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Construction of Pseudomonas putida S1 trehalose synthase expression vector and optimization of induction conditions

Pseudomonas putida S1海藻糖合成酶表达质粒的构建及诱导条件优化



全 文 :Sep.2008
·44·
生物加工过程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
第6卷第5期
2008年9月
PseudomonasputidaS1海藻糖合成酶
表达质粒的构建及诱导条件优化
姚 林,段作营,史仲平,毛忠贵
(江南大学 工业生物技术教育部重点实验室,无锡214122)
摘要:采用PCR方法从PseudomonasputidaSI中克隆出编码海藻糖合成酶的基因treS,并与质粒pQE30T相连,构
建了表达质粒pQE-TS2。将此重组质粒转化宿主茵EcoliM15进行诱导表达。十二烷基磺酸钠一聚丙烯酰胺凝胶
SDS—PAGE电泳结果表明,treS基因在大肠杆菌中获得了高效表达。通过对诱导温度、诱导荆浓度、加诱导荆时间
和诱导时间的优化研究,在茵液生长至OD咖值为0.6时,加入诱导剂IPTG至终浓度O.01mmoL/L,20℃诱导20h,
蛋白的表达量达到每克干细胞89mg的蛋白,粗酶液酶活达到19U/mL。
关键词:Pseudomona5put/da;海藻糖合成酶;克隆;表达;诱导条件
中图分类号:Q93 文献标志码:A 文章编号:1672—3678(2008)05—0044—06
ConstructionofPseudomonasputidaSl trehalosesynthaseexpression
vectorandoptimizationofinductionconditions
YAOLin,DUANZuo—ying,SHIZhong—ping,MAOZhong-gui
(KeyLaboratoryofIndustrialB otechnologyoftheMinistryofEducation,SchoolofBiotechnology.
JiangnanUniversity,Wuxi214122,China)
Abstract:TreSgenencodingtrehalosesynthasefromPseudomonasputidaS1wasamplifiedbyPCRand
WasligatedtopQE30Tplasmidasthe xpressionplasmidpQE—TS2.E.coliM15 competentc llswere
transformedbytherecombinantpl smidpQE-TS2andinducedbyIPTG.ThetrehalosesynthasegeneWas
confirmedinE.colibySDS—PAGE.Theinfluencesofinductionemperature,IPTGconcentration,indue—
tiontime,andi uctiondurationwereinvestigated.WhenthecellsgrewintoOD600was0.6,IPTGWas
addedtothefinalconcentrationof0.01 mmol/L.After20hinductionat20℃.theexpressionofthe
trehalosesynthasereached89mg/g(DCW).Theactivityof hetrehalosesynthaseinthecrudeenzyme
wasdetectedas19U/mL.
Keywords:Pseudomonasputida;trehalosesynthase;clone;expression;inductionconditions
海藻糖是由两个葡萄糖分子以及,a-1,1糖苷键
连接而成的非还原性双糖,是生物体在不良环境中
所产生的抗逆应激物之一,对生命体和生物活性物
质具有保护功能。其特殊的理化性质和生物学功
能使其在食品工业、化妆品工业、医药工业、农业和
分子生物学等领域有广泛的应用前景‘川。
收稿日期:2008旬2.28
基金项目:国家863计划资助项目(2006AA020101)
作者简介:姚林(1981一),男,江苏句客人,硕士研究生,研究方向:生物化工。
联系人:段作营。副研究员,E—mail:duanzy025@163.corn
万方数据
2008年9月姚林等:PseudomonasputidaS1海藻糖合成酶表达质粒的构建及诱导条件优化 ·45·
海藻糖合成酶是近年来新发现的一种酶,它通
过分子内转糖基化作用,将a,a—l,4糖苷键连接的
麦芽糖一步法转化为a,Q一1,1糖苷键连接的海藻
糖旧],是海藻糖合成最重要的途径之一。目前,已
从Pimelobactersp.R48、ThermusaquaticusATCC33—
923、PseudomonasstutzeriCJ38、Deinococcusradio—
durans等多种微生物中克隆和鉴定出海藻糖合成酶
编码基因treS【3-6;。虽然Pseudomonasputida是最
先发现产海藻糖合成酶的细菌之一,但是有关P.
putida海藻糖合成酶基因的克隆与表达还未见研究
报道。
本文通过基因工程的方法,在大肠杆菌中表达
P.putidaS1的海藻糖合成酶基因,并通过诱导条件
研究,提高其表达活性,为采用该重组酶酶法转化
麦芽糖生产海藻糖奠定技术基础。
1材料与方法
1.1菌株与质粒
海藻糖合成酶产生菌恶臭假单胞杆菌(Pseudo—
monAl噶putidaS1)由本实验室筛选并保存071;大肠杆
菌JMl09,大肠杆菌M15和质粒pQT30T由本实验
室保存。
1.2酶与试剂
BamHI、HindIII内切酶、T4DNA连接酶、Taq
DNA聚合酶、PCR试剂均为大连宝生生物有限公司
产品;酵母提取物和蛋白胨为Oxiod公司产品;质粒
抽提试剂盒、DNA纯化试剂盒、胶回收试剂盒均购
自上海生工有限公司。其他试剂均为国产分析纯
试剂。
1.3培养基
大肠杆菌完全培养基LB(g/L):蛋白胨10,酵
母提取物5,NaCI10,pH7.0。添加质量分数1.5%
琼脂为LB固体培养基。使用前根据需要加入氨苄
青霉素(终质量浓度100斗g/mL)和卡那霉素(终质
量浓度50I山g/mL)。
质粒转化所用培养基为SOC(s/L):蛋白胨20,
酵母提取物5,NaCl0.5,KCl0.186,MgS041.2,葡
萄糖3.963。
1.4分子克隆技术
质粒DNA的提取、酶切、连接、感受态细胞的制
备、转化等均按文献[8]及相关的试剂盒操作说明
书进行。PCR产物纯化参照上海生工有限公司小
量PCR纯化试剂盒说明书。
1.5 PseudomonasputidaSI海藻糖合成酶基因treS
的PCR扩增
根据本研究室对P.putidaS1菌株treS序列分
析结果(该序列已提交Genbank数据库,Accession
Number:EU310374),用primer5.0软件设计PCR扩
增引物。
上游弓I物:5’一AAGGATCCACCCAGCCCGAC—
CCGTCATA-37.
下游引物:57一CCCGGAAGCTTTTACACATGTC—
CACTGCTG.3’。
在上下游引物5’端分别设计了BamHI和Hind
Ⅲ酶切位点(下划线部分),便于连接到表达载体
pQE30T上。所有引物均由上海生工生物有限公司
合成。用上海生工生物有限公司的试剂盒提取P.
putidaS1基因组DNA。以P.putidaS1总DNA为
模板,进行PCR扩增:95cc,5min,然后94℃,
30S,65℃30S,72℃3min完成34个循环,72℃
延伸10rain。
1.6重组质粒的构建
PCR产物用DNA胶回收试剂盒回收,纯化后用
BamHI和HindIII进行双酶切,然后与同样用
BamHI和HindIII双酶切过的pQE30T载体连接,
连接产物转化大肠杆菌JMl09感受态细胞,涂布在
含有氨苄青霉素的LB平板上,37℃静置培养过夜,
提取阳性克隆酶切电泳验证,筛选得到重组质粒命
名为pQE.TS2,如图1所示。
图1表达质粒pQE—TS2
Fig.1Schematicoverviewofthexpression
plasmidpQE—TS2
1.7重组菌的诱导表达和表达产物分析
将重组质粒pQE—TS2转化到表达宿主大肠杆
菌M15感受态细胞,涂布含有氨苄青霉素和卡那霉
素的LB平板上,37℃静置培养过夜,同时以
万方数据
·46· 生物加工过程 第6卷第5期
pQE30T空载体为对照。挑取阳性克隆酶到含氨苄
青霉素和卡那霉素的LB培养液中,37℃振荡培养
过夜,然后按体积分数2%接种量接种到新鲜LB培
养液中,37℃培养一定时间,加IPTG诱导表达。取
一定量发酵液经8000r/min离心10min,得到的菌
体沉淀悬浮于50mmoL/L、pH为8.1的磷酸盐缓冲
液中(浓缩10倍),冰浴超声波破碎(300W,工作2
s,间歇4s)15min。细胞破碎液在11000r/min下
离心20min,离心后上清液即为粗酶液归J,用于目
的蛋白SDS.PAGE分析和酶活力测定。
1.8海藻糖合成酶酶活力的测定
以40g/L麦芽糖为底物,加粗酶液于50mmol,
pH为8.1的磷酸盐缓冲液中,20℃反应30min后,
100cc沸水浴10min灭酶活,冷却至室温后,HPLC
测定海藻糖含量¨01。在上述条件下每分钟转化1
p。mol麦芽糖生成海藻糖的量定义为1个酶活单位。
2结果与讨论
2.1 重组质粒pQE—TS2的构建、筛选和鉴定
用设计的引物在TaqDNA聚合酶的作用下,扩
增得到海藻糖合成酶treS基因片段,PCR产物经
1%琼脂糖凝胶电泳鉴定表明,在2100bp左右有一
明显的带(图2),与预期一致。
1一PCRproduct:M—DNAmarker-EcoTl4I
图2 TreS基因的PCR产物电泳分析
Fig.2PCRproductoftreSgene
已正确连接到表达载体上。
M—DNAmarkerk-EcoTl4I;l—pQE-TS2/HindⅢ;
2一pQE-TS2/HindⅢ+BamHI;3--pQE30T/HindIII
图3重组质粒pQE—TS2的酶切鉴定
Fig.3Identificationofrecombinantpl smidpQE·TS2by
restrictionendonueleasereaction
2.2重组茵(M15/pQE—TS2)的构建和表达产物的
SDS.PAGE分析
将鉴定正确的重组质粒pQE—TS2转化到表达
宿主大肠杆菌M15,同时以pQE30T空载体为对照。
挑取单菌落到含氨苄青霉素和卡那霉素的LB培养
液中,37℃振荡培养至0D㈣值约为0.6时,加IPTG
到至浓度0.1mmol/L,37oC诱导表达8h。将诱导
培养的重组菌经超声破碎并离心后,分别收集上清
液和沉淀物,同时进行SDS—PAGE电泳检测。结果
(图4)表明重组菌和对照相比在相对分子质量为
7.5×104处出现特异蛋白带,与核酸序列理论推算
的蛋白质相对分子质量的相符,表明treS基因在重
组菌中得到表达。但是日的酶蛋白几乎全在沉淀
中,上清液中只有少量的可溶性目的蛋白,目的蛋
白绝大部分以包涵体的形式存在。
将扩增得到的DNA片断回收后用限制性内切
酶BamHI、HindIll双酶切后与同样用BamHI、
HindIll双酶切后的表达载体pQE30T连接,连接产
物转化JMl09感受态细胞。筛选阳性克隆,用限制 M—Pr0【einmarker;I--SupernatantofEcoliM15/pQE30T;
性内切酶胁ndIII单酶切和限制性内切酶BarnHI、箭舞£篙20fE““M1579QE一’rs2;3一Del)(J8i“”4
E”“
胁砌Ⅱ1双酶切电泳鉴定,结果(图3)表明日的片断 Fig.4魁,。喜著薏麓三鉴:篙息卺篷丞.PAGE
万方数据
2008年9月姚林等:PseudomonasputidaS1海藻糖合成酶表达质粒的构建及诱导条件优化 ·47·
包涵体的形成原因是基因工程菌的表达产率
过高,合成速度太快,以至于没有足够的时间进行
折叠,二硫键不能正确配对,过多的蛋白问非特异
性结合,蛋白质无法达到足够的溶解度,形成高密
度、非水溶性、无活性的固体颗粒’11|。研究表明在
低温条件下诱导,可减少包涵体的形成¨2|。这样就
避免了通过变性、复性来恢复蛋白质活性的棘手问
题,给下面的纯化工作带来方便。
2.3诱导条件的初步优化
2.3.1 诱导温度对重组海藻糖合成酶表达水平的
影响
重组菌在37℃摇瓶培养至DD枷值为0.6时,
加入IPTG(终浓度为0.1mmol/L)分别于15℃,
20℃,25℃,30℃下诱导24h,SDS.PAGE电泳结
果如图5所示。通过分析可知,温度对目的蛋白表
达的影响较大,在低温条件下诱导表达有助于包含
体的减少。在低温下,蛋白质的合成速度减慢,有
利于合成的重组蛋白正确折叠,从而减少包含体的
形成,增加表达产物中可溶性蛋白含量。在15~
20℃下诱导,上清液中均可获得较多的可溶性目的
蛋白。由于20℃时菌体的生长速度相对较快,可缩
短发酵周期。因此最终确定重组菌的最适诱导温
度为20℃。
M—Proteinmarker;1、3、5、7--SupematantofEco/i
M15/pQE-TS2inducedat15oC,20℃。25qC,30℃;
2、4、6、8--DepositionofE.coliM15/pQE-TS2
inducedaI15℃.20℃.25℃.30℃
图5诱导温度对海藻糖合成酶表达水平的影响
Fig.5Effectofinductionemperatureontrehalose
synthaseexpression
2.3.2IPTG浓度对重组海藻糖合成酶表达水平的
影响
重组菌在37℃摇瓶培养至∞枷值为0.6时,
分别加入不同剂量的IPTG,使其终浓度分别为
0.01,0.05,0.10,0.20,0.50,1.00mmol/L,20oC诱
导24h,超声波破碎菌体。高速离心后取上清液进
行SDS.PAGE电泳分析,结果如图6所示。从图6
中可以看出,采用低IPTG浓度诱导,上清液中可溶
性目的蛋白浓度较高,而提高IPTG诱导浓度,虽然
海藻糖合成酶总表达量有较明显升高(结果未图
示),但上清液中可溶性目的蛋白浓度却有所降低。
同时由于IPTG具有毒副作用,高浓度的IPTG添加
量会毒害细胞,使细胞生物量有所降低,因此,确定
诱导剂IPTG的最适浓度为0.01mmol/L。
M—Proteinmarker;1~6--Supematantof£cotiM15/pQE-TS2
inducedby0.01,0.05,0.10.0.20,0.50,1.00mmoL/LIPTG
图6 IPTG浓度对海藻糖合成酶表达水平的影响
Fig.6EffectofIIrFGconcentrationon rehalose
synthaseexpression
2.3.3诱导时机对重组海藻糖合成酶表达水平的
影响
重组菌37℃摇瓶培养至0D锄值为0.18,
0.25,0。31,0。38,0.48,0。58,0.71,0.86不同阶段,
分别加入IPTG(终浓度为0.01mmol/L)20℃诱导
24h,取样并进行SDS—PAGE电泳分析。从图7可
以看出,过早的加入IPTG进行诱导,微生物还处于
生长初期,目的酶蛋白的大量表达干扰了宿主细胞
的生长。进入对数生长期之后诱导,目的蛋白的表
达量基本维持不变,因此确定最适诱导时机为DD鲫
值为0.6。
2.3.4IPTG诱导时间对重组海藻糖合成酶表达水
平的影响
重组菌37℃摇瓶培养至优)枷值为0.6时,加入
IPTG(终浓度为0.01mmoVL)20℃诱导,每隔4h
取样,以测定重组海藻糖合成酶的表达情况(见图
8)。结果表明,诱导20h后重组海藻糖合成酶的表
达量基本维持不变,因此诱导可在20h左右结束。
万方数据
·48· 生物加工过程 第6卷第5期
M—Pmteinnmrker;l一8一Totalpr einofE.coliM15/pQE—TS2
inducedat0D枷=O.18,0,25,0.31,0.38,0.48,0.59,0.71,0.86
图7 IPTG诱导时机对海藻糖合成酶表达水平的影响
Fig.7Effectofdifferentco centrationofE.c liM15
pQE—TS2withIPTGontrehalosesynthaseexpression
M—pmteinmarker;1—8一Totalpr einofE.coli
M15/pQE—TS2inducedafter0,4,8.12,16,20,24,36h
图8 IPTG诱导时间对海藻糖合成酶表达水平的影响
Fig.8EffectofIPTGinductiondurationontrehalose
synthaseexpression
2.3.5优化条件下重组菌的诱导表达
重组菌37℃摇瓶培养至DD咖值为0.6时,加
入IPTG(终浓度为0.01mmoL/L)20℃诱导20h,
超声波破碎菌体制取粗酶液,并进行SDS—PAGE电
泳和酶活力分析。如图9所示,优化条件下发酵结
束后重组菌的DCW为1.14g/L,表达量达到了每
克DCW产89mg目的蛋白,较优化前有了大幅度的
提高。经测定粗酶液的酶活达到19U/mL。
3结论
用PCR的方法克隆出海藻糖合成酶编码基因
treS,并成功连接到表达载体pQE30T上,构建了产海
藻糖合成酶重组菌株,实现丁该酶在大肠杆菌中的高
M—PmLeinmarker;1--SupematantofEcoliM15/pQE-TS2:
2--SupematantofE.coliM15/pQE30T
图9优化条件下表达产物的SDS.PAGE电泳分析
Fig.9SDS—PAGEanalysisofthexpressionpr duct
Offtheoptimalcondition
效表达。研究表明在菌液生长至DD㈣值为0.6时,
加入诱导剂IPTG至终浓度0.01mmol/L,20℃诱导
20h,每克干细胞产89mg目的蛋白量达到了
89mg/g,粗酶液酶活为19U/mL。在此基础E,本实
验室正在进行该酶的纯化以及酶学性质的研究。
参考文献:
[1]MasaruK,YutakaM,MasakoK.ela1.Purificationandcharacter-
izationof ewtrehalese—producingenzymesisolatedfromthehyper-
thermophilicarchaeumSulfolobussdfataricusKMI[J].BieseiBio-
techBiechem,1996,60(3):546-550.
[2]KohS,ShinHJ,KimJS,ela1.Trehalosesynthesisfrommaltose
byathermostabletrehalosesynthasefromThermuscaldophgus[J].
BiotechnolLett.1998,20(8):757-761.
[3]TsusakiK,NishimotoT,NakadaT,etal,Cloningandsequencing
oftrehalosesynthasegenefromPimelobactersp.R48[J].Bio—
chimBiophysAeta,1996,1290(1):l-3.
[4]KeijiT.TomoyukiN,TetsuyaN,eta1.Cloningandsequencing
oftrehalosesynthasegenefromThermusaquat/cusATCC33923
[J].BiochimBiophysAeta,1997,1334(1):28-32.
[5]LeeJH。LeeKH,KimCG,eta1.Cloningandexpressionofa
trehalosesynthasefromPseudomonasstutzeriCJ38inEscherichia
colifortheproductionoftrehMose[J】.ApplMicrobiolB techn.
01.2005,68(1):213.219.
[6]韦宇拓,朱绮霞.罗兆飞,等.耐放射异常球菌海藻糖合成酶基
因的克隆及功能鉴定[J].生物化学与生物物理进展,2004,31
(11):1018-1023.
WeiYutuo.ZhuQixia,LuoZhaofoi。eta1.Cloningandidentifica.
tionofageneencodingnovelttehalosesynthasefromDeinococcus
radiodurans[J].ProgBiochandBioph。2004,31(11):
万方数据
2008年9月姚林等:PseudomonasputidaS1海藻糖合成酶表达质粒的构建及诱导条件优化 ·49·
1018一1023.
[7】徐骥,高媛,段作营。等.极地微生物产海藻糖合成酶菌株的筛
选[J].无锡轮工大学学报,2004,23(3):15-18.
XuJi,GaoYuan,DuanZ oying,etal,Screeningofstrainsprodu—
cingtrehalosesynthasefromicroorganisminpolarregion[J].
JournalofWuxiUniversityofLishtIndustry,2004.23(3):
15一18.
【8] 萨姆布鲁克J,拉寒尔Dw.分子克隆实验指南[M],黄堵堂.
译.北京:科学出版社,2002.
[9]贺魏,段作营,史仲平,等.恶臭假单胞菌s1产胞内海藻糖合
成酶发酵培养基的优化[J].生物加工程过程,2007,5(1):
3740.
HeWei,DumaZuoying。ShiZhoogping,et缸.Studyonoptimiza-
一Ⅲ¨¨·“mII一一。’⋯⋯7‘‘’⋯·-,’Ⅶ..一’¨.●_,-‘¨¨-一·
tionoffermentationconditionswithPseudomonasputidaSI[J].
ChinJBioprEngin,2007,5(1):37-40,
[10]王成君。林建平,岑沛霖高效液相色谱法快速检测海藻糖
[J].江南大学学报:自然科学版,2005,4(5):522-525.
WangChengjun.LinJianping,CenPeilin.ArapidHPLCmethod
f打thed tectionoftrehalose[J].JSouthernYa gtzeUniv:Natu.
ralScienceEdition,2005,4(5):522-525.
【11]NeubauerP,FahnerlB,LilleH,ela1.Proteininclusionbodiesin
recombinantbacteria[J],MicrobiolMonoF.2006(1):238-292.
[12]MichaelJW,MariaP,ShawnRC,cta1.Stabilizationofapoglo.
binbylowtemperatureinc asesyi ldofsolublerecombinanthe—
moglohinin胁c如应^如coil[J].ApplEnvimnMicmbiol,1997,
63(1):4313-4321,
乙烯的生物炼制技术应用推广前景广阔
乙烯是重要的化工原料,目前基本来源于石油炼制。我国乙烯年消费量已超过2000万t,其中50%以
上依赖进口。伴随着石油资源的枯竭和油价的高涨,以生物可再生资源替代石油资源开发基于生物制造的
化学产品成为当今世界的研究热点。国家“十一五”863计划在生物和医药领域将“生物乙烯的生物炼制技
术”作为重点项目,由南京工业大学牵头,联合中国石化、安徽丰原集团等国内优势企业和科研单位进行联
合攻关,目前取得了可喜的进展,展示广阔的应用前景。
乙烯生物制造的关键技术在利用秸秆、甜高粱、木薯等非稚原料生产乙醇,乙醇催化转化成乙烯。在国
家863计划的支持下,研究开发了秸秆预处理技术,筛选获得高活力纤维素酶菌株和能同步高效利用五碳糖
和六碳糖发酵乙醇的优良菌株以及强耐受性菌株,实现了发酵工艺技术的优化。研究开发的高效脱水催化
剂,其乙醇单程转化率和乙烯选择性均大于98%,催化剂强度在80~120N/cm,寿命大于2000h。开发的
熔盐控温系统新型反应器,使乙烯收率由原来的89%提升至96%。针对乙烯分离系统的稳定性生产问题,
成功开发出热管和高效翅片组合式换热器,实现低位热能的高效利用,解决工艺堵塔的问题,实现工艺过程
的节能减排。3000t/a秸秆乙醇产业化成套技术中试研究已在中国石化展开。
中石化计划在2010年建立1万t/a生物乙烯生产装置,并配套10万tVAE;丰原宿州生物化学股份有限
公司计划投资建立生物乙烯生产线,并配套18万t生物基乙二醇,预计2010年3月可建成投产。
(朱宏阳)
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