免费文献传递   相关文献

Preparation of attapulgite mesoporous materials for immobilization of porcine pancreatic lipase

凹土介孔材料的制备及其固载猪胰脂肪酶



全 文 :第 14卷第 4期
2016年 7月
生  物  加  工  过  程
Chinese Journal of Bioprocess Engineering
Vol􀆰 14 No􀆰 4
Jul. 2016
doi:10􀆰 3969 / j􀆰 issn􀆰 1672-3678􀆰 2016􀆰 04􀆰 005
收稿日期:2016-01-13
基金项目:江苏省博士后基金(1301037C)
作者简介:张岩岩(1990—),女,山东聊城人,研究方向:酶固定化与酶催化;韩萍芳(联系人),研究员,E⁃mail:hpf@ njtech.edu.cn
凹土介孔材料的制备及其固载猪胰脂肪酶
张岩岩,唐  雷,赵  萌,李  亚,韩萍芳
(南京工业大学 生物与制药工程学院,江苏 南京 211800)
摘  要:通过高温加热法,以天然凹土、硅酸钠、氯化铝为原料,十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)为模板剂,在碱性条
件下制备凹土介孔材料,并将其用于固载猪胰脂肪酶(PPL)。 通过扫描电子显微镜(SEM)、N2吸附脱附分析仪
(BET)、傅里叶红外光谱(FT IR)等手段表征制备的介孔材料。 结果表明:合成的样品具有典型的介孔结构,凹土
表面呈现较大孔径。 凹土介孔材料的比表面积为 102􀆰 27 m2 / g。 实验表明脂肪酶固定化的最适温度为 25 ℃,最适
pH为 6􀆰 0,固载 4 h后固定化脂肪酶的热稳定性、pH稳定性均优于游离酶。
关键词:凹土;介孔;固载;猪胰脂肪酶
中图分类号:Q814􀆰 2        文献标志码:A        文章编号:1672-3678(2016)04-0024-05
Preparation of attapulgite mesoporous materials for immobilization
of porcine pancreatic lipase
ZHANG Yanyan,TANG Lei,ZHAO Meng,LI Ya,HAN Pingfang
(College of Biotechnology and Pharmaceutical Engineering,Nanjing Tech University,Nanjing 211800,China)
Abstract:Attapulgite mesoporous materials were synthesized via high temperature method,with natural
attapulgite,sodium silicate and aluminum chloride as raw materials and cetyl trimethyl ammonium bromide
(CTAB)as a template agent under alkaline condition.Then the synthesized material was used to immobilizae
porcine pancreatic lipase(PPL).Immobilization samples were characterized by scanning electron microscope
(SEM),Brunauer⁃Emmet⁃Teller (BET) adsorption and desonsion isotherm and Fourier transform infrared
spectroscopy(FT⁃IR),et al.Results show that the synthesized sample had typical mesoporous structure and
larger aperture on its surface. Attapulgite mesoporous materials had a surface area of 102􀆰 27 m2 / g. The
optimum temperature for lipase immobilization was 25 ℃,and the optimum pH was 6.The thermal stability
and pH stability of immobilized lipase were better than free enzyme after loading for 4 h.
Keywords:attapulgite; mesoporous; immobilization; porcine pancreatic lipase
    目前,游离脂肪酶催化技术已相对成熟,但它
在高温、强酸、强碱和有机溶剂中反应容易失活,且
存在分离困难、不能重复利用、难以实现连续操作
等缺点。 为克服游离酶反应的不足之处,对游离酶
进行固定化。 与游离酶相比,固定化酶具有稳定性
好、易从反应系统中分离、能重复使用、便于运输和
贮存、有利于生产的连续化和自动化等优点,得到
广泛的应用[1]。 常用固定化方法有吸附法[2]、包埋
法[3]、交联法[4]和共价偶联法[5]。 一般将 2 种或以
上方法共同使用,以提高固定化酶的活力。
在固定化过程中酶与载体紧密结合在一起,会导
致酶的构象发生改变,影响固定化后的酶活性[6]。 同
时,固定化载体材料也会影响固定化酶的酶学性质,
为增强酶的活性,提高固定化性能,酶的固定化载体
需要具有高机械强度、耐受化学试剂侵蚀、具有易反
应或易修饰的基团以及适宜的表面特性等特点。 各
种各样的新型载体材料如磁性材料、介孔材料等被用
于酶的固定化技术。 新型载体材料以其本身的性能
及优点使得固定化酶的利用率和活性提高,具有良好
的应用前景。 Li等[6]将猪胰脂肪酶(PPL)固定在棒
状 SBA 15 上,研究结果表明:PPL 被成功的吸附固
定到了 SBA 15 孔道内,而且吸附了 PPL 的 SBA
15 仍能保持其有序的介孔结构。
硅酸盐黏土具有特定的链层状多孔结构,该结
构赋予其许多优良的性质,如力学强度高、热稳定
性好及良好的吸附性能。 Yang 等[7]选用了硅藻土
为载体,将脂肪酶 Arthrobacter sp 进行了固定化,加
入甲基丙烯酰氧基丙基、辛基、十二烷基等与载体
反应,调节材料表面亲疏水性,优化反应工艺,结果
发现甲基丙烯酰氧基丙基改性的载体固定化酶酶
活为游离酶的 7􀆰 9 倍,固定化酶重复使用 20 d 后,
残余活性为初始活性的 76%。
本文中,笔者以廉价凹土作为原材料,选取无机
柱撑的方式制备凹土介孔材料,并对载体的性能和结
构进行了表征分析,同时对固定化酶的最适条件及
pH稳定性、储存稳定性等理化性质进行了探讨。
1  材料与方法
1􀆰 1  材料
凹凸棒黏土(74 μm,含预处理),江苏澳特邦非
金属矿业有限公司; NaHCO3、 NaOH、 Na2 HPO4、
NaH2PO4(AR),广东汕头西陇化工厂;FeCl3·6H2O
(AR)、聚乙烯醇(PVA;1750),国药集团化学试剂
有限公司;十六烷基三甲基溴化铵(CTAB,AR),上
海研生实业有限公司;猪胰脂肪酶(porcine pancreas
lipase,纯度 98%,BR),南京奥多福尼生物技术有限
责任公司。
1􀆰 2  仪器
GL 21M型离心机,上海离心机械研究所;85
1型磁力搅拌器,金坛医疗设备厂;DZF 6000 型真
空干燥箱,上海博迅实业有限公司;Nexus 670 傅里
叶红外光谱仪,美国 Nicolet 公司;JsM 6700F 型冷
场发射扫描电子显微镜,美国 JEOL公司。
1􀆰 3  Na 天然凹土的制备
Na 天然凹土的制备参照文献[8]。 50 g 天然
凹土加入到 1 000 mL蒸馏水中,然后加入 200 g 钠
型离子交换树脂,搅拌 24 h 后,将树脂从悬浮液中
分离出来,在 120 ℃蒸发干燥 24 h,即得钠天然凹
土,命名 Na L。
1􀆰 4  凹土介孔材料的合成
取 4 g Na L加入到 110 mL蒸馏水中,然后边
搅拌边加入 14􀆰 21 g Na2SiO3·9H2O和 0􀆰 6 g AlCl3·
6H2O,得悬浮液。 取 9􀆰 11 g CTAB加入到 50 mL 蒸
馏水中,边加边搅拌,反应几小时直到获得胶状溶
液。 然后在剧烈搅拌的条件下缓慢向胶状溶液中
加入制备好的悬浮液,之后逐滴加入体积分数 50%
的 H2SO4 溶液,将 pH调至 11,室温下搅拌 10 h。 将
合成溶液转到 250 mL圆底烧瓶,在冷凝回流的条件
下加热 2􀆰 5 h。 冷却至室温,过滤样品,去离子水洗
涤,然后再 120 ℃下烘干 24 h,得到样品 s LWS。
s LWS样品在 550 ℃ (温度以 2 ℃ / min 的速率上
升至 550 ℃)下焙烧,并维持 550 ℃10 h,所得样品
为 c LWS。
1􀆰 5  凹土介孔材料的表征
采用扫描电子显微镜(SEM)、傅里叶红外光谱
(FT IR)、N2吸附脱附分析仪(BET)对凹凸棒凹土
介孔材料的结构和性能进行分析表征。
1􀆰 6  脂肪酶的固定化
向 100 mL具塞三角烧瓶中加入 40 mL 磷酸缓
冲液、80 mg 猪胰脂肪酶、制备的凹土介孔材料 80
mg。 一定温度下,在转速为 110 r / min 的恒温水浴
振荡器中固定化一定时间后取出,于 5 000 r / min 离
心机离心 10 min,缓冲溶液洗涤 3 次,抽滤,固体置
于真空冷冻干燥机中干燥 5 h,得到固定化酶,于 4
℃保存。
1􀆰 7  脂肪酶活力的测定
在温度为 37 ℃的条件下,按照橄榄油水解
法[9-10]测定酶活力。 每分钟酶催化底物水解释放出
1 μmol脂肪酸所需的酶量为 1 U。
2  结果与讨论
2􀆰 1  凹土介孔材料的表征结果
2􀆰 1􀆰 1  SEM表征
为考察制备的凹土介孔材料的表面孔径状态,
对其进行了 SEM表征,结果如图 1 所示。 由图 1 可
以看出:天然凹土呈纤维结构,为直线,且表面相对
52  第 4期 张岩岩等:凹土介孔材料的制备及其固载猪胰脂肪酶
光滑,孔径较小。 凹土介孔材料呈网状纤维结构,
表面粗糙且有明显的较大孔。 正如预期的,凹土材
料的表面被明显地改变,且相对于未改性前的原材
料表现出更紧密更粗糙的表面。 这是因为低相对
分子质量表面活性剂 CTAB 调控柱撑凹土,经过高
温焙烧得到的凹土介孔材料片层表面发生了变化。
图 1  天然凹土材料和凹土介孔材料 SEM照片
Fig􀆰 1  SEM images of natural attapulgite materials and attapulgite mesoporous materials
2􀆰 1􀆰 2  FT IR表征
为了了解柱撑及焙烧后凹土基团的信息,对其进
行了红外谱分析,结果见图 2。 由图 2可以看出:样品
(b)在 3 385、1 639、1 015和 780 cm-1附近都有出峰,
其中在 3 385 cm-1附近的出峰是 Si—OH的特征带和
凹土内部吸附水的羟基震动引起的;1 639 cm-1是水
分子变形振动吸附吸收峰[11];1 015 和 780 cm-1为
Si—O—Si反振动伸缩对称的特征吸收峰。 而样品
(a)在 2 850、2 917和 1 490 cm-1附近还有 3个峰,为
表面活性剂烷基链的特征吸收峰,在焙烧过的样品
中,这样的吸收峰消失了。 由此可知图 2 表明,柱撑
凹土在经过焙烧后,2 850、2 917和1 490 cm-1的吸收
峰消失了,而其他的吸收峰没有变化,这说明柱撑样
品被有效地消除了,这与 Jiang 等[8]的研究结果一致。
图 2  柱撑过的凹土(a)和焙烧后的
凹土(b)的红外光谱
Fig􀆰 2  FT⁃IR spectra of samples column supported
attapulgite (a) and roasted attapulgite(b)
2􀆰 1􀆰 3  BET表征
为考察凹土介孔材料的孔径及大小,对其进行了
等温吸附 脱附表征,表征曲线见图 3。 由图 3可知:
凹土介孔材料的吸附 脱附等温曲线类型是 Langmuir
IV型曲线[12]。 吸附等温线和脱附等温线在最初时是
重合的,当相对压力达到一定数值时,两条曲线的趋
势发生了变化,并出现了 H3型的滞后环。 相对压力
在 0􀆰 55时曲线出现变化,这可以说明载体中存在介
孔[13]。 若能有一种酶的尺寸和凹土介孔材料的平均
孔径相似,就可以增加其固载率,而猪胰脂肪酶的尺
寸和凹土介孔材料的平均孔径大小相近,所以酶很容
易进入凹土介孔材料的孔道中,凹土介孔材料有较高
的比表面积(102􀆰 27 m2 / g),固载率得到提高,比 Zhao
等[14]研究的以化学法合成的介孔材料的比表面积
(48􀆰 5 m2 / g)高。
图 3  凹土介孔材料吸附 脱附等温曲线
Fig􀆰 3  N2 adsorption⁃desorption isotherms of
attapulgite mesoporous materials
2􀆰 2  脂肪酶固定化条件的研究
2􀆰 2􀆰 1  固载时间的确定
依据固定化的方法,考察固载时间对酶固定化
的影响,结果如图 4所示。 由图 4可知:在固载的前
4 h,比酶活和固载率都随时间的延长而增加;当固
载时间为 4 h时,酶活和固载率都达到最大值;在固
62 生  物  加  工  过  程    第 14卷 
载 4 h之后,酶活和固载率随着固载时间的延长而
下降。 这说明在反应开始阶段(4 h 内),脂肪酶通
过吸附快速结合到载体上,而随着载体上可结合位
点数量的减少,吸附速度明显下降,超过一定时间后
(4 h),载体表面可结合位点已基本上被酶所覆盖,由
于空间位阻的存在,即使还存在一些结合位点,蛋白
基本上无法被继续吸附,因而随着时间的延长也不会
使固定化酶活继续得以提高。 在 4 h 内,猪胰脂肪酶
分子与凹凸介孔材料可能是通过范德华力和疏水作
用相结合,在载体表面和孔道形成单分子层吸附,使
得酶的活性中心暴露出来,表现出最大的酶活[15]。
故可以确定固载时间为 4 h最佳。
图 4  固载时间对酶固定化的影响
Fig􀆰 4  Effects of time on PPL immobilization
2􀆰 2􀆰 2  固载温度的确定
依据固定化的方法,考察固载温度对酶固定化
的影响,结果如图 5所示。 由图 5可知:虽然固载温
度升高,但固载率变化很小,比酶活在 25 ℃时达到
最大。 这可能是由于温度的升高致使分子运动加
快和功能团的振动频率加大,传质动力加大,有利
于材料吸附脂肪酶。 在固定化的过程中,由于温度
的升高,固定化酶子分运动加剧,蛋白质的构象发
生了变化,部分脂肪酶分子发生不可逆失活,固定
化脂肪酶的活力损失力度加大,故温度不宜过高。
温度在 30 ℃的时候,酶的活性下降明显,所以本实
验固载温度选择室温 25 ℃。
2􀆰 2􀆰 3  体系 pH的确定
固定其他条件,考察 pH对固定化酶比酶活的影
响,结果如图 6所示。 由图 6可知:pH对酶活性的影
响和对固载率的影响是相似的,pH为6􀆰 0时,比酶活和
固载率都达到最大,pH大于 6􀆰 0时呈明显下降趋势。
这一现象是由蛋白质的两性电离性质决定的。 载体孔
道内表面由于带负电荷使其 pH比蛋白质溶液小[16]。
PPL的等电点为 5􀆰 0[17]。 当溶液 pH为 5􀆰 0~6􀆰 0时,载
图 5  温度对酶固定化的影响
Fig􀆰 5  Effects of temperature on PPL immobilization
体孔道 pH小于酶分子等电点,所以孔道内的脂肪酶带
正电荷并随着 pH的增加而逐渐减少为零,酶分子之间
的库伦力随之变弱,在载体的内表面形成较紧密的单
层排列[18]。 在溶液 pH等于 6􀆰 0时,可能是酶分子所
带电荷为 0,酶分子之间斥力为 0,酶活较高。 当 pH大
于 7􀆰 0时,可能是载体孔道 pH大于酶分子等电点,酶
分子带负电荷,脂肪酶和载体内表面都带负电荷而相
互排斥,固载率下降,比酶活变低[15]。
图 6  pH对酶固定化的影响
Fig􀆰 6  Effects of pH on PPL immobilization
2􀆰 3  固定化酶的热稳定性
将制备好的固定化酶和游离酶放置 60 ℃环境
中考察高温对酶活的影响,并以各自未处理的初始
酶活力为 100%计,结果见图 6。 由图 6 可知:随着
60 ℃温浴时间的延长,固定化酶和游离酶的酶活都
呈下降趋势。 经 6 h 高温保存,固定化酶保留初始
酶活的 51%,游离酶活保留初始酶活的 19%,可说
明固定化酶的剩余酶活高于游离酶。 这表明固定
化酶具有更好的热稳定性,其原因可能是部分脂肪
酶进入材料的介孔中,使得其在高温中的空间构象
得到孔道的束缚,酶活得以保留。
2􀆰 4  固定化酶的重复使用性
在 pH 6􀆰 0、温度 25 ℃的条件下,考察固定化酶
的重复使用性能,结果见图 8。 由图 8 可知:随着使
72  第 4期 张岩岩等:凹土介孔材料的制备及其固载猪胰脂肪酶
图 7  高温对固定化酶和游离酶的影响
Fig􀆰 7  Thermal stability of immobilized lipase in
comarison with free lipase
用次数的增加酶活有所下降,但重复 7次,酶活仍能
达到原始酶活的 42%左右。 这可能是固定化酶的
力学强度较高,使其稳定性提高。 而酶活下降的原
因可能是酶分子与载体仅通过微弱的疏水作用和
范德华力结合,经多次洗涤,酶分子易脱落,造成酶
活部分失活。 整个反应体系在上述优化条件下有
较好的操作稳定性,而且本反应体系反应条件温
和,保持了脂肪酶良好的催化活性。
图 8  使用次数对固定化酶的影响
Fig􀆰 8  Reusability of immobilized lipase
3  结论
以自制凹土介孔材料作载体,用于固定化脂肪
酶的研究,详细研究了脂肪酶固定化的性质,结果
表明:脂肪酶固定化的最适温度为温度 25 ℃,最适
pH为 pH 6􀆰 0且固定化脂肪酶的热稳定性、pH稳定
性均优于游离酶。 制备的凹土介孔材料的固载率
得到较大提升,且载体不需要预先活化,是一种比
较理想的固定化酶的载体。
参考文献:
[ 1 ]  BORNSCHEUER U. Immobilizing enzymes: how to create more
suitable biocatalysts[J].Angew Chem Int Ed,2003,42:3336⁃3337.
[ 2 ]   LI Y J,ZHOU G W,QIAO W T,et al. Immobilization of porcine
pancreas lipase on fiber⁃like SBA⁃15 mesoporous material [ J] .
Mater Sci Eng B,2009,120:120⁃126.
[ 3 ]   HAYNES C A,NORDE W. Structure and stabilities of adsorbed
proteins[J] .J Colloid Interf Sci,1995,169(2):3l3⁃318.
[ 4 ]   PRABHUNE A A,RAO B S,PUNDLE A V,et al.Immobilization
of premeabilized Escherichia coli cells with penicillin acylase
activity[J] .Enzyme Microbiol Technol,1992,14:161⁃163.
[ 5 ]   SHAW J F,CHANG R C,WANG F F,et al.Lipolitic activities of
a lipase immobilized on six selected supporting materials [ J] .
Biotechnol Bioeng,1990,35:132⁃137.
[ 6 ]   LI Y J,ZHOU G W,LI C J,et al.Adsorption and catalytic activity
of porcine pancreatic lipase on rod⁃like SBA⁃15 mesoporous
material[J] .Colloids Surf A,2009,341(1 / 3):79⁃85.
[ 7 ]   YANG G,WU J,XU G,et al. Enhancement of the activity and
enantioselectivity of lipase in organic systems by immobilization
onto low⁃cost support [ J] . J Mol Catal B:Enzymatic,2009,57:
96⁃103.
[ 8 ]   JIANG T,SHEN W,TANG Y,et al.Stability and characterization
of mesoporous molecular sieve using natural clay as a raw material
obtained by microwave irradiation[ J] .Appl Surf Sci,2008,254
(15):4797⁃4802.
[ 9 ]   中华人民共和国轻工业部.工业酶制剂通用试验方法 QB /
T1803—1993[S].北京:北京轻工业出版社,1993.
[10]   高贵,韩四平,王智,等.脂肪酶活力检测方法的比较[ J] .药物
生物技术,2002,9(5):281⁃284.
[11]   BOURLINOS A B, KARAKASSIDES M A, SIMOPPULOS A.
Synthesis and characterization of magnetically modified clay
composites[J] .Chem Mat,2000,12(9):2640⁃2645.
[12]   BARRETT E P, JOYNER, L G, HALENDA P P. The
determination of pore volume and area distributions in porous
substances: I. computations from nitrogen isotherms [ J] . J Am
Chem Soc,1951,73(1):373⁃380.
[13]   JIANG T, ZHAO Q, YIN H. Synthesis of highly stabilized
mesoporous molecular sieves using natural clay as raw material
[J] .Appl Clay Sci,2007:35(3 / 4):155⁃161.
[14]   ZHAO D Y, FENG J L, HUO Q S, et al. Triblock copolymer
syntheses of mesoporous silica with periodic 50 to 300
angstrompores[J] .Science,1998,279,548⁃552.
[15]   KATIYAR A,JI L,SMIRNIOTIS P,et al. Protein adsorption on
the mesoporous molecular seieve silicate SBA⁃15:effects of pH
and pore size[J] .J Chromatogr A,2005,1069(1):119⁃126.
[16]   O′REILLY J P,BUTTS C P,I′ANSON I A,et al.Interfacial pH at
an isolated silica⁃water surface[ J] . J Am Chem Soc,2005,127
(6):1632⁃1633.
[17]   FAN J,YU C,WANG L,et al. Mesotunnels on the silica wall of
ordered SBA⁃15 to generate three⁃dimensional large⁃pore mesoporous
networks[J].J Am Chem Soc,2001,123:12113⁃1211.
[18]   VINU A,MURUGESAN V,TANGERMANN O,et al. Adsorption
of cytochrome conmesoporous molecular sieves:influence of pH,
pore diameter,and aluminum incorporation[J] .Chem Mat,2004,
16:3056⁃3065.
(责任编辑  荀志金)
82 生  物  加  工  过  程    第 14卷