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碧桃花瓣转录组微卫星特征分析



全 文 :第 39 卷 第 3 期
2015 年 5 月
南京林业大学学报(自然科学版)
Journal of Nanjing Forestry University (Natural Sciences Edition)
Vol. 39,No. 3
May,2015
doi:10. 3969 / j. issn. 1000 - 2006. 2015. 03. 007
收稿日期:2014 - 05 - 12 修回日期:2014 - 07 - 02
基金项目:国家林业公益性行业科研专项重大项目(201304102);国家自然科学基金项目(31270711);江苏高校优势学科建设工程
资助项目(PAPD)
第一作者:马秋月,博士生;廖卓毅,硕士生。* 通信作者:李淑娴,研究员。E-mail:shuxianli@ njfu. com. cn。
引文格式:马秋月,廖卓毅,张得芳,等. 碧桃花瓣转录组微卫星特征分析[J]. 南京林业大学学报:自然科学版,2015,39(3):34 -38.
碧桃花瓣转录组微卫星特征分析
马秋月,廖卓毅,张得芳,戴晓港,陈赢男,李淑娴*
(南京林业大学南方现代林业协同创新中心,江苏 南京 210037)
摘要:为开发碧桃转录组微卫星信息,利用 454 高通量测序技术,对其花瓣转录组序列进行 SSR 位点发掘,结果
发现含 SSR的序列 4 705 条,共得到 5 668 个 SSR,平均每 3. 49 kb出现 1 个 SSR。微卫星序列主要以三碱基重复
为主,约占总数的 42. 66%。笔者共发现 516 种碱基重复基元,所占比例最高的为(AG/CT)n(18. 34%),其次是
(AAG/CTT)n(12. 42%)。微卫星多为重复长度小于 20 bp 的短序列,长度大于 20 bp 的微卫星仅占总数的
12. 13%。研究还发现碧桃花瓣微卫星的频率和长度呈显著负相关(P < 0. 05),相关系数为 - 0. 246。
关键词:碧桃;微卫星;SSR;转录组;高通量测序
中图分类号:Q948;Q78 文献标志码:A 文章编号:1000 - 2006(2015)03 - 0034 - 05
Deep sequenced-based transcriptome analysis of microsatellites in peach
(Prunus persica cv. duplex)flowers
MA Qiuyue,LIAO Zhuoyi,ZHANG Defang,DAI Xiaogang,CHEN Yingnan,LI Shuxian*
(Co-Innovation Center for the Sustainable Forestry in Southern China,Nanjing Forestry University,Nanjing 210037,China)
Abstract:To obtain information of Prunus persica cv. duplex,the transcriptome of peach flowers were sequenced by 454
high-throughput sequencing technology. A total of 5 668 SSRs were identified in 4 705 sequences,with an average den-
sity of one SSR per 3. 49 kb. Tri-nucleotide repeats were the most abundant,accounted for 42. 66% of all SSRs. Among
all the 516 SSR motifs,(AG/CT)n was the most frequent repeat motif (18. 34%),followed by the(AAG/CTT)n
(12. 42%). The microsatellites in length below 20 bp were in maximum proportion,while the microsatellites over 20 bp
were only 12. 13% . There were significant negative correlation (P < 0. 05)between the frequency of microsatellites and
the length,the correlation coefficient was - 0. 246.
Keywords:Prunus persica cv. duplex;microsatellites;SSR;transcriptome;high-throughput sequencing
微卫星又称简单序列重复(SSR),是真核生物
基因组中由少数几个核苷酸组成的串联重复序
列[1],其长度一般较短。SSR广泛分布于各类真核
生物、原核生物以及病毒基因组中[2 - 4],具有可重
复性、数量丰富和对基因组有很好覆盖性等特点,
现已成为生物遗传特性研究的一种重要分子标记,
并被广泛应用在分子生物学、遗传学、育种学等研
究领域[5 - 6]。根据序列性质不同,SSR标记主要分
为基因组 SSR(genomic SSR,gSSR)和表达序列标
签 SSR(expressed SSR,EST-SSR)两种。由于 EST-
SSR标记源于基因的转录区,与 gSSR标记相比,其
多态性与基因功能有直接联系,因此比 gSSR 标记
具有更高的通用性[7]。近年来,随着高通量测序
技术的发展,通过对转录本进行高通量测序,能产
生较 EST 测序更为海量的转录组数据,因此更具
有信息量大和通用性好的特点,在矫正连锁图谱和
比较作图方面也具有更强的优势[8],对功能基因
组学研究有重要的应用价值。目前已有不少研究
者对 Camellia sinensi[7]、Nymphoides peltata (Men-
yanthaceae)[9]、松树[10]等很多物种转录组中的微
卫星进行了分析,结果表明,其在不同物种中的分
布特征存在较大差异。
碧桃(Prunus persica cv. duplex)是蔷薇科(Ro-
saceae)李属的木本观赏植物,起源于中国,因其花
多为重瓣,花色艳丽,具有极高的观赏价值,在园林
绿化中得到广泛应用。近年来,不少研究者在桃树
第 3 期 马秋月,等:碧桃花瓣转录组微卫星特征分析
生理生化以及分子水平等领域开展了相关研
究[11 - 12]。2013 年桃树基因组测序工作完成
后[13],桃树分子标记的开发日益受到重视[14],如
曹珂等[15]利用多种分子标记以桃“红垂枝”与碧
桃“白花山”为亲本,构建了一张包含 206 个标记
的遗传图谱,并对雌蕊发育和单瓣 /重瓣性状进行
了定位;Verde等[13]对 56 个桃树品种进行重测序,
从中检测到 1 022 354 个 SNP。但是相对于拟南
芥、水稻、小麦等模式植物来说,桃树功能基因组
SSR标记的开发还非常有限。该研究利用 Roche
- 454 FLX 高通量测序平台对碧桃花瓣转录组进
行测序,并对微卫星序列特征和组成开展分析,以
期为后续桃品种鉴别、功能基因组 SSR 标记的开
发、桃树基因表达调控、基因组进化、QTL定位等提
供一定的理论依据。
1 材料与方法
1. 1 试验材料及数据来源
碧桃花瓣于 2013 年 3 月采自南京市情侣园,
采后用液氮迅速冷冻,置于 - 80 ℃冰箱保存备用。
用 Roche - 454 FLX 测序仪对花瓣测序后,共获得
1 556 684条 reads,平均读长 446 bp,得到 695. 34
Mb的数据量。去除低质量序列后,1 492 289条
reads被组装成 22 762 个 contig。测序原始数据已
上传至美国国家生物技术信息中心(national center
for biotechnology information,NCBI),登 录 号
为 SRR1037160。
1. 2 简单重复序列(SSR)的分析方法
SSR位点的搜索主要是利用 Perl 操作平台下
的 MISA软件(misa-microsatellite identification tool,
MISA,http:/ / pgrc. ipk-gatersleben. de /misa /)搜索
所得到的 contig,参数设置为:单碱基、二碱基、三
碱基、四碱基、五碱基、六碱基的最短重复分别为
12、6、4、3、3、2。复合 SSR 两个位点间最大间隔碱
基数(maximal number of bases interrupting 2 SSRs
in a compound microsatellite)为 100。
2 结果与分析
2. 1 碧桃花瓣转录组序列中 SSR重复的分布
Weber在 1990 年按照微卫星重复序列结构的
不同,将微卫星分为完整型 SSR、不完整型 SSR 以
及复合型 SSR[16]。完整型 SSR是由一种串联重复
序列以不间断的重复方式构成的单一重复类型的
微卫星;不完整型 SSR是指 3 个或 3 个以下的非重
复碱基将 2 个或 2 个以上的同种重复序列分隔开
的现象;复合型 SSR指 3 个或者 3 个以上连续的非
重复碱基将 2 个或 2 个以上的串联核心序列间隔,
并且连续性的核心序列重复数不得少于 5。该研
究利用 MISA软件分析了 22 762 个 contig 中 SSRs
的特征,序列拼接的总长度为 19 803 kb,其中含不
同重复基元 SSRs的序列有 4 705 条,共得到5 668
个 SSRs,完整型 SSRs 5 075 个,平均每 3. 49 kb 出
现 1 个 SSR 序列,SSR 序列的出现频率为 0. 286
SSR /kb。经对碧桃花瓣转录组中 1 ~ 6 碱基完整
型 SSR进行分析,部分微卫星信息见表 1。
表 1 碧桃花瓣转录组中微卫星数据库的部分结果
Table 1 SSR database of the peach flower transcriptome
重叠群
contig name
SSR类型
SSR type
重复单元
repeat motif
SSR长度 /bp
SSR length
> contig00764 (CT)6 二碱基 dinucleotide 12
> contig00797 (AG)21 二碱基 dinucleotide 42
> contig00845 (GCT)5 三碱基 trinucleotide 15
> contig01106 (ACA)4 三碱基 inucleotide 12
> contig00854 (TTGG)4 四碱基 tetranucleotide 16
> contig01030 (GACC)3 四碱基 tetranucleotide 12
> contig00269 (TGCCT)4 五碱基 pentanucleotide 20
> contig01835 (T)14 单碱基mononucleotide 14
2. 2 碧桃花瓣转录组中优势重复单元碱基组成
分析
在所有碱基重复类型中,三碱基重复单元的
SSR含量最多,约占总数的 42. 66%,其次分别为
二碱基(22. 78%)、四碱基(19. 68%)、五碱基
(7. 43%)、单碱基(7. 00%)和六碱基(0. 45%)。
研究中还发现 516 种重复基元(motif)中,(A/T)n、
(AG/CT )n、(AAG/CTT )n、(AAAT /ATTT )n、
(AAAAT /ATTTT)n、(AACCCG/CGGGTT)n 分别在
单、二、三、四、五和六碱基中出现频率最多,它们在
各自重复基元类型中的比例分别是 84. 51%、
79. 15%、28. 50%、20. 22%、15. 95%、8. 70%(表 2)。
在碧桃 516 种碱基重复基元中,单、二、三、四、
五及六碱基重复基元分别有 4、11、60、187、228、26
种,从出现的频率来看,所占比例最高的是(AG /
CT)n(18. 34%),其次是(AAG /CTT)n(12. 42%)、
(AGC /CTG)n(6. 77%)、(A /T)n(5. 90%)、(ATC /
ATG)n(5. 90%)等。不同类型重复基元 SSRs分布
见图 1。
53
南 京 林 业 大 学 学 报 (自 然 科 学 版 ) 第 39 卷
表 2 碧桃花瓣转录组中不同微卫星优势重复基元出现的频率
Table 2 Occurrence frequency of different advantage repeat motifs of the peach flower transcriptome
重复类型
repeat type
类型数量
number of type
频率 /%
frequency
最多重复基元
maximum repeat motif
基元数量
number of motif
比例 /%
proportion
单碱基
mononucleotide 355 7. 00 A /T 300 84. 51
二碱基
dinucleotide 1 156 22. 78 AG /CT 1 172 79. 15
三碱基
trinucleotide 2 165 42. 66 AAG /CTT 617 28. 50
四碱基
tetranucleotide 999 19. 68 AAAT /ATTT 202 20. 22
五碱基
pentanucleotide 377 7. 43 AAAAT /ATTTT 60 15. 95
六碱基
hexnucleotide 23 0. 45 AACCCG /CGGGTT 2 8. 70
图 1 不同类型重复单元的微卫星分布
Fig. 1 Microsatellites distribution on different repeat
motifs
注:此结果考虑了碱基互补作用。others 表示频率小于
0. 80%的重复基元类型。
Note:The figure considered sequence complementary. others
denote the repeat motifs with frequency below 0. 80% .
图 2 碧桃花瓣转录组中微卫星的长度分布
Fig. 2 Length distribution of microsatellites in peach
flower transcriptome
2. 3 碧桃花瓣转录组序列中微卫星的长度分布
在碧桃花瓣转录组中所发现的 5 075 个完整
型 SSRs中,微卫星长度存在极显著变异,从 12 ~
197 个碱基不等,平均长度为 15. 86 个碱基。如图
2 显示,碧桃花瓣微卫星中多为重复长度小于 20
bp 的短微卫星重复序列,其中 12 ~ 15 bp的数量最
多,其次为 16 ~ 20 bp,长度大于 20 bp 的长序列重
复仅占微卫星总数的 12. 13%。进一步利用 SPSS
软件 Person分布进行相关性分析,结果显示微卫
星出现的频率和其长度呈显著负相关(P < 0. 05),
相关系数为 - 0. 246。
碧桃花瓣转录组中 SSR 的数量与其长度的关
系见图 3。从图 3 可以看出,随着重复次数的增
加,SSR数量呈明显下降趋势,仅当其他碱基类型
的重复数从 3 次(1 172 个)增加到 4 次(1 546 个)
时,碧桃花瓣的 SSR 数量出现了增加。从图 3 中
还可以看出,碱基的重复次数越少,其数量下降的
速率就越快。当单碱基和二碱基的重复次数为 16
次,其他碱基重复次数为 12 次时,SSR的下降速率
降低,最终进入平台期。
图 3 碧桃花瓣转录组中 SSR数量随重复次数的变化
Fig. 3 Changes with the number of peach flower
transcriptome of SSR with repeat
注:Others 表示三、四、五、六碱基重复 SSR的总和。
Note:Others denote the total number of Tri -,Tetra -,Penta
-,and Hex-nucleotides repeats.
3 讨 论
微卫星序列对基因的功能会产生重要的影响,
63
第 3 期 马秋月,等:碧桃花瓣转录组微卫星特征分析
其序列特征是了解不同物种基因组差异的重要指
标。碧桃花瓣转录组中,微卫星序列主要以三碱基
重复为主,约占总数的 42. 66%。微卫星多为重复
长度小于 20 bp 的短重复序列,长度大于 20 bp 的
微卫星仅占总数的 12. 13%。研究中还发现微卫
星的频率和长度呈显著负相关(P < 0. 05),相关系
数为 - 0. 246。
3. 1 碧桃花瓣转录组中 SSR微卫星分布特征
以往的研究表明,微卫星的形成可能与 DNA
复制滑脱、核酸交替以及重组不平衡有关[3]。Biet
等[17]研究发现 CA、GA、GT 等重复可以通过影响
DNA的结构而影响 DNA 重组,因此微卫星中重复
单元碱基组成在很大程度上会影响生物的生命活
动。该研究利用 Roche - 454 FLX 高通量测序平
台,对碧桃花瓣进行转录组测序,并利用 Misa 软件
在该转录组序列中搜索到 5 668 个微卫星,这些微
卫星分布在 4 705 条序列中,SSR 的出现频率为
0. 286 个 /kb,平均每 3. 49 kb 出现 1 个 SSR 序列。
Wang等[18]对不同品种桃树的叶子、花瓣、果实的
转录组进行分析时发现,SSR 分布密度为 0. 313
个 /kb,与此次对碧桃的研究结果相近。另外,茶
树(0. 272 个 /kb)[7]、拟南芥(0. 357 个 /kb)和葡萄
(0. 247 个 /kb)中 SSR 的分布密度与之也比较相
近,但是这个分布密度却低于单子叶植物,如水稻
(0. 739 个 /kb)、高粱(0. 646 个 /kb)[19]。此次研
究还发现,碧桃花瓣三碱基重复单元的 SSR 数量
最多,约占总数的 42. 66%,这与对桃树、小麦、柑
橘、百合等的研究结果一致[20 - 22]。但是也有学者
发现,茶树、白桦、核桃、猕猴桃、杨树等以二碱基重
复类型为主[23 - 27],因此不同物种中优势重复类型
有所不同。另外,不同优势碱基单元在不同物种中
也呈现出很大的差别。此次研究中,碧桃花瓣优势
碱基 单 元 中 所 占 比 例 最 高 的 是 (AG /CT)n
(18. 34%),这与王丽鸳等[23]在茶树花(Camellia
sinensis)、袁阳阳等[9]在莕菜(Nymphoides peltata)、
Aggarwal等[28]在咖啡(Coffea arabica)转录组分析
中的结果一致[25]。碧桃花瓣三碱基重复中,AAG /
CTT最多(占总 SSR 的 12. 42%),对莕菜[9]、西葫
芦[29]、红豆杉[30]等的报道中也是如此,而在水稻、
高粱、玉米等作物中却是 GGC /CCG为三碱基重复
类型中最多[31],袁阳阳等[9]认为这可能与不同物
种中相应编码蛋白的使用频率有关。
GC重复基元在水稻、玉米、大豆等植物中很
难见到[32],小麦、油菜中虽有发现,但相对频率却
比较低[33 - 34]。此次碧桃花瓣转录组中 GC 重复基
元也比较少,仅在三碱基重复类型中发现 89 个,四
碱基中有 5 个,五碱基中有 1 个,因此 GC 碱基重
复在植物中有一定的偏倚性。产生这一现象的原
因可能是由于基因组 DNA 中 CpG 岛的甲基化造
成的[32],甲基化的胞苷酸 C 很容易经过脱氨基作
用转变成胸腺嘧啶 T,同时基因组 DNA 中 CpG 的
甲基化会成为突变的热点,但少量的 GC 又是维持
DNA热力学稳定性所必需的,这可能是导致 GC含
量偏少的原因[3]。
3. 2 碧桃花瓣转录组序列中 SSR长度变异情况
SSR分子标记的多态性是判断其可用性的重
要依据,而其长度和重复次数又是影响其多态性高
低的重要因素。多数研究者认为这种多态性起因
于复制过程中的滑动[35]。根据 Tenmykh 等[36]的
研究,当 SSR 长度大于等于 20 bp 时多态性较高,
长度在 12 ~ 20 bp之间的 SSR多态性中等,长度在
12 bp以下时多态性极低。该研究在 SSR 筛选过
程中已经将多态潜能很低的(12 bp 以下)SSR 过
滤掉,最终发现碧桃花瓣转录组中长度为 12 ~ 197
个碱基不等,平均长度为 15. 86 bp,以重复长度
12 ~ 15 bp的短重复序列为最多,其次为 16 ~ 20 bp
(12 ~ 20 bp占 87. 87%),具有中等多态性;长度大
于 20 bp 的长序列重复仅占微卫星总数的
12. 13%,此类具有高度多态性,可以预计这部分多
态性潜能高的 SSR在桃树上应具有较高的利用价
值[7]。笔者在研究中还发现,微卫星的频率与长度
呈显著负相关(P <0. 05),相关系数为 -0. 246。Sa-
madi等[37]的模拟分析认为,微卫星重复单位长度的
变化与其选择压力有关,长度越长所受的选择压力
将会越大,拷贝数就越少,因此基因组中长度较短的
微卫星变异速率较快,而较长的变异速率会较慢,相
对较为稳定。尽管基因序列中的微卫星增加了基因
的不稳定性,但这样的不稳定性也为基因的变异提
供了动力。
参考文献(References):
[1]何平. 真核生物中的微卫星及其应用[J]. 遗传,1998,20
(4):42 - 47.
He P. Abundance,polymorphism and applications of microsatel-
lite in eukaryote[J]. Hereditas,1998,20(4):42 - 47.
[2]Mrázek J,Guo X,Shah A. Simple sequence repeats in prokary-
otic genomes[J]. Proceedings of the National Academy of Sci-
ences,2007,104(20):8472 - 8477.
[3]Tóth G,Gáspári Z,Jurka J. Microsatellites in different eukaryot-
ic genomes:survey and analysis[J]. Genome Research,2000,
10(7):967 - 981.
[4]杨纪青,杨硕,杨莉,等. Tomato leaf curl Bangladesh 病毒完整
基因组上微卫星分布[J]. 中国农学通报,2010,26(24):
20 - 27.
Yang J Q,Yang S,Yang L,et al. The microsatellite distribution
in the complete genomes of the tomato leaf curl Bangladesh virus
73
南 京 林 业 大 学 学 报 (自 然 科 学 版 ) 第 39 卷
[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin,2010,26(24):
20 - 27.
[5]Selkoe K A,Toonen R J. Microsatellites for ecologists:a practi-
cal guide to using and evaluating microsatellite markers[J]. E-
cology Letters,2006,9(5):615 - 629.
[6]Beheregaray L B,Ciofi C,Geist D,et al. Genes record a prehis-
toric volcano eruption in the Galapagos[J]. Science,2003,302
(5642):75.
[7]杨华,陈琪,韦朝领,等. 茶树转录组中 SSR 位点的信息分析
[J]. 安徽农业大学学报,2011,38(6):882 - 886.
Yang H,Chen Q,Wei Z L,et al. Analysis on SSR information in
Camellia sinensis transcriptome[J]. Journal of Anhui Agricultural
University,2011,38(6):882 - 886.
[8]李小白,向林,罗洁,等. 转录组测序(RNA-seq)策略及其数
据在分子标记开发上的应用[J]. 中国细胞生物学报,2013,
35 (5):1 - 8.
Li X B,Xiang L,Luo J,et al. The strategy of RNA-seq,appli-
cation and development of molecular marker derived from RNA-
seq[J]. Chinese Journal of Cell Biology,2013,35(5):1 - 8.
[9]袁阳阳,王青锋,陈进明. 基于转录组测序信息的水生植物莕
菜 SSR 标记开发 [J]. 植物科学学报,2013,31(5):485
- 492.
Yuan Y Y,Wang Q F,Chen J M. Development of SSR markers
in aquatic plant Nymphoides peltata (Menyanthaceae)based on
information from transcriptome sequencing[J]. Journal of Plant
Sciences,2013,31(5):485 - 492.
[10]孔凡明,王小龙,陈赢男,等. 松属编码区微卫星特征和相应
基因功能分析[J]. 南京林业大学学报:自然科学版,2014,38
(2):47 - 51.
Kong F M,Wang X L,Chen Y N,et al. Characterization of mic-
rosatellites in coding genes and functional analysis of these genes
in pines[J]. Journal of Nanjing Forestry University:Natural Sci-
ences Edition,2014,38(2):47 - 51.
[11]张文娥,潘学军,杨仕国,等. 碧桃组织培养中褐化及其抑制
研究[J]. 贵州农业科学,2009,37(1):11 - 12.
Zhang W E,Pan X J,Yang S G,et al. Inhibition effects of dif-
ferent sterilized methods,inoculation times and antioxidants on
browning in tissue culture of Prunus persica var. duplex[J].
Guizhou Agricultural Science,2009,37(1):11 - 12.
[12]Chen Y,Mao Y,Liu H,et al. Transcriptome analysis of differ-
entially expressed genes relevant to variegation in Peach flowers
[J]. PloS one,2014,9(3):e90842.
[13]Verde I,Abbott A G,Scalabrin S,et al. The high-quality draft
genome of peach (Prunus persica)identifies unique patterns of
genetic diversity,domestication and genome evolution[J]. Na-
ture Genetics,2013,45(5):487 - 494.
[14]李雄伟,贾惠娟,高中山. 桃基因组学及全基因组关联分析研
究进展[J].遗传,2013,35(10):1167 - 1178.
Li X W,Jia H J,Gao Z S. Peach genomics and genome-wide as-
sociation study:a review[J]. Hereditas,2013,35(10):1167
- 1178.
[15]曹珂,王力荣,朱更瑞,等. 桃遗传图谱的构建及两个花性
状的分子标记[J]. 园艺学报,2009,36(2):179 - 186.
Cao K,Wang L R,Zhu G R,et al. Genetic linkage maps con-
structing and markers linked with pistil development and double
petal gene in peach[J]. Acta Horticulturae Sinica,2009,36
(2):179 - 186.
[16]Weber J L. Informativeness of human (dC-dA)n·(dG-dT)n pol-
ymorphisms[J]. Genomics,1990,7(4):524 - 530.
[17]Biet E,Sun J,Dutreix M. Conserved sequence preference in DNA
binding among recombination proteins:an effect of ssDNA secondary
structure[J]. Nucleic Acids Research,1999,27(2),596 -600.
[18]Wang L,Zhao S,Gu C,et al. Deep RNA-Seq uncovers the
peach transcriptome landscape [J]. Plant Molecular Biology,
2013,83(4 - 5):365 - 377.
[19]Cavagnaro P F,Senalik D A,Yang L,et al. Genome-wide char-
acterization of simple sequence repeats in cucumber (Cucumis sa-
tivus L.) [J]. BMC Genomics,2010,11:569.
[20]陈军方,任正隆,高丽锋,等. 从小麦 EST 序列中开发新的
SSR 引物[J].作物学报,2005,31 (2):154 - 158.
Chen J F,Ren Z L,Gao L F,et al. Developing new SSR marker
from EST of wheat[J]. Acta Agronomica Sinica,2005,31 (2):
154 - 158.
[21]江东,钟广炎,洪棋斌. 柑橘 EST-SSR分子标记分析[J].遗传
学报,2006,33(4):345 - 353.
Jiang D,Zhong G Y,Hong Q B. Analysis of microsatellites in
citrus unigenes[J]. Acta Genetica Sinica,2006,33 (4):
345 - 353.
[22]杨素丽,明 军,刘 春,等. 基于 EST 信息的百合 SSR 标记的
建立[J]. 园艺学报,2008,35 (7):1069 - 1074.
Yang S L,Ming J,Liu C,et al. Data mining for simple sequence
repeats marker development in Expressed Sequence Tags from
Lilium L.[J]. Acta Horticulturae Sinica,2008,35 (7):1069 -
1074.
[23]王丽鸳,韦康,张成才,等. 茶树花转录组微卫星分布特征
[J].作物学报,2014,40(1):80 - 85.
Wang L Y,Wei K,Zhang C C,et al. Characterization of micro-
satellites in tea (Camellia sinensis)floral transcriptome[J]. Ac-
ta Agronomica Sinica,2014,40(1):80 - 85.
[24]王艳敏,魏志刚,杨传平. 白桦 EST-SSR 信息分析与标记的开
发[J]. 林业科学,2008,44 (2):78 - 84
Wang Y M,Wei Z G,Yang C P. Data mining for SSRs in ESTs
and EST-SSR marker development in Betula platyphylla[J]. Sci-
entia Silvae Sinicae,2008,44 (2):78 - 84.
[25]朱艳,郝艳宾,王克建,等. 核桃 EST-SSR 信息分析与标记的
初步建立[J].果树学报,2009,26(3):394 - 398.
Zhu Y,Hao Y B,Wang K J,et al. Analysis of SSRs information
and development of SSR markers from walnut ESTs[J]. Journal
of Fruit Science,2009,26(3):394 - 398.
[26]姜春芽,徐小彪,廖 娇,等. 猕猴桃 EST 序列的 SSR 信息分析
[J].中国农学通报,2009,25(13):37 - 39.
Jiang C Y,Xu X B,Liao J,et al. Analysis of SSR information in
EST resources of kiwifruit (Actinidia ssp.)[J]. Chinese Agricul-
tural Science Bulletin,2009,25 (13):37 - 39.
[27]张新叶,宋丛文,张亚东,等. 杨树 EST-SSR 标记的开发[J].
林业科学,2009,45 (9):53 - 59.
Zhang X Y,Song C W,Zhang Y D,et al. Development of EST-
SSR in Populus deltodes and P. euramericana[J]. Scientia Sil-
vae Sinicae,2009,45 (9):53 - 59.
[28]Aggarwal R K,Hendre P S,Varshney R K,et al. Identification,
characterization and utilization of EST-derived genic microsatellite
markers for genome analyses of coffee and related species[J].
Theoretical and Applied Genetics,2007,114(2):359 - 372.
[29]Blanca J,Caizares J,Roig C,et al. Transcriptome characteriza-
tion and high throughput SSRs and SNPs discovery in Cucurbita
pepo (Cucurbitaceae)[J]. BMC Genomics,2011,12(1):104.
[30]李炎林,杨星星,张家银,等. 南方红豆杉转录组 SSR 挖掘及
分子标记的研究[J]. 园艺学报,2014,41(4):735 - 745.
Li Y L,Yang X X,Zhang J Y,et al. Studies on SSR molecular
markers based on transcriptome of Taxus chinensis var. mairei
[J]. Acta Horticulturae Sinica,2014,41(4):735 - 745.
[31]Kantety R V,La Rota M,Matthews D E,et al,Data mining for
simple sequence repeats in expressed sequence tags from barley,
maize,rice,sorghum and wheat[J]. Plant Molecular Biology,
2002,48(5 - 6):501 - 510.
[32]Schorderet D F,Gartler S M. Analysis of CpG suppression in
methylated and nonmethylated species [J]. PNAS,1992,89
(3):957 - 961.
[33]Gao L,Tang J,Li H,et al. Analysis of microsatellites in major
crops assessed by computational and experimental approaches
[J]. Molecular Breeding,2003,12(3):245 - 261.
[34]李小白,张明龙,崔海瑞.油菜 EST资源的 SSR信息分析[J].
中国油料作物学报,2007,29(1):20 - 25.
Li X B,Zhang M L,Cui H R. Analysis of SSR information in
EST resource of oilseed rape[J]. Chinese Journal of Oil Crop
Sciences,2007,29(1):20 - 25.
[35]Sharopova N. Plant simple sequence repeats:distribution,varia-
tion,and effects on gene expression[J]. Genome,2008,51
(2):79 - 90.
[36]Temnykh S,DeClerck G,Lukashova A,et al. Computational
and experimental analysis of microsatellites in rice (Oryza sativa
L.):frequency,length variation,transposon associations,and
genetic marker potential[J]. Genome Research,2001,11(8):
1441 - 1452.
[37]Samadi S,Artiguebielle E,Estoup A,et al. Density and varia-
bility of dinucleotide microsatellites in the parthenogenetic poly-
ploid snail Melanoides tuberculata[J]. Molecular Ecology,1998,
7(9):1233 - 1236.
(责任编辑 刘昌来)
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