全 文 :植物生理学报 Plant Physiology Journal 2013, 49 (9): 909~916 909
收稿 2013-05-10 修定 2013-07-04
资助 国家重点基础研究发展计划课题(2011CB200904)、山东
省自然科学基金(ZR2011CM010)和青岛农业大学人才基
金(630743)。
* 通讯作者(E-mail: qdyiyanjun@163.com; Tel: 0532-86080640)。
外源碳源和盐度对微拟球藻QA2生长和油脂积累的影响
王通1, 刘帅帅1, 刘家尧1, 刘建国2, 衣艳君1,*
1青岛农业大学生命科学学院, 山东省高校植物生物技术重点实验室, 山东青岛266109; 2中国科学院海洋研究所, 山东青岛
266071
摘要: 微藻因生长速度快、含油量高、可作为生物柴油的优质原料而备受关注。本实验以一株海洋微拟球藻QA2为材料,
研究了外源碳源的种类和浓度对其生长和油脂积累的影响。结果表明, 以NaHCO3、CH3COONa和Na2CO3为外源碳源均能
促进QA2藻株的生长, 但以培养液中添加15 mmol·L-1 CH3COONa对QA2藻株的生长和油脂积累的促进作用最为明显, 总脂
和脂肪酸的日产率分别是对照的2.73倍和5.67倍。同时利用叶绿素荧光技术研究了盐度对QA2光合作用的影响, 表明QA2
对盐度有较宽的适应范围, 盐度在1.5%~6.0%范围内, 不会对油脂产率造成明显的影响, 但盐度增加能抑制QA2藻株PSII的
电子传递, 引起反应中心色素和捕光色素的降解, 影响QA2的光合作用和生长, 可见QA2培养的最适盐度应为3.0%。这为
开放式规模培养微藻及其相关研究提供依据和参考。
关键词: 微拟球藻; 碳源; 盐度; 生长; 油脂积累
Effects of Exogenous Carbon Sources and Salinity on the Growth and Oil Ac-
cumulation of Nannochloropsis sp. QA2
WANG Tong1, LIU Shuai-Shuai1, LIU Jia-Yao1, LIU Jian-Guo2, YI Yan-Jun1,*
1University Key Laboratory of Plant Biotechnology in Shandong Province, College of Life Sciences, Qingdao Agricultural University,
Qingdao, Shandong 266109, China; 2Institude of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao, Shandong 266071, China
Abstract: Microalgae lipids are regarded as the feedstock for sustainable biodiesel production because microal-
gae had much higher growth rate and photosynthetic efficiency than conventional terrestrial plants. In this
study, a marine microalgae strain (Nannochloropsis sp. QA2) was used to study the type and concentration of
exogenous carbon source to its growth and oil accumulation in an autotrophic culture condition. The results
showed that the strain QA2 could use Na2CO3, NaHCO3 or CH3COONa as a carbon source to promote the mi-
croalgae growth. Further study revealed that the daily yield of total lipid and fatty acid were 2.73-fold and 5.67-
fold increase respectively when the CH3COONa at 15 mmol·L
-1 was added. The effect of salinity on the photo-
synthesis of the strain QA2 was analyzed by chlorophyll fluorescence, and the results showed that the optimal
salinity of the strain QA2 was 3.0%, although the QA2 had a wide range of salinity adaptation (1.5% to 6.0%),
and no significant effect of the salinity on the oil production of QA2 was observed. With the increase of salinity
the electron transfer of PSII was inhibited, which caused the degradation of the reaction center pigments and
light harvesting pigments. This study also provided a theoretical basis for an outdoor open scale cultivation of
microalgae.
Key words: Nannochloropsis sp.; carbon sources; salinity; growth; oil accumulation
生物柴油作为一种可再生的生物新能源, 已
受到广泛关注。目前, 正面临原料供应不足这个
“瓶颈”问题, 寻找新一代生物柴油原料已迫在眉
睫。微藻生长速度快、周期短、油脂含量高, 已
成为人们青睐的生物柴油原料之一(李建等2012;
杨忠华等2012)。我国具有广阔的海域, 海洋微藻
资源丰富, 为开发利用微藻生产生物柴油奠定了
基础。
微藻细胞内的油脂是以CO2为起始反应物经
一系列的代谢反应而合成的。微藻利用细胞表面
的碳酸酐酶将HCO3
−转化成CO2再被1,5-二磷酸核
酮糖羧化酶(RuBPCase)固定(Blanco-Rivero等
2012), CO2、Na2CO3、NaHCO3和CH3COONa等多
植物生理学报910
种外来碳源可被微藻利用(Babich等2011; Devgo-
swami等2011; 赵华等2012)。郑洪立等(2011)研究
了3种无机碳源Na2CO3、NaHCO3和CO2及其初始
浓度对小球藻(Chlorella vulgaris)产油特性的影响,
发现CO2是最佳无机碳源, CO2浓度为6%时小球藻
生长最快, 生物量和产油量都达到最高。Barghba-
ni等(2012)的研究表明, 低浓度的NaHCO3能够促
进微藻的生长, 浓度超过6.0 g·L-1则无法生长。蔡
佳佳等(2011)在SE培养基中添加30 mmol·L-1的
CH3COONa, 小球藻(Chlorella sp.)的生物量提高了
200%, 油脂含量提高了120%。虽然目前有关外源
碳源对微藻生长和油脂含量影响有一些研究, 但
微藻种类和藻株不同, 研究结果也各不相同。
QA2是由本实验室分离纯化的一株海洋微绿
藻, 该藻株生长周期较短(8 d), 油脂含量高(总脂占
干重42%), 是非常有希望用于工业化生产生物柴
油的藻株。为此, 我们对该藻株进行了多种环境
因子的优化培养, 本文主要报道添加外源碳源对
其生长及油脂积累的研究结果。QA2藻株采用L1
(Guillard和Hargraves 1993)海水培养基进行基础培
养。在室外开放式养殖时, 水分的蒸发极易导致
培养液盐度的升高。由于盐度能影响微藻的渗透
压、对营养盐的吸收以及悬浮性(茂华等2007), 过
高或过低均会影响藻细胞的正常代谢, 甚至导致
死亡(Xu和Beardall 1997), 因而, 生产上需要不断
补充淡水以降低盐度。另外, 盐度也能影响藻细
胞固定CO2的速度和碳酸酐酶的活性, 进而影响脂
肪酸的合成(朱松玲和王怡洁2005)。因此, 本文同
时也研究了不同盐度对QA2生物量、总脂及脂肪
酸含量的影响, 明确适宜QA2生长的盐度范围, 为
大规模培养和节约用水提供资料。
材料与方法
1 实验材料与培养
QA2是本实验室筛选出来的一株高含油量藻
株, 经鉴定属于真眼点藻纲(Eustigmatophyceae),
微拟球藻属(Nannochloropsis)。藻种保存于青岛农
业大学生命科学学院植物逆境生物学实验室。藻
种用L1培养基培养, 海水取自青岛近海海域, 经过
滤和高压灭菌后使用。培养条件为光照周期14
h/10 h, 温度(23±1) ℃, 光强75 µmol·m-2·s-1, 每天定
时摇瓶4次。
2 外源碳源的添加
以L1培养基为基础 , 取处于对数生长期的
QA2藻液分别接种到添加5 mmol·L-1的NaHCO3、
CH3COONa和Na2CO3的培养液中培养, 筛选最佳
碳源。另以L1培养基为基础, 分别添加浓度梯度为
0、1、3、5、7、10、15、20 mmol·L-1的CH3-
COONa和浓度梯度为0、1、3、5、7、10、15
mmol·L-1的Na2CO3, 取对数生长期QA2藻液分别加
入上述培养液中培养, 筛选最佳碳源浓度。所有
实验均设3个重复。
3 盐度实验
盐度设为5个梯度: 1.5%、3.0%、4.0%、
5.0%和6.0%。以L1海水培养基(盐度约3.0%)为基
础, 通过稀释和浓缩来配制培养液的盐度。取对
数生长期QA2藻液离心去上清, 分别加入上述培养
液中培养, 并设3个重复。
4 生物量测定
每天定时用紫外可见分光光度计测定藻液在
750 nm处的吸光度(OD) (Salim等2011), 用血球计
数法计算小球藻细胞密度, 并制作生长曲线。每
个测定设3个重复。用公式K(OD·d-1)=(㏒ODt–㏒
OD0)/t×3.322计算微藻的平均生长速度(张桂艳等
2011), 用公式G(d)=0.301/K计算平均倍增时间(黄
翔鹊等2002), OD0为初始吸光度, ODt为培养t天后
的吸光度, t为培养天数。
5 总脂及脂肪酸含量测定
总脂提取采用Folch的方法(Chen等2009); 脂
肪酸甲酯化采用硫酸-甲醇法(王九思等2002)。脂
肪酸检测使用GC112A型气相色谱仪 , 色谱柱 :
DM-FFAP, 30 m×0.25 mm×0.25 μm; 程序升温条件:
初始温度110 ℃, 以20 ℃·min-1速率升至150 ℃并
停留2 min, 再以4 ℃·min-1速率升至230 ℃并停留8
min。载气为高纯度氮气, 流速为90 mL·min-1, 进样
量1 μL, 内标为C17, 设3个重复。
6 油脂产率计算
用下列公式计算总脂和脂肪酸的日产率: 总
脂日产率(mg·L-1·d-1)=生物量(mg·L-1)×总脂含量
(%)/培养时间(d); 脂肪酸日产率(mg·L-1·d-1)=生物
量(mg·L-1)×脂肪酸含量(%)/培养时间(d)。
7 叶绿素a荧光参数的测定
快速叶绿素荧光诱导动力学曲线用便携式植
物效率分析仪(Handy PEA; 英国)测定, 激发光波
王通等: 外源碳源和盐度对微拟球藻QA2生长和油脂积累的影响 911
长为650 nm。测定方法按照本实验室之前已建立
的方法 (丁彦聪等2011)。叶绿素a荧光参数由
Handy PEA软件直接从测定的叶绿素荧光快速诱
导动力学曲线中获得。
8 统计分析
利用SPSS13.0和Excel软件对数据进行处理
分析。
实验结果
1 外源碳源对QA2藻株生长及油脂积累的影响
1.1 不同碳源对QA2藻株生长及油脂积累的影响
培养液添加5 mmol·L-1 CH3COONa、NaHCO3
和Na2CO3三种碳源后, QA2藻株的生长曲线(图1)
显示, 实验选用的3种碳源均能促进QA2藻株的生
长。其中, CH3COONa对QA2藻株生长的促进作用
最为明显, 虽然在添加的最初2 d, 由于培养液中pH
的升高, 导致QA2藻株的生长速度略低于对照, 但
随培养时间的延长, 藻细胞的浓度迅速增加, K值
为0.184, G值为1.636 (表1), 达稳定期后, 生物量是
对照的1.7倍。添加外源NaHCO3和Na2CO3也分别
促进了其生长, 稳定期的生物量分别是对照的1.39
和1.40倍。
其总脂和脂肪酸的日产率, 结果显示添加CH3COONa
后, QA2的总脂和脂肪酸的日产率分别是对照的
2.0和2.4倍(图3)。添加Na2CO3后, QA2的总脂和脂肪
酸的日产率分别是对照的2.1和1.7倍(图3)。培养液
添加NaHCO3后, 虽然QA2的总脂和脂肪酸的日产
率同对照相比也有所提高, 但效果明显低于培养液
中添加Na2CO3和CH3COONa, 因此, 本研究选择培养
液中添加Na2CO3和CH3COONa进行进一步实验。
表1 不同碳源培养下QA2藻株生长速度及平均倍增时间
Table 1 Growth rate and the double time of Nannochloropsis
sp. QA2 in different carbon sources
处理 平均生长速度(K)/OD·d-1 平均倍增时间(G)/d
对照 0.148 2.034
5 mmol·L-1 Na2CO3 0.158 1.905
5 mmol·L-1 NaHCO3 0.156 1.929
5 mmol·L-1 CH3COONa 0.184 1.636
图1 不同碳源对QA2藻株生长的影响
Fig.1 Effects of different carbon sources on the growth of
Nannochloropsis sp. QA2
培养液添加5 mmol·L-1 CH3COONa后, QA2藻
株的总脂和脂肪酸含量明显高于对照, 其中脂肪
酸含量比对照增加了23.5% (图2)。添加5 mmol·L-1
Na2CO3后, 其总脂含量得到明显提高(图2)。综合分析
图2 不同碳源对QA2藻株总脂及脂肪酸含量的影响
Fig.2 Effects of different carbon sources on the total lipid and
fatty acid contents of Nannochloropsis sp. QA2
图3 不同碳源对QA2藻株总脂和脂肪酸的日产率影响
Fig.3 Effects of different carbon sources on the daily total
lipid yield and daily fatty acid yield of
Nannochloropsis sp. QA2
植物生理学报912
1.2 Na2CO3和CH3COONa添加浓度对QA2生长及
油脂积累的影响
培养液中CH3COONa添加浓度在1~15 mmol·L
-1
范围内均能促进QA2的生长, 浓度为7 mmol·L-1时, QA2
的K值最大, G值最小, 收获期(培养10 d)的细胞密度
是对照的1.75倍(表2、图4)。浓度高于15 mmol·L-1时,
培养液pH偏高, 反而影响生长, 甚至导致藻细胞死
亡。与CH3COONa的影响相似, 培养液中添加浓度在
1~15 mmol·L-1范围内的Na2CO3时, 均能促进QA2的生
长, 浓度为7 mmol·L-1时, QA2生长最快(表2、图5)。
添加外源CH3COONa后QA2藻株总脂含量随
着添加浓度的增加呈现下降趋势, 脂肪酸含量则
有所增加, 添加浓度为15 mmol·L-1时脂肪酸含量最
高, 比对照提高了63% (图6)。综合分析其总脂和
脂肪酸的日产率, 结果显示添加15 mmol·L-1 CH3-
COONa后, QA2的总脂和脂肪酸的日产率分别是
对照的2.73倍和5.67倍(图7)。不同浓度Na2CO3对
QA2总脂及脂肪酸含量的影响, 表现为随着添加浓
度的增加, 总脂和脂肪酸含量呈下降的趋势(图
8)。在添加Na2CO3为7 mmol·L
-1时, 总脂和脂肪酸
图4 不同浓度CH3COONa对QA2藻株生长的影响
Fig.4 Effects of different concentration of CH3COONa on the
growth of Nannochloropsis sp. QA2
的日产率最高, 分别是对照的1.64倍和1.58倍(图
9)。可见培养液中添加15 mmol·L-1 CH3COONa是
提高QA2产油量的最佳方案。
2 盐度对QA2的光合作用、生长和油脂积累的影响
2.1 盐度对QA2光合作用的影响
室外开放式养殖时, 水分的蒸发极易导致培
养液盐度升高, 微藻对生活环境的盐度变化有一
定的适应范围 , 过高或过低均会影响其正常生
长。一般而言, 海洋微藻能耐受约0.5 mol·L-1 NaCl
的渗透压(Xu和Beardall 1997)。本研究测定了
图5 不同浓度Na2CO3对QA2藻株生长的影响
Fig.5 Effects of different concentration of Na2CO3 on the
growth of Nannochloropsis sp. QA2
表2 不同浓度CH3COONa和Na2CO3培养下QA2藻株的平均生长速度及平均倍增时间
Table 2 Growth rate and the double time of Nannochloropsis sp. QA2 in different concentration of CH3COONa and Na2CO3
CH3COONa/ 平均生长速度(K)/ 平均倍增 Na2CO3/ 平均生长速度(K)/ 平均倍增
mmol·L-1 OD·d-1 时间(G)/d mmol·L-1 OD·d-1 时间(G)/d
0 0.133 2.263 0 0.199 1.513
1 0.161 1.870 1 0.210 1.433
3 0.185 1.627 3 0.219 1.374
5 0.201 1.498 5 0.230 1.309
7 0.207 1.454 7 0.266 1.132
10 0.163 1.847 10 0.221 1.362
15 0.142 2.120 15 0.229 1.314
20 0.083 3.627
王通等: 外源碳源和盐度对微拟球藻QA2生长和油脂积累的影响 913
QA2在不同盐度下的叶绿素荧光动力学曲线, 获得
了各项叶绿素a荧光参数值(表3), 结果显示, QA2
生长的最适盐度约为3.0%, 随盐度的增加, QA2
PSII最大光化学效率(Fv/Fm)、单位面积内反应中
心的数量(RC/CS0)、光合机构单位面积捕获的能
量(TR0/CS0)、单位面积用于电子传递的能量(ET0/
CS0)、光合机构电子传递的量子产额(ET0/ABS)以
及以吸收光能为基础的性能指数(PIABS)均呈现不
同程度的降低(P<0.05)。分析其叶绿素a荧光参数
的变化, 发现盐度的增加, 首先是影响了微藻的电
子传递速率, 然后引起反应中心色素降解和捕光
色素的降解, 最终导致PSII实际光化学效率降低,
性能指数明显下降(图10)。
2.2 盐度对QA2生长及油脂积累的影响
盐度对QA2的生长亦有一定影响。本研究
结果显示, 海水的盐度(3.0%)仍是QA2生长的最
适盐度, 在此盐度下, QA2生长最快。盐度增加或
降低都会影响其生长速度(图11)。但是, 盐度的
增加并没有降低其总脂及脂肪酸的含量(图12),
甚至在高盐度条件下油脂的积累还略有增加。因
此, 在实验盐度范围内, QA2总脂和脂肪酸的日产
率无明显差别(图13)。可见, QA2在室外开放式
大规模培养时, 培养液盐度控制在1.5%~6.0%范
围内, 不会影响QA2的油脂积累, 但是盐度过高,
会影响其光合作用, 从而降低生长速度, 产油量也
受到影响。
图6 不同浓度CH3COONa对QA2藻株总脂和脂肪酸
含量的影响
Fig.6 Effects of different concentration of CH3COONa on the
total lipid and fatty acid contents of Nannochloropsis sp. QA2
图7 不同浓度CH3COONa对QA2藻株总脂和脂肪酸
日产率的影响
Fig.7 Effects of different concentration of CH3COONa on the
daily total lipid yield and daily fatty acid yield of
Nannochloropsis sp. QA2
图8 不同浓度Na2CO3对QA2藻株总脂和脂肪酸含量的影响
Fig.8 Effects of different concentration of Na2CO3 on the total
lipid and fatty acid contents of Nannochloropsissp. QA2
图9 不同浓度Na2CO3对QA2藻株总脂和脂肪酸
日产率的影响
Fig.9 Effects of different concentration of Na2CO3 on the daily
total lipid yield and daily fatty acid yield of
Nannochloropsis sp. QA2
植物生理学报914
表3 不同盐度培养下QA2藻株叶绿素a荧光参数
Table 3 Chlorophyll a fluorescence parameters of Nannochloropsis sp. QA2 under different salinity
荧光参数
盐度/%
Fv/Fm ET0/CS0 TR0/CS0 RC/CS0 ET0/ABS PIABS
1.5 0.731±0.002a 204.804±4.581b 434.982±9.161b 207.778±6.607b 0.344±0.001b 0.841±0.014b
3.0 0.732±0.002a 213.390±1.899a 446.886±5.247a 218.150±3.837a 0.349±0.002a 0.889±0.026a
4.0 0.712±0.000b 172.587±1.263c 364.562±2.711c 192.900±2.578c 0.337±0.001c 0.838±0.008c
5.0 0.707±0.005c 143.264±1.619d 322.582±5.137d 167.966±1.614d 0.330±0.004d 0.785±0.034c
6.0 0.679±0.002d 140.057±1.850e 299.719±3.557e 157.134±2.334e 0.302±0.003e 0.599±0.019c
同列数据后不同小写字母表示差异达显著水平(P<0.05)。
图10 不同盐度对QA2藻株叶绿素a荧光参数的影响
Fig.10 Effects of different salinity on the chlorophyll a fluorescence parameters of Nannochloropsis sp. QA2
讨 论
微藻能利用无机碳作为外来碳源已有相关报
道(Babich等2011; Devgoswami等2011), 但不同微
藻可利用的最佳碳源种类、添加浓度以及对微藻
油脂积累的促进能力并不相同(郑洪立等2011;
Barghbani等2012; 蔡佳佳等2011)。从本研究结果
可以看出, 以L1海水培养基为基础, 培养液中添加
图11 不同盐度对QA2藻株生长的影响
Fig.11 Effects of different salinity on the growth of
Nannochloropsis sp. QA2
图12 不同盐度对QA2藻株总脂及脂肪酸含量的影响
Fig.12 Effects of different salinity on the total lipid and fatty
acid contents of Nannochloropsis sp. QA2
王通等: 外源碳源和盐度对微拟球藻QA2生长和油脂积累的影响 915
NaHCO3、CH3COONa、Na2CO3三种碳源均能促
进海洋绿藻QA2藻株的生长, 但以添加15 mmol·L-1
浓度的CH3COONa对QA2藻株的生长和油脂积累
的促进作用最为明显, 总脂和脂肪酸的日产率与
对照相比分别增加了173%和467%, 本实验结果与
Wang等(2012)对三角褐指藻(Phaeodactylum trico-
rnutum)的研究结果基本一致, 因此CH3COONa是
QA2藻株培养的最佳碳源。
盐度对微藻具有多方面的影响。已有的研究
表明, 高盐度下微藻的电子传递速率降低, 导致
ATP的合成量也明显减少, 对微藻的生长和光合作
用具有明显抑制作用(余锦兰等2011)。本实验对
不同盐度培养下QA2的叶绿素a荧光动力学研究也
得出一致的结果, 盐度升高导致微藻叶绿素a荧光
参数不同程度的降低, 高盐度不仅影响微藻的电
子传递速率, 也引起反应中心色素降解和捕光色
素的降解, PSII实际光化学效率降低, 影响微藻光
合作用。同时在高盐度环境下微藻细胞内储存物
质的脂肪含量也会有相应增加, 但生长过程中会
消耗更多的能量(茅华等2007)。也有研究表明, 随
着盐度增加, 微藻脂肪酸饱和度增加, 使脂肪酸的
种类及含量改变(Xu和Beardall 1997)。因此, 盐度
的增加使QA2生长速度降低, 但并没有降低其总脂
及脂肪酸的含量, 甚至在高盐度条件下油脂的积
累还略有增加。可见QA2在室外开放式大规模培
养时, 培养液盐度控制在1.5%~6.0%范围内, 不会
影响QA2的油脂积累, 但是盐度过高, 会影响其光
合作用, 从而降低生长速度, 产油量也受到影响。
从生长和产油效率来讲, QA2最适生长盐度应为天
然海水的盐度。
碳源和盐度是影响海洋微藻生长的两个重要
环境因子, 本实验结果可为筛选和培养高产油微
藻提供重要依据, 也为开放式规模培养微藻及其
相关研究提供参考。
参考文献
蔡佳佳, 费小雯, 李亚军, 胡新文, 郭建春, 邓晓东(2011). 元素缺乏
和外加碳源对小球藻(Chlorella sp. KMMCCFC-21)生长和油
脂积累的影响. 热带作物学报, 32 (11): 2029~2036
丁彦聪, 高群, 刘家尧, 衣艳君, 刘建国, 林伟(2011). 环境因子对小
球藻生长的影响及高产油培养条件的优化. 生态学报, 31 (18):
5307~5315
黄翔鹊, 李长玲, 刘楚吾, 王中铎, 陈建军(2002). 微绿球藻对氮和磷
营养盐需求的研究. 海洋科学, 26 (8): 13~16
李健, 张学成, 胡鸿钧, 胡鸿钧, 王广策(2012). 微藻生物技术产业前
景和研发策略分析. 科学通报, 57 (1): 23~31
茅华, 许海, 刘兆普(2007). 温度、光照、盐度及pH对旋链角毛藻
生长的影响. 生态科学, 26 (5): 432~436
王九思, 陈学民, 肖举强, 伏小勇(2002). 水处理化学. 北京: 化学工
业出版社, 29~36
杨忠华, 李方芳, 曹亚飞, 赵燕, 陈庚华, 周云川, 周卫, 侯亚利
(2012). 微藻减排CO2制备生物柴油的研究进展. 生物加工过
程, 10 (1): 70~76
余锦兰, 夏建荣, 邹永东(2011). 小新月菱形藻碳酸酐酶活性和光合
作用对高盐度胁迫的响应. 水产学报, 35 (4): 515~522
张桂艳, 温小斌, 梁芳, 欧阳峥嵘, 耿亚红, 梅洪, 李夜光(2011). 重要
理化因子对小球藻生长和油脂产量的影响. 生态学报, 31 (8):
2076~2085
赵华 , 董晓宇 ,牛堃 , 夏媛媛(2012). 无机碳源对Chlorella sp.
TCCC45058生长的影响. 环境科学与技术, 35 (12): 96~99
郑洪立, 高振, 张齐, 黄和, 纪晓俊, 孙洪磊, 窦畅(2011). 无机碳源对
小球藻自养产油脂的影响. 生物工程学报, 27 (3): 436~444
朱松玲, 王怡洁(2005). 盐度变化对杜氏盐藻的游离氨基酸和脂肪
酸含量的影响. 海洋科学, 29 (3): 8~11
Babich IV, van der Hulst M, Lefferts L, Moulijn JA, O’Connor P,
Seshan K (2011). Catalytic pyrolysis of microalgae to high-
quality liquid bio-fuels. Biomass Bioenerg, 35 (7): 3199~3207
Barghbani R, Rezaei K, Javanshir A (2012). Investigating the effects
of several parameters on the growth of Chlorella vulgaris using
taguchi’s experimental approach. Int J Biotech Well Indus, 1:
128~133
Blanco-Rivero A, Shutova T, Román MJ, Villarejo A, Martinez F
(2012). Phosphorylation controls the localization and activation
图13 不同盐度对QA2藻株总脂和脂肪酸日产率的影响
Fig.13 Effects of different salinity on the daily total lipid
yield and daily fatty acid yield of Nannochloropsis sp. QA2
植物生理学报916
of the lumenal carbonic anhydrase in Chlamydomonas
reinhardtii. PLoS ONE, 7 (11): e49063
Chen JJ, Yeh HH, Tseng IC (2009). Effect of ozone and permanganate
on algae coagulation removal—Pilot and bench scale tests.
Chemosphere, 74: 840~846
Devgoswami CR, Kalita MC, Talukdar J, Bora R, Sharma P (2011).
Studies on the growth behavior of Chlorella, Haematococcus and
Scenedesmus sp. in culture media with different concentrations
of sodium bicarbonate and carbon dioxide gas. Afr J Biotechnol,
61: 13128~13138
Guillard RRL, Hargraves PE (1993). Stichochrysis immobilis is a
diatom, not a chrysophyte. Phycologia, 32 (3): 234~236
Salim S, Bosma R, Vermuë MH, Wijffels RH (2011). Harvesting of
microalgae by bio-flocculation. J Appl Phycol, 23: 849~855
Wang HY, Fu R, Pei GF (2012). A study on lipid production of the
mixotrophic microalgae Phaeodactylum tricornutum on various
carbon sources. Afr J Microbiol Res, 6 (5): 1041~1047
Xu XQ, Beardall J (1997). Effect of salinity on fatty acid composition
of a green microalgae from an antarctic hypersaline lake.
Phytochemistry, 45 (4): 655~658