全 文 ：　２０１３年２月 Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｇｒｅｅｎ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ 第２期
收稿日期：２０１３－０１－１８
作者简介：宋洪文 （１９６９—），女，黑龙江望奎人，硕士，副教授，主要从事植物学、植物组织培养、园林苗圃等方面的教学、生产、科研工作。
郁李微型繁殖技术研究
宋洪文，周 鑫
（黑龙江林业职业技术学院，黑龙江 牡丹江１５７０１１）
摘要：指出了郁李种子繁殖花色变化大，影响园林应用效果，微型繁殖技术的研究不但可以使花色稳定，而
且能够快速繁殖优良品种，对郁李的推广应用意义巨大，同时为郁李的工厂化育苗提供理论依据。对郁李
微型繁殖技术进行了研究，结果表明：郁李微型繁殖诱导培养基为：ＭＳ＋ＫＴ１．５＋ＩＢＡ０．１；增殖培养基为：
ＭＳ＋ＫＴ３．０＋ＩＢＡ０．５；生根培养基为１／２ＭＳ＋ＫＴ０．１＋ＩＢＡ０．５。
关键词：郁李；微型繁殖；诱导；增殖；生根
中图分类号：Ｓ６２２．３　　　　　　文献标识码：Ａ　 文章编号：１６７４－９９４４（２０１３）０２－００６６－０２
１　引言
郁李（Ｐｒｕｎｕｓ　ｊａｐｏｎｉｃａ　Ｔｈｕｎｂ）属蔷薇科、樱属。落
叶灌木，高约１．５ｍ，小枝纤细，叶卵圆形，长３～７ｃｍ，宽
１．５～２．５ｃｍ，先端渐尖，基部圆形，边缘有浅重锯齿，花
先于叶或与叶同时开放，花梗长５～１０ｍｍ，花直径约
２ｃｍ，倒卵形，花瓣粉红色或近白色，核果近球形，直径
约１ｃｍ，暗红色，光滑而有光泽，花期３～５月，是园林中
重要的观花、观果树种，常与棣棠、迎春等其他花木配
植，也可作花篱栽植。郁李常规用种子繁殖，花色变化
大，花色的不确定性加大了植物配置难度，限制了郁李
的使用，而微型繁殖技术不但可以快速繁殖，同时使花
色稳定，利于园林利用。
２　材料与方法
２．１　材料
选取健壮的枝条，用饱满而未萌发的侧芽作为外植
体，切成小段，每段长２～３ｃｍ。每段带有１个侧芽，用
自来水冲洗１５ｍｉｎ，在无菌条件下用７５％的酒精消毒
３０ｓ，再用０．１％升的汞消毒７～８ｍｉｎ，最后用无菌水冲
洗６～８遍，在超净工作台上把它们接种于不同的培养
基上。
２．２　方法
２．２．１　侧芽诱导培养
以 ＭＳ为基本培养基，不同种类、浓度的生长调节
剂组合形成１～４８号侧芽诱导培养基（表１），将外植体
接种于不同的培养基上，培养２周后，观测生长情况。
表１　不同生长调节剂组合培养基编号
单位／（ｍｇ／Ｌ） ＢＡ１．５ ＢＡ２．０ ＢＡ２．５ ＢＡ３．０ ＫＴ１．５ ＫＴ２．０ ＫＴ２．５ ＫＴ３．０
ＮＡＡ０．１　 １　 ７　 １３　 １９　 ２５　 ３１　 ３７　 ４３
ＮＡＡ０．５　 ２　 ８　 １４　 ２０　 ２６　 ３２　 ３８　 ４４
ＮＡＡ１．０　 ３　 ９　 １５　 ２１　 ２７　 ３３　 ３９　 ４５
ＩＢＡ０．１　 ４　 １０　 １６　 ２２　 ２８　 ３４　 ４０　 ４６
ＩＢＡ０．５　 ５　 １１　 １７　 ２３　 ２９　 ３５　 ４１　 ４７
ＩＢＡ１．０　 ６　 １２　 １８　 ２４　 ３０　 ３６　 ４２　 ４８
２．２．２　增殖培养
根据２．２．１实验结果，将诱导培养中高达到１ｃｍ
的侧芽，接种于以 ＭＳ为基本培养基，ＫＴ浓度分别为
２．０ｍｇ／Ｌ、２．５ｍｇ／Ｌ、３．０ｍｇ／Ｌ、３．５ｍｇ／Ｌ、４．０ｍｇ／Ｌ，
ＩＢＡ浓度分别为０．１ｍｇ／Ｌ、０．５ｍｇ／Ｌ、１．０ｍｇ／Ｌ、１．５
ｍｇ／Ｌ的丛生芽诱导培养基上，培养２周后，观测生长
情况。
２．２．３　生根培养
将诱导培养中高达到１ｃｍ 的侧芽，接种于以１／２
ＭＳ为基本培养基，ＫＴ浓度分别为０．１ｍｇ／Ｌ、０．２ｍｇ／
Ｌ、０．４ｍｇ／Ｌ，ＩＢＡ浓度分别为０．５ｍｇ／Ｌ、１．０ｍｇ／Ｌ、１．
５ｍｇ／Ｌ的生根培养基上，培养２周后，观测生长情况。
３　结果与分析
３．１　侧芽诱导培养
外植体在不同的侧芽诱导培养基生长１５ｄ，每种培
养基随机抽取１０个样本，统计分析诱导率结果，从表２
可以看出ＮＡＡ对侧芽诱导结果有一定影响，但差异不
显著；ＩＢＡ对侧芽诱导结果有显著影响，以０．１ｍｇ／Ｌ
最好，０．５ｍｇ／Ｌ次之，１．０ｍｇ／Ｌ最差；ＢＡ对侧芽诱导结
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　宋洪文，等：郁李微型繁殖技术研究 植物研究
果有显著影响；ＫＴ对侧芽诱导结果有极显著影响；
ＮＡＡ×ＢＡ的交互作用对侧芽诱导不显著；ＮＡＡ×ＫＴ
和ＩＢＡ×ＢＡ的交换作用对侧芽诱导均显著；ＩＢＡ×ＫＴ
交换作用对侧芽诱导极显著。ＩＢＡ与 ＫＴ组合好于其
他组合，从图１可以看出ＩＢＡ与ＫＴ组合的２８号培养
基侧芽诱导率最高，达到８７．９％，即 ＭＳ＋ＫＴ１．５＋
ＩＢＡ０．１侧芽诱导效果最好。
表２　不同培养基侧芽诱导率方差分析结果
变异来源 自由度ｄｆ　 Ｐｖａｌｕｅｓ
ＮＡＡ处理 ２　 ０．０９４
ＩＢＡ处理 ２　 ０．０１１＊
ＢＡ处理 ３　 ０．０２１＊
ＫＴ处理 ３　 ０．０００＊＊
ＮＡＡ×ＢＡ　 ６　 ０．０８４
ＮＡＡ×ＫＴ　 ６　 ０．０２３＊
ＩＢＡ×ＢＡ　 ６　 ０．０３１＊
ＩＢＡ×ＫＴ　 ６　 ０．０００＊＊
　　注：＊代表差异显著，＊＊代表差异极显著。
图１　不同培养基平均侧芽诱导率统计
３．２　丛生芽诱导培养
随机抽取培养基样品各４０个，统计分析丛生芽有
效（不含玻璃化或形成愈伤组织的芽）增值率（表３），
ＫＴ浓度变化对丛生芽有效增值率影响显著（Ｐ＜
０．０５），ＫＴ促进芽分化效果显著（Ｐ＜０．０５），过高浓度
ＫＴ产生玻璃化或形成愈伤组织，使丛生芽有效增值率
降低；ＩＢＡ促进芽生长作用显著（Ｐ＜０．０５），在同一ＫＴ
浓度下，随着ＩＢＡ浓度的升高芽的高生长加大，增值率
降低，而ＫＴ在３．０ｍｇ／Ｌ，ＩＢＡ　０．１０ｍｇ／Ｌ有效增值率
最高，因而最佳丛生芽诱导培养基为 ＭＳ＋ＫＴ３．０ｍｇ／Ｌ
＋ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ，有效增值率５．９。
表３　不同培养基侧芽有效增值率方差分析
浓度／（ｍｇ／Ｌ） ＫＴ２．０ ＫＴ２．５ ＫＴ３．０ ＫＴ３．５ ＫＴ４．０
ＩＢＡ　０．１　 １．９±０．４９Ｄａ　 ３．６±０．１４Ｃａ　 ５．９±０．５２Ａａ　 ５．２±０．２７Ｂａ　 １．４±０．１３Ｅａ
ＩＢＡ　０．５　 １．６±０．５２Ｃａ　 ３．０±０．２１Ｂｂ　 ５．３±０．２３Ａｂ　 ４．９±０．３７Ａａ　 １．２±０．０６Ｄａ
ＩＢＡ　１．０　 １．０±０．５４Ｃｂ　 １．２±０．５４Ｃｃ　 ３．３±０．５５Ａｃ　 ２．６±０．４２Ｂｂ　 １．０±０．０７Ｄａ
ＩＢＡ　１．５　 １．０±０．３４Ｂｂ　 １．０±０．４９Ｂｃ　 １．４±０．６７Ａｄ　 １．３±０．３７Ａｃ　 １．０±０．１１Ｂａ
　　　　　　　　注：同行不同大写字母代表差异显著，同列不同小写字母代表差异显著（Ｐ＜０．０５）。
３．３　生根培养
随机抽取不同培养基各４０个样品，统计有效根发生
率（表４），ＩＢＡ促进生根效果显著（Ｐ＜０．０５），浓度低于
１．０ｍｇ／Ｌ时随着浓度增加促进生根效果明显，浓度大于
１．０ｍｇ／Ｌ时，形成愈伤组织、出现玻璃化现象增加，因而
随着浓度增加有效根数量减少；ＫＴ抑制根的发生，随着
浓度的增加有效生根率较低。最佳根诱导培养基为１／
２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５，生根率达８５％。
表４　不同培养基有效生根率方差分析
浓度／（ｍｇ／Ｌ） ＫＴ０ ＫＴ０．１ ＫＴ０．２ ＫＴ０．４ ＫＴ０．６
ＩＢＡ　０．５　 ８５．１４±２．４０１Ａａ　 ７６．４３±１．３５２Ｂａ　 ７０．５４±４．６８７Ｃａ　 ５１．２０±１．２４３Ｄａ　 ４５．１２±１．６５２Ｅａ
ＩＢＡ　１．０　 ５４．２１±２．２９０Ａｂ　 ３４．２３±１．４０２Ｂｂ　 ３１．１６±１．２５８Ｂｂ　 ２５．１２±１．２９３Ｃｂ　 ２１．８２±０．９３４Ｃｂ
ＩＢＡ　１．５　 ８．１８±０．１２３Ａｃ　 ８．０６±０．２０５Ａｃ　 ７．０９±１．３５６Ａｃ　 ６．４６±１．１１２Ａｃ　 ６．０６±０．９４３Ａｃ
　　　　　　　　注：同行不同大写字母代表差异显著，同列不同小写字母代表差异显著（Ｐ ＜０．０５）。
４　结语
郁李微型繁殖诱导侧芽分化最佳培养基：ＭＳ＋
ＫＴ１．５＋ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ，诱导率达到８７．９％；丛生芽诱
导最佳培养基：ＭＳ＋ＫＴ３．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ，增
值率为５．９；生根最佳培养基：１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ，
生根率８５％。
参考文献：
［１］周以良，董世林，聂绍荃．黑龙江树木志［Ｍ］．哈尔滨：黑龙江科技
出版社，１９８６．
［２］谭文澄，戴策刚．观赏植物组织培养技术［Ｍ］．北京：中国林业出版
社，１９９１．
［３］谷瑞升，蒋湘宁．植物离体培养器官发生调控机制的研究进展
［Ｊ］．植物学通报，１９９９（３）：２３８～２９４．
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