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Purification and modeling of a-amylase with aqueous two-phase systems

PEG-柠檬酸盐双水相体系纯化α-淀粉酶及模型构建



全 文 :!"#!淀粉酶及模型构建
郅文波,顾 铭,宋江楠,欧阳藩!
(中国科学院 过程工程研究所 生化工程国家重点实验室,北京 !"""#")
摘 要:探索了采用 %&分子量,结线
长度、()、上清加入量和 *+,-浓度对!’淀粉酶的分配的不同影响。双水相分离体系复杂,影响因素多,为进行分
析、预测和优化,采用了响应面方法,以 N@Q=TT %>DC>==NC>D,,5E,P=CVC>D !"""#",,RC>+)
9:4+&*)+:3R= O=+TC?C-CJL @O!’+SL-+T= (UNCOCQ+JC@> ON@S O=NS=>J+JC@> TU(=N>+J+>J @O !"#%WCJR%&’
QCJN+J= +XU=@UT JW@’(R+T= TLTJ=S W+T TJUYC=YZ %& . ./",QCJN+J= +>Y *+,-
Q@>Q=>JN+JC@> +T (+N+S=J=NTZB@Y=-T @O (+NJCJC@> Q@=OOCQC=>JT @O!’+SL-+T= +>Y J@J+- (N@J=C>,(UNCOCQ+JC@> O+QJ@N
+>Y!’+SL-+T= LC=-Y W=N= =TJ+?-CTR=Y +>Y @(JCSC]=Y +>Y TLTJ=S Q@S(@TCJC@> +N=+ WCJR (UNCOCQ+JC@> O+QJ@N @O @^=N
0Z" +>Y 1"2 LC=-Y,+T W=-- +T -@W TLTJ=S ^CTQ@TCJL W+T Y=J=NSC>=Y +>Y ^+-CY+J=Y WCJR =\(=NCS=>J+- Y+J+Z
;03 5,&.4:!’+SL-+T=;+XU=@UT JW@’(R+T= TLTJ=ST;@(JCSC]+JC@>;(UNCOCQ+JC@>
双水相体系已经被广泛的应用于生物大分子,
如蛋白质、核酸和抗生素等的提取和纯化过程
中[!,0]。与其它常用的纯化方法相比,双水相体系具
有很多优势[.]:如含水量高(7"2 _ #"2,质量分
数),分辨率高,产物回收率高,易放大,原料便宜而
且可以循环使用等。但是生物大分子在双水相体系
中分配的确切机制尚还不清楚。
!’淀粉酶(!,9’!’[’D-UQ+> D-UQ+>@RLYN@-+T=T;%,
.Z0Z!Z!)是一种重要的工业用酶,它被广泛应用于
酿酒、纺织、洗涤剂、淀粉加工等工业领域[9]。来源
于枯草芽孢杆菌的!’淀粉酶具有许多优点,如热稳
定性好、活性高等。该酶的分子量约为 9# ‘[+,等电
点约为 /,酶活的最适 ()范围为 /Z. _ 6Z9。
!’淀粉酶在双水相体系中的分配[/]以及分离纯
化[6,7]已经被广泛的研究过,双水相体系可以有效地
用于!’淀粉酶的纯化和精制。所采用的双水相体系
! 收稿日期:0""9’"!’"9
作者简介:郅文波(!176’),男,博士,研究方向:生化工程专业。
联系人:欧阳藩,%’S+C-:@UL+>DO+>0""0aL+R@@b Q@S,3=-:"7//’066!6!/1
第 0卷第 !期
0""9年 0月
生 物 加 工 过 程
,RC>=T= G@UN>+- @O PC@(N@Q=TT %>DC>==NC>D
I=?b 0""9
·97·
万方数据
有 !"#
双水相体系具有两相差异大、易分相、价格低廉等优
点,但 !"#硫酸铵体系[&]’(调整不方便,!"#磷酸
盐体系[)]会造成对环境的污染。这些体系虽然可以
有效地用于!柠檬酸盐双水相体系从发酵液上清中纯化
!!+,+!淀粉酶制备
+,+,+ 菌 株
重组枯草芽孢杆菌 -.+,重组质粒 ’/-++0 含 有来自 !"#%%&’ "()%*%+&,-"#,.’ 的!1淀粉酶酶活测定
按照 #-)3A&)A(7,0702P+4!淀粉酶量为 +个
酶活单位。
+,&,3 总蛋白浓度测定
采用 -I9GQDIG 法测定总蛋白浓度[+0]。为消除
!"#和柠檬酸盐的干扰,以相同体系组成但不含任
何蛋白的样品作为空白。
" 结果与讨论
3,+ 成相盐对!!淀粉酶的酶活和稳定
性依赖于 =93 R的存在[;]。但是,双水相体系中 =93 R
的稳定存在会受到常用成相盐的干扰,如磷酸盐与
=93 R形成沉淀而柠檬酸盐则螯合 =93 R。因此在双
水相操作过程如何有效地保持!=9=>3!淀粉酶活性维持的影
响,结果如图 + 所示。成相盐的质量分数设为
30H,在柠檬酸盐体系中,不加入 =9=>3!=9=>3!淀粉酶失活
速率下降。当加入 =9=>3至终质量分数为 0,&7H时,
!7,3P!淀粉酶仍保留有 )0H活性;而在
磷酸盐体系中该时间仅为 +,) P,且由于与 =93 R形成
沉淀,无法采用此方法维持!淀粉酶的活性,因此选 择柠檬酸盐体系进行研究。 ·;)· 生物加工过程 第 3卷第 +期 万方数据 —!—!"#(质量分数,下同)磷酸盐;—"—!"# 柠檬酸 盐;—#—!"#柠檬酸盐 "%&&#’(’)!;——!"#柠檬酸盐 "%!!#’(’)!;—%— !"#柠檬酸盐 "—?0@ C """
图 ! 不同分子量的 ?0@,柠檬酸盐
双水相体系的相图(6D E +%")
-./%! ?7(82 =.(/9(:8 159 ?0@,3.49(42 8<842:8 F.47 =.11292;4
?0@ :5)23G)(9 F2./74 (4 6D +%"
!%! 聚合物分子量和结线长度对!,淀粉酶分配的
影响
试验在室温和 6D E +%"的条件下进行,由于柠
檬酸盐中柠檬酸钠和柠檬酸的比例随着 6D的改变
而发生变化,因此有必要确定在 6D E +%"条件下不
同分子量的 ?0@,柠檬酸盐双水相体系的相图。结
果如图 !所示。图中的 A条双结点曲线对应于 A种
?0@分子量。在曲线右上方,双水相体系分相;在曲
线左下方,体系不分相。图中线段 HI为 ?0@ A"",
柠檬酸盐双水相体系的一条结线的示意图,H、I两
点坐标分别对应于双水相体系上下相组成。?0@,
柠檬酸盐体系的双结点曲线随着 ?0@分子量的增
加变得更加不对称而且靠近原点。同时由于两相间
的差异逐渐增大,分相所需的 ?0@和柠檬酸盐的浓
度也随之降低。
对于图 ! 中 A 种不同分子量 ?0@,柠檬酸盐双
水相体系,选择了 B种浓度,即对应 B条长度不等结
线,进行!,淀粉酶分配和纯化的试验,结果如表 &所
示。相比为上相和下相体积之比,!(和 ! 4分别是!,
淀粉酶和总蛋白的分配系数,即目标蛋白上相浓度
和下相浓度的比值,此时,收率为上相中目标蛋白的
量与加入总目标蛋白量的质量分数。目标蛋白(!,
淀粉酶)收率和总蛋白收率的比值即代表纯化因子。
! 4和 !(均随 ?0@分子量的增加而减少,?0@分
子量的增加,相同浓度的 ?0@具有更少的羟基,因
而导致 ?0@富集的上相的疏水性增加。但!,淀粉
酶的分配系数比总蛋白变化更大,因而在 ?0@
& """,柠檬酸盐体系中可以获得一定的选择性。
表 & ?0@分子量和结线长度对!,淀粉酶和总蛋白分配的影响
J(>)2 & 011234 51 ?0@ :5)23G)(9 F2./74 (;= 4.2 ).;2 )2;/47 5; 472
6(94.4.5; (;= 6G9.1.3(4.5; 51!,(:<)(82 (;= 454() 69542.;
?0@
分子量
质量分数K#
(?0@,柠檬酸盐)
相比 !( ! 4
收率
K#
纯化
因子
A"" &L%*,!B%* "%LB &A%AB B%"" LB &%!
!"%",!A%& "%CC AL%&* !%*! LC &%A
!&%",!*%" &%"! AA%*! !%!M LC &%A
& """ &+%",&C%" &%"! &L%M* &%"M L* &%C
&M%*,&C%* &%&C !L%+B &%"M LM &%C
&C%*,&L%* &%"M AC%CM &%B! LC &%M
B B*" &&%",&A%" "%LC "%+C "%BC A" &%*
&!%*,&A%* "%C* "%*! "%B* B& &%B
&A%",&*%* "%L& "%A* "%!* !L &%+
C """ &"%*,&!%" &%!* "%!! "%!! !! &%"
&!%",&!%* "%L+ "%&" "%&B L "%C
&B%*,&B%* &%"* "%"+ "%&! + "%+
低分子量(?0@ A""和 ?0@ & """)的双水相体系
结线长度对淀粉酶的分配的影响不大。而高分子量
(?0@ B B*"和 ?0@ C """)则随着结线长度的增加,!,
淀粉酶和总蛋白都更多的分配于下相。可能与大分
!""A年 !月 郅文波等:?0@,柠檬酸盐双水相体系纯化!,淀粉酶及模型构建 ·AL·
万方数据
子量的 !"# 浓度增加造成的空间排阻作用有关。
为降低系统粘度和节约原料,优先选择结线长度短
的 !"# %%%&柠檬酸盐双水相体系中进
行,*+控制在 ,(’、-(%、-(-和 .(’。*+调节是通过
盐相中柠檬酸钠和柠檬酸的比例来实现。在 *+
.(/条件下,成相盐完全由柠檬酸钠组成。随着 *+
的从 .(/降低到 ,(’,相同组成的结线长度也随之降
低,在 *+ ,(’时体系不分相。
—!—短结线;—"—中等结线;—#—长结线
图 ) *+对!&淀粉酶和总蛋白分配系数和!&淀粉酶纯化因子的影响
012() "33456 73 *+ 78 *9:616178 57433151486; 73!&9<=>9;4(!9),6769> *:76418(!6)98?!&9<=>9;4 *@:131596178 39567: 18 !"# %%%&柠檬酸盐体
系中加入不同量的发酵液上清研究了对!&淀粉酶纯
化因子的影响,结果如图 /所示。图中的最大上清
加入量组( %%%&柠檬酸
盐体系和 ,%A B .,A最大上清加入量进行研究。
’(, 中性盐 C9D>的加入对!&淀粉酶分配的影响
实验考察了低!&淀粉酶分配系数的 !"# ) ),%&
柠檬酸盐和 !"# E %%%&柠檬酸盐体系中,在 C9D>存
在下!&淀粉酶的分配,结果如图 /。随着 C9D>浓度
的增加,!&淀粉酶和总蛋白的分配系数增加,!&淀粉
酶分配系数的增加更为显著。
—!—短结线;—"—中等结线;—#—长结线
图 / 发酵液加入量对!&淀粉酶纯化的影响
012(/ "33456 73 ;@*4:896986 9??16178 F7>@<4 78!&9<=>9;4
*@:131596178
在 !"# ) ),%&柠檬酸盐体系中,当 C9D>浓度为
/A时,选择性最高,纯化倍数为 (G,在 !"# E %%%& 柠檬酸盐体系中与 !"# ) ),%&柠檬酸盐体系中也类 同,但需要 C9D>浓度更高,为 EA(见图 ,)。 氯化钠的加入一方面会增加两相间的疏水性差 异,导致疏水性强的蛋白质更多分配与上相,另一方 面当盐浓度超过 B , <7>HI后,由于盐析作用,蛋白
·,%· 生物加工过程 第 ’卷第 期 万方数据 质也倾向于分配到上相,而且对于不同的蛋白质分 配系数增加程度不同,因而可以用来改善分离效果。 —!—!";—"—!#;—#—纯化因子 图 ! "#%质量分数对!&淀粉酶和总蛋白分配的影响
’()*! +,,-./ 0, "#%改变体系的离子强度和
疏水性差异,可以进一步的提高!&淀粉酶的分离效
果。因此本文选择对 ;+< = =!>&柠檬酸盐双水相体
系纯化!&淀粉酶进行模型构建和分析。
本文采用中心组合设计方法进行试验设计,该
设计是响应面方法中应用最多的一种设计方法,具
有正交性、一致精度和可旋转性的优点。它包括 =
个部分:92>9
点试验,其中 代表变量的个数。选择 ;+< = =!>, 柠檬酸盐和 "#%浓度作为进行试验设计 =个变量。
在 =个变量的情况下,中心组合设计的实验点位于
立方体的 @个顶点和距中心点 A!的 :个轴点以及
中心点处的 : 个重复[??]。中心点根据上述的单因
素试验结果进行选择,同时需要考虑体系成相的要
求。根据试验结果计算出 !#,! /,纯化因子和收率
的数值并列于表 9,相应的回归模型的参数列于表
=。采用方差分析(B"CDB)通过 %&检验确定显著性
因子。回归模型也通过 %&检验确定回归的显著性
和确定系数(&9)模型的回归分析结果显示了这些
模型的显著性以及在模型和实验数据之前存在着良
好的相关性。
表 9 中心组合设计的试验结果
E#F%- 9 G-85%/8 0, -H3-4(6-2/8 (2 /I- .-2/4#% .06308(/- 1-8()2
试验号 纯化因子 %2 !# %2 ! / 收率JK
? ?*@L >*=: M >*L= !:
9 ?*@> =*9= >*NL O!
= 9*>= ?*!@ M >*>9 LN
N ?*:@ N*!L ?*>= O@
! ?*OO ?*N@ M >*N! @=
: ?*L> 9*O9 >*9N O!
L ?*!@ =*?9 >*!= O!
@ ?*9= N*N9 ?*N@ OO
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?9 ?*N? N*N@ ?*9! O@
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?@ ?*OL =*O> >*9> O@
?O ?*O= =*O> >*9N O@
9> 9*>> =*OO >*9> O@
表 = 模型参数和统计学意义
E#F%- = ;#4#6-/-48 0, 601-% #21 8/#/(8/(.#% /-8/ 4-85%/8
参数# 纯化因子 %2 !# %2 ! / 收率
常数 ?*O:! N*>?N >*99>? >*O!>@
’? M >*?=L? >*N>>> >*??!? >*>@@L?
’9 M >*?9:@ >*:N>= >*N9!! >*>!9?!
’= M >*?>NL ?*9?9 >*!9OO >*?O=9
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’99 M >*>O?!L M >*?OON >*??ON M
’== M >*>L9?= M >*L9:9 M >*?==N M >*?=@?
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(4 P % >*>>>? >*>>>? >*>>>? >*>>>?
&9 >*O9=N >*OL=9 >*OO>: >*O!O9
# ’?:;+< 浓度;’9:柠檬酸盐浓度;’=:"#%浓度平方;’?9:;+<
浓度 Q柠檬酸盐浓度;’?=:;+<浓度 Q "#淀粉酶的收率和纯化因子作图 %,
图 %的灰色区域具有较高的纯化倍数和收率,同时
&’(浓度较低,粘度较低,从中选择两个点对上述模
型进行验证。结果如表 )所示。模型预测值与试验
值吻合良好,说明模型可以有效地用于双水相体系
的设计和选择。
! 结 论
本文研究了利用双水相方法从发酵液上清中分
离纯化!!淀粉酶的分离,通过研究各种因素对纯化过
程的影响,在单步操作过程可以实现接近 !倍的纯
化,除去部分杂蛋白。由于!)+使!",+便淀粉酶纯化倍数和收率的覆盖图
234"% 56781/9 :1;<= ;>!/?91/=7 :@83>3A/<3;B >/A<;8= /BC 9371C= /< -+ ./01 A;BA7B<8/<3;B 表 ) 试验数据和模型预测值的对比 D/E17 ) 0;?:/83=;B ;> 7F:783?7B1 87=@1<= G3<H ?;C71 :87C3A<7C 6/1@7=<brI "A #
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3B4[P]Q IB/1 J3;AH7?,M,#!,#!:!)KQ
[MM]\H@83 I ‘,0;8B711 PIQ _7=:;B=7= =@8>/A7=:C7=34B /BC /B/19=7=[U]Q
.7G X;8Y:U/8A71 N7YY78,M,K# Q
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万方数据

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