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黄槿内生真菌的次级代谢产物及其生物活性研究



全 文 :黄槿内生真菌的次级代谢产物
及其生物活性研究△

李丹,朱天骄,顾谦群,李德海*
(教育部海洋药物重点实验室,中国海洋大学医药学院,山东 青岛,266003)
摘 要:目的 对1株分离自广西红树林植物黄槿(Hibiscus tiliaceus)的内生真菌Penicilliumsp.LD-68的抗
肿瘤活性成分进行研究。方法 采用溶剂萃取、柱色谱层析及制备 HPLC等方法对菌株发酵产物进行活性追
踪分离,通过理化性质及波谱学手段进行化学结构鉴定,以SRB和 MTT法评价化合物的抗肿瘤活性。结果
从中分离得到5个弯孢霉菌素类化合物,其结构分别鉴定为curvularin(1)、dehydrocurvularin(2)、11-β-Hy-
droxy-12-Oxocurvularin(3)、11-β-Hydroxycurvularin(4)、11-α-Hydroxycurvularin(5)。化合物1~5对 A549、
hela、BEL-7402、K562 4种人肿瘤细胞株具有不同程度的抑制作用,其中化合物2、3、4、5对hela细胞具有较
好的抗肿瘤细胞活性,IC50分别为3.99、7.75、10.00、5.10μmol·L
-1。结论 首次测定了化合物3~5对
A549、hela、BEL-7402、K562 4种肿瘤细胞系的细胞毒活性,其中对hela细胞显示出较高的抑制率。
关键词:红树林内生真菌;Hibiscus tiliaceus;Penicilliumsp.;弯孢霉菌素;抗肿瘤
中图分类号:R931   文献标识码:A   文章编号:1002-3461(2012)06-0017-06
Secondary metabolites and their bioactivities of Hibiscus tiliaceus L.
endophytic fungi
LI Dan,ZHU Tian-jiao,GU Qian-qun,LI De-hai*
(Key Laboratory of Marine Drugs,Chinese Ministry of Education,School of Medicine and Pharmacy,
Ocean University of China,Qingdao 266003,P.R.China)
Abstract:Objective To investigate the antitumor bioactive ingredient of a endophytic fungus Penicillium
sp.LD-68isolated from Guang Xi mangrove plant Hibiscus tiliaceus L..Methods The extract of the
fungus was purified by solvent extraction,column chromatography and preparative HPLC guided by the
bioassay results.Their structures were established by physicochemical properties and spectroscopic a-
nalysis.The antitumor activities were evaluated by SRB method and MTT method.Results Five com-
pounds were identified as curvularin(1),dehydrocurvularin(2),11-β-Hydroxy-12-Oxocurvularin(3),
11-β-Hydroxycurvularin(4),11-α-Hydroxycurvularin(5).Compounds 1~5 showed inhibitory activi-
ties to four kinds of human tumor cel lines including A549,hela,BEL-7402and K562,and compounds
2~5 have more potential antitumor activities against hela cels,with IC50values of 3.99,7.75,10.00
and 5.10μM,respectively.Conclusion Compounds 3~5 are reported their cytoxic activities against the
four kinds of human tumor cel lines,A549,hela,BEL-7402and K562for the first time,and exhibiting
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中国海洋药物杂志2012年12月第31卷第6期 Chin J Mar Drugs,2012December,Vol.31No.6
①△基金项目:高等学校博士学科点专项科研基金(20100132120026);山东省优秀中青年科学家科研奖励基金计划(BS2010HZ027);
中国海洋大学青年英才工程科研支持经费资助
 作者简介:李丹(1988-),女,硕士研究生,主要从事海洋微生物活性次级代谢产物研究。
*通讯作者:李德海,男,副教授 Tel:0532-82031619;fax:0532-82033054;E-mail:dehaili@ouc.edu.cn
DOI:10.13400/j.cnki.cjmd.2012.06.004
more selectivities to hela cel line.
Key words:mangrove plant endophytic fungi;Hibiscus tiliaceus;Penicilliumsp.;curvularin;antitu-
mor
  红树林是生长在热带和亚热带潮间带的海洋
木本植物群落,素有“海上森林”之美称,是世界上
珍稀濒危的植物,具有很高的观赏和科考价值,承
含着丰富而多样的微生物。由于红树林生态环境
有着不同于海洋和陆地的性质,赋予了红树林内
生微生物产生不同于其他生态系统的活性物质的
潜在可能性,其中对于内生真菌的研究尤为引人
注目[1-4]。目前已分离鉴定的红树林真菌超过280
种,成为海洋真菌的第二大类群[5]。植物内生真
菌(Endophytic fungi)一般是指其整个生活史或
生活史的某个阶段生活在健康植物的组织中,形
成不明显病症的一类真菌。一些生长在植物体特
殊环境中的真菌,不但对促进宿主植物的生长发
育、增强抗逆性起到重要作用[6],而且还能产生与
宿主相同或相似的生物活性物质[7]。近年已从红
树林真菌中发现了具有药用价值的新型化合物如
aspergiolides A-D[8-9]、CA1189[10]、penicinoline[11]、
secalonic acid A[12]、talaperoxides B和talaperox-
ides D[13]等。
本文对广西红树林内生真菌活性代谢产物的
研究工作中,分离出多种具有抗肿瘤、抗病毒等活
性的新颖结构[14-18]。近期,作者针对采集自广西
半红树植物如杨叶肖槿、黄槿、海芒果等12个样
品中,共分离纯化菌株86株。其中1株从黄槿
(Hibiscus tiliaceus)中分离到的内生真菌Peni-
cilliumsp.LD-68,其乙酸乙酯提取物对P388细
胞表现出了明显的细胞毒活性。对该菌株的发酵
产物进行活性追踪分离,共得到5个弯孢霉菌素
类化合物,分别为curvularin(1)、dehydrocurvula-
rin (2)、11-β-Hydroxycurvularin (3)、11-α-
Hydroxycurvularin (4)、11-β-Hydroxy-12-Ox-
ocurvularin(5)(见图1)。本文对LD-68菌株活性
次级代谢产物的提取分离,结构鉴定和生物活性
工作进行报道。
1 实验部分
1.1 实验仪器和试剂
核磁共振仪(日本Jeol JNM-ECP600型);紫
外光谱仪(Beckman DUR640型);质谱仪(Mari-
ner API-TOF型);旋光仪(Atago Co.Ltd Polax
–L型);制备高效液相色谱采用 Waters公司产
品(Waters 600泵,Waters 996二极管阵列检测
器,Milennium32工作站,Capcel Pak C18 柱:
5μm,4.6mm×250mm );Eyelan-N型旋转薄膜
蒸发仪(Tokyo Rikakikai公司);摇床TC-C-100R
(日本高崎科学器械株式会社);洁净工作台(苏净
集团安泰公司);Sephadex LH-20(Pharmacia公
司);硅胶 H (青岛海洋化工厂)。胎牛血清(FBs)
和RP-MI-1640细胞培养基分别为 Hyclone公司
和Gibco BRL公司产品;磺酰罗丹明 B (SRB)
(Sigma公司)。常规提取分离用甲醇、丙酮、乙酸
乙酯、石油醚、氯仿等均为工业用化学纯产品,重
蒸后使用,液相色谱甲醇为色谱纯。
1.2 菌株的分离
1.2.1 样品来源
供分离的样品来自广西红树林区域的杨叶肖
槿、黄槿、海芒果等植物的叶、枝干。
1.2.2 培养基配方
PDA培养基组成:葡萄糖20g,琼脂20g,氯霉
素1g,土豆200g,陈海水500mL,淡水500mL,
pH=6.0。
沙式培养基:蛋白胨10g,NaCl 5g,葡萄糖
40g,淡水1000mL,pH=5.6。
马丁式培养基:葡萄糖10g,蛋白胨5g,KH2
PO41g,MgSO4·7H2O 0.5g,1/3000的孟加拉
红100mL,琼脂15~20g,陈海水500mL,淡水
500mL。
1.2.3 分离方法
无菌状态下取植物样品,用无菌水冲洗2~3
次,75%酒精冲洗3次,无菌水冲洗2~3次。将
组织切块,置于匀浆器中,捣碎至黏稠状,加入无
菌水搅匀,并吸取一定量至培养基中均匀涂布,
28℃恒温培养[19]。待菌丝长出后,挑取尖端菌丝
移至新的培养基上,纯化后保存备用。
1.3 活性初筛及生物活性测试
从固体斜面培养基上取适量接种到内装
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Chin J Mar Drugs,2012December,Vol.31No.6 中国海洋药物杂志2012年12月第31卷第6期
10mL发酵培养基的试管中,在28℃、240r/min
的条件下于试管摇床中培养9d。在发酵物中加
入乙酸乙酯10mL,将菌体超声破碎,静置过夜,
取上清液真空低温浓缩至干。干燥物除盐后称重
加适量甲醇溶解,供测试活性和TLC分析。采用
丽丝胺罗丹明B(SRB)法进行生物活性测试[20]。
1.4 发酵培养及提取
菌株Penicilliumsp.LD-68发酵条件为:静
置培养,PDB培养基(培养基配方:葡萄糖20g,氯
霉素1g,土豆200g,陈海水500mL,淡水500mL,
pH=6.0)。保藏菌株经复苏后,挑取尖端菌丝至
装液量为300mL/1000mL的PDA培养液中,共
培养30L,发酵温度28℃,发酵时间25d。将菌株
的发酵培养物(30L)抽滤,分为发酵液和菌丝体
2个部分。发酵液用乙酸乙酯萃取,菌丝体用
80%丙酮水溶液超声破碎提取,减压浓缩至不含
丙酮后,用乙酸乙酯萃取。菌丝体与发酵液的乙
酸乙酯萃取液合并,减压浓缩得萃取物10g。
1.5 化合物分离纯化
将菌株发酵培养物的粗浸膏(10g)进行减压
硅胶柱层析(100~200目),以石油醚-丙酮,氯仿-
甲醇为溶剂进行梯度洗脱,分为3个组分(Fr.1~
3),组分Fr.1以二氯甲烷进行重结晶,得到化合
物1(100mg)。组分Fr.2经凝胶柱色谱(Sepha-
dex LH-20,甲醇)分离,高效液相色谱分离,得到
化合物2(20mg)和化合物3(9mg)。组分Fr.3
经凝胶柱色谱 (Sephadex LH-20,二氯甲烷:
甲醇=1∶1)、中压色谱、高效液相色谱分离,得到
化合物4(20mg)和化合物5(21mg)。
2 结果与讨论
2.1 目标菌株确定
PDA培养基、沙式培养基、马丁式培养基共分
离得到植物共生真菌86株,以小鼠白血病细胞株
P388通过SRB法初筛,获得活性菌株48株,其中
LD-68发酵产物的乙酸乙酯提取物在100μg·
mL-1对小鼠白血病P388的抑制率为38.62%,
其HPLC指纹图谱显示代谢产物中具有系列相似
紫外吸收(258nm,290nm)化合物。
2.2 化合物结构鉴定
图1 化合物1~5的结构
Fig.1 The structure of compound 1~5
  化合物1:淡黄色无定形固体,[α]20D = -47.7°
(c=0.1,MeOH),ESI-MS在m/z293.2处给出
分子离子峰[M+H]+,m/z 315.2处给出[M+
Na]+峰,提示该化合物相对分子质量为292,结
合1 H谱、13 C谱和 DEPT谱提示其分子式为C16
H20O5。1 H NMR (600MHz,DMSO-d6)给出12
个氢信号,包括2个活泼氢信号[δ:9.93(1H,s,
OH),9.75(1H,s,OH)],2个间位芳香氢信号
[δ:6.27(1H,d,J=2.2Hz,H-6),6.17(1H,
d,J=2.2Hz,H-4)],1个连氧的次甲基信号[δ:
4.83(1H,m,H-15)],1个甲基信号[δ:1.07
(3H,d,J=6.6Hz,H-15CH3)],2个亚甲基
信号分别为[δ:3.70(1H,d,J =15.4Hz),3.
60(1H,d,J = 15.4Hz),H-2)]和[δ:2.98
(1H,dd,J=13.7,8.8Hz),2.67(1H,dd,J
=13.2,9.9Hz),H-10)],在高场区(δ:1.65~
1.13)还有其他4个相互耦合的亚甲基片段,提示
分子中存在链状片段结构。13 C NMR (150MHz,
DMSO-d6)和DEPT谱结合可见16个碳信号,包
括1个酯羰基[δ:170.8(C-1)],1个酮羰基[δ:
206.6(C-9)],与氢谱对应的四取代苯环的碳信号
[δ:135.8 (C-3),111.5 (C-4),159.7 (C-5),
102.1(C-6),157.9(C-7),120.2(C-8)],1个连
氧次甲基[δ:72.0(C-15)],1个甲基[δ:20.7(C-
15CH3)]和6个亚甲基[δ:39.1(C-2),43.5(C-
10),23.9(C-11),22.8(C-12),26.8(C-13),32.1
(C-14)]。由以上数据与文献[21,22]比对,确定
化合物1为(S)-curvularin。
化合物2:淡黄色结晶,ESI-MS在m/z291.1
处给出分子离子峰[M+H]+,m/z 313.2处给出
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中国海洋药物杂志2012年12月第31卷第6期 Chin J Mar Drugs,2012December,Vol.31No.6
[M+Na]+ 峰,提示该化合物相对分子质量为
290,结合核磁谱提示其分子式为 C16H18O5。1 H
NMR(600MHz,DMSO-d6)给出10个氢信号,包
括2个活泼氢信号[δ:10.23(1H,s,OH),9.73
(1H,s,OH)],3个sp2杂化的次甲基信号[δ:
6.35(1H,dd,J=6.6,14.34Hz,H-10),6.30
(1H,d,J=15.36Hz,H-11),6.23(2H,s,H-
4,6],1个连氧的次甲基信号[δ:4.74(1H,m,
H-15)],1个甲基信号[δ:1.10(3H,d,J=6.0
Hz,H-15CH3)],2 个亚甲基信号分别为 [δ:
(3.40(1H,d,J=15.9Hz)3.34(1H,d,J=
15.9 Hz)H-2)]和[δ:(2.28 (1H,m)2.17
(1H,m)H-12)],在高场区(δ:1.85~1.38)还有
其他2个相互耦合的亚甲基片段,将化合物1和2
的氢谱比较,化合物2在高场区(δ:1.85~1.38)
处比1少了4个氢,但是低场(δ:6.35,6.30)处
出现了2个sp2杂化的氢,结合ESI-MS数据,提示
化合物1中的亚甲基可能变为双键,改变了周围
氢的化学位移,再与文献[23-24]比对,可以确定化
合物2为dehydrocurvularin。
化合物3:白色粉末,ESI-MS在m/z323.1处
给出分子离子峰[M+H]+,m/z345.1处给出[M
+Na]+峰,提示该化合物相对分子质量为322,
1 H NMR(600MHz,CDCl3)给出16个氢信号,
包括3个活泼氢信号[δ:8.49(1H,s,OH),
7.73(1H,s,OH),3.80(1H,s,11-OH)],2个
芳香氢信号[δ:6.29(1H,s,H-6),6.22(1H,
s,H-4)],2个连氧的次甲基信号[δ:4.94(1H,
m,H-15),3.87(1H,brs,H-11)],1个甲基信号
[δ:1.19(3H,d,J=6.06,H-15CH3)]和4个
亚甲基上的8个分别耦合裂分开的氢信号[δ:
3.49(1H,d,J=10.44,H-2),3.01(1H,brs,
H-2),3.36 (1H,d,J = 4.38,H-10),3.29
(1H,d,J =3.84,H-10),2.03(1H,brs,H-
13),1.70(1H,brs,H-13),1.62(1H,brs,H-
14),1.52(1H,brs,H-14)],结合弯孢霉菌素类
化合物的结构特点、化合物3的氢谱和ESI-MS数
据,可推测为11-Hydroxy-12-Oxocurvularin,再与
文献[25]数据比对,确定化合物3为11-β-Hy-
droxy-12-Oxocurvularin。
化合物4:黄色油状,ESI-MS在m/z309.1处
给出分子离子峰[M+H]+,m/z331.1处给出[M
+Na]+峰,m/z 347.1处给出[M+K]+峰,提示
该化合物相对分子质量为308,结合1 H 谱和与化
合物1比对,提示其分子式为C16H20O6。1 H NMR
(600MHz,CDCl3)给出11个氢信号,包括1个活
泼氢信号[δ:9.30(2H,brs,OH)],2个芳香氢
信号[δ:6.30(1H,s,H-6),6.16(1H,s,H-
4)],2个连氧的次甲基信号[δ:4.81(1H,m,H-
15),3.97(1H,brs,H-11)],1个甲基信号[δ:
1.05(3H,d,J=6.0,H-15CH3)],2个亚甲基
信号分别为[δ:(4.02(1H,d,J =16.5)3.48
(1H,d,J=16.5)H-2)]和[δ:(3.42(1H,d,
J=14.3)2.92(1H,dd,J=6.6,14.88)H-
10)],在高场区(δ:1.50~1.17)还有其他3个相
互耦合的亚甲基片段,由以上数据与化合物1的
氢谱比较,不同之处在于化合物4的2,10位亚甲
基氢化学位移比化合物1普遍偏低场,提示化合
物4中含有吸电子基团,且少了1个耦合的亚甲
基,多了11位的连氧次甲基信号,结合质谱信息
可以推测11位连接-OH,再与文献[26]数据比对
基本吻合,可基本确定化合物4为11-β-Hydroxy-
curvularin。
化合物5:黄色油状,ESI-MS数据与化合物4
一致,结合氢谱比对可知与化合物4为同分异构
体,分子式为 C16H20O6,1 H NMR (600 MHz,
DMSO-d6)给出12个氢信号,包括2个活泼氢信
号[δ:10.12 (1H,s,OH),9.90 (1H,s,
OH)],2个芳香氢信号[δ:6.31(1H,d,J =
2.22,H-6),6.18(1H,d,J =2.22,H-4)],2
个连氧的次甲基信号[δ:4.87(1H,m,H-15),
4.63(1H,d,J =5.46,H-11)],1个甲基信号
[δ:1.07(3H,d,J=6.6,H-15CH3)],2个亚
甲基信号分别为[δ:(3.78(1H,d,J =14.34)
3.58(1H,d,J =15.36)H-2)]和[δ:(3.17
(1H,d,J=4.44)2.88(1H,brs)H-10)],在
高场区(δ:1.62~1.23)还有其他3个相互耦合的
亚甲基片段,由以上数据与化合物4的氢谱比较,
不同之处在于2,10,11,15位的化学位移有差别,
推测化合物5同4相比是11-OH的构型不同,结
构为11-α-Hydroxycurvularin,再与文献[27]比
对,可知11-β-Hydroxycurvularin H-10的2个氢
信号化学位移差值在0.63~0.77之间,而11-α-
Hydroxycurvularin差值为0.22左右,且15位氢
02
Chin J Mar Drugs,2012December,Vol.31No.6 中国海洋药物杂志2012年12月第31卷第6期
的 化 学 位 移 11-β-Hydroxycurvularin 比 11-α-
Hydroxycurvularin偏高场,化合物5的H-10的2
个氢信号化学位移差值是0.29,与文献吻合,在此
可以确定化合物4为11-β-Hydroxycurvularin,化
合物5为11-α-Hydroxycurvularin。
2.3 化合物生物活性测定
选取A549、hela、BEL-7402、K562 4种肿瘤细
胞系,用 MTT法[28]以阿霉素为阳性药对化合物1
~5做活性测试,结果如表1所示,表明5个化合
物对BEL-7402细胞都没有抑制活性,化合物1的
抑制率普遍较低,化合物2~5对 A549和 K562
细胞具有中等抑制活性,而对hela细胞的抑制率
普遍较高,表明化合物具有显著的细胞选择性。
于是选取hela细胞用SRB法测定出化合物2~5
对hela细胞的IC50值分别为3.99、7.75、10.00和
5.10μmol/L,提示C-10与C-11位双键和C-11位
羟基的存在是活性所必需,而C-11位羟基的构型
不同能引起约1倍的强度变化,详细的构效关系
还需要进一步验证和研究。
表1 化合物1~5对4种肿瘤细胞系的细胞活性a
Table 1 Cytotoxicities of the compounds 1~5 against a panel of four tumor cel linesa /%
抑制率
Inhibition rate
A549 hela  BEL-7402 K562
阿霉素
doxorubicin
85.73  51.06  66.03  85.93
1  13.29  30.12  7.30  1.35
2  66.61  74.33  18.59  53.20
3  37.51  78.86  11.98  45.41
4  35.46  54.42  6.21  36.95
5  65.65  77.26  15.42  51.45
  a测试结果为抑制率(%),阿霉素浓度为1μmol/L;化合物1~5浓度为10μmol/L。表中:A549=人肺癌上皮细胞系;hela=人子宫颈
癌细胞系;BEL-7402=人肝癌细胞系;K562=人慢性髓性白血病细胞系。
2.4 结语
本研究采用活性追踪的方法从1株来自广西
红树林的内生真菌LD-68的发酵产物中分离鉴定
了5个弯孢霉菌素类化合物,研究表明,化合物2
比其他同系物具有更强的药理活性。据文献报道,
弯孢霉菌素类化合物对一系列肿瘤细胞具有细胞
毒活性,其中化合物1活性较低,2活性最高,对
NCI-H460、MCF-7、SF-268、MIA Pa Ca-2、Hela和
A549等多种人肿瘤细胞系具有较高的细胞毒活
性[23,29-30],化合物3未见有活性报道,化合物4和5
对NCI-H460、MCF-7、SF-268等肿瘤细胞具有中
等活性[23,29],并且对人肿瘤细胞的IC50值是正常原
纤维细胞的3~5倍,显示出对肿瘤细胞和正常细
胞的选择毒性[29]。本研究首次测定了化合物3~5
对A549、hela、BEL-7402、K562共4种肿瘤细胞系
的细胞毒活性,结果表明,化合物2~5对hela细
胞显示较高的抑制率。
参考文献
[1] Hong K,Gao A H,Xie Q Y,et al.Actinomycetes for Ma-
rine Drug Discovery Isolated from Mangrove Soils and Plants
in China[J].Mar.Drugs,2009,7:24.
[2] 王岳坤,洪葵.红树林因子对土壤微生物数量的影响[J].热
带作物学报,2005,26(3):109.
[3] 邓祖军,曹理想,周世宁.红树林内生真菌的分离及代谢产物
生物活性的初步研究[J].中山大学学报(自然科学版),2010,
49(2):100.
[4] 刘月廉,陈光,陈晓春.红树内生细菌的分离及皮肤病菌拮
抗菌株的筛选[J].中国热带医学,2010(1):13.
[5] 吴尚英,张洋,刘爱荣,等.红树林植物红海榄和秋茄的内生
真菌多样性[J].浙江林学院学报,2010,27(4):489.
[6] 邓祖军,曹理想,陆勇军,等.红树林植物桐花树内生真菌
主要无孢类群的分子鉴定[J].海洋学报,2010,3(2):161.
[7] 罗江华,吾鲁木汗·那孜尔别克,等.白花泡桐内生真菌的
分离鉴定及抗菌活性筛选[J].微生物学通报,2010,37(10):
1481.
[8] Du L,Zhu T J,Gu Q Q,et al.Cytotoxic Polyketides from a
Marine-derived Fungus Aspergillus glaucus[J].J.Nat.
Prod.,2008,71(11):1837.
[9] Du L,Geng M Y,Gu Q Q,et al.Aspergiolides C and D,
12
中国海洋药物杂志2012年12月第31卷第6期 Chin J Mar Drugs,2012December,Vol.31No.6
Spirocyclic Aromatic Polyketides with Potent Protein Kinase
c-Met Inhibitory Effects[J].Chem.A.Euro.J,2011,17
(4):1319.
[10] 褚以文,李进军,王辂,等.红树林内生链霉菌A1626产生
的抗真菌抗生素 CA1189[J].中国抗生素杂志,2011,36
(1):14.
[11] Shao C L,Wang C Y,Gu Y C,et al.Penicinoline,a new pyr-
rolyl 4-quinolinone alkaloid with an unprecedented ring sys-
tem from an endophytic fungus Penicillium sp.[J].
Bioorg.Med.Chem.Lett.,2010,20(11):3284.
[12] Cai X L,Gao J P,Li Q,et al.Cytotoxicity of the secondary
metabolites of Marine Mangrove Fungus Paecilomyces sp.
tree 1-7on human hepatoma cel line HepG2[J].Zhong Yao
Cai,2008,31(6):864.
[13] Li H,Huang H,Shao C,et al.Cytotoxic norsesquiterpene
peroxides from the endophytic fungus Talaromyces flavus i-
solated from the mangrove plant Sonneratia apetala[J].J.
Nat.Prod.,2011,74(5):1230.
[14] Lin Z J,Zhu T J,Gu Q Q,et al.Polyketides from Penicil-
lium sp.JP-1,an endophytic fungus associated with the
mangrove plant Aegiceras corniculatum[J].Phytochem.,
2008,69(5):1273.
[15] Zhou H N,Zhu T J,Li D H,et al.Drimane sesquiterpe-
noids from the mangrove-derived fungus Aspergillus ustus
[J].Chem.Pharm.Bull.,2011,59(6):762.
[16] Zhang G J,Li D H,Gu Q Q,et al.Antiviral isoindolone
derivatives from an endophytic fungus Emericela sp.associ-
ated with Aegiceras corniculatum[J].Phytochem.,2011,
72(11-12):1436.
[17] Lin Z J,Zhang G J,Gu Q Q,et al.Bioactive Cytochalasins
fromAspergillus flavipes,an Endophytic Fungus Associ-
ated with Mangrove Plant Acanthus ilicifolius[J].Helv.
Chim.Acta.,2009,92(8):1538.
[18] Lin Z J,Gu Q Q,Zhu W M,et al.Penicilenols from Peni-
cilium sp.GQ-7,an Endophytic Fungus Associated with
Aegiceras corniculatum[J].Chem.Pharm.Bull.,2008,
56(2):217.
[19] 孙世伟,李德海,顾谦群,等.老鼠簕植物内生真菌Asper-
gillus terreus(W-8)抗肿瘤活性成分的研究[J].中国海洋
大学学报(自然科学版),2011,41(Sup.):349.
[20] Cui C B,Yan S Y,Cai B,et al.Carbazole alkaloids as new
cel cycle inhibitors and apoptosis inducers from Clausena
dunniana Levl[J].J.Asian Nat.Prod.Res.,2002,4
(4):233.
[21] Kobayashi A,Hino T,Yata S,et al.Unique spindle poi-
sons,curvularin and its derivatives,isolated from Penicili-
um species[J].Agric.Biol.Chem.,1988,52(12):3119.
[22] Ghisalberti E L,Hockless David C.R.,Rowland C,et al.
Structural study of curvularin,a cel division inhibitor[J].
Aust.J.Chem.,1993,46(4):571.
[23] Zhan J X,Wijeratne E M Kithsiri,Seliga C J,et al.A new
anthraquinone and cytotoxic curvularins of a Penicilium sp.
from the rhizosphere of Falugia paradoxa of the Sonoran
desert[J].J.Antibiot.,2004,57(5):341.
[24] Agatsuma T,Kanda Y,Onodera H,et al.Hsp90family
protein inhibitors:Jpn.Jp 2004024141[P].2004-03-25.
[25] Lai S,Shizuri Y,Yamamura S,et al.New metabolites of
two hybrid strains ME 0004and 0005derived from Penicili-
um citreo-viride B.IFO 6200and 4692[J].Chem.Lett.,
1990,(4):589.
[26] Hyeon S B,Ozaki A,Suzuki A,et al.Isolation ofαβ-de-
hydrocurvularin andβ-hydroxycurvularin from Alternaria
tomato as sporulation-suppressing factors[J].Agric.Biol.
Chem.,1976,40(8):1663.
[27] Lai S,Shizuri Y,Yamamura S,et al.New curvularin-type
metabolites from the hybrid strain ME 0005derived from
Penicilliumcitreo-viride B.IFO 4692and 6200[J].Bull.
Chem.Soc.Jpn.,1991.64(3):1048.
[28] Rubinstein L V,Shoemaker R H,Paul K D,et al.Compar-
ison of in vitro anticancer-drug-screening data generated
with a tetrazolium assay versus a protein assay against a di-
verse panel of human tumor cel lines[J].J.Nat.Cancer
Inst.,1990,82(13):1113.
[29] He J,Wijeratne E M Kithsiri,Bashyal B P,et al.Cytotox-
ic and other metabolites of Aspergilus inhabiting the rhizo-
sphere of Sonoran desert plants[J].J.Nat.Prod.,2004,
67(12):1985.
[30] Xie L W,Ouyang Y C,Zou K,et al.Isolation and differ-
ence in anti-Staphylococcus aureus bioactivity of curvularin
derivates from fungus Eupenicilliumsp.[J].Appl.Bio-
chem.Biotechnol.,2009,159(1):284.
(收稿日期:2012-07-25)
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