全 文 :·综述与专论· 2013年第11期
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN
1 植物 Rboh 基因概述
活性氧(reactive oxygen species,ROS)是一类
生物体有氧代谢的副产物,主要包括超氧阴离子自
由基(O2
-·)、羟自由基(·OH)及过氧化氢(H2O2)。
ROS 具有双重功能,一方面可以作为有毒的次生代
谢物对体内正常分子产生破坏作用 ;另一方面作为
重要的信号分子参与生物体的生长和发育[1-5]。目
前的研究表明,ROS 的来源包括质膜 NADPH 氧化酶、
过氧化物酶及胺氧化酶,其中由 NADPH 氧化酶介
导产生的 ROS 最受关注。NADPH 氧化酶是一种以
胞质 NADPH 为电子供体,催化胞外 O2 生成超氧阴
离子(O2
-·)并伴随着 H2O2 产生的氧化还原酶
[6,7]。
NADPH 氧化酶最早在哺乳动物中发现,位于
吞 噬 细 胞 质 膜 上, 是 由 gp91phox、p22phox、p47phox、
收稿日期 :2013-03-18
基金项目 :国家自然科学基金项目(31160062)
作者简介 :刘秋圆,男,硕士研究生,研究方向 :植物分子生物学 ;E-mail :guotaiminan99@163.com
通讯作者 :胡丽芳,女,博士,助理研究员,研究方向 :植物分子生物学 ;E-mail :lfhu_hn337@163.com
植物 Rboh 基因功能及其活性调节机制的研究进展
刘秋圆1 贺浩华2 胡丽芳2
(1. 江西农业大学理学院,南昌 330045 ;2. 江西农业大学农学院 作物生理生态与遗传育种教育部重点实验室,南昌 330045)
摘 要 : 植物呼吸爆发氧化酶(respiratory burst oxidase homologue,Rboh)又称 NADPH 氧化酶,是哺乳动物吞噬细胞
NADPH 氧化酶复合体主要功能亚基 gp91phox 的同源物。植物 Rboh 基因主要在植物生长发育及胁迫反应中起作用,其活性主要受
Ca2+、蛋白磷酸化、Rac 蛋白及 ABA 所调控。对近年来植物 Rboh 基因的功能及其活性调节机制的研究进行综述。
关键词 : NADPH 氧化酶 呼吸爆发氧化酶 活性氧 胁迫 活性调节
Research Progress in Plant Rboh Genes Function and Activity
Regulation Mechanism
Liu Qiuyuan1 He Haohua2 Hu Lifang2
(1. School of Sciences,Jiangxi Agricultural University,Nanchang 330045 ;2. Key Laboratory of Crop Physiology,Ecology,Genetics and
Breeding,Ministry of Education,College of Agronomy,Jiangxi Agricultural University,Nanchang 330045)
Abstract: Plant respiratory burst oxidase homologue is also named NADPH oxidase,which is the homologue of mammalian phagocyte
gp91phox -the main catalyze subunit of NADPH oxidase complex. Plant Rboh genes play a significant role in plant development and stress
response,and its activity is regulated by Ca2+,protein phosphorylation,Rac protein and ABA. This article provides an overview of the plant
Rboh genes function and its activity regulation mechanism based on the current researches.
Key words: NADPH oxidase Rboh ROS Stress Activity regulate
p67phox、p40phox 和 Rac 六种亚基组成的多酶复合体,
并带有细胞色素 C 和 FAD 基团。研究表明,植物
中的 NADPH 氧化酶与哺乳动物中的 NADPH 氧化
酶具有一定的差异。植物 NADPH 氧化酶又称呼吸
爆 发 氧 化 酶(Respiratory burst oxidase homologue,
Rboh),是哺乳动物巨噬细胞 NADPH 氧化酶催化亚
基 gp91phox 的同源物[8-10]。植物中尽管也具有与巨噬
细胞小 G 蛋白 Rac 同源的 RhoGTPase 亚家族 ROP,
但 另 外 的 4 种 催 化 亚 基 p22phox、p47phox、p67phox 和
p40phox 在植物中的同源物还未见报道。
植物 NADPH 氧化酶包含 NADPH 结合结构域、
FAD 结合结构域以及 6 个保守的跨膜结构域,这与
哺乳动物 gp91phox 的保守结构域一致(图 1)。然而,
与哺乳动物 gp91phox 不同的是,所有植物 Rboh 蛋白
2013年第11期 9刘秋圆等 :植物 Rboh 基因功能及其活性调节机制的研究进展
都包含约 300 个氨基酸大小的 N 末端延长区,该区
域含有 2 个保守的 Ca2+ 结合 EF 手性结构[9,11,12]。
而 AtRbohH、J 在 花 粉 中 特 异 表 达[12]。 水 稻 中 的
OsRbohA-C 和 OsRbohG 在根、茎、叶、穗、鞘和愈
伤组织中组成型表达,OsRbohD 在穗和愈伤组织中
表达,OsRbohE 和 OsRbohF 仅在愈伤组织中表达[17]。
水稻和拟南芥 Rboh 基因家族各成员在表达上的差异
表明各成员可能在功能上存在一定的差异。
2 植物 Rboh 基因的功能
目前的研究表明,植物 Rboh 基因的功能主要集
中于两个方面 :参与胁迫反应和调控生长发育。
2.1 参与胁迫反应
当 病 原 菌 侵 染 拟 南 芥 细 胞 时,AtRbohD 和
AtRbohF 基因表达产生大量的 ROS 来增强组织的抗
病性。脱落酸(Abscisic Acid,ABA)可以诱导拟南
芥保卫细胞主动关闭气孔以适应外界环境的变化。
拟 南 芥 atrbohD/atrbohF 双 突 变 体 中,Ca2+ 通 道 的
ABA 活化与气孔关闭不能正常进行,通过外源施加
H2O2 可以部分修复这些缺失的功能,同时,atrbohD
和 atrbohF 双突变体植株相比于各自单突变体的表型
明显加重,这说明 AtRbohD 和 AtRbohF 基因功能的
叠加性。这一研究结果证明气孔中的 AtRboh 蛋白可
以调节 ABA 信号,相同的 AtRboh 亚基可以在不同
的细胞中调节不同的 ROS 的功能[18]。对本塞姆氏
烟草植株(Nicotiana benthamiana)采用病毒诱导基
因沉默(VIGS)的方法使 NbRbohA 或 NbRbohB 基因
沉默后发现,转基因植株的 ROS 生成量降低,同时,
对致病疫霉菌(Phytophthora infestans)的抗性降低,
且过敏反应受到抑制[17]。马铃薯中 stRbohA 参与受
伤后超氧根离子 O2
-·的产生,其在马铃薯块茎的伤
口愈合及抗微生物感染中起作用[19]。
Rboh 基因在胁迫方面的功能在单子叶植株中也
有报道。Yoshiaki 等[20]用非共生性的细菌性果斑病
菌(Acidovorax avenae)侵染水稻细胞后,检测结果
显示 OsRbohA mRNA 水平显著升高,同时质膜上的
NADPH 氧化酶活性明显上升,而用共生细菌侵染
时则没有观察到这些现象。通过人工构建 OsRbohA-
RNAi 和 OsRbohE-RNAi 转化株系,在侵染 A. avenae
后发现,水稻细胞免疫早期 H2O2 的大量生成是由
OsRbohA 引起的,而 OsRbohE 则参与免疫晚期 H2O2
的生成。另外,瞬时表达转入了水稻 OsRbohB 基因
O2 O
g
2
outside
Fe
Fe
H
H
H
H
FAD
NADPH
Ef
h
an
d
Ef
h
an
d
NH3
+
NADPH NADP+ +H+
COO-
inside
图 1 植物 Rboh 蛋白空间结构示意图 [12]
水稻中的 OsRbohA 为植物中第一个克隆的 Rboh
基因[13],随后,陆续从拟南芥(Arabidopsis thalia-
na)[11]、 马 铃 薯(Solanum tuberosum)[14]、 番 茄
(Solanum lycopersicum)[15]、烟草(Nicotiana tabac-
um)[16]等多种植物中克隆出 Rboh 基因。研究表明,
植物中的 Rboh 基因一般以基因家族的形式存在。拟
南芥基因组中包含 10 个 Rboh 基因(AtRbohA-J)[12]
(图 2-A),水稻中包含 7 个 Rboh 基因(OsRbohA-G)[17]
(图 2-B)。进一步研究表明,拟南芥 AtRbohA-J 呈现
出不同的组织器官特征 :AtRbohD、F 在植株的各个
器官中组成型表达,AtRbohA-G、I 在根中特异表达,
AtRbohG
AtRbohC
AtRbohA
AtRbohD
AtRbohB
AtRbohI
AtRbohF
AtRbohE
AtRbohH
AtRbohJ
OsRbohB
OsRbohF
OsRbohD
OsRbohC
OsRbohA
OsRbohG
OsRbohE
100
100
100
100
100
100
97
47
A
B
91
56
98
图 2 拟南芥(A) 和水稻(B)Rboh 基因进化树分析
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2013年第11期10
的本塞姆氏烟草植株细胞内 ROS 的本底表达水平明
显增强。大麦 HvRbohA 反义转基因植株受伤后的叶
片出现凋亡速度加剧的情形,类似的表型也在老的
大麦叶片中出现,同时,转基因植株对白粉菌的抗
性明显降低[21]。赵宇等[22]发现玉米 ZmRbohA/B/
C/D 基因表达水平受水分胁迫所诱导。
2.2 调控植物生长发育
拟南芥 AtRbohC 基因的突变导致根和根毛生长
受抑制,其突变体 rdh2 内 ROS 的水平较野生型有
大幅度的降低,用 NADPH 氧化酶的抑制剂二亚苯
基碘(DPI)处理可抑制其活性,产生与突变体相
同的情况,而 ROS 处理突变体根部则可部分恢复
表型。进一步的研究表明,由于 AtRbohC 基因的突
变使得根毛顶端质膜的超极化不能实现,无法激活
Ca2+ 离子通道,使得胞内 Ca2+ 离子浓度不能升高,
从而使得根毛的生长受抑制[6]。番茄反义 Rboh 植
株中 ROS 的生成量明显下降,同时在形态上出现很
多明显的表型 :植株的侧枝增加,花序和花数量为
野生型的 2-3 倍,花瓣多于 6 瓣,胚珠和花柱的形
状变得扁平。而且,由于花发育的不正常使得相当
高比例的花表现不育,同时,转基因植株中也出现
较高比例的不正常果实[15]。大麦 HvRbohA 基因除在
胁迫反应中的功能外,还在大麦的生长发育中起作
用。大麦 HvrRbohA 反义转基因植株表现出分蘖变少,
育性降低[21]。菜豆 PvRbohB 干扰植株中侧根的密度
降低,根瘤的形成受影响,从而影响植株的固氮能
力[23]。另外,西瓜 CcRboh 基因的表达水平在种子
萌发后的 3 d 达到最高,推测其可能在根的发育中
起作用[24]。可以看出,植物 Rboh 基因的主要作用
机理是其编码的 Rboh 氧化酶催化产生 ROS,后者
作为一种信号分子激活下一级的反应,从而在胁迫
反应和植物生长发育中起作用。
3 植物 Rboh 蛋白活性的调节机制
目前,对动物 NADPH 氧化酶活性调节机制的
研究较为深入。研究表明,哺乳动物 NADPH 氧化
酶在静息状态下并不具有活性,此时的功能亚基
p40phox、p47phox 和 p67phox 作为复合体存在于细胞质
中,而 p22phox 和 gp91phox 以二聚体的形式存在于质膜
上。当细胞受到外界信号刺激时,p40phox、p47phox 和
p67phox 复合体与结合了 GTP 的 Rac 蛋白一起由细胞
质转移到质膜上与 p22phox 和 gp91phox 组装成有活性的
NADPH 氧化酶复合体,短时间内产生大量 O2
-·,
随后,O2
-·迅速歧化生成·OH 和 H2O2 等活性氧
(ROS)[25]。与动物相比,植物 Rboh(NADPH)氧
化酶的调控机制存在着一定的差异。已有的研究报
道表明,其活性主要受 Ca2+、蛋白磷酸化、Rac 蛋
白及 ABA 所调控。
3.1 Rboh蛋白的活性受Ca2+和蛋白磷酸化的协同
调控
Ca2+ 是植物细胞内重要的第二信使,它连接多
种胞内外信号转导通路,参与细胞的多种基本生命
活动。植物 Rboh 蛋白的显著特征是 N 末端含有 2
个保守的 Ca2+ 结合 EF 手性结构,提示 Ca2+ 在调节
植物 Rboh 蛋白活化上起作用。1998 年,Keller 等[9]
证实拟南芥 AtRboh 蛋白 N 末端的两个 EF 手性结构
域都能与 Ca2+ 结合,推测 Ca2+ 可能直接参与 Rboh
蛋 白 的 活 化。2001 年,Sagi 和 Fluhr[26] 发 现 番 茄
与烟草质膜 Rboh 蛋白活性会随外源 Ca2+ 浓度的增
加 而 提 高。2007 年,Ogasawara 等[27] 发 现 拟 南 芥
AtRbohD 蛋白两个 EF 手性结构域可以通过与 Ca2+
结合改变其蛋白结构,从而调控 AtRbohD 的活性,
外源施加 ionomycin(细胞 Ca2+ 流的载体)可诱导
AtRbohD 的活性。Kobayashi 等[28]发现 Ca2+ 的拮抗
剂 EGTA 可有效抑制马铃薯 StRboh 蛋白诱导的氧化
爆发。另外,Neill 等[29]发现钙调素也可能通过调
节 NAD 酶活性增加 NADPH 的量间接激活 NADPH
氧化酶。Harding 等[30] 发现包含组成型活性的合
成钙调素的转基因植物受激发子侵染时具有较高的
NADPH 水平,且导致较高水平活性氧的产生。
植物 Rboh 蛋白的活性受磷酸化作用诱导。蛋
白激酶(催化蛋白质磷酸化反应的酶)的抑制剂
K252a 可有效抑制马铃薯 StRboh 蛋白诱导的氧化爆
发[29]。对拟南芥质膜蛋白质进行定量磷酸化蛋白质
组学分析发现,AtRbohD 蛋白的两个位点 Ser343 和
Ser347 可以在体内进行磷酸化,这两个位点的突变
使得 ROS 的产生明显下降。蛋白磷酸酶(催化已经
磷酸化的蛋白质分子发生去磷酸化反应的一类酶分
子)的抑制剂(calyculin A,CA)可增强 AtRbohD
2013年第11期 11刘秋圆等 :植物 Rboh 基因功能及其活性调节机制的研究进展
的磷酸化作用及 ROS 的生成量[27]。
Rboh 蛋白的活性还受 Ca2+ 和磷酸化的协调调
控。Ca2+ 可以通过间接的磷酸化作用,激活一种
Ca2+ 依赖的蛋白激酶(CDPK)而发生作用。Xing
等[31] 用拟南芥 cdpk 基因转化番茄原生质体后增
加 了 原 生 质 体 NADHP 氧 化 酶 的 活 性, 表 明 AK1
(Arabidopsis CDPK)可能通过磷酸化的方式来调节
植物 NADHP 氧化酶的活性。马铃薯 StRboh 的活性
受其 N 端 Ser82 和 Ser97 位点的磷酸化所调控,该
磷酸化过程受 StCDPK4 和 StCDPK5 的直接激活。当
Ser82 和 Ser97 突变为 Ala 时其 ROS 生成活性明显降
低。烟草 NbRboh 干扰植株中 CDPK 介导的 ROS 生
成能力缺失,过量表达 StRboh 基因会恢复其功能[28]。
3.2 Rac/Rop蛋白的募集与转运参与Rboh活性调控
植物 RBOH 酶不具有哺乳动物 4 种催化亚基的
同源物,但具有与哺乳动物吞噬细胞小 G 蛋白 Rac
高度同源的 Rac/Rop 蛋白。鉴于动物 Rac 蛋白可以
调控 NADPH 活性,预示植物 Rac/Rop 蛋白也可能
参与调控植物 Rboh(NADPH)酶的活性。
1999 年,Kawasaki 等[32]发现组成型活化的水
稻 Rac1 可以促进 ROS 的形成。此后,人们相继在
棉花[33]、玉米[34]、大豆[35]和拟南芥[36]等物种中
发现组成型活化的 Rac 蛋白在种内或种间表达时,
其可以提高植株 ROS 的生成能力,进而参与特定的
植物抗逆反应。鉴于植物 Rboh 氧化酶是 ROS 产生
的主要来源,推测植物中的 Rac/ROP 蛋白可能是通
过调控 Rboh 蛋白而参与 ROS 的产生。
植物 Rac/ROP 蛋白参与调控 Rboh 蛋白活性的
直 接 证 据 源 于 随 后 的 研 究。2007 年,Wong 等[37]
通过酵母双杂交、pull-down、单原子核磁共振和体
内荧光共振能量转移(FRET)等技术证明了水稻
OsRac1 可以与 RbohB 蛋白的 N 端相互作用,同时
发现细胞质内 Ca2+ 水平动态调节 Rac-Rboh 之间的反
应,瞬时共表达 OsRac1 与 RbohB 可以提高本塞姆
氏烟草(Nicotiana benthamiana)细胞内 ROS 的生成
量。2008 年,Ayako 等[38]借助亲和层析的方法证
明 水 稻 OsRac1 与 RACK1(Receptor for Activated C-
Kinase 1)之间存在交互作用。Rac1 可以在转录和转
录后水平上正向调节 RACK1 基因的表达,而过表达
RACK1 基因水稻幼苗中 ROS 含量上升。2012 年,Liu
等[39]发现磷脂酰肌醇 -3-激酶(PI3K)可以通过募
集 OsRac1 由细胞质到细胞膜的转运,进而参与 Rboh-
B 功能复合体的组装,以此参与 Rboh 的活性调控。
3.3 ABA参与Rboh活性调节
Jiang 等[40]发现,ABA 处理玉米幼苗可明显增
加叶片质膜 Rboh 氧化酶的活性,而用 ABA 合成的
抑制剂 Tungstat 处理可以明显降低 Rboh 氧化酶的活
性,超氧阴离子的产生也明显减少,这种抑制作用
可以被外源添加的 ABA 恢复。Kwak 等[18]在拟南
芥 AtRbohD 和 AtRbohF 双突变体中发现,ABA 诱导
的气孔关闭,ROS 积累及 Ca2+ 通道的活跃程度均削
弱,外源 ABA 的处理可以直接刺激 Rboh 氧化酶的
活性,产生 ROS 类物质,从而诱导保卫细胞中气孔
的关闭来更好地适应缺水环境,表明 ABA 可诱导植
物 Rboh 氧化酶产生 ROS 参与植株的生理调节过程。
4 展望
植物与动物 Rboh 基因有很多相似性,但又有一
定的差别,最显著的差别在于植物 Rboh 氧化酶含有
钙离子结合结构域。Rboh 基因目前已在拟南芥、水
稻、烟草和番茄等约 10 个物种中克隆并进行相关
功能研究,其编码的质膜 NADPH 氧化酶催化产生
ROS 作为信号分子在胁迫反应和植物生长发育中起
作用。除已报道的功能外,该基因在植物生长发育
方面是否还有其他作用,如是否参与控制叶的发育、
花和果实生长的调控等诸多问题,尚有待进一步研
究。此外,鉴于 Rboh 基因通常以基因家族的形式存
在,但目前仅能通过进化树的分析及表达模式的研
究来初步推测其可能的功能,家族各成员的具体功
能还需要深入研究。植物 Rboh 氧化酶的活性调节机
制与动物相比有明显差异,研究表明,植物 Rboh 蛋
白活性受 Ca2+ 和蛋白磷酸化的协同调控,Rac 蛋白
和 ABA 也参与 RBOH 活性的调节(图 3)。
尽管目前在植物 Rboh 基因的研究中取得了一定
的进展,但 Rboh 氧化酶相关信号传递机制及其与其
他信号途径的交互作用还未见相关报道,需要进一
步的研究。另外,已有报道表明水稻 OsRboh 基因在
水稻种子萌发率及抗逆性上具有重要的作用,但关
于 OsRboh 基因是否参与水稻花器官的发育还未见报
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Ca2+
P
CDPK
Ca2+
EFEF
Rac I
PI3K
ABA
RACK 1
图 3 植物 Rboh 蛋白活性调节机制简图
道。最近研究发现,在水稻花药发育过程中,第 8-9
期的水稻花药中呈现较高的 ROS 水平,第 10 期开
始下降,所产生的 ROS 主要为超氧根离子,主要集
中于花药的绒毡层和小孢子中[41]。由于绒毡层是重
要的营养组织,而小孢子是正常花粉粒形成的前提,
ROS 的产生可能与花药的正常发育相关,分离水稻
花药 ROS 产生的相关基因并进行详细的功能分析值
得深入研究。鉴于 Rboh 基因编码的 Rboh 氧化酶是
产生 ROS 的主要来源,通过原位杂交研究 OsRboh
基因在花药中的特定表达模式、结合过量表达及
RNAi 等技术研究水稻 OsRboh 基因在水稻花药发育
中的功能是下一步的研究重点。
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(责任编辑 狄艳红)