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脱水胁迫和光合日变化对梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数的影响



全 文 :脱水胁迫和光合日变化对梭梭和白梭梭
叶绿素荧光参数的影响*
沈 亮
1
陈 君
1
刘 赛
1
徐 荣
1**
徐常青
1
刘同宁
2
(1中国医学科学院北京协和医学院药用植物研究所,北京 100193;2宁夏永宁县本草苁蓉种植基地,银川 750100)
摘 要 采用 IMAGING-PAM叶绿素荧光法,测定了宁夏地区种植的梭梭和白梭梭在离体脱
水胁迫和光合日变化下的叶绿素荧光参数变化,以研究肉苁蓉寄主梭梭和白梭梭对地理环境
的生态适应机制.结果表明:梭梭具有较高的光合作用性能,其光合电子传递活性(Fv /Fm)、
光能转化效率(qP)和表观电子传递效率(ETR)等指标均高于白梭梭.离体脱水胁迫 48 h,梭
梭同化枝含水率及叶绿素荧光参数各指标均显著高于白梭梭.梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数
日变化差异较大,且呈现“V”型变化趋势.推测梭梭对水分及光照等环境因子变化的适应能
力较白梭梭强,地理分布较广;白梭梭因受水分及光照等因子限制,地理分布较窄.
关键词 梭梭;白梭梭;叶绿素荧光;脱水胁迫;日变化
文章编号 1001 - 9332(2015)08 - 2321 - 08 中图分类号 S322 文献标识码 A
Influence of dehydration and diurnal variation on characteristics of chlorophyll fluorescence of
leaves in Haloxylon ammodendron and H. persicum. SHEN Liang1,CHEN Jun1,LIU Sai1,XU
Rong1,XU Chang-qing1,LIU Tong-ning2 (1Institute of Medicinal Plant Development,Chinese Acade-
my of Medical Sciences & Peking Union Medical College,Beijing 100193,China;2Yongning Plantation
of Herba Cistanche,Yinchuan 750100,China). -Chin. J. Appl. Ecol.,2015,26(8):2321 -2328.
Abstract:To evaluate the ecological adaptation mechanism of Haloxylon ammodendron and H. per-
sicum from Ningxia,the host of Cistanche deserticola,the chlorophyll fluorescence under dehydra-
tion and diurnal variation was determined by IMAGING-PAM method. The results showed that H.
ammodendron had higher photosynthetic electron transport activity (Fv /Fm) ,photosynthetic effi-
ciency (qP) ,and PSⅡ electron transport activity (ETR)than H. persicum. After 48 h dehydra-
tion,the chlorophyll fluorescence and water-retaining property of H. ammodendron were significant-
ly higher than those of H. persicum. The significant difference in diurnal variation between H. am-
modendron and H. persicum was observed and a‘V’trend was exhibited. It suggested that H. am-
modendron had a stronger ability to adapt to the environment and had wider distribution,while H.
persicum was limited by water and light and had narrow distribution.
Key words:Haloxylon ammodendron;H. persicum;chlorophyll fluorescence;dehydration stress;
diurnal variation.
* 国家自然科学基金青年科学基金项目(81102748)、国家自然科学
基金新疆联合基金项目(U1403324)、中央级公益性科研院所基本科
研业务费专项资金项目(YZ2012-09)和国家科技支撑计划项目
(2011BAI05B03)资助.
**通讯作者. E-mail:rxu@ implad. ac. cn
2014-11-03 收稿,2015-04-22 接受.
梭梭(Haloxylon ammdendron)和白梭梭(H. per-
sicum)均为苋科(Amaranthaceae)藜亚科(Chenopo-
diaceae)梭梭属(Haloxylon)多年生小乔木或灌木,
主要分布在亚非干旱少雨的荒漠地区[1]. 梭梭根
部常寄生被称为“沙漠人参”的名贵药材肉苁蓉
(Cistanche deserticola). 肉苁蓉为列当科(Oroban-
chaceae)肉苁蓉属(Cistanche)多年生寄生性草本植
物,具有补肾阳、益精血、润肠通便等功效[2]. 近年
来,随着人们医疗保健意识的增强,补益类中药市场
需求量猛增,滥采滥挖肉苁蓉导致其野生储量锐减、
濒临灭绝,其现有资源已经不能满足市场需求.国家
已明令禁止采挖野生肉苁蓉,鼓励通过人工种植来
满足市场需求[3 - 5]. 人工种植肉苁蓉需要种植其寄
主植物梭梭或者白梭梭. 梭梭在我国地理环境复杂
多样的西北地区广为分布,而白梭梭仅分布在新疆
应 用 生 态 学 报 2015 年 8 月 第 26 卷 第 8 期
Chinese Journal of Applied Ecology,Aug. 2015,26(8) :2321 - 2328
DOI:10.13287/j.1001-9332.20150521.011
古尔班通古特沙漠、艾比湖自然保护区及伊犁等地
区.人工引种到其他地区的白梭梭常因环境不适,导
致植株长势不良或者死亡[6 - 7],这给肉苁蓉种植企
业造成了一定损失.研究表明,植物光合机构的光能
超过其利用量时可能产生光抑制现象[8 - 9]. 白梭梭
适宜生长在海拔较低、地下水位较高、光照强度较弱
的地区,这是否是限制其引种到其他地区的主要原
因,尚未见报道.因此,对梭梭和白梭梭的生态适应
性进行研究,不仅可以了解该物种形态结构与生理
功能的关系,而且可为梭梭和白梭梭的野生保护及
人工种植区域的选择提供科学依据.
光合作用是植物生长发育的基础,也是植物生
态适应性评价的重要内容[10].叶绿素荧光作为光合
作用研究的探针,能够较为全面地反映叶片光合作
用过程中光系统对光能的吸收、传递和分配等情况,
可以提供许多有关植物光合生理变化的信息[11].该
技术在植物光合作用机理、逆境胁迫及生态适应性
评价等领域得到广泛应用[12 - 15]. 目前,有关梭梭光
合作用特性的研究较多[16 - 17],而有关梭梭和白梭梭
在胁迫环境下光合特性比较以及二者的生态适应
性评价较少. 本文采用调制叶绿素荧光成像系统
(IMAGING-PAM)对宁夏地区种植的梭梭和白梭梭
同化枝特征、离体脱水胁迫及光合日变化下的叶绿
素荧光参数变化进行比较,分析梭梭和白梭梭光合
作用及水分利用的生理生态差异,为揭示二者适应
西北干旱荒漠环境的生态适应机理提供科学依据.
1 材料与方法
1. 1 供试材料
试验材料于 2013 年 8 月 10 日采自宁夏本草苁
蓉种植基地.该基地位于贺兰山东麓腾格里沙漠边
缘(38°15 N,106°40 E) ,海拔 1125 m.该地区属于
中温带干旱气候区,年均温 8. 7 ℃,降水量 180 ~
200 mm,多年平均蒸发量 1785 ~ 1906 mm,地下水位
在 10 m以下,年平均日照时数 2700 ~2900 h.土壤质地
为沙壤土,表土有机质含量为 5 ~10 g·kg -1[18].
选择生长健壮、长势一致的 10 年生梭梭和白梭
梭各 16 株,挂牌标记. 每株样品选择植株冠层部位
阳面健康一致的同化枝放入低温避光冰盒,立即带
回实验室,开展梭梭和白梭梭的同化枝外观. 叶绿
素、含水率和叶绿素荧光测定,及二者干旱胁迫、光
合日变化下的叶绿素荧光特征分析.
1. 2 试验方法
1. 2. 1 梭梭同化枝直径和节间长度测量 采用游标
卡尺测量,精确到 0. 02 mm.
1. 2. 2 叶绿素含量测定 采用分光光度计法,将待
测样品用去离子水洗净表面灰尘,将其剪成数段,
经精度 0. 001 g 的电子天平称量后,立即浸入 50
mL丙酮和乙醇的混合提取液中(丙酮 ∶ 乙醇 ∶ 水
= 4. 5∶ 4. 5∶ 1) ,盖紧样品盖于低温处避光浸提 5 d
至叶片无色,测定提取液在 663和 645 nm处叶绿素 a
和叶绿素 b的吸光值(A) ,叶绿素总含量 =(8. 04A663
+20. 29A645)× V /M ×1000
[19].
1. 2. 3 叶片含水率测定 采用烘干法,将样品快速
置于称量瓶中立即称取鲜质量,并于恒温干燥箱
100 ℃杀青 30 min后,调至 80 ℃烘干至恒量[20].
1. 2. 4 叶绿素荧光测定 采用德国 Walz 公司生产
的 IMAGING-PAM荧光仪,参照 Schreiber[21]方法测
定.测试前,设置活化光为 7,测量光为 2,样品经过
暗适应处理 20 min 后,测定各样品初始荧光(Fo)、
最大荧光(Fm)、实际最大荧光(Fm )、实时荧光
(F t)、PSⅡ原初光能转化效率(Fv /Fm)、PSⅡ潜在活
性(Fv /Fo)、光化学淬灭系数(qP)、非光化学淬灭系
数(qN)和光合电子传递速率(ETR)等参数
[22 - 24].
其中,Fv = Fm - Fo、qP =(Fm - Fm )/(Fm - Fo)、qN
=(Fm - Fm )/Fm、ETR = Yield × 0. 84 × 0. 50 × PAR
(0. 84 为叶片吸收光的比例,0. 5 为光能在 PSⅡ的
分配比例,PAR为入射于叶面的光强).
选取已做标记的梭梭和白梭梭各 10 株样品 60
条同化枝进行叶绿素荧光特征比较. 将取回的梭梭
和白梭梭各 6 株样品 36 条同化枝放在室内进行离
体干旱胁迫处理,0、12、24、36、48 h 后进行测试,0 h
处理作为对照.梭梭和白梭梭叶绿素荧光日变化测
试从 8:00—18:00,每隔 2 h取一次梭梭和白梭梭各
6 份 36 条同化枝进行测试. 每条同化枝测定 6 个
点,为减少强光影响,在背景光强度 < 1 μmol·m -2
·s - 1的避光环境下操作,测试光强为 0 ~ 1210 μmol
·m -2·s - 1,各指标均取最后 8 次比较稳定的闪光
平均值进行数据分析.各项测定工作重复 3 次.实验
室内白天最高温度 25 ℃,夜间最低温度 15 ℃,光周
期为 14 h /10 h,空气湿度 25% ~36% .
1. 3 数据处理
采用 Excel 2013 和 SPSS 20. 0 软件对数据进行
统计分析.采用单因素(one-way ANOVA)和 LSD 法
进行方差分析和差异显著性检验(α = 0. 05). 表中
数据为平均值 ±标准差.
2232 应 用 生 态 学 报 26 卷
2 结果与分析
2. 1 梭梭和白梭梭同化枝外观比较
梭梭和白梭梭同为梭梭属植物,但二者在形态
上差异较大(图 1).梭梭植株高大,树冠稠密,呈球
状或近椭圆形;树干多扭曲,枝条多直立,向上生长;
当年生幼嫩同化枝顶端钝圆,浓绿色且富含水分;叶
退化为小鳞片状,生长在节部,稍开展. 白梭梭植株
较矮小,树冠稀疏,多为不规则形状;树干及枝条多
弯曲,当年生幼嫩同化枝纤细,淡绿色,顶端呈锥形
刺状(具芒尖) ,节部在夏秋两季呈白色环状结构;
叶呈三角形,着生于节部,常贴伏于枝. 人工种植在
宁夏地区的梭梭和白梭梭同化枝直径及节间长均差
异显著.梭梭当年生幼嫩同化枝直径约为 1. 54 mm,
节间长约 7. 58 mm;白梭梭当年生同化枝直径约为
1. 23 mm,节间长约为 10. 91 mm.
2. 2 梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数比较
根据荧光强度和颜色的不同,得出梭梭的实际
叶绿素荧光值(F t)显著高于白梭梭(图 2) ,梭梭
Fo、Fm、Fv /Fm和 Fv /Fo指标均显著高于白梭梭(表
1). Fv /Fo常用于度量 PSⅡ的潜在活性
[25],Fv /Fm反
映逆境胁迫下植物的光抑制情况[26]. 与白梭梭相
比,梭梭具有较高的光合电子传递活性,高效捕获
图 1 梭梭和白梭梭外观特征比较
Fig. 1 Appearance characteristics of Haloxylon ammodendron
and H. persicum.
Ⅰ:梭梭 Haloxylon ammodendron;Ⅱ:白梭梭 H. persicum. 下同 The
same below.
光能并转化成生物化学能的能力. qP反映 PSⅡ所捕
获的光量子转化成化学能的效率[23].梭梭 qP显著高
于白梭梭,表明梭梭通过光化学淬灭转换光能的作
用明显高于白梭梭. qN反映 PSⅡ中不能进行光合作
用、依靠天线色素吸收的光能以热的形式耗散的那
部分光能[24].梭梭 qN显著高于白梭梭,表明梭梭对
宁夏地区高温天气下的热辐射自我保护性能高于白
梭梭. ETR反映实际光强条件下的 PSⅡ表观电子传
递速率,ETR与光合速率有很强的线性关系[27]. 梭
梭的 ETR显著高于白梭梭,说明梭梭在宁夏地区的
光能转化效率和表观电子传递效率优于白梭梭,能
为暗反应积累更多能量,从而促进光合产物运转和
积累.
2. 3 离体脱水胁迫下梭梭和白梭梭叶绿素荧光参
数的变化
离体脱水胁迫下,梭梭和白梭梭同化枝持水
能力有显著差异(图 3). 梭梭同化枝含水率较高
(82. 7%) ,而白梭梭同化枝含水率较低(60. 1%).
从离体 12 h开始,白梭梭同化枝的持水能力明显低
于梭梭,并随着离体时间延长,白梭梭的下降趋势明
显.离体 24 h时,梭梭同化枝的含水率为 73. 9%,白
梭梭同化枝含水率为 53. 2%,二者在 24 h内的失水
速率较为相似,但白梭梭日失水速率(11. 5%)略大
于梭梭(10. 6%).在随后的24 h内,白梭梭含水率
图 2 梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数成像
Fig. 2 Images of chlorophyll fluorescence parameters of Halox-
ylon ammodendron and H. persicum.
同化枝上数字为叶绿素荧光实际测定值 Numbers in assimilating
shoots were the measured values of chlorophyll fluorescence.
32328 期 沈 亮等:脱水胁迫和光合日变化对梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数的影响
表 1 梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数
Table 1 Chlorophyll fluorescence parameters of Haloxylon ammodendron and H. persicum (n =30)
物种 Species Fo Fm Fv /Fo Fv /Fm qN qP ETR
梭梭 H. ammodendron 0. 04 ± 0. 00a 0. 31 ± 0. 02a 6. 10 ± 0. 23a 0. 89 ± 0. 06a 0. 83 ± 0. 03a 0. 24 ± 0. 03a 27. 45 ± 3. 83a
白梭梭 H. persicum 0. 03 ± 0. 00b 0. 20 ± 0. 01b 4. 74 ± 0. 16b 0. 82 ± 0. 01a 0. 74 ± 0. 03b 0. 16 ± 0. 02b 18. 76 ± 2. 44b
同列不同字母表示差异显著(P < 0. 05)Different letters in the same column meant significant difference at 0. 05 level. 下同 The same below.
降幅较快,当离体胁迫 48 h 时,梭梭的含水率为
67. 0%,而白梭梭的含水率为 29. 9%,其中梭梭含
水率在 48 h内比鲜质量时降低了 19. 0%,而白梭梭
的含水率比鲜质量时降低了 50. 3% .这表明在严重
干旱胁迫条件下,梭梭可能比白梭梭更能适应恶劣
的沙漠环境,从而广泛分布在我国西北地区.
离体脱水胁迫下,梭梭和白梭梭的叶绿素荧光
参数差异较大(图 3). 刚采集的梭梭和白梭梭同
化枝的 Fv /Fm分别为 0. 81 和 0. 83,后者比前者高
2. 6% .随着离体时间的延长,白梭梭的 Fv /Fm逐渐
降低.当离体 12 h 时,梭梭的 Fv /Fm开始显著低于
梭梭;当离体 24 h 时梭梭的 Fv /Fm为 0. 72,而白梭
梭为 0. 42,前者比后者高出了 71. 4% . 这表明在轻
度脱水胁迫发生时,二者均具有较高的光合电子传
递活性,但在离体脱水情况下,梭梭的保水性能优于
白梭梭.梭梭能够保持较强的光合电子传递活性,表
明它更能适应干旱的沙漠环境.
刚采收的白梭梭 Fv /Fo高于梭梭,当离体 12 h
时,梭梭的 Fv /Fo高于白梭梭;此后二者差异不断增
大,当离体 48 h时,梭梭的 Fv /Fo为 2. 94,白梭梭为
0. 07.这表明轻度脱水胁迫发生时,梭梭和白梭梭的
PSⅡ光合作用潜在活性均较高,但白梭梭离体 48 h
后,其光能潜在活性基本丧失,而梭梭因保水性能较
好,还具有较高的光合作用活性.离体脱水胁迫发生
时,梭梭和白梭梭的 qN值较为相似,分别为 0. 71 和
0. 72;之后二者的变化趋势发生较大差异,梭梭在离
图 3 梭梭和白梭梭含水率及叶绿素荧光参数随脱水时间的变化
Fig. 3 Variations of moisture content and chlorophyll fluorescence parameters of Haloxylon ammodendron and H. persicum with dehydration
time.
4232 应 用 生 态 学 报 26 卷
体 48 h时的 qN值为 0. 52,而白梭梭的 qN为 0. 05.这
表明严重脱水胁迫发生时,梭梭还保持着较高的光
能散热机制,而白梭梭基本丧失该功能.离体脱水胁
迫发生时,梭梭的 qP为 0. 54,白梭梭为 0. 35;梭梭的
ETR为 21. 93,而白梭梭的 ETR为 29. 49.当离体脱
水胁迫 12 h后,二者的 qP和 ETR均迅速下降;离体
脱水胁迫 48 h后,二者的 qP和 ETR 值较为相似.这
表明脱水胁迫时,二者光能转化成化学能及光合速
率均受到严重的影响.
2. 4 梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数的日变化
由图 4 可以看出,梭梭总叶绿素含量高于白梭
梭.梭梭总叶绿素含量为 0. 21 ~ 0. 33 mg·g -1,以
8:00、10:00、14:00 和 18:00 含量较高,而 12:00 和
16:00 含量较低,且叶绿素含量日变化曲线呈“W”
型.白梭梭总叶绿素含量为 0. 24 ~ 0. 28 mg·g -1,以
10:00 含量最高,18:00 含量最低,且总叶绿素含量
日变化差异不大,呈现较为平缓的“阶梯”型.
梭梭叶绿素荧光特征的日变化差异较大(图
4).其中,Fo、Fm、Fv /Fo和 Fv /Fm在一天内均具有显
著差异,且呈现“V”型. Fv /Fo为 4. 42 ~ 5. 40,8:00和
18:00 较高,而 12:00 最低,表明梭梭在早晨和傍晚
PSⅡ潜在活性较高,而 12:00 光能转化能力较弱.
Fv /Fm为 0. 81 ~ 0. 85,8:00 和 18:00 较高,而 14:00
较低,表明梭梭在早晨和傍晚具有较高的光合电子
传递活性,发生光抑制的可能性较小,可以高效捕获
光能并转化成生物化学能,而 12:00 和14:00梭梭光
合作用能力较弱,出现了光抑制现象. 梭梭 qN为
0. 66 ~ 0. 79,其变化曲线呈“V”型,即早晨和傍晚值
最高,中午值最低,表明梭梭保护 PSⅡ反应中心的
热辐射性能力在 18:00 最强,而 14:00 热能辐射能
力最弱.梭梭的 qP为 0. 16 ~ 0. 20,但变化曲线呈现
倾斜向上的“阶梯”型,以 18:00 光合电子传递效率
最高,而 8:00 最低. ETR 以 18:00 数值最高,14:00
最低,表明梭梭 18:00 光能转化效率和表观电子传
递效率均最强,而 14:00 光能捕获效率和表观电子
传递效率最弱.
白梭梭叶绿素荧光特征日变化差异也较大(图
4) ,除qP差异不显著外,Fo、Fm、Fv / Fo、Fv / Fm、qN和
图 4 梭梭和白梭梭总叶绿素和叶绿素荧光参数的日变化
Fig. 4 Diurnal variation of total chlorophyll content and chlorophyll fluorescence parameters of Haloxylon ammodendron and H. persi-
cum.
52328 期 沈 亮等:脱水胁迫和光合日变化对梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数的影响
ETR指标均呈现显著差异. 其中,Fv /Fo、Fv /Fm、qN
和 ETR变化曲线呈现“V”型,而 qP变化曲线呈现倒
“V”型. Fv /Fo为 4. 26 ~ 6. 11,其中 8:00 最高,而
12:00最低;Fv /Fm为 0. 80 ~ 0. 87,其中 8:00 最高,
而14:00最低.这表明白梭梭早晨的光合电子传递活
性及高效捕获光能并转化成生物化学能的能力较
强,而在中午光合作用能力较弱,光抑制比较明显.
qN数值变化范围为 0. 58 ~ 0. 75,其中 18:00 最高,而
14:00最低,这表明白梭梭在 18:00 的光合电子传递
效率最高,而 14:00 的光合电子传递效率较低. qP为
0. 10 ~ 0. 15,其中 12:00 最高,16:00 最低,这表明
白梭梭在 12:00 的 PSⅡ反应中心的热辐射能力最
强,而 16:00 的热能辐射能力最弱,这与白梭梭中午
出现的光合“午休”现象有关.白梭梭 ETR 为 13. 56
~ 21. 61,其中 8:00 最高,14:00 最低,这表明白梭
梭在8:00的光能捕获效率和 18:00 的表观电子传递
效率均较强,而 14:00 的光能转化效率和表观电子
传递效率较弱.
3 讨 论
3. 1 离体脱水胁迫下梭梭和白梭梭叶绿素荧光参
数的变化
本研究中,梭梭和白梭梭在离体脱水胁迫下叶
绿素荧光特性差异显著. 由于梭梭具有较强的保水
能力,其叶绿素荧光特性在离体较长时间内仍然保
持较高光合作用性能. 梭梭同化枝在离体 48 h 后,
与鲜质量相比,含水率减少了 19. 0%,但梭梭 PSⅡ
仍具有较强的光合电子传递活性,并且能够保持较
高的光合作用能力.白梭梭同化枝含水率较低,干旱
胁迫 48 h后,与鲜质量相比,含水率减少了 50. 3%,
严重失水导致白梭梭的光合电子传递活性、光能潜
在活性以及光能转化成化学能的能力受到严重影
响.因此,水分可能是限制白梭梭光合作用及其地理
分布的主要环境因子.此外,脱水胁迫会引起光化学
效率降低,捕获的光能超过其光合作用所需要的能
量,过多的激发能会以热能的形式耗散掉,以保护光
合器官免受破坏[16,28].离体 0 ~ 36 h,梭梭和白梭梭
的 qN值均降低缓慢,但梭梭的降低幅度明显低于白
梭梭,表明二者在胁迫初期都可能启动了叶黄素循
环来防止过剩激发能对光合机构的破坏[17]. 离体
36 h后,白梭梭的 qN值迅速降低,而梭梭的 qN值仍
然降低缓慢,这表明严重脱水胁迫发生时,白梭梭基
本丧失了以热能耗散过剩激发能的能力,而梭梭可
能启动了其他过剩能量的耗散机制,使其仍保持着
较高的热能耗散机制,促使梭梭保持较高的光合作
用能力.
3. 2 梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数的日变化
马婕等[29]研究表明,新疆甘家湖地区梭梭净光
合速率(Pn)、蒸腾速率(n)、气孔导度(gs)的日变化
曲线呈现高等植物常见的倒置“W”型,且具有光合
“午休”特点. 这与甘家湖地区地下水位较高、土壤
肥沃及气候湿润,梭梭在一天内出现了 2 次光合作
用高峰有关.本研究表明,梭梭和白梭梭叶绿素荧光
变化曲线均呈“V”型,这可能与宁夏地区秋季早晨
及傍晚产生的露水使二者的同化枝充分吸水,促进
了光合作用的高效运转有关.中午天气炎热干燥,梭
梭和白梭梭以气孔关闭减少水分流失,通过“午休”
现象应对不良逆境.因此,二者光合作用的日变化与
水分含量的多少有很大的关系. 光照强度可以显著
影响植物的光合作用能力,对任何一种植物来说,最
大的光能转化效率并不等于最大的光合速率,低光
强下几乎所有的激发能被光合电子所利用,因此,梭
梭和白梭梭在光强较弱的早晨及傍晚光合速率较
高,这与二者同化枝吸收的光能最大限度地用于光
化学反应有关. 田媛等[30]研究表明,白梭梭的净光
合速率(Pn)与一天内的光量子通量密度(PPFD)显
著相关. 本研究也发现,新疆白梭梭分布区的光照
强度(2637 lx)低于宁夏地区的光照强度(2869
lx)[31],白梭梭在宁夏地区的长势不好可能与该地
区光照强度较强有关. 梭梭在新疆、青海、甘肃及宁
夏等地均长势较好,表明光照强度可能不是梭梭光
合作用的限制因子.
3. 3 梭梭和白梭梭的生态适应性
生态适应性是指在一定地域内,植物生长发育
所需要的最适生态因子需求与该地域环境中实际可
提供的生态条件吻合的程度[32].每种植物都有最适
宜的生长地区,在一个非适宜生长的地区都有其最
主要的限制因子. 除遗传因素外,环境因子中的水
分、光照、温度等因素均可以影响植物在不同地区的
生态适应性.梭梭在我国西北地区广泛分布,而白梭
梭仅分布在新疆艾比湖、额尔齐斯河和乌伦古河及
降雨量丰沛的伊犁等地区[33]. 这说明与梭梭相比,
白梭梭的生态幅较窄,可能限制其分布的环境因子
较多.本研究推测,水分及光照强度可能是白梭梭生
态适应性的主要限制因子. 田媛等[30]研究表明,白
梭梭是一种高光合、高蒸腾、高水分利用效率的物
种.田间调查发现,在相同的水肥管理条件下,宁夏
肉苁蓉种植基地的白梭梭长势较弱,死亡率远高于
6232 应 用 生 态 学 报 26 卷
梭梭;白梭梭在水分充足的新疆甘家湖地区长势较
好.这表明水分可能是白梭梭生态分布的限制因子.
在宁夏地区种植的梭梭叶绿素荧光参数均高于白梭
梭,这与梭梭对宁夏种植气候环境具有较好的适应
性,而白梭梭仅适合生长在新疆部分地区的事实一
致[33].一般情况下,健康植物叶片的 Fv /Fm参数比
较稳定,当植物生长在不适宜的环境条件下,叶片吸
收的过剩光能就会引起 Fv /Fm的降低而发生光抑
制[8,34].梭梭 Fv /Fm显著高于白梭梭,表明梭梭在宁
夏地区长势良好,而白梭梭因水分及光照强度差异
在宁夏地区受到逆境胁迫,长势不良.
由于外界生态环境的影响,植物在进化过程中,
逐渐演化出各种各样的形态结构来适应所生长的环
境[35]. Lyshede[36]研究表明,同化枝的形成是植物在
干旱条件下进化的顶峰,不同植物在不同的环境条
件下进化出不同的同化枝类型. 梭梭为了适应干旱
环境,减少水分散失,其同化枝浓绿,叶顶端钝圆且
富含水分;而白梭梭因同化枝纤细且水分含量较少,
叶顶端呈锥形刺状,二者同化枝的表观差异可能与
其长期进化过程中生长环境的水分差异有关.因此,
梭梭和白梭梭的生态适应性是其形态结构、生理生
化及环境因子综合作用的结果.本研究推测,影响白
梭梭地理分布的主要限制因子是水分,光照也起到
显著影响;而梭梭的生态幅较宽,对水分及光照等因
子的生态适应性较强. 由于本研究仅在宁夏地区开
展了梭梭和白梭梭的生态适应性评价,为验证水分
及光照是否对二者的光合作用及生态分布具有显著
影响,本研究还需要在新疆白梭梭野生分布区进行.
此外,本研究仅在离体脱水条件下分析了梭梭和白
梭梭的叶绿素荧光特性变化,得到梭梭比白梭梭更
能适应干旱环境,以后有待于对整株植物的干旱胁
迫开展相关研究,以进一步阐明其适应西北干旱荒
漠区的生理机制.
参考文献
[1] Hu S-Z (胡式之). The Haloxylon in northwest of Chi-
na. Acta Phytoecologica Sinica (植物生态学报) ,
1963,1(1) :81 - 109 (in Chinese)
[2] Chinese Pharmacopoeia Commission (国家药典委员
会). Pharmacopoeia of the People’s Republic of Chi-
na. Beijing:China Medical Science Press,2010 (in
Chinese)
[3] Tu P-F (屠鹏飞) ,He Y-P (何燕萍) ,Lou Z-C (楼之
岑). Herbalogical studies on Rou Congrong. China
Journal of Chinese Materia Medica (中国中药杂志) ,
1994,19(1) :3 - 5 (in Chinese)
[4] Liu Y-X (刘瑛心). Desert Flora in China. Volume 1.
Beijing:Science Press,1985 (in Chinese)
[5] Liu Y-X (刘瑛心). Desert Flora in China. Volume 2.
Beijing:Science Press,1987 (in Chinese)
[6] Guo Q-S (郭泉水) ,Wang C-L (王春玲) ,Guo Z-H
(郭志华) ,et al. Geographic distribution of existing
Haloxylon desert vegetation and its patch character in
China. Scientia Silvae Sinicae (林业科学) ,2005,41
(5) :2 - 7 (in Chinese)
[7] Wang C-L (王春玲) ,Guo Q-S (郭泉水) ,Tan D-Y
(谭德远) ,et al. Haloxylon ammodendron community
patterns in different habitats along southeastern edge of
Zhunger Basin. Chinese Journal of Applied Ecology (应
用生态学报) ,2005,16(7) :1224 - 1229 (in Chi-
nese)
[8] Demmig-Adams B,Adams-Ⅲ WW. Xanthophyll cycle
and light stress in nature:Uniform response to excess
direct sunlight among higher plant species. Planta,
1996,198:460 - 470
[9] Demmig-Adams B,Adams-Ⅲ WW. Photoprotection and
other responses of plants to high light stress. Annual Re-
view of Plant Biology,1992,43:599 - 626
[10] Shen Y-G (沈允钢) ,Cheng J-F (程建峰). Photosyn-
thesis and agricultural production. Plant Physiology
Communications (植物生理学通讯) ,2010,46(6) :
513 - 516 (in Chinese)
[11] Genty B,Briantais JM,Baker NR. The relationship be-
tween the quantum yield of photosynthetic electron trans-
port and quenching of chlorophyll fluorescence. Biochi-
mica et Biophysica Acta:General Subjects,1989,990:
87 - 92
[12] Zhang G-W (张国伟) ,Zhang L (张 雷) ,Tang M-X
(唐明星) ,et al. Diurnal variation of gas exchange and
chlorophyll fluorescence parameters of cotton functional
leaves under effects of soil salinity. Chinese Journal of
Applied Ecology (应用生态学报) ,2011,22(7) :
1771 - 1781 (in Chinese)
[13] Xiang F (向 芬) ,Zhou Q (周 强) ,Tian X-R (田
向荣) ,et al. Leaf morphology and PSⅡ chlorophyll
fluorescence parameters in leaves of Sinosenecio jishouen-
sis in different habitats. Acta Ecologica Sinica (生态学
报) ,2014,34(2) :337 - 344 (in Chinese)
[14] Tikkanen M,Mekala NR,Aro EM. Photosystem Ⅱ
photoinhibition-repair cycle protects photosystem Ⅰ from
irreversible damage. Biochimica et Biophysica Acta:
Bioenergetics,2014,1837:210 - 215
[15] Neto MCL,Lobo AKM,Martins MO,et al. Dissipation
of excess photosynthetic energy contributes to salinity
tolerance:A comparative study of salt-tolerant Ricinus
communis and salt-sensitive Jatropha curcas. Journal of
Plant Physiology,2014,171:23 - 30
[16] Su P-X (苏培玺) ,Yan Q-D (严巧娣). Photosynthet-
ic characteristics of C4 desert species Haloxylon ammo-
dendron and Calligonum mongolicum under different
moisture conditions. Acta Ecologica Sinica (生态学
报) ,2006,26(1) :75 - 82 (in Chinese)
[17] Shi Z (施 征) ,Shi S-Q (史胜青) ,Zhang Z-X (张
72328 期 沈 亮等:脱水胁迫和光合日变化对梭梭和白梭梭叶绿素荧光参数的影响
志翔) ,et al. Effects of drought and excess salt stress
on characteristics of chlorophyll fluorescence of leaves in
Haloxylon ammodendron. Journal of Beijing Forestry
University (北京林业大学学报) ,2012,34(3) :20 -
25 (in Chinese)
[18] Chen J (陈 君) ,Yu J (于 晶) ,Xu R (徐 荣) ,
et al. Study on reproduction biology of Cistanche deserti-
cola seedling emergence and flowering. China Journal of
Chinese Materia Medica (中国中药杂志) ,2007,32
(17) :1729 - 1732 (in Chinese)
[19] Li H-S (李合生). Principles and Techniques of Plant
Physiology and Biochemical Experiment. Beijing:High-
er Education Press,2000 (in Chinese)
[20] Barrs HD,Weatherley PE. A re-examination of the rela-
tive turgidity technique for estimating water deficit in
leaves. Australian Journal of Biological Science,1962,
15:413 - 428
[21] Schreiber U. Pulse-amplitude-modulation (PAM )
fluorometry and saturation pulse method:An overview / /
Papageorgiou GC,Govindjee,eds. Chlorophyll a Fluo-
rescence. Berlin:Springer,2004:279 - 319
[22] Zhang S-R (张守仁). A discussion on chlorophyll fluo-
rescence kinetics parameters and their significance. Chi-
nese Bulletin of Botany (植物学通报) ,1999,16(4) :
444 - 448 (in Chinese)
[23] Wang K-B (王可玢) ,Xu C-H (许春辉) ,Zhao F-H
(赵福洪) ,et al. The effects of water stress on some in
vivo chlorophyll a fluorescence parameters of wheat flag
leaves. Acta Biophysica Sinica (生物物理学报) ,
1997,13(2) :273 - 278 (in Chinese)
[24] Lichtenthaler HK. Applications of chlorophyll fluores-
cence in photosynthesis research,stress physiology,hy-
drobiology and remote sensing. Plant Growth Regula-
tion,1990,9:280 - 281
[25] Li X (李 晓) ,Feng W (冯 伟) ,Zeng X-C (曾晓
春). Advances in chlorophyll fluorescence analysis and
its uses. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica (西
北植物学报) ,2006,26(10) :2186 - 2196 (in Chi-
nese)
[26] Xu D-Q (许大全) ,Zhang Y-Z (张玉忠) ,Zhang R-X
(张荣铣). Photoinhibition of photosynthesis in plants.
Plant Physiology Communications (植物生理学通讯) ,
1992,28(4) :237 - 244 (in Chinese)
[27] Bilger W,Bjrkman O. Relationships among violaxan-
thin deepoxidation,thylakoid membrane conformation,
and nonphotochemical chlorophyll fluorescence quen-
ching in leaves of cotton (Gossypium hirsutum L.).
Planta,1994,193:238 - 246
[28] Shi Z (施 征) ,Shi S-Q (史胜青) ,Xiao W-F (肖文
发) ,et al. Influence of dehydration on characteristics of
chlorophyll fluorescence of detached leaves in Haloxylon
ammodendron and Populus euphratica. Forest Research
(林业科学研究) ,2008,21(4) :566 - 570 (in Chi-
nese)
[29] Ma J (马 婕) ,Yang A-X (杨爱霞) ,Ma X-F (马晓
飞). Study on photosynthetic characteristics of degrada-
tion Haloxylon in Ganjiahu Haloxylon forest national na-
ture reserve. Arid Environmental Monitoring (干旱环境
监测) ,2012,26(1) :8 - 14 (in Chinese)
[30] Tian Y (田 媛) ,Taxiplat T (塔西甫拉提·特依
拜) ,Xu G-Q (徐贵青). Gas exchange of Haloxylon
ammodendron and H. persicum. Arid Zone Research (干
旱区研究) ,2014,31(3) :542 - 549 (in Chinese)
[31] Chen S-L (陈士林) ,Suo F-M (索凤梅) ,Han J-P
(韩建萍) ,et al. Analysis on ecological suitability and
regionalization of traditional Chinese medicinal materi-
als. Chinese Traditional and Herbal Drugs (中草药) ,
2007,38(4) :481 - 487 (in Chinese)
[32] Liu H-T (刘海涛) ,Jia Z-Q (贾志清) ,Zhu Y-J (朱
雅娟) ,et al. Water physiological characteristics and
leaf traits of different aged Salix cheilophila on alpine
sandy land. Chinese Journal of Applied Ecology (应用生
态学报) ,2012,23(9) :2370 - 2376 (in Chinese)
[33] Zhou M-D (周明冬) ,Chen G-Q (陈国庆) ,Li X-J
(李晓瑾) ,et al. Suitable producing area of Haloxylon
persicum in Xinjiang. Grass-Feeding Livestock (草食家
畜) ,2014(2) :34 - 38 (in Chinese)
[34] Maxwell K,Johnson GN. Chlorophyll fluorescence:A
practical guide. Journal of Experimental Botany,2000,
51:659 - 668
[35] Chen Q-C (陈庆诚) ,Sun Y-W (孙仰文) ,Zhang G-L
(张国樑). A preliminary study on the morphology and
anatomy of the dominants of the vegetations distributing
along the middle and low drainage basin of the Shorler
River based on the view point of ecology. Journal of
Lanzhou University (兰州大学学报) ,1961,12(3) :
61 - 96 (in Chinese)
[36] Lyshede OB. Xeromorphic features of three stem assimi-
lating in relation to their ecology. Botanical Journal of
the Linnean Society,1979,78:85 - 98
作者简介 沈 亮,男,1986 年生,博士研究生. 主要从事药
用植物栽培与保护研究. E-mail:shenliang08@ 126. com
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