免费文献传递   相关文献

国外牧草基因组学和转基因技术研究进展



全 文 :·综述与专论·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2011 年第 11 期
国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
井赵斌1 俞靓2 魏琳2 程积民3
(1西北农林科技大学动物科技学院,杨凌 712100;2西北农林科技大学资源与环境学院,杨凌 712100;
3中国科学院水利部水土保持研究,杨凌 712100)
摘 要: 禾本科和豆科牧草在动物生产、水土保持和环境保护中发挥着重要的作用。随着现代生物技术的发展,以优
异基因型品种间多次杂交培育的合成品种为主的传统常规育种方法与以基因组学和转基因为核心的分子育种技术相比,挑
战和机遇并存。与主要农作物相比,牧草作物基因组学及其转基因研究尚处于发展阶段。目前,牧草基因组学及转基因在以
黑麦草属(Lolium)和羊茅属(Festuca)为代表的禾本科牧草及以三叶草(Triflolium)和苜蓿(Medicago)为代表的豆科牧草中已
有较多研究,就现代生物技术在国外牧草遗传育种中的方法、应用及最新研究进展进行综述,旨在为我国牧草常规和转基因
育种提供方法参考及思路借鉴。
关键词: 牧草 基因组学 转基因 分子育种
Research Advances in Genomics and Transgenic of Forage in Abroad
Jing Zhaobin1 Yu Jing2 Wei Lin2 Cheng Jimin3
(1College of Animal Science and Technology,Northwest A &F University,Yangling 712100;
2College of Resources and Environment,Northwest A &F University,Yangling 712100;
3 Institute of Soil and Water Conservation,Chinese Academy of Sciences and Ministry of Water Resources,Yangling 712100)
Abstract: Forage grasses and legumes are important for animal production as well as water-soil conservation and environmental
protection. With the development of modern biotechnology,conversional breeding for forage is mainly based on the synthetic varieties
through the many hybrids of superior genotypes,this method presents the coexist situation the challenge and opportunity compare with
the application of molecular breeding such as the genomics and transgenesis. Compare with the main crops,the research for the genomics
and transgenesis of forage crops is still in developmental stage. Nowadays,there are some researches for forage genomics and transgene-
sis in grasses such as Lolium and Festuca as well as legumes such as Triflolium and Medicago. This paper summarized the method,ap-
plications,and the latest research progress of modern biotechnology in forage genetic breeding,in order to provide the method and
thought reference for forage conversional and transgenesis breeding in China.
Key words: Forage Genomics Transgenesis Molecular breeding
收稿日期:2011-06-20
基金项目:国家重点基础研究发展计划“973”项目(2007CB106803) ,黄土高原土壤侵蚀与旱地农业国家重点实验室专项(10502-Z8) ,国家自然
科学基金重点项目(40730631) ,农业部“现代农业产业技术体系建设专项资金”资助项目
作者简介:井赵斌,男,博士研究生,研究方向:草业科学;E-mail:mlnjzb520@ 126. com
通讯作者:程积民,男,研究员,博士生导师,研究方向:恢复生态学;E-mail:gyzcjm@ ms. iswc. ac. cn
禾本科和豆科牧草作物不但是畜牧产业中牧草
和干草的主要来源,同时在水土保持和环境保护方
面发挥着重要的作用。禾本科牧草中的多年生黑麦
草(Lolium perenne L.)、高羊茅(Festuca arundinacea
Schreb.)及翦股颖草(Agrostis spp.)等已被广泛地
应用于各类草坪,如公园,以及高尔夫球场等运动场
地的绿化;柳枝稷(Panicum virgatum)以其较高的生
物量在环境领域广受重视,草芦(Phalaris arundina-
cea L.)作为可持续性生物能源作物可能成为矿物
燃料的补给源。此外,以白三叶草(Trifolium re-
pens)、红三叶草(Trifolium pratense)和苜蓿(Medica-
go satiya L.)为代表的豆科牧草不但是高品质的牧
草资源,同时在生物固氮中也发挥着特殊的作用。
以表型鉴定、选择和杂交等传统育种方法培育
2011 年第 11 期 井赵斌等:国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
新牧草作物品种已有较长的历史,并将继续在牧草
和畜牧产业中具有不可替代的地位。目前,以应用
生物技术为代表的分子生物学为牧草作物育种开辟
了新的途径,其中转基因及其基因组学生物技术成
为分子育种和传统育种程序的连接纽带。转基因技
术在培育抗虫、抗病和抗除草剂等作物方面已有较
多报道,利用转基因技术培育具有特定目标性状的
植物对研究其生理和生物化学代谢途径等有着重要
的作用。继人类基因组测序计划成功后,以拟南芥
(Arabidopsis thaliana (L.)Heynh.)和水稻(Oryza
sativa L.)为代表的模式植物全基因组测序也已顺
利完成。目前,新型禾本科模式植物二穗短柄草
(Brachypodium distachyon(L.)P. Beauv) ,高粱(Sor-
ghum bicolor Moench)的全基因组测序已经完成,豆
科模式植物蒺藜苜蓿(Medicago truncatula Gaertn) ,
以及百脉根(Lotus japonicus)基因组测序正在进行,
获得大量序列后结合生物信息学手段对进一步明确
牧草相关物种之间的关系和基因表达将有更深入的
理解,同时对牧草改良也将具有重要的实践意义。
1 基因组学在牧草育种中的应用进展
以分子标记技术为代表的基因组学为分子育种
提供了强有力的工具,近年来发展了许多应用于分
子育种的技术,主要包括:DNA 标记、遗传连锁图谱
构建、QTL 定位及其关联分析和比较基因组学等。
然而与主要谷粒作物相比,牧草作物基因组学方面
的研究相比较为滞后,目前多见于二倍体物种,多年
生黑麦草、红三叶草等有报道。高产、优质和多抗
(抗旱、耐热、抗寒、抗盐碱及抗病虫)是牧草作物育
种的主要目标,这些农艺性状中许多表现连续的表
型变异,且受多数量性状位点(QTL)控制,DNA 分
子标记辅助选择加速了传统育种过程。
1. 1 基因组资源
利用表达序列标签(EST)测序发掘基因产生了
大量的基因组资源。Sawbridge 等[1]报道了从多年
生黑麦草 29 个 cDNA文库中随机挑选克隆,利用单
通测序法获得了黑麦草不同组织器官,在不同生长
时期及环境下的 44 534 个 ESTs 序列。随后,Saw-
bridge等[2]利用相同的方法获得了白三叶草不同组
织器官,在不同生长时期及环境下的 42 017 个 ESTs
序列。通过与 GenBank、SwissProt 公共序列数据库
进行比对可以对每个序列进行基因功能注释(gene
ontology)。所有序列和注释可在 MySQL 数据库中
以 ASTRA格式保存,而基于 BLAST 在线网页序列
比对和功能注释结果可获得分类树状图[3]。基于
这种方法可对每条黑麦草序列在 EnsEMBL 基因组
数据库和水稻全基因组序列及其它相关物种的表达
序列进行相似性比对;同样,可对白三叶草每条序列
与拟南芥基因组序列及相关豆科植物表达序列进行
比对分析。Ikeda 等[4]在生物和非生物胁迫下处理
意大利黑麦草(Lolium multiflorum)不同组织和叶片
构建了 7 个 cDNA 文库,最后挑选单克隆获得了
5 922条 ESTs序列。Tobias 等[5]从柳枝稷 cDNA 文
库中获得了 11 990 条序列,经序列拼接分析后得到
了 7 810 条特异基因簇。Cervigni 等[6]获得了半干
旱地区画眉草(Eragrostis curvula)的 7 029 条特异功
能基因序列。Sato 等[7]对已获得的共 26 356 条红
三叶草 ESTs序列进行比对后发现,78%的序列与注
册已知功能基因相似,这些相似序列主要集中在拟
南芥和水稻中。
利用细菌人工染色体(BAC)文库对于丰富 EST
数据是一种很好的策略。目前,构建了两个多年生
黑麦草 BAC文库,这两个文库共有控制黑麦草两个
基因型的 BAC 克隆 199 680 个,据估计两个文库平
均插入片段大小约为 100 kb[8]。Spangenberg 等[3]
建立了多年生黑麦草和白三叶草的 BAC 文库,研究
表明,多年生黑麦草 50 304 个 BAC克隆平均插入片
段大小是 113 kb,相当于 3. 4 个染色体组和 97%的
基因组覆盖率;而 50 302 个白三叶草的 BAC克隆平
均插入片段大小为 101 kb,相当于 6. 3 个染色体组
和 99%的基因组覆盖率。
1. 2 DNA分子标记
遗传变异的研究分析有助于加深对植物分子基
础的理解,在大多数植物不可能进行全基因组测序
的情况下,分子标记及其与表型性状的相关分析在
阐明遗传变异的分子机理上成为一个里程碑。根据
其试验检测方法可将分子标记分为两类:一是以分
子杂交为基础的 RFLP;另一类是以 PCR 为基础的
RAPD、AFLP、SNPs、SCAR、CAPS、RAMP、SRAP、
TRAP、SSCP、IRAP、REMAP、S-SAP、RBIP、TD、
MITES和 IMP 等[9]。现仅就牧草中常用的标记进
31
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2011 年第 11 期
行阐述。
限制片段长度多态性标记(RFLP)具有较高的
可重复性和共显性等特点,已被应用于高羊茅和黑
麦草等的遗传多样性和连锁图谱构建的研究中,由
于其昂贵的试验花费和较高的试验条件要求,加之
许多牧草序列信息未知而限制了其发展和应用。随
机扩增多态性标记(RAPD)在目标物种序列未知的
情况下可以进行分析,并可在短时间获得大量的标
记,因而在许多未知 DNA序列信息的牧草中得到了
应用,如红三叶草[10]、草地羊茅(Festuca elatior)[11]
和大针茅(Stipa grandis P. Smirn)[12]。但该标记不
能从纯合的个体中鉴定杂种个体,且在不同群体间
转移性和重现性较差,因而其应用受到制约。与
RAPD比较,扩增片段长度多态性标记(AFLP)有较
高的重现性和更好的可转移性,在牧草作物遗传多
样性、QTL定位连锁分析中得到了广泛的应用[13]。
简单序列重复标记(SSR)其具有多态性好、重现性
高及共显性等优点。因此,在牧草作物中应用广泛,
主要有禾本科中的多年生黑麦草[14 - 16]、意大利黑麦
草[17]、高羊茅(Festuca arundinaacea)[18]、梯牧草
(Phleum pratense L.)[19]、结缕草 (Zoysia japoni-
ca)[20]、鸭茅 (Dactylis glomerata L.)[17] 和柳枝
稷[21];豆科牧草中的白三叶草[22,23]、红三叶草[7]和
苜蓿中[24]也有报道。单核苷酸多态性标记(SNP)
是一种较新的标记,目前仅在多年生黑麦草[25]和白
三叶草[26]中有报道。Dracatos 等[27]在多年生黑麦
草中用标记—性状关联分析法发现了抗病 SNP 和
水溶性碳水化合物成分[28]。多样性多序列芯片技
术(DArT)是 2001 年发展起来的一种基于微阵列杂
交技术的分子标记,在未知目标物种 DNA序列的条
件可同时检测数千个标记,目前仅见黑麦草和羊茅
种(Lolium /Festuca)中有应用 DArT标记的研究[29]。
相关序列扩增多态性(SRAP)是一种新型的基于
PCR的随机引物标记系统,在草种质资源研究中应
用较少。
1. 3 遗传多样性分析和应用
物种遗传多样性研究既是人工选择进行群体改
良的基础,又是对各种环境条件下最优群体进行分
子鉴定的方法。利用分子标记可以直接对物种在基
因组水平进行遗传多样性评价,实际应用中要根据
研究目的和目标物种特异序列标记的可用性选择合
适的标记类型。由于牧草遗传信息的缺乏,最初在
牧草和草坪草中应用较多的标记主要是 RAPD、IS-
SR和 AFLP[30],部分牧草 ESTs 序列信息获得后共
显性标记 SSR 也在牧草遗传多样性分析中得到了
应用[7]。Zhang 等同时利用 SSR、SRAP、SSR 和
AFLP标记对采自五大洲的鸭茅种质资源进行了遗
传变异和系统发育关系进行分析,结果表明,非洲北
部、欧洲和亚洲温带可能是鸭茅的遗传多样性中心
(2010 年牧草、草坪草和能源草种质资源国际会议
论文集)。SRAP因其可以在未知物种 DNA 序列时
使用,近几年在牧草遗传多样性研究中得到了的应
用。Budak等[31]利用 SRAP 对野牛草[Buchloe dac-
tyloides(Nutt.)Englem]进行了遗传多样性研究,
Song等[32]采用 SRAP分子标记技术,对采自中国 5
个不同生态分布区的 62 份丹参(Salvia miltiorrhiza)
材料进行了遗传多样性分析。功能标记直接和特定
性状关联,到目前为止,在牧草和草坪草种质中仅有
少数关联的基因标记报道[33]。
根据前人大量的研究成果,遗传多样性研究对
牧草育种的主要作用可以归纳 3 个主要方面:一是
指导种质资源收集,这在三叶草属(Trifolium)/黑麦
草和羊茅草中已有报道[34]。遗传多样性研究不仅
对明确物种遗传多样性的地理分布提供了分子数
据,同时对长期管理条件下遗传资源进化和生态过
程的机制有了更多的理解。如 Heremann 等[35]对红
三叶草的遗传多样性分析结果表明,红三叶草 Mat-
tenklee(一种瑞士红三叶草)源于从 Flanders 和
Brabant引入的种质资源,而并非源于本地野生红三
叶草种群。Peter等[36]采用 SSR 标记分析了草地羊
茅,结果表明,生境和管理对草地羊茅生态型群体的
遗传多样性有明显的影响,由此提出了从不同生境
取样保护草地羊茅遗传多样性的策略。二是亲本选
择。在禾本科牧草远系杂交育种中主要依靠用多系
杂交方法选择的几个亲本互交。采用标记辅助亲本
选择可以最大限度的利用杂种优势而减少近亲交
配,使最优双亲进行组合。Kolliler 等[37]研究表明,
选择遗传多样性丰富的多年生黑麦草双亲杂交后,
其第一、二子代农艺性状表现更加优良,但是对分子
标记遗传多样性和杂种优势的直接相关性未有明确
41
2011 年第 11 期 井赵斌等:国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
报道。三是植物遗传资源的原位保护与核心种质库
构建。遗传资源的原位保护对保持多样性基因库有
重要的作用,而基因库中种质的利用常因其数量庞
大和结构的复杂性受到较多限制,应用分子标记对
基因库种质进行遗传多样性分析,在此基础上进一
步构建核心种质库对提高种质利用率和降低保护成
本具有重要的实践意义(2010 年牧草、草坪草和能
源草种质资源国际会议论文集)。
1. 4 目标性状的基因定位
1. 4. 1 遗传连锁图谱的构建 利用遗传连锁图谱
可以有效地将特定性状 QTL 定位于与其关联的标
记位点,遗传连锁图谱的构建主要是在基因型分离
定位群体和亲本及其杂交后代重组频率计算的基础
上构建的。在牧草研究中最易获得的定位群体是临
时群体 F2代,而永久群体重组自交系和回交系常不
易获得,主要原因是许多牧草作物种质具有高度的
自交不亲和性。当前用于牧草遗传连锁图谱构建的
主要分子标记可以分为两类:一是用于第一代图谱
构建的同工酶、RFLP 和 RAPD;另一类是用于第二
代图谱构建的 AFLP、SSR和 SNP。
利用两个杂合的个体杂交后产生的双拟测交群
体(two-way pseudo testcross populations)常被用于自
交不亲和的意大利黑麦草和红三叶草中[35,38]。
Brummer等[39]和 Hayward 等[40]采用 RFLP 标记分
别以二倍体苜蓿(Medicago sativa L.)、多年生黑麦
草和意大利黑麦草杂交的 F1代中间群体构建了牧
草作物中的第一张连锁图谱,其中 Hayward 等构建
的黑麦草连锁图包括了 17 个同工酶标记、48 个
RAPDs标记和 41 个 RFLPs 标记,这些标记被定位
到 7 个连锁群,图谱全长 692 cM。随后,采用 SSR
标记构建了多年生黑麦草[41]、意大利黑麦草[42]、高
羊茅[18]、红三叶草[7]、白三叶草[43]和苜蓿[44]的遗
传连锁图谱。Forster 等[45]通过国际黑麦草基因组
计划(ILGI)基于 RFLP 分子标记采用 P150 /112 双
拟测交群体构建了多年生黑麦草的遗传图谱,该图
谱由来自小麦(Triticum aestivum Linn.)、大麦(Hor-
deum vulgare)、水稻和燕麦(Avena sativa)的不同探
针共计 109 个 RFLP 位点组成。Jones 等[46]比较研
究了多年生黑麦草与小麦,水稻和燕麦基因组图谱
的直线性比较分析后,得出多年生黑麦草与禾本科
植物种基本上有保守的同线性关系。目前,高密度
的遗传连锁图谱在意大利黑麦草[42]、草地羊茅[47]、
高羊茅[18]、结缕草[20]、鸭茅[17]、梯牧草[17],以及多
年生黑麦草和意大利黑麦草中间杂交群体[48]中已
经成功构建。Isobe等[49]采用双倍体红三叶草 F1双
拟测交群体构建了包括 157 个来自 RFLP 标记的
cDNA图谱,Sato等[7]通过整合来自 DNA 基因组和
EST-SSR标记构建了包括 1 434 个 SSR 位点,全长
869 cM的红三叶草图谱;随后,Herrmnn 等[35]在分
析了红三叶草与紫花苜蓿和百脉根宏同线性(Mac-
rosynteny)的基础上,利用第 2 个双倍体红三叶草双
拟测交群体构建了包含 216 个 AFLP 和 42 个 SSR
位点,全长 444 cM 的连锁图谱。据不完全统计,到
目前先后采用 EST-SSR和 AFLP标记构建了双二倍
体白三叶草的三张高密度连锁图谱[22,23,43],其中
Zhang等[43]采用来自三叶草族种(包括白三叶草、
红三叶草、紫花苜蓿和大豆(Glycine max) )的 SSR
标记和 F1群体构建了全长 1 877 cM,覆盖全基因组
87%的图谱。Sledge 等[25]基于 EST-SSR 标记构建
了四倍体苜蓿遗传图谱,并用于干旱基因定位研究。
为挖掘目标性状优异 QTL和候选基因,在许多农作
物种质中已构建了不同定位群体的一致性连锁图
谱,Isobe 等[50]发表了红三叶草的第 1 张一致性连
锁图谱,共有 6 个群体的 1 804 个标记位点。
1. 4. 2 基因定位 在牧草作物中许多性状基因 /
QTL的定位分析为基因分离和分子标记辅助选择奠
定了基础,这些性状主要包括:牧草品质,春化作用,
多年生黑麦草抽穗期,意大利黑麦草抗倒伏及苜蓿
中产量、抗寒性和生长因子[51]。由于草坪草的经济
价值较高,抗病性 QTL 研究一直是其重点,已鉴定
了许多抗病 QTL 位点,包括冠锈病、青枯病和叶斑
病[27,52]。对多年生黑麦草生理机制的研究中也有
QTL定位报道,主要是对生长发育和干旱胁迫下果
聚糖的研究[53]。
对多年生黑麦草、意大利黑麦草中相关性状基
因 /QTLs研究的报道很多。基于 RFLP 分子标记采
用 P150 /112 双拟测交群体构建的多年生黑麦草遗
传图谱已被用于相关性状基因定位研究,这些性状
主要包括控制生长生殖形态建成的性状、抗寒性、牧
草品质和配子体自交不亲和性[54,55]。Humphreys
51
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2011 年第 11 期
等[56]报道了多年生黑麦草中水溶性碳水化合物
(WSC)、中性洗涤纤维(NDF)、植株大小、叶伸长率
和再生率 QTLs的定位结果,这些 QTLs 分布于 7 条
染色体上,解释的表型变异范围在 23%- 40%之间。
Inoue等[57]利用意大利黑麦草对控制抗倒性、株高、
秆重、秆直径和秆强度、抽穗期及分蘖数共 7 个性状
进行了定位研究,结果共检出除秆重外所有性状的
17 个 QTLs,分布于 6 个连锁群。Forster 等[58]报道
了采用多年生黑麦草杂交 F1群体进行芽和根部形
态建成、光合作用、假茎水溶性碳水化合物及冠锈病
基因定位的研究。利用多年生黑麦草其他定位群体
对控制冠锈病、春化作用和花期调控基因发掘的研
究也有报道[59 - 61]。利用多年生黑麦草和意大利黑
麦草中间杂交群体进行 QTLs 发掘的相关研究也较
多,主要是控制花期调控、纤维质、粗蛋白、抗寒性、
抗灰霉病和冠锈病性状的基因。Studer 等[38]利用
高抗青枯病的两个意大利黑麦草双拟测交群体 F1
代,基于 SSR和 AFLP 标记构建的图谱定位了一个
主效应抗病 QTL,该 QTL解释 67%的表型变异。随
后,Studer等[52]在意大利黑麦草第一、二连锁群上
定位了两个抗冠锈病的主效应 QTLs,共解释 56%的
表型变异。Ergon等[62]对草地羊茅中种子产量相关
性状,春化作用,抽穗期和穗数 QTL也有报道。
三叶草和苜蓿中基因 /QTLs 的定位研究也较
多。Barrett等[63]利用白三叶草定位了控制种子产
量相关性状(如花序密度、每序产量和千粒重)的
QTLs,随后 Cogan等[26]用构建的 F2代白三叶草群体
发现了控制生长生殖形态的相关 QTL。Herrmann
等[64]先后利用基于 42 个 SSR 和 216 个 AFLP 标记
构建的 F1代白三叶草群体鉴定了控制种子产量 8
个相关性状的 38 个 QTLs,这些 QTLs分布于 2 个基
因组上,簇状主效基因已被用于标记辅助选择。
Robins等[65]利用紫花苜蓿黄花亚种(Medicago sati-
va subsp. falcata)和紫花苜蓿紫花亚种(M. sativa
subsp. sativa)构建的遗传连锁图谱在连续三季数据
的基础上定位四倍体苜蓿产量、株高和再生性
QTLs。Musial等[66,67]以同源四倍体苜蓿(Medicago
sativa L.)为材料定位了调控根腐烂的抗性基因和
控制产量及其相关性状的 QTLs。Musial等和 Mack-
ie 等[68,69]利用同一同源四倍体苜蓿的回交群体共
145 个单株,分别定位了对草木犀壳多孢(Stagonos-
pora meliloti)抗性、易感性和对三叶草刺盘孢(Colle-
totrichum trifolii)3 个种的作用 QTL。
植物个体性状表现复杂,一个性状可能受多个
基因 /QTLs控制,相应的一个基因 /QTL 也可能作用
于多个性状。Isobe等[70]提出了一种研究遗传变异
中 QTL互作的新方法:基因型模型定位(Genotype
matrix mapping,GMM) ,其结果表明该方法对于
QTL-QTL互作及 QTL-环境互作检测较有效。
1. 5 标记辅助选择育种和关联分析
与目标性状基因 /QTL 紧密连锁的分子标记已
被应用于优异基因型选择和新基因渗入系培育为主
的标记辅助选择育种中,标记辅助选择育种对常规
育种中表型鉴定工作量大和无法直观检测的性状选
择较有利,如产量相关性状和水溶性碳水合物。标
记辅助选择需要有与目标性状紧密连锁的分子标记
为前提,因而限制了其在牧草育种中的应用。当前,
仅有少数相关报道。Barrent 等[71]在白三叶草中采
用一个与种子产量 QTL 紧密连锁的 SSR 标记进行
了标记辅助选择育种研究。关联分析(association a-
nalysis) ,又称连锁不平衡作图(LD mapping) ,是发
掘基因和对基因功能研究的一种方法,可对目标群
体中分子变异和表型变异间的关系进行分析,以实
现特定目标性状基因鉴定的目的,关联分析根据其
研究目的可分为两类,全基因组关联分析(genome-
wide association mapping,GWAS)和候选基因关联分
析(candidate-gene association mapping)。Auzanneau
等[72]利用 STS和 SSR 标记数据与 3 个多年生黑麦
草人工合成品种中抗病基因数据进行关联分析发
现,可将赤霉酸不敏感基因定位于一个很小的基因
组区域。一种体外扩增 SNPs 鉴定的有效方法和
SNP单模标本结构的研究已在多年生黑麦草中成功
报道[73],该研究主要是基于 PCR 扩增和多重扩增
序列对转录单位全部组成成分的扫描而实现对 SNP
检测的,在不同时间段通过转录单位检测了杂合双
亲间多种 SNPs,并在 F1代进行了验证。Skot 等
[28]
报道了利用候选基因法对多年生黑麦草中与花期和
水溶性碳水化合物含量(WSC)等相关联的 SNPs 的
变异情况,从群体内变异分析结果中鉴定了与
WSC、氮和干物质消化率有关的一个候选基因碱性
61
2011 年第 11 期 井赵斌等:国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
转移酶(LpcAI) ,以及与水稻光周期控制基因 HD1
同源的控制多年生黑麦草花期的基因 LpHD1。
Cogan等[26]利用从白三叶草栽培品种构建的多个
cDNA文库中获得的 EST序列进行了硅片(in silico)
SNP检测和验证分析,通过对双亲和多个双拟测交
定位群体的基因型分析,从选择的 236 个拼接序列
中获得了 58 个经验证含有多态性的 SNPs。
1. 6 比较基因组学
比较基因组学是对来源于不同物种的基因和基
因组进行比较分析的方法,可以提高人们对物种如
何进化及基因功能的理解。同源基因常位于相似的
基因组区域,且在不同的植物种中其功能也相似,因
此模式植物的研究成果为比较基因组发展提供了机
遇。模式植物拟南芥的全基因组测序工作已于
2000 年完成。Zhu 等[74]通过对豆科模式植物蒺藜
苜蓿和拟南芥的基因组比较分析发现,这两个物种
基因组之间缺乏广泛的宏同线性,从而证明了拟南
芥不能作为豆科基因组研究的模式植物。苜蓿近缘
种蒺藜苜蓿和豆科杂草百脉根已被作为豆科牧草中
的模式植物[75]。水稻是单子叶植物研究中的模式
植物,水稻大量的基因组资源为牧草和草坪草的研
究提供了信息,但与主要谷粒作物相比依然有众多
的因素限制了其利用。目前,二穗短柄草已被作为
新的禾本科牧草模式植物[76]。Wang 等[77]研究建
议将与羊茅黑麦草关系较近的另一禾本科牧草毒草
(Lolium temulentum)作为牧草和草坪草遗传工程研
究中的模式植物。与其他牧草和草坪草相比,毒草
优点较多:自花授粉、二倍体、无需春化处理、生命周
期短和温室种植较易成活。Ge 等[78]已成功的建立
了毒草的遗传转化体系。同线性分析对建立不同物
种基因组区域间的直系同源性(orthology)较有用。
直系同源的标记在亲缘关系较远物种间的可转移性
可用于目前基因组和 EST 信息特别少的物种的遗
传图谱的快速构建,利用比较遗传图谱和同线性信
息可以鉴定与目标性状基因和候选基因紧密连锁的
标记,快速分离到该基因[79]。Zhu等[80]利用大量的
蒺藜苜蓿 EST 序列信息获得了许多杂交种遗传标
记,并通过系统发育分析检测了直系同源位点,结果
表明其同线性的程度与豆科种的系统进化距离间有
一定的相关性,蒺藜苜蓿和紫花苜蓿之间具有高度
的保守核苷酸序列同线性。基于蒺藜苜蓿和其他豆
科植物之间的保守基因组结构可对目标性状基因进
行图位克隆,Zhu等[80]采用图位克隆方法同时在蒺
藜苜蓿、紫花苜蓿和豌豆(Lathyrus odoratus L.)中克
隆了 3 个直系同源性基因,该基因是调控细菌和真
菌的结瘤受体激酶基因。Armstead 等[81]对水稻和
多年生黑麦草之间的同线性区域进行了比较定位分
析,利用水稻一个抽穗期 QTL(Hd3)获得了多年生
黑麦草中控制抽穗期的主效 QTL。该 QTL 解释
70%的表型变异,该结果表明利用水稻基因组对理
解其他物种的生物进化过程具有可行性。Tamura
等[82]通过水稻基因组信息推测了禾本科牧草的内
含子区域,据此从黑麦草属 /羊茅属(Lolium /Festu-
ca)ESTs序列设计了 209 个引物,其中 61 个引物是
InDel标记,82 个引物是 CAPS标记并被用于区分多
年生黑麦草和草地羊茅的研究中。许多 InDel 标记
和 CAPS标记对多年生黑麦草和草甸羊茅(F. prat-
ensis)具有高度的特异性,利用这些标记对黑麦草
属 /羊茅属代换系植株的染色体定位结果表明,黑麦
草属 /羊茅属和水稻之间具有很高的同线性关系。
2 转基因在牧草育种中的应用进展
通过常规植物育种方法进行牧草作物遗传改良
周期较长,风媒异花授粉禾本科和虫媒异花授粉豆
科牧草一般不耐自交,自交不亲和性又限制了利用
同系繁殖进行优异基因聚合培育新品种的可能性。
常规牧草作物育种主要是以不同生态类型品种间或
品种内的自然遗传变异和有性重组为基础的,利用
转基因技术培育转基因植株可以获得独特的遗传变
异类型。牧草转基因技术的研究应用主要集中在组
织培养、二倍体诱导、再生、特定遗传变异的转化及
植物生物合成途径的分子检测等方面[83]。
2. 1 组织培养和二倍体诱导
单倍体植株来源有两种方式:一种是通过花药
或者花粉粒培养的雄性单性生殖,另一种是利用远
缘杂交后单倍体胚挽救的雌性生殖。自然或者化学
诱导单倍体植株染色体加倍可以获得纯合的二倍体
植株。雄性单性生殖主要是以从杂合二倍体植株获
得单倍体,然后通过染色体加倍成纯合基因型。然
而,在利用禾本科牧草中遗传型和表型变异较高的
二倍体黑麦草属与羊茅属杂交群体中得到了优异的
71
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2011 年第 11 期
雄性单性生殖结果,这些群体在非生物胁迫抗性方
面较之亲本基因型表现较高[56]。通过这种杂交方
式对培育渗入系和复杂性状的遗传及生理学解析较
为有用。Andersen 等[84]对黑麦草、意大利黑麦草、
梯牧草和鸭茅中单、双倍体诱导的受体植株要求,花
药的采集及培养,培养基和再生条件等进行了详尽
的报道。利用二倍体苜蓿花粉与四倍体植株杂交得
到苜蓿双单倍体,获得了豆科牧草中孤雌生殖的成
功,双单倍体已经用于揭示四倍体苜蓿中等位基因
数目效用的研究[85]。目前,在豆科牧草中通过花药
培养单倍体的研究仅见紫花苜蓿,百脉根和埃及三
叶草中有相关报道[86]。胚挽救获得杂交植株在三
叶草属中已有成功报道[87]。
2. 2 再生和转化
关于禾本科和豆科牧草再生和转化的研究已有
较多报道。由于体外试管再生和转化能力主要受基
因型的影响,而具有高再生性和易转化基因型的组
织常常不适于直接培养从而限制了其应用和发展。
Li等[88]利用花序组织建立了狗牙根的愈伤组织再
生体系,并进行了 gusA 和 bar 基因转化,获得了转
基因植株。Sun 等[89]首次报道了以羊草(Leymus
chinensis(Trin.) )成熟种子和叶基为材料通过体细
胞胚胎发生建立的羊草高效再生体系。Ding 等和
Weeks等[90,91]对苜蓿和其他豆科牧草中独立基因
型遗传转化(genotype-independent transformation)进
行了研究。由于无性生殖种子的形成可以容易地将
优异基因转入生物品种以获得某些性状的改良,独
立基因型遗传转化在单性生殖禾本科牧草中有着特
殊的作用。选择标记基因(selectable marker genes)
对牧草植株的有效转化鉴别是必不可少的,细菌抗
生素和抗除草剂基因已被用于相关研究。通过携带
叶绿素生物合成酶基因(hemL)突变体的抗植物毒
素 Gabaculine在鉴别转化苜蓿中取得成功,该过程
没有使用抗生素和抗除草剂标记基因[92]。Weeks
等[89]报道了未使用选择标记基因进行苜蓿转化的
相关研究,但转化后标记消除在牧草中尚未有成功
报道。转基因表达的稳定性(transgene expression
stability)是获得转基因植株后评价的一个关键指
标,随着周期性选择表达水平在杂交子代可能会趋
于减少,白三叶草中已有报道[93]。Alexander 等[94]
利用实时定量 PCR内参基因(Reference genes)策略
对苜蓿中转基因污染水平、拷贝数目和接合性进行
了评价。
目前,应用于牧草基因转化的方法较多,以基因
枪法和农杆菌介导法为主。基因枪法是一种将外源
DNA包被在金粉或钨粉微粒表面,在高压作用下轰
击受体细胞或组织而达到稳定转化的方法。由于基
因枪法是一个易操作的简单的生物物理过程,因而
在转基因牧草中得到了广泛的应用,这些研究均以
胚细胞为受体进行微粒轰击得到,主要有禾本科中
的高羊茅[95 - 98]、多年生黑麦草[99 - 101]、意大利黑麦
草(Lolium mulitiflorum Lam.)[101]、鸭茅[102]、草地早
熟禾(Poa pratensis L.)[103]以及一些暖季禾本科牧
草 如 柳 枝 稷[104]、百 喜 草 (Paspalum notatum
Flugge)[105,106] 以及盖氏虎尾草 (Chloris gayana
Kunth)[107]。与基因枪法相比,农杆菌介导法有利
于转基因低拷贝数目整合到植物基因组。近年,用
农杆菌为载体的牧草转化体系研究取得了许多重要
进展,这些牧草主要有禾本科中的高羊茅[108,109]、多
年生黑麦草[110 - 112]、意大利黑麦草[113]、羊茅黑麦
草[114]、鸭茅[115]、暖季牧草柳枝稷[116] 和 结缕
草[80,117]。豆科较禾本科牧草转化相对比较容易,
Kalla等[118]就主要豆科牧草农杆菌介导的遗传转
化体系建立进行了报道。目前,通过农杆菌介导
转化法已得到了转基因蒺藜苜蓿和白三叶草植
株[90,117,118]。
2. 3 转基因植株选择性标记基因
进行基因转化后,通过在适当的筛选转化选择
压力下建立一个有效的选择方案对获得转基因植株
是至关重要的。许多禾本科牧草对抗生素具有很高
的内生抗性,特别是卡那霉素。目前,应用于禾本科
牧草转化中的选择标记基因有:来自大肠杆菌的潮
霉素磷酸转移酶基因 hph,来源于吸水链霉菌的草
甘膦乙酰转移酶基因 bar 以及从细菌转座子 Tn5 中
分离到的新霉素磷酸转移酶基因 npt2。应用于禾本
科牧草转化中的报告基因有:来自大肠杆菌染色体
上 uidA位点的 β-葡萄糖苷酸酶基因 gusA和得自维
多利亚水母的绿色荧光蛋白基因 mgfp。选择剂 hpt
和 PPT 也成功的被应用于禾本科牧草转化研究
中[121]。在农杆菌介导转化中,报告基因 β-葡萄糖
81
2011 年第 11 期 井赵斌等:国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
苷酸酶基因 gusA 需有一个内部编码序列的内含子
(如一个过氧化酶内含子)以确保来源于真核细胞
葡萄糖苷酸酶活性的表达,而不是来源于通过残余
农杆菌细胞的表达[122,123]。用于构建嵌合基因(chi-
meric genes)的启动子有:花椰菜花叶病毒 CaMV35S
启动子,水稻肌动蛋白启动子,玉米 ubiquitin启动子
和组织特异性启动子。终止子有花椰菜花叶病毒
CaMV35S终止子和胭脂碱合成酶基因 nos终止子。
2. 4 基因漂移及生物安全
由于人类间接地消费牧草作物,转基因牧草作
物的生物安全评价将可能集中在对环境和生态的影
响方面。转基因牧草作物的生物安全,有两个问题
需要研究:一是牧草花粉漂移的距离和保持自我发
育的时间达到什么程度;另一个就是在自然条件下
通过和相关物种杂交后转基因逃逸发生的概率是多
少。可以利用分子标记技术研究这两个问题[121]。
禾本科牧草是靠风媒授粉和异型杂交的物种,豆科
牧草是虫媒授粉种,在没有严格的授粉管理条件下,
转基因植株花粉传播给其他物种或同种野生群体是
不可避免的。Wang 等[123]报道了花粉介导的来自
转基因高羊茅植株的 T1和 T2子代基因漂流的试验,
结果表明在相距 200 m的任何方向没有转基因漂移
现象出现,由此提出了在小范围田间试验中,将转基
因植株和其他物种隔离 300 m是完全可以防止基因
漂移发生的。
2. 5 转基因研究示例———木质素和果聚糖生物合
成及其调控
牧草的可消化性是影响动物生产力的一个限制
因子,而引起牧草组织消化性降低的一个主要因素
是植株细胞壁的木质化。通过负调控单木质素生物
合成酶转基因的分子育种在改良牧草可消化性中进
行了研究。利用肉桂酸脱氢酶和咖啡酸-O-甲基转
移酶转基因负调控改良高羊茅的消化性已获得成
功[98]。木质素对利用植株结构多聚糖生产乙醇也
有负面影响,在有纤维质的生物能作物中(如柳枝
稷)减少木质素含量可以降低糖化作用的顽拗现
象。Wang等[121]采用 RNA 干扰基因结构实现了柳
枝稷中木质素的负调控。果聚糖作为一种果糖聚合
物,是在温季牧草中累计的非结构性碳水化合物的
一种主要成分。可溶性碳水化合物水平的增加对提
高牧草的营养价值作用明显。Ye等[124]报道了通过
转果聚糖蔗糖转移酶基因(Bacillus subtilis sac B
gene)转化进行意大利黑麦草可溶性碳水化合物成
分调控的相关研究。白三叶草在正常情况下没有果
聚糖累积,Jenkins 等[125]进行了白三叶草果聚糖转
基因研究,结果表明在转基因白三叶草中果聚糖的
积累主要是在 CaMV35S启动子的操纵下,通过来源
于唾液链球菌(Streptococcus salivarius)的果糖基转
移酶(Ftf)的表达产生的。Gadegaard 等[126]获得了
蔗糖(蔗糖 1-果糖基转移酶)和果聚糖(果聚糖 6G-
果糖基转移酶)表达量提高 3 倍的多年生黑麦草植
株。果聚糖与抗寒性也有关系。Hisano 等[127]采用
基因枪转化法在 CaMV 35S 启动子的操纵下,获得
了过量表达小麦果糖基转移酶基因 wft1(wft1 编码
蔗糖-果聚糖 6-果糖基转移酶,6-SFT)和 wft2(wft2
编码蔗糖-蔗糖 1-果糖基转移酶,1-SST)的转基因多
年生黑麦草植株,与未转基因植株相比,转基因植株
累积了大量的果聚糖使其细胞抗寒性也增加了。这
些结果表明,wft1 和 wft2 基因的过量表达参与了果
聚糖合成,据此提出了培育抗寒牧草的新策略。
3 展望
现代生物技术的应用加速了传统牧草遗传育种
改良的步伐,随着现代科学仪器和各种新技术的不
断创新和发展,生物技术在牧草遗传育种中的应用
前景诱人。基因表达谱为发掘与目标性状关联的候
选基因提供了新的途径,其中 cDNA-AFLP分析在意
大利黑麦草感染青枯病差异表达的转录和多年生黑
麦草自交不亲和应答关键元件的鉴定中应用成
功[128,129]。目前在水稻、小麦和玉米中利用微点阵
分离了许多差异表达的目的基因并发表了许多可供
利用的公共数据,迄今,在牧草和草坪草中尚未发表
可利用的微点阵平台信息,但已有采用微点阵分析
进行模式植物蒺藜苜蓿(M. truncatula)的研究报
道[130]。图位克隆(map-based cloning)又称定位克
隆(positional cloning) ,该方法无需预先知道基因的
DNA序列及其表达产物的有关信息,它是根据目的
基因在染色体上的位置进行分离,是通过分析突变
位点与已知分子标记的连锁关系来确定突变表型的
遗传基础。目前在牧草中采用图位克隆基因的研究
鲜有报道,然而已经产生了用于图位克隆的大量基
91
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2011 年第 11 期
础数据,如意大利黑麦草和多年生黑麦草中 BAC 文
库的构建[8],RFLP 和 SSR 标记在 7 个连锁群的定
位[131],约 50 000 条 ESTs序列的发表。利用已构建
的各牧草种连锁图谱和定位数据结合序列信息进一
步图位克隆相关基因进行转基因研究亟需加强。基
于双脱氧测序法对水稻和拟南芥等模式植物全基因
测序研究已经完成,但由于基因组测序的高成本而
限制了其在基因组较大植物(如大麦、小麦和黑麦
草)中的应用。下一代基因组测序(next-generation
genome sequencing)技术具有高准确性、高通量、高
灵敏度和低成本等优点,可以同时完成传统基因
组学(测序和注释) ,功能基因组学(转录组分析、
基因表达及调控、基因功能、蛋白-核酸相互作用)
以及表观基因组学研究,可在几天产生 Gb 级的序
列[132]。随着下一代基因组测序技术的快速发展,
许多牧草(如蒺藜苜蓿、百脉根)的基因组序列有望
在不久发表(http:/ /www. genomesonline. org /)。
以基因组学和转基因为核心的分子育种为现
代牧草育种作出了重大贡献,但应用于牧草新品
种培育中的成果较有限。随着测序技术的发展将
产生越来越多 ESTs,基因分离也将更加容易,利用
生物信息学对目的基因在转录组和代谢水平上的
功能进行研究为牧草遗传育种提供了新的理论和
思路。
参 考 文 献
[1]Sawbridge T,Ong EK,Binnion C,et al. Generation and analysis of
expressed sequence tags in white clover(Trifolium repens L.). Plant
Science,2003a,165(5) :1077-1087.
[2]Sawbridge T,Ong EK,Binnion C,et al. Generation and analysis of
expressed sequencetags in perennial ryegrass(Lolium perenne L.).
Plant Science,2003b,165(5) :1089-1100.
[3]Humphreys MO. Molecular breeding for the genetic improvement of
forage crops and turf[M]. The Netherlands:Wageningen Academic,
2005:83-97.
[4] Ikeda S,Takahashi W,Oishi H. Generation of expressed sequence
tags from cDNA libraries of Italian ryegrass(Lolium multiflorum
Lam.). Grassland Science,2004,49(6) :593-598.
[5]Tobias CM,Twigg P,Hayden DM,et al. Analysis of expressed se-
quence tags and the identification of associated short tandem repeats
in switchgrass. Theoretical and Applied Genetics,2005,111(5) :
956-964.
[6]Cervigni GDL,Paniego N,Selva JP,et al. Expressed sequence tag a-
nalysis and development of gene associated markers in a near-isogen-
ic plant system of Eragrostis curvula. Plant Molecular Biology,2008,
67(1-2) :1-10.
[7]Sato S,Isobe S,Asamizu E,et al. Comprehensive structural analysis
of the genome of red clover(Trifolium pratense L.). DNA Research,
2005,12(5) :301-364.
[8]Farrar K,Asp T,Lubberstedt T,et al. Construction of two Lolium pe-
renne BAC libraries and identification of BACs containing candidate
genes for disease resistance and forage quality. Molecular Breeding,
2007,19(1) :15-23.
[9] Agarwal M,Shrivastava N,Padh H. Advances in molecular marker
techniques and their applications in plant sciences. Plant Cell Re-
port,2008,27(4) :617-631.
[10]Kongkiatngam P,Waterway MJ,Fortin MG,et al. Genetic variation
within and between two cultivars of red clover(Trifolium pratense
L.) :Comparisons of morphological,isozyme,and RAPD markers.
Euphytica,1995,84(3) :237-246.
[11]Klliker R,Stadelmann FJ,Reidy B,et al. Genetic variability of for-
age grass cultivars:a comparison of Festuca pratensis huds.,Lolium
perenne L. and Dactylis glomerata L. Euphytica,1999,106(3) :
261-270.
[12]Wu JB,Gao YB,Bao XY,et al. Genetic diversity of Stipa grandis
P. Smirn populations across the species’range in the Inner Mongo-
lia Plateau of China. Biochemical Systematics and Ecology,2010,
38(4) :1-7.
[13]Herrmann D,Boller B,Studer B,et al. QTL analysis of seed yield
components in red clover(Trifolium pratense L.). Theoretical and
Applied Genetics,2006,112(3) :536-545.
[14]Asp T,Frei UK,Didion T,et al. Frequency,type,and distribution of
ESTSSRs from three genotypes of Lolium perenne,and their conser-
vation across orthologous sequences of Festuca arundinacea,
Brachypodium distachyon,and Oryza sativa. BMC Plant Biologyogy,
2007,7:36.
[15] Jensen LB,Holm PB,Lubberstedt T. Cross-species amplification of
105 Lolium perenne SSR loci in 23 species within the Poaceae. Mo-
lecular Ecology Note,2007,7(6) :1155-1161.
[16]Studer B,Asp T,Frei U,et al. Expressed sequence tag-derived mic-
rosatellite markers of perennial ryegrass(Lolium perenne L.). Mo-
lecular Breeding,2008,21(4) :533-548.
[17]Cai HW,Inoue M,Yuyama N,et al. Genome mapping in cool-sea-
son forage grasses[M]. In:Yamada T,Spangenberg G(eds)Molec-
ular breeding of forage crops. Springer Science + Business Media:
New York,2009:173-184.
[18] Saha MC,Cooper JD,Mian MAR,et al. Tall fescue genomic SSR
markers:development and transferability across multiple grass spe-
cies. Theoretical and Applied Genetics,2006,113(8) :1449-1458.
[19]Cai HW,Yuyama N,Tamaki H,et al. Isolation and characterisation
02
2011 年第 11 期 井赵斌等:国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
of simple sequence repeat markers in the hexaploid forage grass
timothy(Phleum pratense L.). Theoretical and Applied Genetics,
2003,107(8) :1337-1349.
[20] Cai H,Inoue M,Yuyama N,et al. Isolation,characterization and
mapping of simple sequence repeat markers in zoysiagrass(Zoysia
spp.). Theoretical and Applied Genetics,2005b,112 (1) :
158-166.
[21]Tobias CM,Hayden DM,Twigg P,et al. Genic microsatellite mark-
ers derived from EST sequencesof switchgrass(Panicum virgatum
L.). Molecular Ecology Note,2006,6(1) :185-187.
[22] Jones ES,Hughes LJ,Drayton MC,et al. An SSR and AFLP molec-
ular marker-based genetic map of white clover(Trifolium repens
L.). Plant Science,2003,165(3) :531-539.
[23]Barrett B,Griffiths A,Schreiber M,et al. A microsatellite map of
white clover. Theoretical and Applied Genetics,2004,109(3) :
596-608.
[24]Sledge MK,Ray IM,Jiang G. An expressed sequence tag SSR map
of tetraploid alfalfa(Medicago sativa L.). Theoretical and Applied
Genetics,2005,111(5) :980-992.
[25]Cogan NOI,Ponting RC,Vecchies AC,et al. Gene-associated single
nucleotide polymorphism(SNP)discovery in perennial ryegrass(Lo-
lium perenne L.). Molecular Genetic Genomics,2006b,276(2) :
101-112.
[26]Cogan NOI,Drayton MC,Ponting RC,et al. Validation of in silico-
predicted genic SNPs in white clover(Trifolium repens L.) ,an out-
breeding alloplyploid species. Molecular Genetic Genomics,2007,
277(4) :413-425.
[27]Dracatos PM,Cogan NOI,Dobrowolski MP,et al. Discovery and ge-
netic mapping of single nucleotide polymorphisms in candidate
genes for pathogen defence response in perennial ryegrass(Lolium
perenne L.). Theoretical and Applied Genetics,2008,117(2) :
203-219.
[28]Skot L,Humphreys J,Humphreys MO,et al. Association of candi-
date genes with flowering time and water-soluble carbohydrate con-
tent in Lolium perenne (L.). Genetics,2007,177(1) :535-547.
[29]Kopecky D,Bartos J,Lukaszewski A,et al. Development and map-
ping of DArT markers within the Festuca-Lolium complex. BMC Ge-
nomics,2009,10:473.
[30]Touil L,Guesmi F,Fares K,et al. Genetic diversity of some medi-
terranean populations of the cultivated alfalfa(Medicago sativa L.)
using ISSR markers. Pakistan Journal of Biological Sciences,2008,
11(15) :1923-1928.
[31]Budak H,Shearman RC,Parmaksiz I,et al. Molecular characteriza-
tion of buffalograss germplasm using sequence-related amplified
polymorphism markers. Theoretical and Applied Genetics,2004,
108(2) :328-334.
[32]Song ZQ,Li XF,Wang HG,et al. Genetic diversity and population
structure of Salvia miltiorrhiza Bge in China revealed by ISSR and
SRAP. Genetica,2010,138(2) :241-249.
[33] Miura Y,Hirata M,Fujimori M. Mapping of EST-derived CAPS
markers in Italian ryegrass (Lolium multiflorum Lam.). Plant
Breeding,2007,126(4) :353-360.
[34]George J,Dobrowolski MP,de Jong EV,et al. Assessment of genetic
diversity in cultivars of white clover(Trifolium repens L.)detected
by SSR polymorphisms. Genome,2006,49(8) :919-930.
[35] Herrmann D,Boller B,Widmer F,et al. Optimization of bulked
AFLP analysis and its application for exploring diversity of natural
and cultivated populations of red clover. Genome,2005,48(3) :
474-486.
[36] Peter-Schmid MKI,Boller B,Klliker R. Habitat and management
affect genetic structure of Festuca pratensis but not Lolium multiflo-
rum ecotype populations. Plant Breeding,2008,127(5) :510-517.
[37]Klliker R,Boller B,Widmer F. Marker assisted polycross breeding
to increase diversity and yield in perennial ryegrass(Lolium perenne
L.). Euphytica,2005,146(1-2) :55-65.
[38]Studer B,Boller B,Herrman D,et al. Genetic mapping reveals a
single major QTL for bacterial wilt resistance in Italian ryegrass(Lo-
lium multiflorum L.). Theoretical and Applied Genetics,2006,113
(4) :661-671.
[39]Brummer EC,Bouton JH,Kochert G. Development of an RFLP map
in diploid alfalfa. Theoretical and Applied Genetics,1993,86(2-
3) :329-332.
[40]Hayward MD,McAdam NJ,Jones JG,et al. Genetic markers and the
selection of quantitative traits in forage grasses. Euphytica,1994,77
(3) :269-275.
[41]Gill GP,Wilcox PL,Whittaker DJ,et al. A framework linkage map
of perennial ryegrass based on SSR markers. Genome,2006,49
(4) :354-364.
[42]Hirata M,Cai H,Inoue M,et al. Development of simple sequence
repeat(SSR)markers and construction of an SSR-based linkage
map in Italian ryegrass(Lolium multiflorum Lam.). Theoretical and
Applied Genetics,2006,113(2) :270-279.
[43]Zhang Y,Sledge MK,Bouton JH. Genome mapping of white clover
(Trifolium repens L.)and comparative analysis within the Trifolieae
using cross-species SSR markers. Theoretical and Applied Genet-
ics,2007c,114(8) :1367-1378.
[44]Sledge MK,Ray IM,Jiang G. An expressed sequence tag SSR map
of tetraploid alfalfa(Medicago sativa L.). Theoretical and Applied
Genetics,2005,111(5) :980-992.
[45]Spangenberg G. Molecular breeding of forage crops:proceedings of
the 2nd international symposium,molecular breeing of forgge crops
[M]. Dordrecht:Kluwer Academic Publishers,2001:101-133.
[46]Jones ES,Mahoney NL,Hayward MD,et al. An enhanced molecular
marker-based map of perennial ryegrass(Lolium perenne L.)reveals
12
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2011 年第 11 期
comparative relationships with other Poaceae species. Genome,
2002a,45(2) :282-295.
[47]Alm V,Fang C,Busso CS,et al. A linkage map of meadow fescue
(Festuca pratensis Huds.)and comparative mapping with other
Poaceae species. Theoretical and Applied Genetics,2003,108(1) :
25-40.
[48]Sim S,Chang T,Curley J,et al. Chromosomal rearrangements differ-
entiating the ryegrass genome from the Triticeae,oat and rice ge-
nomes using common heterologous RFLP probes. Theoretical and
Applied Genetics,2005,110(6) :1011-1019.
[49] Isobe S,Klimenko I,Ivashuta S,et al. First RFLP linkage map of
red clover(Trifolium pratense L.)based on cDNA probes and its
transferability to other red clover germplasm. Theoretical and Ap-
plied Genetics,2003,108(1) :105-112.
[50] Isobe S,Klliker R,Hisano H,et al. Construction of a consensus
linkage map and genome-wide polymorphism analysis of red clover.
BMC Plant Biology,2005,9:57.
[51] Inoue M,Fujimori M,Cai H. Forage crops[M]. In:C. Kole(ed.)
Genome mapping and molecular breeding in plants,Technical
crops. Berlin Heidelberg:Springer-Verlag,2007:51-75.
[52]Studer B,Boller B,Bauer E,et al. Consistent detection of QTLs for
crown rust resistance in Italian ryegrass(Lolium multiflorum Lam.)
across environments and phenotyping methods. Theoretical and Ap-
plied Genetics,2007,115(1) :9-17.
[53]Turner LB,Cairns AJ,Armstead IP,et al. Does fructan have a func-
tional role in physiological traits investigation by quantitative trait
locus mapping. New Phytologist,2008,179(3) :765-775.
[54]Cogan NOI,Smith KF,Yamada T,et al. QTL analysis and compara-
tive genomics of herbage quality traits in perennial ryegrass(Lolium
perenne L.). Theoretical and Applied Genetics,2005,110(2) :
364-380.
[55]Yamada T,Jones ES,Cogan NOI,et al. QTL analysis of morphologi-
cal,developmental and winter hardiness associated traits in perenni-
al ryegrass(Lolium perenne L.). Crop Science,2004,44:925-935.
[56]Humphreys MW,Gasior D,Lesniewska-Bocianowska A,et al. An-
drogenesis as a means of dissecting complex genetic and physiologi-
cal controls:selecting useful gene combinations for breeding freez-
ing tolerant grasses. Euphytica,2007,158(3) :337-345.
[57] Inoue M,Gao ZS,Cai HW. QTL analysis of lodging resistance and
related traits in Italian ryegrass(Lolium multiflorum Lam.). Theo-
retical and Applied Genetics,2004b,109(8) :1576-1585.
[58]Forster JW,Jones ES,Batley J,et al. Molecular marker-based genet-
ic analysis of pasture and turf grasses[M]. In:Hopkins A,Wang
Z-Y,Sledge M,Barker RE(eds)Molecular breeding of Forage and
Turf. Kluwer Academic,Dordrecht,2004:197-238.
[59]Muylle H,Baert J,Van Bockstaele E,et al. Four QTLs determine
crown rust(Puccinia coronata f. sp. lolii)resistance in a perennial
ryegrass (Lolium perenne)population. Heredity,2005a,95:
348-357.
[60]Muylle H,Baert J,Van Bockstaele E,et al. Identification of molecu-
lar markers linked with crown rust(Puccinia coronata f. sp. lolii)re-
sistance in perennial ryegrass(Lolium perenne)using AFLP markers
and a bulked segregant approach. Euphytica,2005b,143(1-2) :
135-144.
[61] Jensen LB,Andersen JR,Frei U,et al. QTL mapping of vernalisati-
on response in perennial ryegrass(Lolium perenne L.)reveals co-lo-
cation with an orthologue of wheat VRN1. Theoretical and Applied
Genetics,2005,110(3) :527-536.
[62]Ergon A,Fang C,Jorgensen O,et al. Quantitative trait loci control-
ling vernalisation requirement,heading time and number of panicles
in meadow fescue(Festuca pratensis Huds.). Theoretical and Ap-
plied Genetics,2008,112(2) :232-242.
[63]Barrett BA,Baird IJ,Woodfield DR. A QTL analysis of white clover
seed production. Crop Science,2005,45:1844-1850.
[64]Herrmann D,Boller B,Studer B,et al. Improving persistence in red
clover:insights from QTL analysis and comparative phenotypic eval-
uation. Crop Science,2008,48:269-277.
[65] Robins JG,Bauchan GR,Brummer EC. Genetic mapping forage
yield,plant height,and regrowth at multiple harvests in tetraploid
alfalfa(Medicago sativa L.). Crop Science,2007b,47(1) :11-18.
[66]Musial JM,Aitken KS,Mackie JM,et al. A genetic linkage map in
autotetraploid lucerne adapted to northern Australia,and the use of
the map to identify DNA markers linked to resistance to Phytoph-
thora medicaginis. Australian Journal of Agricultural Research,
2005,56(4) :333-344.
[67]Musial JM,Aitken KS,Mackie JM,et al. DNA markers linked to
yield,yield components,and morphological traits in autotetraploid
lucerne(Medicago sativa L.). Australian Journal of Agricultural
Research,2006,57(7) :801-810.
[68]Musial JM,Mackie JM,Armour DJ,et al. Identification of QTL for
resistance and susceptibility to Stagonospora meliloti in autotetra-
ploid Lucerne. Theoretical and Applied Genetics,2007,114(8) :
1427-1435.
[69]Mackie JM,Musial JM,Armour DJ,et al. Identification of QTL for
reaction to three races of Colletotrichum trifolii and further analysis
of inheritance of resistance in autotetraploid Lucerne. Theoretical
and Applied Genetics,2007,114(8) :1417-1426.
[70] Isobe S,Nakaya A,Tabata S. Genotype matrix mapping:searching
for quantitative trait loci interactions in genetic variation in complex
traits. DNA Research,2007,14(5) :217-225.
[71]Yamada T,Spangenberg G. Molecular breeding of forage and turf:
the proceedings of the 5th International Symposium of the Molecular
Breeding of Forage and Turf[M]. New York. NY:Springer,2009:
241-250.
22
2011 年第 11 期 井赵斌等:国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
[72]Auzanneau J,Huyghe C,Julier B,et al. Linkage disequilibrium in
synthetic varieties of perennial ryegrass. Theoretical and Applied
Genetics,2007,115(6) :837-847.
[73]Ponting RC,Drayton MC,Cogan NOI,et al. SNP discovery,valida-
tion,haplotype structure and linkage disequilibrium in full-length
herbage nutritive quality genes of perennial ryegrass(Lolium pe-
renne L.). Molecular Genetic Genomics,2007,278(5) :585-597.
[74] Zhu H,Kim DJ,Baek JM,et al. Syntenic relationships between
Medicago truncatula and Arabidopsis reveal extensive divergence of
genome organization. Plant Physiology,2003,131(3) :1018-1026.
[75]Young ND,Cannon SB,Sato S,et al. Sequencing the genespaces of
Medicago truncatula and Lotus japonicus. Plant Physiology,2005,
137(4) :1174-1181.
[76]Garvin DF. Brachypodium:a new monocot model plant system emer-
ges. Science Food Agriculture,2007,87(7) :1177-1179.
[77]Wang ZY,Ge YX,Mian R,et al. Development of highly tissue cul-
ture responsive lines of Lolium temulentum by anther culture. Plant
Science,2005,168(1) :203-211.
[78]Ge YX,Cheng XF,Hopkins A,et al. Generation of transgenic Loli-
um temulentum plants by agrobacterium tumefaciens-mediated
transformation. Plant Cell Reporter,2007,26(6) :783-789.
[79]Phan HTT,Ellwood SR,Ford R,et al. Differences in syntenic com-
plexity between Medicago truncatula with Lens culinaris and Lupi-
nus albus. Function Plant Biology,2006,33(8) :775-782.
[80]Zhu H,Choi HK,Cook DR,et al. Bridging model and crop legumes
through comparative genomics. Plant Physiology,2005,137(4) :
1189-1196.
[81]Armstead IP,Turner LB,Farrell M,et al. Synteny between a major
heading-date QTL in perennial ryegrass(Lolium perenne L.)and
the Hd3 heading-date locus in rice. Theoretical and Applied Genet-
ics,2004,108(5) :822-828.
[82]Tamura K,Yamada T. A perennial ryegrass CBF gene cluster is lo-
cated in a region predicted by conserved synteny between Poaceae
species. Theoretical and Applied Genetics,2007,114 (2) :
273-283.
[83]Spangenberg G,Kalla R,Lidgett A,et al. Breeding forage plants in
the genome era[M]. In:Spangenberg G(ed)Molecular breeding of
forage crops. Kluwer Academic Dordrecht,2007:1-39.
[84]Andersen JR,Lubberstedt T. Functional markers in plants. Trends
Plant Science,2003,8(11) :554-560.
[85]Bingham ET,Groose RW,Woodfield DR,et al. Complementary gene
interactions in alfalfa are greater in autotetraploids than diploids.
Crop Science,2004,34(4) :823-829.
[86]Croser JS,Lulsdorf MM,Davies PA,et al. Toward doubled haploid
production in the Fabaceae:Progress,constraints,and opportuni-
ties. Critical Rev in Plant Science,2006,25(2) :139-157.
[87] Abberton MT. Interspecific hybridization in the genus Trifolium.
Plant Breeding,2007,126(4) :337-342.
[88]Li L,Qu R. Development of highly regenerable callus lines and bio-
listic transformation of turf-type common bermudagrass[Cynodon
dactylon(L.)Pers. Plant Cell Repm,2004,22(6) :403-407.
[89]Sun YL,Hong SK. Effects of plant growth regulators and L-glutamic
acid on shoot organogenesi in the halophyte Leymus chinensis
(Trin.). Plant Cell Tiss Organ Cult,2010,100(3) :317-328.
[90]Ding YL,Ludlow E,Drayton M,et al. Efficient plant regeneration
and agrobacterium-mediated transformation in Medicago and Trifoli-
um species. Plant Science,2003,165(6) :1419-1427.
[91]Weeks JT,Ye JS,Rommens CM. Development of an in planta meth-
od for transformation of alfalfa(Medicago sativa). Transgenic Re-
search,2008,17(4) :587-597.
[92] Rosellini R,Capomaccio S,Ferradini N,et al. Nonantibiotic,effi-
cient selection for alfalfa genetic engineering. Plant Cell Reporter,
2007,26(7) :1035-1044.
[93] Schmidt MA,Martin GS,Artelt BJ,et al. Increased transgene ex-
pression by breeding and selection in white clover. Crop Science,
2004,44:963-967.
[94]Alexander TW,Reuter T,McAllister TA. Qualitative and quantita-
tive polymerase chain reaction assays for an alfalfa(Medicago sati-
va)-specific reference gene to use in monitoring transgenic culti-
vars. Agriculture Food Chemical,2007,55(8) :2918-2922.
[95]Wang ZY,Ye XD,Nagel J,et al. Expression of a sulphur-rich sun-
flower albumin gene in transgenic tall fescue(Festuca arundinacea
Schreb.)plants. Plant Cell Reporter,2001,20(3) :213-219.
[96]Wang ZY,Bell J,Ge YX,et al. Inheritance of transgenes in trans-
genic tall fescue(Festuca arundinacea Schreb.). In Vitro Cellular
and Developmental Biology,2003a,39(3) :277-282.
[97]Chen L,Auh C,Dowling P,et al. Improved forage digestibility of
tall fescue(Festuca arundinacea)by transgenic down-regulation of
cinnamyl alcohol dehydrogenase. Plant Biotechnology,2003,1(6) :
437-449.
[98]Chen L,Auh C,Dowling P,et al. Transgenic down-regulation of caf-
feic acid O-methyltransferase(COMT)led to improved digestibility
in tall fescue(Festuca arundinacea). Function Plant Biology,2004,
31(3) :235-245.
[99]Altpeter F,Xu JP,Ahmed S. Generation of large numbers of inde-
pendently transformed fertile perennial ryegrass(Lolium perenne
L.)plants of forage-and turf-type cultivars. Molecular Breeding,
2000,6(5) :519-528.
[100] Xu JP,Schubert J,Altpeter F. Dissection of RNA-mediated
ryegrass mosaic virus resistance in fertile transgenic perennial
ryegrass(Lolium perenne L.). Plant,2001,26(3) :265-274.
[101]Petrovska N,Wu X,Donato R,et al. Transgenic ryegrasses(Lolium
spp.)with down-regulation of main pollen allergens. Molecular Bre-
eding,2004,14(4) :489-501.
32
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2011 年第 11 期
[102]Cho MJ,Choi HW,Lemaux PG. Transformed T0 orchardgrass(Dac-
tylis glomerata L.)plants produced from highly regenerative tis-
sues derived from mature seeds. Plant Cell Reporter,2001,20
(4) :318-324.
[103]Gao C,Jiang L,Folling M,et al. Generation of large numbers of
transgenic Kentucky bluegrass(Poa pratensis L.)plants following
biolistic gene transfer. Plant Cell Reporter,2006,25(1) :19-25.
[104]Richards HA,Rudas VA,Sun H,et al. Genetic transformation and
hybridization:construction of a GFP-BAR plasmid and its use for
switchgrass transformation. Plant Cell Reporter,2001,20(1) :
48-54.
[105] Gondo T,Tsuruta S,Akashi R,et al. Green herbicide-resistant
plants by particle inflow gun-mediated gene transfer to diploid ba-
hiagrass(Paspalum notatum). Plant Physiology,2005,162(12) :
1367-1375.
[106]Zhang H,Lomba P,Altpeter F. Improved turf quality of transgenic
bahiagrass(Paspalum notatum Flugge)constitutively expressing
the ATHB16 gene,a repressor of cell expansion. Molecular Breed-
ing,2007a,20(4) :415-423.
[107]Gondo T,Matsumoto J,Tsuruta S,et al. Particle inflow gun-media-
ted transformation of multiple-shoot clumps in rhodes grass(Chlo-
ris gayana). Plant Physiology,2009,166(4) :435-441.
[108] Dong S,Qu R. High efficiency transformation of tall fescue with
Agrobacterium tumefaciens. Plant Science,2005,168 (6 ) :
1453-1458.
[109]Wang ZY,Ge Y. Agrobacterium-mediated high efficiency transfor-
mation of tall fescue(Festuca arundinacea Schreb.). Plant Physi-
ology,2005a,162(1) :103-113.
[110]Sato H,Takamizo T. Agrobacterium tumefaciens-mediated transfor-
mation of forage-type perennial ryegrass(Lolium perenne L.).
Grassland Science,2006,52(2) :95-98.
[111]Bajaj S,Ran Y,Phillips J,et al. A high throughput Agrobacterium
tumefaciens-mediated transformation method for functional genom-
ics of perennial ryegrass(Lolium perenne L.). Plant Cell Report-
er,2006,25(7) :651-659.
[112]Wu YY,Chen QJ,Cui XH,et al. Efficient regeneration and Agro-
ba-cterium-mediated stable transformation of perennial ryegr-ass.
Russian Plant Physiologyogy,2007,54(4) :524-529.
[113] Bettany AJE,Dalton SJ,Timms E,et al. Agrobacterium tumefa-
ciens-mediated transformation of Festuca arundinacea (Schreb.)
and Lolium multiflorum (Lam.). Plant Cell Reporter,2003,21
(5) :437-444.
[114]Guo YD,Hisano H,Shimamoto Y. Transformation of androgenic-
derived Festulolium plants(Lolium perenne L. x Festuca pratensis
Huds.)by Agrobacterium tumefaciens. Plant Cell Tissue Organ
Culture,2009,96(2) :219-227.
[115] Lee SH,Lee DG,Woo HS,et al. Production of transgenic or-
chardgrass via Agrobacterium mediated transformation of seed-de-
rived callus tissues. Plant Science,2006,171(3) :408-414.
[116] Somleva MN,Snell KD,Beaulieu JJ,et al. Production of poly-
hydroxybutyrate in switchgrass,a value-added co-product in an
important lignocellulosic biomass crop. Plant Biotechnology,2008,
6(7) :663-678.
[117]Zhang L,Wu D,Zhang L. Agrobacterium-mediated transformation
of Japanese lawngrass(Zoysia japonica Steud.)containing a syn-
thetic cryIA(b)gene from Bacillus thuringiensis. Plant Breeding,
2007b,126(4) :428-432.
[118]Spangenberg G. Molecular breeding of forage and turf[M]. Dor-
drecht:Kluwer Academic Publishers,2001:219-237.
[119]Montague A,Ziauddin A,Lee R,et al. High-efficiency phosphino-
thricin-based selection for alfalfa transformation. Plant Cell Tissue
Organ Culture,2007,91(1) :29-36.
[120]Barone P,Rosellini D,LaFayette P,et al. Bacterial citrate synthase
expression and soil aluminum tolerance in transgenic alfalfa. Plant
Cell Reporter,2008,27(5) :893-901.
[121]Kole C,Hall TC,Compendium of transgenic crop plants:transgenic
cereals and forage grasses[M]. Hoboken,NJ:Wiley-Blackwell,
2008:199-210.
[122]Wang ZY,Ge Y. Rapid and efficient production of transgenic ber-
mudagrass and creeping bentgrass bypassing the callus formation
phase. Function Plant Biology,2005b,32(9) :769-776.
[123]Wang ZY,Lawrence R,Hopkins A,et al. Pollen-mediated trans-
gene flow in the wind-pollinated grass species tall fescue(Festuca
arundinacea Schreb.). Molecular Breeding,2004,14(1) :47-60.
[124]Ye XD,Wu XL,Zhao H,et al. Altered fructan accumulation in
transgenic Lolium multiflorum plants expressing a Bacillus subtilis-
sacB gene. Plant Cell Reporter,2001,20(3) :205-212.
[125] Jenkins CLD,Snow AJ,Simpson RJ,et al. Fructan formation in
transgenic white clover expressing a fructosyltransferase from
Streptococcus salivarius. Function Plant Biology,2002,29(11) :
1287-1298.
[126]Gadegaard G,Didion T,Folling M,et al. Improved fructan accu-
mulation in perennial ryegrass transformed with the onion fructo-
syltransferase genes 1-SST and 6G-FFT. Plant Physiology,2008,
165(11) :1214-1225.
[127]Hisano H,Kanazawa A,Kawakami A,et al. Transgenic perennial
ryegrass plants expressing wheat fructosyltransferase genes accu-
mulate increased amounts of fructan and acquire increased toler-
ance on a cellular level to freezing. Plant Science,2004,167(4) :
861-868.
[128]Rechsteiner MP,Widmer F,Klliker R. Expression profiling of I-
talian ryegrass(Lolium multiflorum Lam.)during infection with
the bacterial wilt inducing pathogen Xanthomonas translucens pv.
graminis. Plant Breeding,2006,125(1) :43-51.
42
2011 年第 11 期 井赵斌等:国外牧草基因组学和转基因技术研究进展
[129]Van Daele I,Van Bockstaele E,Martens C,et al. Identification of
transcribed derived fragments involved in self-incompatibility in
perennial ryegrass(Lolium perenne L.)using cDNA-AFLP. Eu-
phytica,2008,163(1) :67-80.
[130]Chandran D,Sharopova N,Ivashuta S,et al. Transcriptome profi-
ling identified novel genes associated with aluminum toxicity,re-
sistance and tolerance in Medicago truncatula. Planta,2008,228
(1) :151-166.
[131]Hirata M,Cai H,Inoue M,et al. Development of simple sequence
repeat(SSR)markers and construction of an SSR-based linkage
map in Italian ryegrass(Lolium multiflorum Lam.). Theoretical
and Applied Genetics,2006,113(2) :270-279.
[132] Salojrvi J. Next-generation genome sequencing. Hum Genet,
2010,127:459-460.
(责任编辑 狄艳红
櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧
)
(上接第 5 页)
[37] Khan MA,Ansari R,Gul B,et al. Dormancy and germination re-
sponses of halophyte seeds to the application of ethylene. Comptes
Rendus Biologies,2009,332(9) :806-815.
[38]Huang XL. Seedgermination,seedling growth and ethylene produet-
ion of plants and their sensitivety to ethylene under stress condi-
tion. Chinese Bulletin of Botany,1995,12(2) :32-37.
[39]Cao WH,Liu J,He XJ,et al. Modulation of ethylene responses af-
fects plant salt-stress responses. Plant Physiology,2007,143(2) :
707-719.
[40]Wei A,Chen Y. Effect of IAA on soybean seedling’s membrance
injury and salt resistance. Acta Bot Boreal Occident Sin,2000,20
(3) :410-414.
[41]Wang Y,Li K,Li X. Auxin redistribution modulates plastic develop-
ment of root system architecture under salt stress in Arabidopsis
thaliana. Journal of Plant Physiology,2009,166(15) :1637-1645.
[42] Sveikauskas V,Bareikiené N,Jancys Z. Energy-dependent auxin
transport through the plasmalemma:the role of H + -ATPase. Bi-
ologija,2003,3:60-62.
(责任编辑 狄艳红
櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧櫧
)
(上接第 11 页)
[40] Ballif J,Endo S,Kotani M,et al. Over-expression of HAP3b en-
hances primary root elongation in Arabidopsis. Plant Physiology and
Biochemistry,2011,49(6) :579-83.
[41] Bo Shen,Allen WB,Zheng PZ,et al. Expression of ZmLEC1 and
ZmWRI1 increases seed oil production in maize. Plant Physiology,
2010,153(3) :980-987.
[42]Shibukawa T,Yazawa K,Kikuchi A,et al. Possible involvement of
DNA methylation on expression regulation of carrot LEC1 gene in
its 5-upstream region. Gene,2009,437(1-2) :22-31.
(责任编辑 狄艳红)
52