收稿日期：２０１１－１１－０３
嵩明海菜花的核型分析
郭 　 庆１，翟 书 华１，熊 继 会１，黄 定 兴２
（１．昆明学院 生命科学与技术系，云南 昆明６５００３１；２．昆明市第三十中学，云南 昆明６５００３１）
　　摘　要：以我国云南省嵩明海菜花为试材，研究其体细胞染色体数目和核型（２ｎ＝２ｘ＝２２＝
１２ｍ＋８ｓｍ＋２ｓｔ）。结果表明：嵩明海菜花核型类型为“２Ｂ”型，与海菜花属的核型非常相近，这为
进一步研究水鳖科海菜花属的系统演化提供了重要的细胞学资料，为海菜花的１个新变种提供
细胞学依据。
关键词：嵩明海菜花；染色体；核型
中图分类号：Ｓ　５５５＋．９　文献标识码：Ａ　文章编号：１００１－０００９（２０１２）０２－０１２１－０４
　　海菜花（Ｏｔｅｌｉａ　ａｃｕｍｉｎａｔａ（Ｇａｇｎｅｐ））是国家重点保
护的珍稀濒危水生植物，中国独有，属国家３级重点保
护植物。嵩明海菜花是植物界被子植物门单子叶植物
纲水鳖目水鳖科植物，为海菜花（水鳖科）的１个新变种，
是多年生水生草本，完全沉在水里，主根不发达，由许多
不定根形成须根系。茎缩短、叶基生，花单性，雌雄异
株，白色花瓣，雌、雄蕊为黄色，种子数多，先端有毛，可进
行种子繁殖或根茎繁殖。
分布于云南、贵州、广西和海南部分地区海拔
２　７００ｍ以下的湖泊、池塘、沟渠和深水田中。可生长在
４ｍ的深水中，要求水体特别干净，喜温暖。一般花期
５～１０月，温暖地区全年有花。云南省嵩明县黑龙潭、青
龙潭和上村龙潭的海菜花因其叶形与原变种不同而被
蒋柱檀等定为海菜花（水鳖科）的１个新变种（Ｏ．ａｃｕｍｉ－
ｎａｔａｖａｒ．ｓｏｎｇｍｉｎｇｅｎｓｉｓ　Ｚ．Ｔ．Ｊｉａｎｇ　ｅｔ　ａｌ．）。
对海菜花的核型分析曾有过《通海海菜花的核型
研究》［１］和《路南海菜花的核型分析及其海菜花属的
演化探讨》［２］的报道。２００５年９月蒋柱檀等报道了
《嵩明海菜花是海菜花（水鳖科）的一新变种》［３］，该变
种与原变种的区别在于叶片带状厚纸质，不透明，叶
尖钝圆或具短尖，现阶段还没有嵩明海菜花的核型分
析的报道，现以云南省嵩明海菜花为试材，研究其体
细胞染色体数目和模型，以期为水鳖科海菜花属的系
统演化提供细胞学资料，为海菜花的一新变种提供细
胞学依据。
１　材料与方法
１．１　试验材料
１．１．１　植物材料　嵩明海菜花（Ｏ．ａｃｕｍｉｎａｔａ　ｖａｒ．
ｓｏｎｇｍｉｎｇｅｎｓｉｓ　Ｚ．Ｔ．Ｊｉａｎｇ　ｅｔ　ａｌ．）采自云南省昆明市嵩明
县黑龙潭（图１）。嵩明海菜花除叶形外与海菜花很相
似。海菜花的叶形是随着底质营养条件、水体环境和气
候等环境因素的变化而变化，变异很大，甚至同一植株
的不同年龄阶段的叶形也不一样。而嵩明海菜花各年
龄阶段的叶形保持不变，在不同营养条件底质、不同水
体流速、不同水深的条件下，仍保持带状厚纸质的叶片
形态。根据这一特性将嵩明海菜花确定为１个新变种
（图２）。原变种海菜花的叶片膜质，半透明，形状多变，
由披针形、长椭圆形、狭卵形、广卵形至宽心形，先端急
尖、渐尖，基部楔形、圆形、心形至深心形。嵩明海菜花
的叶片呈长带状、叶片边缘全缘或者略具波状褶皱，叶
脉、佛焰苞、花梗、萼片背面中脉上无疣刺及疣凸，仅果
棱上有疣凸。
１２１
·生物技术· 北方园艺２０１２（０２）：１２１～１２４
１．１．２　试验试剂　卡诺氏固定液：冰醋酸∶无水乙醇＝
１∶３；α?２溴萘饱和液：将１滴α?２溴萘滴到１００ｍＬ蒸馏
水中用力摇匀（现配现用）；１ｍｏｌ／Ｌ盐酸∶１０ｍＬ浓盐
酸加水稀释至１２０ｍＬ；卡宝品红染色液：先配成３种原
液，再配成染色液。原液Ａ为３ｇ碱性品红溶于１００ｍＬ
７０％乙醇（可长期保存）；原液Ｂ为原液Ａ　１０ｍＬ加入
９０ｍＬ　５％石炭酸水溶液（限２周内使用）；原液Ｃ为原
液Ｂ　４５ｍＬ，加冰乙酸和福尔马林（３７％甲醛）各６ｍＬ
（可长期保存）。染色液为取原液Ｃ　１０～２０ｍＬ，加４５％
的乙酸８０～９０ｍＬ，再加山梨醇１．８ｇ，配成１０％～２０％
的石炭酸品红液，放置２周后使用，着色能力显著加强。
１．２　试验方法
１．２．１　取材　采集整株嵩明海菜花，养殖在水槽中，置
于向阳处，经常换洁净的水，一般１个星期换２～３次水。
试验时将海菜花捞出，用镊子切取长势好、长度为０．５～
１．５ｃｍ左右的根尖进行处理。
１．２．２　预处理　将切取的根尖投入稀释好的α?２溴萘
饱和液中预处理４～８ｈ（１０～１５℃）。
１．２．３　固定　将预处理过的根尖用蒸馏水冲洗干净后
移入卡诺氏固定液中固定１０～１６ｈ（１４～２０℃），固定液
的量约为材料的１０倍。固定后若要保存，则用９５％酒
精冲洗后转入７０％酒精中，于４℃冰箱保存；若要继续试
验，则可用蒸馏水清洗掉药液后方可进行下一步操作。
１．２．４　解离　将固定后的根尖置于载玻片上（最好１块
载玻片放置１个根尖），加入１ｍｏｌ／Ｌ盐酸的解离液，加
的量大约是材料的３～４倍，室温下解离１０～１５ｍｉｎ，解
离完毕用自来水将解离液彻底洗净。
１．２．５　染色及压片　将解离好的根尖置于载玻片中间，
放在解剖镜下切去根冠（大概１～２ｍｍ），从分生组织切
取尽可能薄的一小片滴加卡宝品红染液，染色大约５～
１０ｍｉｎ，盖上盖玻片，用吸水纸覆于盖玻片一侧并用手按
住，用橡皮头敲击根尖切片，用力要均匀，将材料敲击
分散［６］。
１．３　镜检及核型分析
将玻片置于显微镜下观察，找到染色体分散良好、
形态清晰的有丝分裂中期细胞，数出细胞中的染色体数
目。大约统计１２０个细胞。在染色体计数的基础上，选
择１０个典型的细胞，用形态学分析软件处理（显微镜４０
倍，缩放２００％），测量每条染色体的长臂和短臂。
计算出染色体的相对长度，计算公式：相对长
度（％）＝染色体长度／染色体组总长度×１００。
将２条同源染色体的相对长度计算平均值，作为染
色体组中这一序号的染色体的相对长度。算出这些参
数后，最为接近的染色体为同源染色体。利用Ａｄｏｂｅ
Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐ软件处理染色体的配对。
计算出每条染色体的臂比，计算公式：臂比（ｒ）＝长
臂（Ｌ）／短臂（Ｓ）。式中，长、短臂的值取自２条同源染色
体的平均值，臂比值反应着丝粒的位置，是描述染色体
特征的重要指标，该试验采用Ｌｅｖａｎ等［５］提出的着丝粒
命名法。
２　结果与分析
２．１　嵩明海菜花的染色体数目
由表１可知，嵩明海菜花的染色体数目为２ｎ＝２２，
试验数据同时也反映出种群内不同个体间染色体数目
有所不同，同一个体的不同细胞间染色体数目也不相
同，所记录到的１２０个细胞分裂中期细胞染色体的计数
观察到有２ｎ＝１４、１６、１８、２０、２２的染色体数目变化，其中
２ｎ＝２２的个数为最多，数据的变化没有明显的规律，进
一步论证了李恒［８］的海菜花属通常发生染色体数目不
规则变化的结论。
表１ 嵩明海菜花的染色体数目统计
２ｎ＝ ２２　 ２０　 １８　 １６　 １４
细胞个数 ７７　 １６　 １１　 ７　 ９
所占百分数／％ ６４．１７　 １３．３３　 ９．１７　 ５．８３　 ７．５０
　　注：细胞总数＝１２０个。
２．２　嵩明海菜花的染色体长度、臂比和类型
染色体的绝对长度即测量出的实际长度，在不同的
处理条件或不同的生理状况下表现不同，因此并不可
靠。核型分析中用染色体的相对长度表示该染色体的
长度。由表２可知，按Ｌｅｖａｎ等［５］的染色体分类标准，确
定嵩明海菜花的核型公式为２ｎ＝２ｘ＝２２＝１２ｍ＋８ｓｍ＋
２ｓｔ，着丝粒位置为中部、亚中部和亚端部着丝粒区，没有
正中部、端部着丝粒区和端部着丝粒。臂比范围为１．２１～
３．６３，臂比平均值为１．８２。染色体实际长度范围为３．００～
１３．４４μｍ，相对长度范围为４．２５～１９．０３，最长与最短染色
体比为４．４８，染色体组总长度为７０．６５μｍ。
表２ 嵩明海菜花的核型分析
染色体
序号
实测染色体长度
（长臂＋短臂＝全长）／μｍ
染色体相对长度／％ 臂比＝长臂／短臂 类型
１　 ７．３６＋６．０８＝１３．４４　 １０．４２＋８．６１＝１９．０３　 １．２１ ｍ
２　 ５．０５＋３．０８＝８．１３　 ７．１５＋４．３６＝１１．５１　 １．６４ ｍ
３　 ６．０３＋１．６６＝７．６９　 ８．５４＋２．３５＝１０．８９　 ３．６３ ｓｔ
４　 ４．３８＋２．７６＝７．１４　 ６．２０＋３．９１＝１０．１１　 １．５９ ｍ
５　 ４．１４＋２．３３＝６．４７　 ５．８６＋３．３０＝９．１６　 １．７８ ｓｍ
６　 ３．７２＋２．２６＝５．９８　 ５．２７＋３．２０＝８．４７　 １．６５ ｍ
７　 ３．３５＋２．２８＝５．６３　 ４．７４＋３．２３＝７．９７　 １．４７ ｍ
８　 ３．０１＋１．９４＝４．９５　 ４．２６＋２．７５＝７．０１　 １．５５ ｍ
９　 ２．８９＋１．４９＝４．３８　 ４．０９＋２．１１＝６．２０　 １．９４ ｓｍ
１０　 ２．４９＋１．３５＝３．８４　 ３．５２＋１．９１＝５．４３　 １．８４ ｓｍ
１１　 １．８９＋１．１１＝３．００　 ２．６８＋１．５７＝４．２５　 １．７１ ｓｍ
　　注：染色体组总长度＝７０．６５μｍ。
２２１
北方园艺２０１２（０２）：１２１～１２４ ·生物技术·
２．３　嵩明海菜花核型的对称性分析
核型的对称性分析是核型分析的重要内容之一，在
研究染色体组的起源与进化中占有重要地位。根据
Ａｒａｎｏ　Ｈ［９］提出的核型不对称系数（Ａｓ．Ｋ）的方法计算，
即：Ａｓ．Ｋ％＝长臂总长／全组染色体总长×１００。嵩明海
菜花的Ａｓ．Ｋ＝６２．７２，表明嵩明海菜花的核型为不对
称，最长与最短染色体之比为４．８，臂比大于２∶１的染
色体为０．０９。根据Ｌｅｖａｎ　Ａ等［５］提出的着丝粒命名法
分析，１、２、４、６、７、８号染色体的着丝粒位置为中部着丝
粒区，５、９、１０、１１号染色体的着丝粒位置为亚中部着丝
粒区，３号染色体的着丝粒位置为亚端部着丝粒区，没有
正中部着丝粒区和端部着丝粒，由此说明，嵩明海菜花的
染色体没有随体及Ｂ染色体存在。根据Ｓｔｅｂｂｉｎｓ　Ｇ　Ｌ［１０］
提出的核型分类划分标准，嵩明海菜花的核型属２Ｂ型。
２．４　嵩明海菜花染色体核型比较分析
图３和图４分别为嵩明海菜花的染色体及其配对
结果。
将嵩明海菜花与海菜花、通海海菜花和路南海菜花
的核型公式、臂比平均值、标准差和变异幅度等进行对
比，嵩明海菜花和通海海菜花都出现了２ｓｔ染色体，区别
在于嵩明海菜花的ｓｍ比通海海菜花的多；核型类型只
有路南海菜花为１Ｂ型，其余都是２Ｂ型；平均臂比，嵩明
海菜花为最高，其次为通海海菜花；对比臂比＞２的染色
体比例，在１１对染色体中，嵩明海菜花有１对；与其它海
菜花不同；最长染色体与最短染色体的比值，嵩明海菜
花的值为最大；嵩明海菜花的标准差在海菜花与通海海
菜花之间，更接近海菜花的标准差；嵩明海菜花的变异
幅度最大，通海海菜花次之（表３）。
由以上对比可推测，嵩明海菜花可能是在海菜花的
基础上变异而得，与通海海菜花相同，可能是原变种染
色体结构变异所致。从核型方面分析为三者的亲缘关
系提供了一定证据。在宏观上表现出嵩明海菜花除叶
形外与海菜花很相似。海菜花的叶形是随着底质营养
条件、水体环境和气候等环境因素的变化而变化，变异
很大，甚至同一植株的不同年龄阶段的叶形也不一样。而
嵩明海菜花各年龄阶段的叶形保持不变，在不同营养条件
底质、不同水体流速、不同水深的条件下，仍保持带状厚纸
质的叶片形态，这些不同可能由染色体变异所导致。
表３　 ４种海菜花属植物的核型比较
种名 嵩明海菜花 通海海菜花 路南海菜花 海菜花
核型公式
２ｎ＝２ｘ＝２２
＝１２ｍ＋８ｓｍ＋２ｓｔ
２ｎ＝２ｘ＝２２
＝１８ｍ＋２ｓｍ＋２ｓｔ
２ｎ＝２ｘ＝２２
＝１８ｍ＋４ｓｍ
２ｎ＝２ｘ＝２２
＝２０ｍ＋２ｓｍ
核型 ２Ｂ ２Ｂ １Ｂ ２Ｂ
平均臂比 １．８２　 １．６１　 １．４０　 １．４０
臂比＞２染
色体比例
１／１１　 ２／１１　 ０／１１　 ２／１１
最长染色体／
最短染色体
４．４８　 ３．１２　 ３．００　 ２．３８
标准差ＳＤ　 ０．６３　 ０．８６　 ０．２６　 ０．５０
变异幅度 １．８２±０．２３　 １．６１±０．２８　 １．４０±０．１５　 １．４０±０．２１
文献 该文 ［１］ ［２］ ［１１］
３　结论与讨论
从整个试验过程来分析，按照宏观到微观的思路来
进行，运用了植物学、细胞生物学、遗传学和计算机的
Ａｄｏｂｅ　Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐ软件和形态学分析软件等方法，首先
根据蒋柱檀等报道了嵩明海菜花是海菜花（水鳖科）的
一新变种，在宏观上表现出嵩明海菜花除叶形外与海菜
花很相似。海菜花的叶形是随着底质营养条件、水体环
境和气候等环境因素的变化而变化，变异很大，甚至同
一植株的不同年龄阶段的叶形也不一样。而嵩明海菜
花各年龄阶段的叶形保持不变，在不同营养条件底质、
不同水体流速、不同水深的条件下，仍保持带状厚纸质
的叶片形态。由宏观上的异同来研究微观的异同，微观
的染色体的形态所体现的异同决定了宏观的异同。该
试验也体现出一个问题，即染色体变异导致性状表现的
变异，当然环境因素也可能有一定的影响。
参考文献
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Ｊａｐａｎ．１Ｘ．Ｔｈｅ　ｋａｒｙｏｔｙｐｅ　ａｎａｌｙｓ　ｉｓ　ａｎｄ　ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ　ｃｏｎｓｉｄｅｒａｔｉｏｎｓ　ｏｎ　Ｐｅｒｔｙａ
ａｎｄ　Ａ　ｉｎ　ｓｌｉａｅａ（２）［Ｊ］．ＢｏｔＭａｇ（Ｔｏｋｙｏ），１９６３，７６：３２－３９．
［１０］Ｓｔｅｂｂｉｎｓ　Ｇ　Ｌ．Ｃｈｒｏｍｏｓｏｍａｌ　ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ　ｉｎ　ｈｉｇｈｅｒ　ｐｌａｎｔｓ［Ｍ］．Ｌｏｎｄｏｎ：
Ｅｄｗａｒｄ　Ａｒｎｏｌｄ　Ｌｔｄ，１９７１．
［１１］王宁珠．九种水鳖科植物染色体数目及其核型分析［Ｊ］．植物分类学
报，１９８６，２４（５）：３７０－３７５．
３２１
·生物技术· 北方园艺２０１２（０２）：１２４～１２６
第一作者简介：武鹏（１９７８－），男，硕士，助理研究员，现从事蔬菜育
种与栽培研究工作。Ｅ－ｍａｉｌ：ｗｕｐｅｎｇ＠ｇｘａａｓ．ｎｅｔ。
基金项目：广西农业科学院基本科研业务专项资助项目（２００８１５
（基））。
收稿日期：２０１１－１１－１０
苦瓜离体再生体系建立的研究
武 　 鹏１，方 锋 学２，黄 如 葵３，黄 熊 娟３，陈 小 凤３
（１．广西农业科学院 广西现代农业科技示范园，广西 南宁５３０００７；２．广西农业科学院 甘蔗研究所，广西 南宁５３０００７；
３．广西农业科学院 蔬菜研究所，广西 南宁５３０００７）
　　摘　要：以ＭＳ为基本培养基，附加不同浓度的激素组合进行苦瓜离体再生体系的研究。结
果表明：种子去壳洗净浸泡５ｍｉｎ，用７０％酒精浸泡１ｍｉｎ，洗净后０．１％ＨｇＣｌ２消毒１０ｍｉｎ的灭菌
效果最好；通过愈伤组织诱导不定芽没有取得成功；利用无菌苗不同部位直接诱导不定芽，子叶
节效果最好，最高诱导率达到１００％，最适宜诱导培养基是 ＭＳ＋６－ＢＡ　２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．０２ｍｇ／Ｌ
和ＭＳ＋６－ＢＡ　４ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．０１ｍｇ／Ｌ；最适生根培养基为１／２ＭＳ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ。
关键词：苦瓜；离体培养；愈伤组织；不定芽
中图分类号：Ｓ　６４２．５０３．６　文献标识码：Ｂ　文章编号：１００１－０００９（２０１２）０２－０１２４－０３
　　苦瓜（Ｍｏｍｏｒｄｉｃａ　ｃｈａｒａｎｔｉａ　Ｌ．）属于葫芦科苦瓜属
１ａ生蔓生草本植物，又称凉瓜、锦荔枝、红姑娘、癫瓜、红
羊等，起源于印度和缅甸，现广泛分布于热带、亚热带和
温带地区，在印度、日本和东南亚栽培历史悠久。苦瓜
作为蔬菜作物主要以食用嫩瓜为主，具有较高的营养价
值，同时还具有很高的药用价值。近年来，有关苦瓜组
织培养方面的研究虽日益增多［１－１７］，但现有的苦瓜离体
再生体系并不适于离体遗传转化，因此，该试验通过苦
瓜的种子无菌萌发，研究适合于苦瓜离体遗传转化的再
生体系，为今后通过现代生物技术培育苦瓜优良品种或
创造新种质提供理论依据和技术支持。
１　材料与方法
１．１　试验材料
苦瓜自交系‘ＭＣ９’和‘ＭＣ４２’，由广西农业科学院
蔬菜研究所提供。
１．２　试验方法
ＭＳ培养基和１／２ＭＳ培养基（ＭＳ培养基大量元素
用量减半），蔗糖２０ｇ／Ｌ，琼脂１０ｇ／Ｌ，ｐＨ　５．８。培养温
度为（２８±１）℃，光照强度为２　０００ｌｘ，每日光照１４ｈ，黑
暗１０ｈ。
１．２．１　种子无菌萌发　用以下３种处理方式去种壳：
（１）５５℃温水浸种１０ｍｉｎ，然后室温浸泡２４ｈ，在超净台
上用０．１％ ＨｇＣｌ２消毒１０ｍｉｎ，无菌水洗净待用；（２）在
超净台上用１０％ＮａＣｌＯ４浸泡１５ｍｉｎ，无菌水洗净待用；
（３）用水浸泡５ｍｉｎ，在超净台上用７０％酒精泡１ｍｉｎ，洗
净后０．１％ ＨｇＣｌ２消毒１０ｍｉｎ，无菌水洗净待用。把消
毒好的种子接种于 ＭＳ培养基中，各接６瓶，每瓶５粒，
放入培养箱，１０ｄ后统计污染率和发芽率。

比较各种消
Ｋａｒｙｏｔｙｐｅ　Ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　Ｏｔｅｌｉａ　ａｃｕｍｉｎａｔａｖａｒ．ｓｏｎｇｍｉｎｇｅｎｓｉｓ　Ｚ．Ｔ．Ｊｉａｎｇ
ＧＵＯ　Ｑｉｎｇ１，ＺＨＡＩ　Ｓｈｕ－ｈｕａ１，ＸＩＯＮＧ　Ｊｉ－ｈｕｉ　１，ＨＵＡＮＧ　Ｄｉｎｇ－ｘｉｎｇ２
（１．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｋｕｎｍｉｎｇ　Ｃｏｌｅｇｅ，Ｋｕｎｍｉｎｇ，Ｙｕｎｎａｎ　６５００３１；２．３０ｔｈ　Ｍｉｄｄｌｅ　Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｋｕｎｍｉｎｇ，Ｋｕｎｍｉｎｇ，
Ｙｕｎｎａｎ　６５００３１）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔａｋｉｎｇ　Ｏｔｅｌｉａ　ａｃｕｍｉｎａｔａ　ｖａｒ．ｓｏｎｇｍｉｎｇｅｎｓｉｓ　Ｚ．Ｔ．Ｊｉａｎｇ　ｗｈｉｃｈ　ｇｒｏｗｓ　ｉｎ　Ｙｕｎｎａｎ，Ｃｈｉｎａ　ａｓ　ｔｈｅ　ｍａｔｅｒｉａｌ．Ｔｈｅ
ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ　ｎｕｍｂｅｒ　ａｎｄ　ｋａｒｙｏｔｙｐｅ（２ｎ＝２ｘ＝２２＝１２ｍ＋８ｓｍ＋２ｓｔ）ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ
ｋａｒｙｏｔｙｐｅ　ｂｅｌｏｎｇｓ　ｏｆ　Ｏｔｅｌｉａ　ａｃｕｍｉｎａｔａｖａｒ．ｓｏｎｇｍｉｎｇｅｎｓｉｓｔｏ‘２Ｂ’ａｎｄ　ｗａｓ　ｖｅｒｙ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｔｏ　ｔｈａｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｏｔｅｌｉａ．Ｔｈｉｓ　ｗａｓ
ｆｏｒ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｓｔｕｄｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｗａｔｅｒ　ｔｕｒｔｌｅ　ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｇｅｎｕｓ　Ｋｅｈａｉ　Ｏｔｅｌｉａ　ａｃｕｍｉｎａｔａ　ｐｒｏｖｉｄｅｓ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｃｙｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ｄａｔａ
ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｓｅａ　ｔｏ　ｐｒｏｖｉｄｅ　ａ　ｎｅｗ　ｖａｒｉｅｔｙ　ｏｆ　ｃａｕｌｉｆｌｏｗｅｒ　ｃｙｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ｂａｓｉｓ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｏｔｅｌｉａ　ａｃｕｍｉｎａｔａ　ｖａｒ．ｓｏｎｇｍｉｎｇｅｎｓｉｓ；ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ；ｋａｒｙｏｔｙｐｅ
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