全 文 ：262  Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences  http://www.jcps.ac.cn 
Antihyperglycemic, insulin­sensitizing and antioxidant activities of 
the active fractions from Anoectochilus chapaensis 
Jinyan Cai 1* , Lin Zhao 2 , En Zhu 1 , Chengxi Wang 1 
1. School of Pharmacy, Guangdong Pharmaceutical University, Guangzhou 510006, China 
2. School of Life Science and Bio­pharmaceutical, Guangdong Pharmaceutical University, Guangzhou 510006, China 
Abstract: Anoectochilus chapaensis Gagnep. (Orchidaceae), an indigenous and valuable Chinese folk medicine, has been widely 
used in China to treat diabetes. However, few reports are available about its constituents and activity. The present experiment was 
conducted to investigate the active fractions from A. chapaensis in diabetic rat model induced by high­fat diet plus streptozotocin. 
The total EtOH extract from the whole herbs of A. chapaensis, half of which was partitioned in sequence with petrol ether (PE), ethyl 
acetate  (EtOAc),  n­BuOH  and H2O,  thus  yielding  four  fractions,  all  of  them were  orally  administered with  an  identical  dose 
amount  to 4 g/kg dried crude herbs once a day for consecutive two weeks to further investigate the antihyperglycemic activity. 
The  EtOAc  fraction  caused  a  significant  fall  in  the  non­fasting  blood  glucose  level  of  diabetic  rats  from  (402.66±82.26)  to 
(226.26±62.10) mg/dl, which may be attributed to ameliorating insulin resistance, modulating the activity of enzymatic antioxidants, 
reducing the content of NO, etc. Much more intact β cells in the islets of Langerhans in EtOAc fraction­treated groups than the 
negative control were observed, which greatly supported the morphological and functional elucidation. The OGTT evidenced 
that EtOAc fraction could promote the endurance capacity of acute glucose increase in diabetic rats. The EtOAc fraction of 
A. chapaensis contains some hypoglycemic and antioxidant principles with the potential to be developed further for the treatment 
of diabetes specifically associated with an insulin resistance state. 
Keywords: Anoectochilus chapaensis; Antihyperglycemic; ISI; Active fraction 
CLC number: R962  Document code: A  Article ID: 1003–1057(2014)4–262–06 
Received: 2013­12­18; Revised: 2014­02­22; Accepted: 2014­02­27. 
Foundation  items:  National  Natural  Science  Foundation  of  China 
(Grant No. 81001628) and Guangdong Natural Science Foundation 
(Grant No. S2013010014771); 
* Corresponding author. Tel.: +86­15920107845; Fax: +86­20­39352129; 
E­mail: caijy928@163.com 
http://dx.doi.org/10.5246/jcps.2014.04.037 
1. Introduction 
Diabetes mellitus  is  a  group  of metabolic  disorders 
characterized  by  hyperglycemia [1] .   The  number  of 
diabetic patients has been increasing rapidly [2] ; however, 
the control of diabetes and its complications remains 
a challenge. There is an increasing demand by patients 
to  use  the  natural  products  with  antidiabetic  activity, 
due  to  obvious  side  effects  associated with  the  use  of 
insulin and oral hypoglycemic agents. 
In China, a country with one of  the highest rates of 
diabetes in  the world, Traditional Chinese Medicine 
(TCM) is popular and used  for the  treatment of many 
ailments. Many patients in China choose a combination 
of western medicine and TCM to treat diabetes [3] . 
The genera Anoectochilus (Orchidaceae) are perennial 
herbs  which  comprise  more  than  40  species  and  are 
widespread in the  tropical regions. Of those species, 
A. chapaensis, an indigenous and valuable Chinese folk 
medicine, has been used as a popular herbal drug in China 
and other Asian countries. It is also called “king medicine” 
along with A. roxburghii because of its diverse pharma­ 
cological  effects [4] .  The whole  dried  plants  have  been 
widely  used  in  China  to  treat  diabetes,  nephritis  and 
venomous snake bite, etc. Because of a low budding 
and growth rate in natural surroundings, predatory mass 
collection,  and  damages  to  the  ecological  environment, 
the  natural  resources  of  A.  chapaensis  are  becoming 
exhausted as well as A. roxburghii. In recent years much 
research has been performed on A. roxburghii [5–8] , however, 
few reports have been available about A. chapaensis’s 
constituents and antidiabetic activity. 
In  this  study, high­fat diet plus STZ  induced hyper­ 
glycemia model on rats were employed to evaluate the 
antihyperglycemic  activity  of  different  fractions  from 
A. chapaensis. 
2. Materials and methods 
2.1. Plant materials 
The  herbs  of  A.  chapaensis  were  collected  in  the
263 Cai, J.Y. et al. / J. Chin. Pharm. Sci. 2014, 23 (4), 262–267 
September  of  2010  from Yunnan Province,  southwest 
China.  The  plant  was  authenticated  by  Hongyan Ma, 
School  of  Traditional  Chinese Medicine,  Guangdong 
Pharmaceutical  University.  A  voucher  specimen  was 
deposited  in  the  herbarium  of  School  of  Pharmacy, 
Guangdong Pharmaceutical University. 
2.2. Apparatus 
Blood  glucose  levels  were  measured  by  One­touch 
Blood Glucose Monitoring System. Inverted microscope 
(NIKON  ECLIPSE  TS100),  KDC­160HR  high  speed 
low temperature freezing centrifuge, microplate reader 
(BIO­RAD Model 680), super­clean worktable, OLYMPUS 
AU400 automatic biochemistry analyzer, and UV­2201 
visible­ultraviolet spectrophotometer were employed. 
2.3. Reagents 
Streptozotocin  (STZ)  was  purchased  from  Sigma­ 
Aldrich Inc. (USA). Superoxidase dismutase (SOD), total 
antioxidant capacity, and content of malonyldialdehyde 
(MDA),  NO  were  assayed  using  kits  from  Nanjing 
Jiancheng  Biological  Reagents  Company.  Insulin  in 
plasma was determined with Rat Insulin Elisa Kit from 
Blue Gene Company. 
2.4. Sample preparation 
Dry  powdered  herbs  (1.6  kg)  of  A.  chapaensis was 
refluxed  with  95%  (v/v)  ethanol  for  2  h,  and  each 
filtrate was concentrated to dryness in vacuo to render 
the total EtOH extract, then half of which was suspended 
in  distilled  water  and  partitioned  in  sequence  with 
petrol ether (PE), ethyl acetate  (EtOAc), n­BuOH and 
H2O, thus yielding four fractions. The respective yields 
of  the  PE  fraction,  EtOAc  fraction,  n­BuOH  fraction 
and H2O  fraction were  14.02%,  10.90%, 27.48%,  and 
48.19%, respectively. 
2.5. Experimental animals and treatment protocol 
Male Sprague­Dawley rats (specific­pathogen free grade, 
weight  80–110 g) were  obtained  from  the Laboratory 
Animal Breeding  and Research Center  of Guangdong 
Province,  and  fed  with  a  high­fat  diet  (formula:  yolk 
2.5%, sugar 20%, lard 10% and basal feed 67.5%) and 
tap water for four weeks. Animals were housed in an air­ 
conditioned room at (23±2) °C with natural light. 
Diabetes mellitus was artificially induced to overnight­ 
fasted rats by  intraperitoneal injection of STZ (30 mg/kg 
body weight dissolved in citrate buffer, 0.1 M, pH 4.5). 
After 10 d, the rats  (showing stabilized diabetes) with 
non­fasting blood glucose level above 199.8 mg/dl, were 
selected  for  the  study.  Diabetic  rats  were  randomly 
divided  into  seven  groups  (each  group  contains  eight 
rats): A. EtOH extract, B. PE fraction, C. EtOAc fraction, 
D. n­BuOH fraction, E. H2O fraction, F. metformin, 
G.  vehicle. And  each  group was  treated with  either 
vehicle, metformin (60 mg/kg in water), total extract or 
fractions all at the same dose amount to 4 g/kg dried 
crude herbs in vehicle in a similar volume for two weeks, 
respectively, the treatment of which was defined according 
to a dose­response experiment previously. 
The  fractions,  metformin  or  vehicle  were  orally 
administered  once  a  day  and  lasted  for  14  d.  Body 
weight,  urine  glucose  level,   food  consumption  and 
faeces  were  observed  and  recorded  daily,  and  blood 
glucose  level  was  monitored  with  the  trace  blood 
samples from the tail vein every week. After two weeks, 
the  OGTT  test  was  also  performed  to  evaluate  the 
endurance   performance   besides   measuring   glucose 
concentration. At the end of the experiment, blood was 
collected  in heparin treated tubes  from abdominal aorta 
for  assessment  after  callisection,  and  pancreas  was 
treated with formaldehyde for histological examination. 
Blood was centrifuged at 2500 r/min for 10 min. Insulin 
level was evaluated with Enzyme Linked Immunosorbent 
Serologic Assay (ELISA). Spectrophotometric test kits were 
used to evaluate relative biomarkers in plasma including 
total antioxidant activity, activity of  total SOD, content 
of MDA, and content of NO, an important active factor. 
2.6. Glucose tolerance test 
The  hypoglycemic  effects  of  all  administrations  in 
diabetic  rats  were  assessed  by  the  improvement  of 
glucose tolerance. Glucose tolerance test was performed 
on diabetic controlled and extracts treated rats after 14 d. 
Hence, glucose  tolerance was  investigated on basis of 
all groups (each group has eight rats): A. EtOH extract, 
B. PE fraction, C. EtOAc fraction, D. n­BuOH fraction, 
E. H2O fraction, F. metformin, G. vehicle. All the groups 
were administered by glucose (2.5 g/kg) after over­night 
fasting.  Blood  samples  were  collected  just  prior  to 
glucose administration  (0 h) and 0.5, 1, 1.5, 2 h after 
the glucose loading.
264  Cai, J.Y. et al. / J. Chin. Pharm. Sci. 2014, 23 (4), 262–267 
2.7. Data analysis 
Data were shown as the mean±standard deviation (SD). 
Insulin  sensitivity  index  (ISI)  was  calculated  by  this 
formula:  ISI＝1/(fasting  blood glucose ×  fasting  plasma 
insulin).  Statistical  analysis  was  performed  by  one­way 
analysis of variation (ANOVA) followed by Dunnett 
t­test for multiple comparisons. A difference with a 
P value of <0.05 was considered statistically different. 
3. Results 
3.1. Blood glucose and body weight 
A  significant  and  steady  increase  in  blood  glucose 
levels were observed after 10 d (the induction of diabetes). 
The  effects  of  different  fractions  and metformin  on 
non­fasting blood glucose and body weight were shown 
in Table 1. After 14 d treatment, non­fasting blood glucose 
was significantly lower for metformin­treated diabetic rats 
in the range from (296.10±31.32) to (127.80±4.32) mg/dl. 
Daily administration of the EtOAc fraction also caused 
a significant fall in the non­fasting blood glucose levels of 
diabetic rats from (402.66±82.26) to (226.26±62.1) mg/dl, 
furthermore,   in  which  the  body  weight  was  much 
higher than vehicle group. Then minor variation can be 
observed in other groups including EtOH extract (from 
(363.24±68.4)  to  (354.78±121.32) mg/dl),  PE  fraction 
(from (327.60±63.0) to (318.06±104.22) mg/dl), n­BuOH 
fraction ((348.48±51.48) to (297.90±70.02) mg/dl), H2O 
fraction ((427.86±64.44) to (376.20±88.02) mg/dl). 
3.2. Plasma insulin and insulin sensitivity index 
Chronic administration of EtOH extract, EtOAc fraction 
and n­BuOH fraction resulted in a promising improvement 
of insulin resistance in diabetic rats induced by high­fat 
food  plus STZ,  even  better  than metformin  (Table  2), 
the reference drug used in this study. 
3.3. Serum SOD, total antioxidant activity and content 
of MDA 
A significant increase in SOD activity was observed 
after the treatment with PE fraction, EtOAc fraction, 
n­BuOH  fraction   and   metformin.   Total   antioxidant 
activity was significantly  increased after  the  treatment 
with PE fraction, EtOAc fraction, H2O fraction and 
metformin (Table 3). Whereas MDA values in plasma 
were lower in the EtOH extract, PE fraction, and n­BuOH 
fraction­treated groups than the STZ+vehicle group. 
3.4. Content of NO in plasma 
As  shown  in  Figure  1,  much  lower  content  of  NO 
were  observed  in  EtOH  extract,  PE  fraction,  EtOAc 
fraction,  n­BuOH  fraction  and  the metformin  treated 
rats than those of vehicle group. 
Groups 
0 d  14 d 
Blood glucose (mg/dl)  Body weight (g)  Blood glucose (mg/dl)  Body weight (g) 
Vehicle  373.14±87.66  248.00±29.00  309.06±66.24  222.00±36.00 
Metformin  296.10±31.32  240.00±18.40  127.80±4.32 b  240.50±18.60 b 
EtOH extract  363.24±68.40  241.63±20.25  354.78±121.32  223.71±33.21 
PE fraction  327.60±63.00  253.00±18.57  318.06±104.22  247.00±20.57 b 
EtOAc fraction  402.66±82.26  251.67±5.71  226.26±62.10 b  259.83±13.62 b 
n­BuOH fraction  348.48±51.48  251.38±13.17  297.90±70.02  244.25±23.72 b 
H2O fraction  427.86±64.44  285.00±10.29  376.20±88.02  250.17±13.84 
Groups  Fasting blood glucose (mg/dl)  Plasma insulin (ng/mL)  Insulin sensitivity index (ISI) (×10 –3 ) 
Vehicle  144.00±12.06  2.233±0.456  2.83±0.21 
Metformin  133.20±5.40  1.637±0.737  4.61±0.15 b 
EtOH extract  135.54±11.52  0.791±0.521  9.33±0.06 b 
PE fraction  158.40±19.26  2.212±0.809  2.84±0.10 
EtOAc fraction  92.70±15.30  1.925±0.290  5.61±0.03 b 
n­BuOH fraction  124.20±20.34  1.141±0.479  7.06±0.08 b 
H2O fraction  122.40±10.62  2.400±0.281  3.39±0.04 
Table 1. Effect of the fractions on body weight and blood glucose 
b P<0.05 vs. vehicle group. 
b P<0.05 vs. vehicle group. 
Table 2. Effect of the fractions on fasting blood glucose, plasma insulin and insulin sensitivity index
265 Cai, J.Y. et al. / J. Chin. Pharm. Sci. 2014, 23 (4), 262–267 
3.5. Histological examination 
Figure 2 showed the typical views of the pancreas by 
HE  staining. Much more  intact  β  cells  in  pancreatic 
islet  issue  in  PE  fraction,  EtOAc  fraction,  n­BuOH 
fraction and the metformin treated rats than those in the 
negative control group. These  results  showed  that  this 
plant could be useful in reversing the injury of β cells 
in  pancreatic  islet  and  the  protective  effect  may  be 
closely related with its improving function. 
3.6. Oral glucose tolerance test 
Endurance capacity, especially the value and time of 
peak blood glucose, was evaluated by blood glucose­time 
curve. As shown in Figure 3, a significant improvement 
(P<0.05) in the endurance performance can be observed 
in all fractions­treated groups, especially in the EtOAc 
fraction,  PE  fraction  and  EtOH  extract­administered 
groups. 
Groups  SOD activity (U/mL)  Total antioxidant  capacity  (U/mL)  Content of MDA  (nmol/mL) 
Vehicle  232.33±21.48  0.987±0.178  5.780±1.420 
Metformin  355.00±113.22 b  1.603±0.292 b  5.208±0.880 
EtOH extract  96.12±5.904  0.678±0.128  4.453±0.440 b 
PE fraction  257.00±22.82 b  1.141±0.316 b  3.125±0.210 b 
EtOAc fraction  493.44±23.88 b  1.603±0.267 b  5.781±0.000 
n­BuOH fraction  401.26±137.98 b  0.216±0.032  3.724±0.254 b 
H2O fraction  233.97±8.35  1.529±0.281 b  6.281±1.373 
Table 3. Effect of the fractions on the total antioxidant capacity, contents of SOD and MDA 
b P<0.05 vs. vehicle group. 
Figure 1. Effect of all  fractions on contents of NO. A: Vehicle; 
B:  EtOH  extract;  C:  PE  fraction; D:  EtOAc  fraction;  E:  n­BuOH 
fraction; F: H2O fraction; G: Metformin. 
Figure 3. Blood glucose­time curves in OGTT of all groups. A: EtOH 
extract; B: PE fraction; C: EtOAc  fraction; D:  n­BuOH fraction; 
E: H2O fraction; F: Metformin; G: Vehicle. 
100
80
60
40
20 
0 
C
on
te
nt
 o
f N
O
 (
μm
ol
/L
) 
A  B        C        D        E        F  G 
Groups 
35
30
25
20
15
10 
5 
0 
B
lo
od
 g
lu
co
se
 (
m
m
ol
/L
) 
0.0           0.5           1.0           1.5           2.0           2.5 
t (h) 
A  B  C  D 
E  F  G 
Figure 2. Photomicrographs of histopathological changes of the pancreatic islet issue in diabetic rats. A: EtOH extract; B: PE fraction; C: EtOAc 
fraction; D: n­BuOH fraction; E: H2O fraction; F: Metformin; G: Vehicle. 
A                                                 B                                                 C  D 
E                                                  F                                                 G
266  Cai, J.Y. et al. / J. Chin. Pharm. Sci. 2014, 23 (4), 262–267 
4. Discussion 
EtOAc fraction­treatment revealed the most promising 
hypoglycemic  effect   among  all  the  administrations, 
which  significantly  improved  the  activity  of  insulin, 
prevented weight loss in diabetic rats, and ameliorated 
β­cells  damage  caused  by  oxidative  stress  and NO. 
The  bioactivity  screening  of  different  fractions  may 
give  an  effective  guide  of  the  isolation  of  the  active 
compounds. 
It  is  found  that  the  metabolic  syndrome  compared 
with impaired fasting glucose status correctly allocates 
the risk of new­onset diabetes in a higher proportion of 
people (62% vs 38%) [9] . Insulin resistance is a metabolic 
disorder, the prevalence of which is increasing alarmingly 
in  populations  world­wide.  It  occurs  when  the  body 
tissues  becoming  increasingly  resistant  to  insulin, 
leading  to  a marked  decrease  in  glucose metabolism, 
which is associated with type 2 diabetes [10] . Indeed, the 
effects  of EtOH  extract, EtOAc  fraction  and  n­BuOH 
fraction   on   insulin   resistance  generally  compared 
favorably  with  those  of  metformin.  A.  chapaensis 
may contain one or more principles which have  the 
potential  to  be  developed  further  for  the  treatment 
of  diabetes  specifically  associated  with  a  insulin 
resistance state. 
Hyperglycemia complications in diabetes mellitus not 
only generate elevated level of reactive oxygen species 
(ROS)  but  also  alter  antioxidative machinery  through 
glycation of  the scavenging enzymes. Oxidative stress 
has been considered to be a common pathogenic factor 
of   diabetic   complications  including   nephropathy [11] . 
The  increase  in  SOD  activity  in  diabetic  animals  is 
possibly due to increased dismutation of superoxide anion 
to molecular oxygen and hydrogen peroxide as an adaptive 
response  to  increased  oxidative  stress. The  increase 
in SOD activity was proposed to protect catalase and 
GPx  against  inactivation  by  superoxide  anions which 
are  known  to  inactivate  catalase  and  GPx [12] .  The 
significant  increase  in  the  SOD  and  total  antioxidant 
capacity  as well  as  the  decreased  content  of MDA  in 
the  diabetic  rats  suggests  that  peroxidative  injury  and 
imbalance  of  the  cellular  defence  system  be  involved 
in  the  development  of  diabetic  disorders.  The  results 
demonstrated   that   the   EtOAc  fraction   significantly 
reduced  the  blood  glucose  level, meanwhile  the  SOD 
activity and total antioxidant activity was significantly 
increased.  These  findings  in  this  paper  also  suggest 
that PE fraction, EtOAc fraction, n­BuOH fraction from 
A. chapaensis had antioxidant effects and could protect 
tissues from lipid peroxidation. It would be essential to 
further study its antioxidant activities. 
Nitric oxide (NO) could be considered as one of the 
key  proinflammatory mediators  for  β  cell  dysfunction 
and  destruction  via  affecting  mitochondrial  functions 
and  later  endoplasmic  reticulum  stress [13,14] .  EtOH 
extract, PE fraction, EtOAc fraction, n­BuOH fraction 
obviously reduced the content of NO. 
With  late  type­2  diabetes,  chronic  cytokine  attack, 
glucolipotoxicity,  and  other  extracellular  stresses  lead 
to  a  massive  loss  of  β  cells [15,16] .  This  paper  also 
demonstrated the extract or fractions from A. chapaensis, 
especially  the EtOAc fraction possessed a reversing 
or   protective  effect  against  β  cells’  damage,  which 
contributed to the antihyperglycemic principle underlying 
a  protective  effect  at  the  cellular and molecular  level. 
The result is in agree with our previous report [17] . The 
histological  examination  (as  shown  in Fig.  2)  showed 
the EtOH extract, PE fraction, EtOAc fraction, n­BuOH 
fraction had a protective and ameliorative effect on 
β cells’ structure and function against oxidative stress and 
NO  factor.  Furthermore,  it  showed  a marked  improve­ 
ment in the glucose tolerance of the diabetic rats. 
5. Conclusions 
In  view of  the  protective  property  in  the antihyper­ 
glycemic  and  antioxidant  activity  and  its  relatively 
non­toxic nature, this plant and its components would 
be  promising  candidates  for  the  development  as  anti­ 
diabetic agents in human. This pharmacological profile 
provides a scientific support for the claimed ethnomedical 
use of A. chapaensis. Further studies are warranted and 
undertaken  to  confirm  our  results  and  to  insight  into 
the accuracy mechanisms of action. 
In conclusion, A. chapaensis herb extract exhibits 
a  potent  blocking  up  effect  on  the  progression  of 
high­fat  diet associated  insulin  resistance  in  rats. Our 
findings are encouraging, and suggest that, with further 
research  and  development, A.  chapaensis herb  extract 
may  prove  to  be  a  useful  treatment  for  diabetes  and 
related symptoms. 
Acknowledgements 
The authors thank National Natural Science Foundation 
of China (Grant No.81001628) and Guangdong Natural 
Science  Foundation  (Grant  No.S2013010014771)  for 
financial support.
267 Cai, J.Y. et al. / J. Chin. Pharm. Sci. 2014, 23 (4), 262–267 
References 
[1]  Zimmet,  P.;  Alberti,  K.G.;  Shaw,  J.  Nature.  2001,  414, 
782–787. 
[2] Tjota, M.Y.; Kozak, B.M.; Chang,  E.M.; Close, K.L. 
J. Diabetes. 2011, 3, 95–102. 
[3] Poon, T.Y.C.; Kwok, L.O.; Cheung, B.M.Y. J. Diabetes. 
2011, 3, 184–200. 
[4] Wang, X.X.; Ming, J.; Wang, C.L. Int. J. Mol. Sci. 2011, 
12, 2556–2571. 
[5]  He,  C.N.;  Wang,  C.L.;  Guo,  S.X.  J.  Chin.  Mat.  Med. 
2005, 30, 761–763. 
[6] Han, M.H.;  Yang,  X.W.;  Jin,  Y.P.  Phytochem.  Anal. 
2008, 19, 438–443. 
[7] Zhang, Y.H.; Cai, J.Y.; Ruan, H.L. J. Ethnopharm. 2007, 
114, 141–145. 
[8] Cai,  J.Y.; Gong,  L.M.;  Zhang, Y.H. J.  Chin. Med. Mat. 
2008, 31, 370–372. 
[9] Gupta, A.K.; Prieto­Merino, D.; Dahlöf, B.; Sever, P.S.; 
Poulter, N.R. Diabet. Med. 2011, 28, 941–947. 
[10] Grundy,  S.M.  J.  Clin.  Endocrinol. Metab.  2007,  92, 
399–404. 
[11] Nicolle, E.F.; Souard1, P.; Faure, A. Curr. Med. Chem. 
2011, 18, 2661–2672. 
[12]  Doroshow,  J.H.;  Locker,  G.Y.;  Myers,  C.E.  J.  Clin. 
Invest. 1980, 65, 128–135. 
[13] Tripathi, P.; Tripathi, P.; Kashyap, L.; Singh, V. FEMS 
Immunol. Med. Microbiol. 2007, 51, 443–452. 
[14] McDaniel, M.L.; Kwon, G.; Hill,  J.R.; Marshall, C.A.; 
Corbett,  J.A.  Proc.  Soc.  Exp.  Biol. Med.  1996,  211, 
24–32. 
[15] Bergholdt, R.; Heding, P.; Nielsen, K.; MandrupPoulsen, T. 
Adv. Exp. Med. Biol. 2004, 552, 129–153. 
[16]  Donath,  M.Y.;  Boni­Schnetzler, M.;  Ellingsgaard,  H.; 
Ehses, J.A. Physiology. 2009, 24, 325–331. 
[17] Cai, J.Y.; Wang, Y.N.; Zhu, E.; Wang, C.X.; Zhang, D.Z.; 
Zhu,  C.C.  Pharmacol.  Clin.  Chin. Mater. Med.  2012, 
28, 116–119. 
滇越金线兰活性部位降血糖、增敏胰岛素和抗氧化活性研究
蔡金艳 1* , 赵林 2 , 朱恩 1 , 王成蹊 2 
1. 广东药学院 药科学院, 广东 广州  510006 
2. 广东药学院 生命科学与生物制药学院,广东 广州  510006 
摘要: 采用高糖高脂饮食联合低剂量STZ诱导造成糖尿病大鼠模型, 实验组大鼠分别灌胃给予滇越金线兰总膏和溶剂
萃取法所得各极性部位, 测定给药后大鼠血糖、胰岛素敏感性、抗氧化活性及NO水平等相关指标。胰腺切片, 进行病理
学检查。与模型组相比, 乙酸乙酯部位给药组的随机血糖可见明显降低, 从给药前402.66至226.26  mg/dl  (P<0.05), 而且
该组大鼠的体重值明显高于模型对照组, 同时能提高胰岛素敏感性, 改善高糖负荷以后的糖耐量; 胰腺细胞形态较模型组
有明显改善; 同时SOD活性增加,  NO含量均显著降低。表明滇越金线兰的乙酸乙酯部位是其降血糖的主要活性部位, 
其作用机制可能与改善胰岛素抵抗、增强机体抗氧化活性和降低血浆NO等机制有关。
关键词: 滇越金线兰; 降血糖;胰岛素敏感指数;活性部位