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天名精内酯酮多克隆抗体的制备



全 文 :第44卷 第4期
2016年4月
西北农林科技大学学报(自然科学版)
Journal of Northwest A&F University(Nat.Sci.Ed.)
Vol.44 No.4
Apr.2016
网络出版时间:2016-03-14 08:45 DOI:10.13207/j.cnki.jnwafu.2016.04.018
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20160314.0845.036.html
天名精内酯酮多克隆抗体的制备
 [收稿日期] 2014-07-16
 [基金项目] 国家自然科学基金项目(31272074);陕西省自然科学研究计划项目(2012JQ3004);中央高校基本科研业务费专项
(ZD2012004)
 [作者简介] 何泽瑜(1990-),男,云南勐腊人,在读硕士,主要从事农药毒理学研究。E-mail:skyhugh2012@gmail.com
 [通信作者] 冯俊涛(1967-),男,河南登封人,教授,博士,主要从事生物农药及植物保护研究。E-mail:jtfeng@126.com
何泽瑜,韩立荣,刘雪茹,冯俊涛,张 兴
(西北农林科技大学 无公害农药研究服务中心,陕西省生物农药工程技术研究中心,陕西 杨凌712100)
[摘 要]  【目的】合成并鉴定天名精内酯酮人工抗原,制备天名精内酯酮多克隆抗体,为天名精内酯酮作用靶
标的免疫化学定位奠定基础。【方法】通过天名精内酯酮4位羰基和盐酸氨基脲氨基的亲核加成反应制备半抗原天
名精内酯酮缩氨基脲(CN),使用 MS和 NMR对其结构进行鉴定;采用戊二醛法将半抗原和载体蛋白牛血清蛋白
(BSA)和卵清蛋白(OVA)偶联,合成天名精内酯酮免疫原(CN-BSA)和包被原(CN-OVA),采用紫外吸收扫描法、红
外光谱法对免疫原及包被原进行鉴定;用制备好的免疫原免疫健康BALB/c小鼠获得天名精内酯酮多克隆抗体,通
过间接非竞争ELISA法测定其效价。【结果】成功制备了天名精内酯酮免疫原(CN-BSA)和包被原(CN-OVA),获得
了效价为128 000的天名精内酯酮多克隆抗体。【结论】成功制备了天名精内酯酮多克隆抗体。
[关键词] 天名精内酯酮;半抗原;人工抗原;酶联免疫吸附分析
[中图分类号] R392.11 [文献标志码] A [文章编号] 1671-9387(2016)04-0129-06
Preparation of polyclonal-antibody against carabrone
HE Ze-yu,HAN Li-rong,LIU Xue-ru,FENG Jun-tao,ZHANG Xing
(Research and Development Center of Biorational Pesticide,Technology and Engineering Center of
Biopesticide,Northwest A&F University,Yangling,Shaanxi 712100,China)
Abstract:【Objective】This study synthesized and identified artificial antigen of carabrone,and pre-
pared polyclonal-antibody.【Method】Reaction of carabrone and semicarbazide hydrochloride was conduc-
ted to obtain hapten carabrone semicarbazone,which was characterized by MS and NMR spectrum.Then,
the haptens were conjugated to bovine serum albumin(BSA)and ovalbumin(OVA)for generation of im-
munogen(CN-BSA)and coating antigen(CN-OVA),respectively.The structures of immunogen and coat-
ing antigen were identified by UV and IR spectrum.BALB/c mice were immunized with CN-BSA and poly-
clonal antisera were produced.The titer of antiserum was also detected by indirect non-competitive enzyme-
linked immunosorbent assay.【Result】Hapten was synthesized,and immunogen(CN-BSA)and coating an-
tigen(CN-OVA)were obtained successfuly.Polyclonal-antibody against carabrone was prepared and the
titer of antiserum was 128 000.【Conclusion】The artificial antigen and polyclonal-antibody against car-
abrone was prepared successfuly.
Key words:carabrone;hapten;artificial antigen;ELISA
  天名精内酯酮是卡拉布烷型倍半萜内酯类化合
物,最早于1964年从天名精属植物天名精(Carpe-
sium abrotanoides)的果实中分离得到[1],并表现出
较好的医用生物活性[2-4]。西北农林科技大学无公
害农药研究服务中心前期对天名精内酯酮农用生物
活性的研究工作表明,天名精内酯酮是一种优秀的
广谱抑菌活性物质,对小麦全蚀病菌(Gaeumanno-
myces graminis var.tritici)、小麦纹枯病菌(Rhi-
zoctonia cerealis)、辣椒疫霉病菌(Phytophthora
capsici Leonian)和番茄灰霉病菌(Botrytis cinerea)
等12种病原菌均具有较好的抑制活性[5];以其为先
导,通过结构改造,衍生合成出酯类[6]、肟酯[7]和腙
类[8]等一系列化合物,这些化合物中大部分均表现
出较强的抑菌活性;对作用机理的初步探索发现,天
名精内酯酮可抑制病原菌线粒体呼吸电子传递链复
合酶的活性,从而影响病原菌的生物氧化过程[9],但
其具体的作用靶标仍不明确,这严重阻碍了天名精
内酯酮的开发利用。
免疫分析作为作用机理研究的重要手段之一,
已成功应用于苏云金杆菌(Bacillus thuringiensis)
伴胞晶体蛋白作用靶标的定位[10-12]。同时,农药免
疫分析还应用于一些除草剂和杀菌剂作用机理的研
究,如Young等[13]利用免疫荧光显微技术确定了苯
酰菌胺对辣椒疫霉菌微管骨架的破坏作用,Tresch
等[14]利用免疫化学定位技术证明高效麦草氟甲酯
对微管组装具有抑制作用。本研究以天名精内酯酮
为原料合成天名精内酯酮人工抗原,通过免疫
BALB/c小鼠获得多克隆抗体,旨在为天名精内酯
酮作用机理的研究提供技术手段。
1 材料与方法
1.1 材 料
仪器:核 磁 共 振 谱 仪 (Bruker Avance 500
MHz)、红外光谱仪(Nicolet Avatar 330FT-IR)、紫
外可见分光光度计(HITACHI U3310)、酶标仪
(TECAN Sunrise)、 高 速 冷 冻 离 心 机
(MIKRO22R)、冻 干 机、超 纯 水 净 化 仪 (D8611
Branstead)、洗 板 机 (Thermo WELLWASH
PLUS)、液质联用仪(Thermo Fisher)。
试剂:天名精内酯酮(由西北农林科技大学无公
害农药研究服务中心提供)、牛血清蛋白(BSA,Sig-
ma)、卵清蛋白 (OVA,Sigma)、弗氏完全佐 剂
(FCA,Sigma)、弗氏不完全佐剂(FICA,Sigma),四
甲基联苯胺(TMB,Sigma分装进口)、辣根过氧化
物酶标记羊抗鼠IgG(HRP-IgG,北京康维)、盐酸氨
基脲、无水乙酸钠、无水乙醇、戊二醛、N、N-二甲基
亚砜均为分析纯。试验动物为6周龄的BALB/c小
鼠(购于西安交通大学实验动物中心)。
1.2 方 法
1.2.1 天名精内酯酮半抗原的合成 参照李江
华[15]的方法并做适当的改动,具体合成路线见图1。
图1 天名精内酯酮半抗原的合成路线
Fig.1 Synthetic route for hapten of carabrone
  向1.2mmol盐酸氨基脲水溶液中加入1.4
mmol乙酸钠,在搅拌条件下,向混合物中加入含有
1mmol天名精内酯酮的甲醇溶液,60℃下水浴反
应。出现大量白色沉淀后(约4h)终止反应。静置
冷却,抽滤。用甲醇和水混合溶剂重结晶,得白色固
体物质,并用NMR和 MS进行结构鉴定。
1.2.2 天名精内酯酮人工抗原的合成和鉴定 采
用戊二醛法将带有游离氨基的天名精内酯酮半抗原
和载体蛋白BSA和OVA偶联[16-17],制备天名精内
酯酮人工抗原,具体如图2所示。
  将20mg牛血清蛋白溶于2mL pH=7.4的
PBS(磷酸盐缓冲溶液)中,缓慢滴加10mg半抗原
天名精内酯酮缩氨基脲(CN)溶液和90μL 25%戊
二醛溶液。室温下搅拌反应4h后,取出反应物,用
PB(磷酸缓冲溶液)于4℃下透析3d。透析完毕
后,冷冻干燥,-20℃保存,即得免疫原CN-BSA。
用同样的方法制备包被原CN-OVA。
使用红外光谱法[18]和紫外吸收扫描法[19]鉴定
人工抗原。
031 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第44卷
图2 天名精内酯酮人工抗原的合成路线
Fig.2 Synthetic route for artificial antigen of carabrone
1.2.3 天名精内酯酮多克隆抗体的制备 参照张
静[20]的方法免疫BALB/c小鼠。用生理盐水稀释
免疫原至400μg/mL,用等体积的弗氏完全佐剂
(CFA,首次免疫时使用)或弗氏不完全佐剂(FICA,
加强免疫时使用),采用涡旋振荡法乳化制备免疫原
乳剂。选取3只健康的6周龄BALB/c小鼠,用制
备好的免疫原乳剂按照表1的方法免疫小鼠。取血
前3d,冲击免疫。摘除眼球取血,并用硫酸铵/辛酸
沉淀法[17]纯化抗血清,向抗血清中加入终浓度为
0.01%的叠氮钠,分装,-20℃保存。
表1 小鼠免疫方案
Table 1 Immunization strategy
操作
Operation
免疫时间/d
Immunization data
佐剂
Adjuvant
免疫剂量/(μg·只-1)
Immunization dose
免疫部位
Immunization site
首次免疫Initial immune  0 CFA  200 背部皮下Subcutaneous
第一次加强免疫Second immune  14 FICA  200 背部皮下Subcutaneous
第二次加强免疫 Third immune  28 FICA  200 背部皮下Subcutaneous
断尾取血测效价 Detection of titer  36 - - -
冲击免疫Last immune  52 - 400
腹腔注射
Intraperitoneal injection
  注:“-”表示未加佐剂或未注射免疫原。
Note:“-”means no adjuvant or no immunization.
1.2.4 抗血清效价的测定 使用间接非竞争
ELISA 法测定抗血清效价[21]。用质量浓度为5
μg/mL的包被原包被酶标板,100μL/孔,4℃过夜,
用PBST(含0.05% Tween-20PBS溶液)洗板3
次;加入质量分数1% OVA 溶液封闭1h,200
μL/孔,再次洗板;以4 000倍为起点,倍比稀释抗血
清,加入相应酶标板孔内,100μL/孔,每个质量浓度
2个平行孔,并设置空白孔和阴性对照孔,37℃孵育
1h,洗板;加入辣根过氧化物酶标记羊抗鼠IgG
(1∶3 000),100μL/孔,37℃孵育1h,洗板;加入
TMB(四甲基联苯胺,tetramethylbenzidine)底物溶
液显色10min,100μL/孔;加入2mol/L的 H2SO4
终止反应,50μL/孔。于450nm下用酶标仪测定
OD值。以待测孔 OD值(P)/阴性对照孔 OD值
(N)≥2.1(即P/N≥2.1)的最大稀释倍数作为抗
血清的最终效价。
2 结果与分析
2.1 天名精内酯酮半抗原结构的鉴定
通过 MS和 NMR对天名精内酯酮半抗原,即
天名精内酯酮缩氨基脲(CN)的结构进行鉴定,结果
如下。
1 H-NMR(500MHz,CD3Cl)δ:6.27(1H,d,
J=2.6Hz,H-13),5.59(1H,d,J=2.4Hz,H-
13),4.79~4.84(1H,m,H-8),3.16~3.22(1H,
m,H-7),2.32~2.37(2H,m,H-3),2.25~2.28
(2H,m,H-2),1.86(3H,s,H-15),1.48~1.55
(2H,m,H-9),1.12(3H,s,H-14),0.91~0.98
(2H,m,H-6),0.47~0.52(1H,m,H-5),0.37~
0.41(1H,m,H-1)。
13C-NMR(125MHz,CD3Cl)δ:170.45(C-12),
157.85(C-4),149.97(C-16),139.03(C-11),122.61
(C-13),75.59(C-8),38.76(C-3),37.68(C-7),
37.31(C-9),34.40(C-1),30.75(C-6),25.93(C-2),
23.02(C-5),18.38(C-15),17.14(C-10),15.41(C-
14)。
ESI-MS:m/z:306.15 C16 H23 O3N3 ([M +
H]+)。
2.2 天名精内酯酮人工抗原的鉴定
采用紫外吸收扫描法和红外光谱法对半抗原-
载体蛋白偶联物进行鉴定,结果如图3~6所示。由
图3和4可知,载体蛋白BSA和OVA的最大紫外
131第4期 何泽瑜,等:天名精内酯酮多克隆抗体的制备
吸收波长出现在278nm处,半抗原在235~295nm
未发现明显的特征吸收峰,而经戊二醛法偶联合成
的人工抗原CN-BSA和CN-OVA的最大吸收波长
分别出现在269nm和267nm处。2种人工抗原
CN-BSA和CN-OVA的紫外吸收光谱是半抗原天
名精内酯酮缩氨基脲与载体蛋白吸收光谱的整合,
表明半抗原和载体蛋白偶联成功。
由图5可以看出,CN-BSA的红外图谱中包含
了载体蛋白BSA的特征吸收谱带,如1 655cm-1处
的BSA酰胺谱带Ⅰ和1 543cm-1处的酰胺谱带Ⅱ,
以及2 929cm-1处较弱的-CH2-吸收。同时在
CN-BSA的红外光谱中还存在半抗原CN 和BSA
偶联后的1 439cm-1处的-CH2-的δCH吸收,以及
1 720cm-1处的半抗原分子的羰基吸收,由此可判
断免疫原CN-BSA合成成功。由图6可以看出,包
被原CN-OVA的红外图谱中包含了载体蛋白OVA
的特征吸收谱带,如1 653cm-1处的酰胺谱带Ⅰ和
1 539cm-1处的酰胺谱带Ⅱ,以及偶联后的1 439
cm-1处-CH2-的δCH吸收,1 724cm-1处的半抗原
分子的羰基吸收,由此表明包被原CN-OVA合成成
功。
结合上述2种鉴定方法,可以确定半抗原和载
体蛋白偶联成功,合成出了免疫原CN-BSA和包被
原CN-OVA。
图3 半抗原CN、免疫原CN-BSA和载体
蛋白BSA的紫外光谱扫描图
Fig.3 Ultraviolet absorbance spectra of
CN,CN-BSA and BSA
图4 半抗原CN、包被原CN-OVA和
载体蛋白OVA的紫外光谱扫描图
Fig.4 Ultraviolet absorbance spectra of
CN,CN-OVA and OVA
图5 载体蛋白BSA与免疫原CN-BSA的红外光谱扫描图
Fig.5 IR spectra of BSA and CN-BSA
2.3 抗血清效价的测定
使用免疫原CN-BSA冲击免疫BALB/c小鼠
后3d,摘除眼球取血,纯化后获得抗血清,进行适当
稀释后用酶标仪测定其在450nm波长处的OD值,
确定抗血清效价,结果如表2所示。由表2可知,经
免疫原CN-BSA免疫后的BALB/c小鼠对半抗原
CN产生了较好的免疫应答,而当抗血清稀释至
128 000倍时,P/N 值为2.729>2.1,即获得的抗
231 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第44卷
血清效价为128 000。较高效价抗血清的获得表明 人工抗原的成功合成和多克隆抗体的成功制备。
图6 载体蛋白OVA与包被原CN-OVA的红外光谱扫描图
Fig.6 IR spectra of OVA and CN-OVA
表2 抗血清效价的测定结果
Table 2 Summary of titers for antisera
血清稀释倍数
Dilutions of antiserum
OD值OD value
待测血清
Tested antiserum
阴性对照
Negative antiserum P
/N
4 000  1.544  0.298  5.181
8 000  1.217  0.262  4.645
16 000  0.944  0.234  4.034
32 000  0.717  0.212  3.382
64 000  0.632  0.191  3.308
128 000  0.453  0.159  2.729
256 000  0.301  0.158  1.905
512 000  0.223  0.158  1.141
3 讨 论
3.1 半抗原和载体蛋白偶联位点的选择
通常小分子半抗原不具有免疫原性,必须与载
体蛋白偶联形成人工抗原,借助载体蛋白的T细胞
表位间接诱导B细胞激活、分化增殖,产生针对半
抗原分子的特异性抗体[22]。研究表明,相同的半抗
原分子,不同的偶联位点所形成的人工抗原的空间
结构不同,即与载体结合后产生的人工抗原表面所
暴露出的抗原决定簇不同,导致产生的抗体在效价、
亲和力和特异性上均存在差异[23]。根据免疫系统
通常对载体远端结构识别能力最强,而对连接位点
部分特异性较弱的原则[24],要制备高效价和高特异
性的抗体,半抗原分子中的偶联位点应远离半抗原
分子的特征结构和官能团(如苯环或杂环等),使半
抗原分子特征结构部分得以充分暴露,易于被动物
免疫系统识别,同时还可避免载体蛋白对半抗原分
子特征结构的屏蔽作用。在选择偶联位点时还应避
免对半抗原分子的电子分布的影响[23]。本试验以
半抗原天名精内酯酮缩氨基脲16位C作为偶联位
点,该偶联位点的选择远离了天名精内酯酮特征结
构α-亚甲基-γ-丁内酯环结构,对天名精内酯酮的电
子分布影响较小,易于免疫系统对该特征结构的识
别,从而产生高效价和高特异性的抗体,效价
128 000抗血清的获得,证明了该设计思路的合理
性。
3.2 免疫分析是鉴定人工抗原的必需步骤
人工抗原的制备是为了能够引起动物的免疫反
应,从而获得能识别半抗原分子的高特异性和高效
价的抗体,因而人工抗原是否合格的评判标准应该
为是否有特异性抗体产生。然而,通常采用的人工
抗原的鉴定方法有SDS-PAGE法、红外光谱法、紫
外吸收扫描法、同位素标记法等[25],但这些方法均
仅能证明半抗原和载体蛋白是否成功偶联,并不能
331第4期 何泽瑜,等:天名精内酯酮多克隆抗体的制备
最终确定所制备的人工抗原是否能够引起动物的免
疫反应从而获得满足要求的抗体。故除了要使用上
述检测方法确定偶联是否成功外,还必须进一步使
用免疫检测法对人工抗原的质量进行评价。本试验
采用红外光谱法和紫外吸收扫描法2种方法对免疫
原和包被原进行鉴定,证明半抗原和载体蛋白偶联
成功,并使用间接非竞争ELISA法测定了抗血清的
效价,高效价抗血清的获得证明了人工抗原的成功
制备。
[参考文献]
[1] Mintao H,Nosaka S,Horibe I.Studies on sesquiterpenoids:
PartⅧ.The structure of carabrone,a new component of
Carpesium abrotanoides Linn[J].Journal of Chemistry Socie-
ty,1964:5503-5510.
[2] Maruyama M,Omura S.Carpesiolin fromCarpesium abrotano-
ides[J].Phytochemistry,1997,16:782-783.
[3] Yang C,Shi Y P,Jia Z J.Sesquiterpene lactone glycosides,eu-
desmanolides,and other constituents from Carpesium abro-
tanoides[J].Planta Medica,2002,68:626-630.
[4] Lee J,Min B,Lee S,et al.Cytotoxic sesquiterpene lactones
fromCarpesium abrotanoides [J].Planta Medica,2002,68:
745-747.
[5] 冯俊涛.大花金挖耳杀菌作用研究 [D].陕西杨凌:西北农林科
技大学,2006.
Feng J T.Studies on the fungicidal activities of Carpesium
macrocephalum Franch.Et Sav [D].Yangling,Shaanxi:
Northwest A&F University,2006.(in Chinese)
[6] Feng J T,Wang H,Ren S X,et al.Synthesis and antifungal ac-
tivities of carabrol ester derivatives[J].Journal of Argricul-
ture and Food Chemistry,2012,60(15):3817-3823.
[7] Wang D L,Ren S X,Wang H,et al.Semisynthesis and antifun-
gal activity of novel oxime ester derivatives of carabrone modi-
fied at C(4)against Botrytis cinerea [J].Chemistry &Biodi-
versity,2014,11(6):886-903.
[8] Wang H,Ren S X,He Z Y,et al.Synthesis,antifungal activities
and qualitative structure:Activity relationship of carabrone hy-
drazine derivatives as potential antifungal agents[J].Interna-
tional Journal of Molecular Science,2014,15(3):4257-4272.
[9] 许 丹.天名精内酯酮抑菌机理初步研究 [D].陕西杨凌:西北
农林科技大学,2011.
Xu D.Preliminary study on the mode of action of carabrome
[D].Yangling,Shaanxi:Northwest A&F University,2011.(in
Chinese)
[10] Bravo A,Hendrickx K,Jansens S,et al.Immunocytochemical
analysis of specific binding of Bacillus thuringiensis insecti-
cide crystal proteins of lepidopteran and coleopteran midgut
membranes[J].Journal of Invertebrate Pathology,1992,60:
247-253.
[11] Yasunori N,Satoshi T,Fumihide Y,et al.Identification of Bo-
mbyxmori midgut receptor for Bacillus thuringiensis insecti-
cidal CryⅠA(a)toxin[J].Bioscience Biotechnology and Bio-
chemistry,1998,62(4):718-726.
[12] Bravo A,Gomez I,Conde J,et al.Oligomerization triggers
binding of a Bacillus thuringiensis Cry1Abpore-forming toxin
to aminopeptidase N receptor leading toinsertion into mem-
brane microdomains[J].Biochimicaet Biophysica Acta,2004,
1667:38-46.
[13] Young D H,Slawecki R A.Mode of action of zoxamide(RH-
7281),a new oomycete fungicide[J].Pesticide Biochemistry
and Physiology,2001,69:100-111.
[14] Tresch S,Niggeweg R,Grossmann K.The herbicide flamprop-
M-methyl has a new antimicrotubule mechanism of action
[J].Pest Management Science,2008,64:1195-1203.
[15] 李江华.天名精内酯酮的衍生合成及其抑菌活性研究 [D].陕
西杨凌:西北农林科技大学,2006.
Li J H.Synthesis of carabrone derivatives and their antifungal
activities[D].Yangling,Shaanxi:Northwest A&F Universi-
ty,2006.(in Chinese)
[16] Pastornavarron N,Mprails S,Maquieira A.Synthesis of hap-
ten and development of a sensitive immunoassay for tetracy-
cline residues[J].Analytica Chimica Acta,2007,594(2):211-
218.
[17] 李 颖,马志卿,冯俊涛,等.苦参碱人工抗原的合成与鉴定
[J].西北农林科技大学学报:自然科学版,2012,40(9):96-
102.
Li Y,Ma Z Q,Feng J T,et al.Synthesis and identification of
artificial antigen of matrine[J].Journal of Northwest A&F
University:Natural Science Edition,2012,40(9):96-102.(in
Chinese)
[18] Goodrow M H,Harrison R O,Hammock B D.Hapten synthe-
sis,antibody development,and competitive inhibition,enzyme
immunoassay for s-Triazine herbicides[J].Journal of Agri-
culture and Food Chemistry,1990,38:990-996.
[19] Pauilac S,Naar J,Branaa P,et al.An improved method for
the production of antibodies tolipophilic carboxylic hapten
using smal amount of hapten-carrier conjugate[J].Journal of
Immunological Methods,1998,220(1):104-114.
[20] 张 静.川楝素免疫分析方法及其应用研究 [D].陕西杨凌:
西北农林科技大学,2008.
Zhang J.Development and application of immunoassay for
toosendanin[D].Yangling,Shaanxi:Northwest A&F Univer-
sity,2008.(in Chinese)
[21] Zhang J,Feng G,Luo L,et al.Development of an enzyme-lin-
ked immuosorbent assay for toosendanin[J].Analytica Chim-
ica Acta,2008,622(12):182-188.
[22] Spinks C A,Wyatt G M,Lee H A,et al.Molecular modeling
of hapten structure and relevance to broad specificity immuno-
assay of sulfonamide antibiotics[J].Bioconjugate Chemistry,
1999,10:583-588.
(下转第141页)
431 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第44卷
[12] Takahashi N,Kobayashi I.Evidence for the double-strand bre-
ak repair model of bacteriophageλrecombination[J].Pro-
ceedings of the National Academy of Sciences USA,1990,87:
2790-2794.
[13] Murphy K C.λGam protein inhibits the helicase and chi-stim-
ulated recombination activities of Escherichia coli RecBCD
enzyme[J].Journal of Bacteriology,1991,173:5808-5821.
[14] Murphy K C,Campelone K G,Poteete A R.PCR-mediated
gene replacement in Escherichia coli [J].Gene,2000,246:
321-330.
[15] 韩 聪,张惟材,游 松,等.大肠杆菌ptsG基因敲除及其缺
陷株生长特性研究 [J].生物工程学报,2004,20(1):16-20.
Han C,Zhang W C,You S,et al.Knockout of the ptsG gene in
Escherichia coli and cultural characterization of the mutants
[J].Chinese Journal of Biotechnology,2004,20(1):16-20.(in
Chinese)
[16] 严 涛,赵锦芳,高文慧,等.大肠杆菌工程菌ptsG基因敲除
及其缺陷株混合糖同型乙醇发酵 [J].生物工程学报,2013,
29(7):937-945.
Yan T,Zhao J F,Gao W H,et al.Knockout of the ptsG gene
in engineered Escherichia coli for homoethanol fermentation
from sugar mixture[J].Chinese Journal of Biotechnology,
2013,29(7):937-945.(in Chinese)
[17] 汪 莉,王玉民.用Red重组系统快速敲除大肠杆菌aroL和
aroK基因 [J].军事医学院院刊,2007,31(4):308-311.
Wang L,Wang Y M.Quick knockout of aroK and aroL genes
from the chromosome of E.coli BW25113by using Red sys-
tem[J].Buletin of the Academy of Military Medical Science,
2007,31(4):308-311.(in Chinese)
[18] 薛 可,李 峰,罗光彬,等.利用Red同源重组系统进行牛β
酪蛋白基因敲除 [J].遗传,2007,29(5):570-574.
Xue K,Li F,Luo G B,et al.Knock out of bovine beta casein
gene by homologous recombination[J].Hereditas,2007,29
(5):570-574.(in Chinese)
[19] 黄 静,史建明,刘 倩,等.pta基因敲除对L-色氨酸发酵的
影响 [J].微生物学报,2011,51(4):480-487.
Huang J,Shi J M,Liu Q,et al.Effects of gene pta disruption
on L-tryptophan fermentation[J].Acta Microbiologica Sini-
ca,2011,51(4):480-487.(in Chinese)
[20] 曲璟秋,刘翠花,刘伟丰,等.应用基因敲除快速构建大肠杆菌
突变体改造脂肪酸代谢途径 [J].微生物学报,2013,53(6):
608-614.
Qu J Q,Liu C H,Liu W F,et al.Construction of Escherichia
coli gene knock-out mutants for engineering of fatty acid me-
tabolism[J].Acta Microbiologica Sinica,2013,53(6):608-
614.(in Chinese)
[21] Fu J,Bian X Y,Hu S B,et al.Ful-length RecE enhances line-
ar-linear homologous recombination and facilitates direct clo-
ning and bioprospecting[J].Nature Biotechnology,2012,30:

440-446.
(上接第134页)
[23] 王 硕,张鸿雁,王俊平.酶联免疫吸附分析方法基本原理及
其在食品化学污染检测中的应用 [M].北京:科学出版社,
2011.
Wang S,Zhang H Y,Wang J P.The principle and application
in decetion of food chemical contamination of ELISA [M].
Beijing:Science Press,2011.(in Chinese)
[24] Kim Y J,Cho Y A,Lee H S,et al.Investigation of haptenhet-
erology on immunoassay sensitivity and development of an en-
zyme-linked immunosorbent assay for organ phosphorus in-
secticide fenthion[J].Analytica Chimica Acta,2003,494(1/
2):29-40.
[25] 杨润亚,祁志军,吴文君.苦皮藤素Ⅴ人工抗原的合成和鉴定
[J].西北农林科技大学学报:自然科学版,2004,32(6):64-
68.
Yang R Y,Qi Z J,Wu W J.Synthesis and identification of ar-
tificial antigen of CelangulinⅤ [J].Journal of Northwest
A&F University:Natural Science Edition,2004,32(6):64-
68.(in Chinese)
141第4期 卫亚红,等:降解布洛芬克隆菌株转座子插入突变体的构建