全 文 :植物生理学报 Plant Physiology Journal 2012, 48 (11): 1069~1078 1069
收稿 2012-09-24 修定 2012-11-05
资助 大麦现代产业技术体系项目(CARS-05)和上海市科技兴农重
点攻关项目[沪农科攻字(2009)第2-1号, 农青年科技2012 (15)]。
* 并列第一作者。
** 通讯作者(E-mail: dainney@163.com; Tel: 021-62202965; E-mail:
sw1@saas.sh.cn; Tel: 021-62201032)。
源于小孢子培养的大麦耐盐变异体获取
陆瑞菊1,2, 徐红卫1,2,*, 陈志伟1,2, 何婷1,2, 杜志钊1,2, 高润红1,2, 王亦菲1,2, 邹磊1,2, 郭桂梅3,卜姝明3,
刘成洪1,2,**, 黄剑华1,2,**
1上海市农业科学院生物技术研究所, 上海201106; 2上海市农业遗传育种重点实验室, 上海201106; 3上海海洋大学水产与生
命学院, 上海201306
摘要: 以大麦品种‘花30’作为供试材料, 比较了甲基磺酸乙酯(EMS)和平阳霉素处理小孢子, 60Co γ-射线辐照处理离体穗和
干种子, 对300 mg·L-1 NaCl胁迫培养下游离小孢子的愈伤组织产量和愈伤组织在0.3% NaCl胁迫筛选下的绿苗产量的影
响。结果表明, EMS处理离体小孢子和60Co γ-射线辐照干种子的愈伤组织产量和绿苗产量明显优于平阳霉素处理小孢子
和60Co γ-射线辐照离体穗。以16份源于种子辐照处理的再生植株自交一代种子为供试材料, 比较了在0.3% NaCl胁迫下种
子的发芽率和幼苗的成活率以及植株的分蘖数、株高和单株产量。结果表明, ‘花30’发芽率为0, 供试的16份耐盐变异体
中, 有14份材料在NaCl胁迫下的发芽率优于‘花30’, 鉴定出4份耐盐性明显优于‘花30’的变异体材料。选择耐盐变异体作为
供试材料, 测定了变异体中Na+/H+逆向转运蛋白基因NHX1、NHX2和NHX3和编码甜菜碱醛脱氢酶(BADH)的两个同工酶
基因BBD1和BBD2的表达模式和表达量, 结果表明变异体耐盐性的提高与这些基因的表达量存在联系。
关键词: 大麦; 小孢子离体诱变和胁迫培养; 耐盐变异体; 单株产量; Na+/H+逆向转运蛋白; 甜菜碱醛脱氢酶
Screening of Variants Derived from Barley (Hordeum vulgare L.) Microspore
Culture for Salt Tolerance
LU Rui-Ju1,2, XU Hong-Wei1,2,*, CHEN Zhi-Wei1,2, HE Ting1,2, DU Zhi-Zhao1,2, GAO Run-Hong1,2, WANG Yi-Fei1,2, ZOU Lei1,2,
GUO Gui-Mei3, BU Shu-Ming3, LIU Cheng-Hong1,2,**, HUANG Jian-Hua1,2,**
1Biotech Research Institute, Shanghai Academy of Agricultural Sciences, Shanghai 201106, China; 2Shanghai Key Laboratory of
Agricultural Genetics and Breeding, Shanghai 201106, China; 3College of Fisheries and Life Science, Shanghai Ocean University,
Shanghai 201306, China
Abstract: Using barley (Hordeum vulgare) variety ‘Hua 30’ as donor material, effects on callus yield under 300
mg·L-1 NaCl stress and the green plantlet differentiated rate under 0.3% NaCl stress from the microspores treated with
ethyl methane sulfonate (EMS) and bleomycin or the microspores from irradiated spikes and dry seeds were
investigated. The results showed that callus yield and green plantlet from microspores with EMS treatment and
microspore derived from irradiated dry seeds were obviously superior to the microspores treated by bleomycin and
microspore derived from irradiated spikes. A series of indexes such as seed germination rate, seedling survival rate,
plant tiller number, plant height and yield per plant were compared on seeds from 16 regenerated plants by seed
irradiation under 0.3% NaCl stress. The germination rate of ‘Hua 30’ is 0, while that of 14 of the 16 salt tolerance
mutants has an advantage over ‘Hua 30’, moreover, 4 materials were obviously better than ‘Hua 30. Based on these
salt tolerant mutants, the expression patterns and quantity of Na+/H+ antiporter genes (NHX1, NHX2 and NHX3),
and BBD1 and BBD2 encoding two betaine aldehyde dehydrogenase (BADH) isozymes were measured. As a
result, the improvement in salt tolerance of variants had corresponding relation with these genes.
Key words: barley; microspore in vitro mutation and stress culture; salt-tolerant variant; yield per plant; Na+/H+
antiporter; betaine aldehyde dehydrogenase
人工诱发突变是获取变异体的有效途径之一,
是创造耐盐新种质和选育新品种的有效途径(李鹏
等2008; Novak和Brunner 1992)。将植物组织培养
技术应用于耐盐突变体筛选的优越性早已被论证
并实现(Jain 2001), 尤其是随着花药培养技术的发
植物生理学报1070
展, 利用诱变与花药培养技术相结合的方法筛选
出一大批耐盐变异体(陆瑞菊等2006; 孙月芳等
2006; 王亦菲等2002)。小孢子群体是真正意义上
的单倍体、单细胞群体, 因而利用小孢子突变途
径比传统突变途径(种子突变)具有明显的优势, 不
仅可以提高变异机率, 实施早期筛选后增加了获
得有益变异体的机率(顾宏辉等2003; 黄剑华2003,
2007), 更可以快速获得目标性状纯合的再生植株,
从而缩短育种年限。将诱变与小孢子培养这两种
技术结合起来还可以避免嵌合体的发生, 使隐性
性状得以较早表现, 加速纯合过程, 从而大大提高
变异频率和筛选效率(Das等2000)。由于受到小孢
子培养技术的限制, 大部分的研究集中在播种前
用γ-射线处理种子, 取花药进行培养获得变异体
(Khan等2001; 宣朴等2000); 或以10~50 Gy的γ-射
线辐照离体穗或花药, 通过花药培养后获得再生
植株(Chen等2001; 孙月芳等2005)。以游离小孢子
作为诱变对象的研究仅仅在油菜上有报道(谢艳平
2008; 石淑稳等2007; Barro等2002; 和江明等
2003)。大麦的小孢子培养技术较为成熟, 且已证
实供试品种的耐盐性在小孢子水平与植株水平上
是一致的(陆瑞菊等2011), 理论上利用这种一致性
可以在短短的2年甚至1年时间内迅速获得纯合
的、耐盐性状得到改良的变异体, 这将大大加快
大麦耐盐性改良的进程, 培育出耐盐新品种。但
目前还未见到利用大麦小孢子培养技术结合诱变
技术 , 在游离后小孢子培养过程中进行离体诱
变、NaCl胁迫培养及筛选耐盐变异体的报道。
大麦的耐盐性是一个多基因控制的数量性状,
涉及多种耐盐基因和多种耐盐机理的协调作用。
Na+/H+逆向转运蛋白能够将土壤中过多的Na+运
入液泡膜 , 对植物抵御盐分的胁迫起着重要作
用。在棉花上有研究表明Na+/H+逆向转运蛋白基
因在耐盐品系的表达量远远高于盐敏感的品系
(Wu等2004)。甜菜碱醛脱氢酶(betaine aldehyde
dehydrogenase, BADH)基因是参与甜菜碱合成的
关键基因, 在盐胁迫下, 甜菜碱的积累可以使许多
重要的酶类保持活性(袁金娥等2011)。因而植株
体内Na+/H+逆向转运蛋白基因和甜菜碱醛脱氢酶
基因的表达量可以作为植株耐盐性鉴定的指标。
大麦品种‘花30’是上海市农业科学院生物所
培育成的适合江浙沪地区种植的新品种, 但它的
耐盐性欠佳(陆瑞菊等2011)。本研究以‘花30’为供
试材料, 采用种子处理(60Co γ-射线辐照干种子)、
离体穗处理(低温预处理结束后用60Co γ-射线辐照
离体穗)和小孢子处理[小孢子游离后用甲基磺酸
乙酯(ethyl methane sulfonate, EMS)和平阳霉素浸
泡], 比较不同诱变时期和不同诱变剂处理后, 小孢
子在NaCl胁迫下诱导和分化的结果, 并对获得的
部分变异体材料进行初步的植株水平耐盐性鉴定
和分子生物学分析, 在短时间内获得了耐盐性高
于原始品种‘花30’的变异体。
材料与方法
1 试验材料
供试材料为大田种植的大麦(Hordeum vulgare
L.)品种‘花30’, 以及来自‘花30’的变异体。大田材
料均种植于上海市农业科学院青浦试验场内。‘花
30’干种子诱变于2010年11月进行, 2011年4月取麦
穗进行小孢子培养; 离体穗和小孢子诱变于2011
年4~5月进行, 诱变结束后进行小孢子培养。获得
的再生植株于2011年7月底移至昆明进行加代种
植, 按株系收获。耐盐性试验于2011~2012年大麦
生长季节在上海市农业科学院塑料大棚内进行,
以防止雨水淋溶, 2012年5月收获后考种。
2 试验方法
2.1 耐盐变异体获取
2.1.1 小孢子的游离、离体诱变及培养 从大田选
取中部小花小孢子发育处于单核早期、中期的穗
子, 放入冰箱(5 ℃)冷藏15 d。接种时, 穗子用饱和
的漂白粉溶液消毒15 min, 无菌水冲洗3~4次。每
个试管接10个穗子, 倒入15 mL提取液, 用高速分
散器超速旋切, 用150目筛网过滤, 滤液以100×g低
速离心5 min, 重复3次, 收集小孢子。小孢子用添
加了诱变剂的预处理液于25 ℃下黑暗预处理48 h。
培养前将小孢子先用21%麦芽糖纯化, 再用培养基
洗涤1次 , 然后用培养基将小孢子密度调节至
1.0×105个·mL-1, 取1 mL小孢子悬浮液接种于培养
皿(35 mm×15 mm), Parafilm封口, 25 ℃暗培养。
2.1.2 小孢子提取液、预处理液及培养基 以添加
1.1 g·L-1 CaCl2和0.976 g·L
-1 N-吗啡乙烷磺酸(MES)
的6%甘露醇溶液作为提取液, 提取液中添加不同
陆瑞菊等: 源于小孢子培养的大麦耐盐变异体获取 1071
浓度的EMS或平阳霉素作为预处理液。小孢子诱
导培养基中NaCl胁迫浓度参照陆瑞菊等(2011), 分
化培养基中NaCl筛选浓度参照孙月芳等(2006)。
诱导培养基以改良的N6培养基为基本培养基, 附
加KT 0.5 mg·L-1、2,4-D 1.0 mg·L-1、麦芽糖90 g·L-1
和NaCl 300 mg·L-1。分化培养基以MS为基本培养
基, 附加6-BA 0.5 mg·L-1、KT 1.5 mg·L-1、NAA
0.05 mg·L-1、麦芽糖 30 g·L-1和NaCl 3 g·L-1, 用6
g·L-1琼脂粉固化。提取液、预处理液及诱导培养
基均过滤灭菌, 分化培养基用0.11 MPa、121 ℃高
温高压灭菌15 min。
2.1.3 诱变处理 小孢子处理时, 以剂量分别为1、
3和5 mg·L-1的EMS和平阳霉素作为诱变剂, 小孢子
提取后用含有诱变剂的提取液, 25 ℃下黑暗处理
48 h。处理结束后, 收集小孢子进行胁迫培养。穗
子处理时, 在低温预处理结束后用60Co γ-射线辐
照, 剂量率1 Gy·min-1, 剂量为5、10和15 Gy, 辐照
结束后, 游离小孢子进行胁迫培养。种子处理时,
将播种前的干种子用60Co γ-射线辐照, 剂量率1
Gy·min-1, 剂量为400和500 Gy。取材后, 游离小孢
子进行胁迫培养。
2.2 耐盐变异体的温室鉴定
挑选大小均匀、籽粒饱满的种子播种于直径
为30 cm的塑料盆钵中, 每盆播种6粒, 出苗后每盆
定苗3株。每盆装土12.0 kg, 土壤中含有机质34.5
g·kg-1、全氮2.42 g·kg-1、速效氮37.35 mg·kg-1, 每
盆施30 g基肥。设对照和NaCl胁迫两个处理, 胁迫
处理按每盆60.0 g加入NaCl (每100 g土含0.5 g
NaCl)。于萌发期统计萌发率, 分蘖期统计分蘖数,
成熟时测定植株的株高和单株产量。
2.3 耐盐变异体的分子生物学鉴定
2.3.1 材料处理 种子用1% NaClO消毒30 min, 流
水冲洗, 25 ℃浸泡12 h后催芽, 露白后置于铺有双
层滤纸的培养皿中生长, 待苗高5 cm左右, 挑选整齐
一致的幼苗, 用海绵条固定在打孔的泡沫板上, 放
入盛有蒸馏水的周转箱中, 培养温度为25 ℃(白
天)/22 ℃(黑夜), 每天光照12 h, 7 d后浇灌营养液。
营养液成分为1/2Hoagland营养液, 铁盐加倍, pH
6.0。培养10 d后进行盐胁迫处理, NaCl的浓度为
300 mmol·L-1, 分别在胁迫0、12、24和48 h时取植
株的地上部分, 液氮速冻后, 于–80 ℃保存备用。
2.3.2 荧光定量PCR分析 采用Trizol Reagent (In-
vitrogen)提取总RNA, 按Trizol试剂盒说明书进行
操作, 用ND-1000分光光度计(NanoDrop)检测RNA
浓度和质量; 采用Invitrogen的qRT-PCR试剂盒合
成cDNA, 按试剂盒说明书进行操作。根据Gen-
Bank中大麦Na+/H+逆向转运蛋白基因(3个)和甜菜
碱醛脱氢酶基因(2个)序列, 运用Oligo6软件分别设
计大麦NHX1 (AB089197.1)、NHX2 (AY247791.2)、
NHX3 (DQ372061.1)、BBD1 (AB063179.1)、BBD2
(AB063178.1)以及Actin (AY145451.1)引物, 引物序
列如表1所示, 由上海英骏生物技术有限公司合
成。采用StepOne Real-Time PCR system (Applied
Biosystem)进行荧光定量PCR, 反应试剂使用
THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix (TOYOBO)。
荧光定量PCR反应体系(20 μL)包括2×Mix 10 μL、
引物(10 μmol·L-1)各0.8 μL、样品cDNA (约50
ng·μL-1) 2 μL、ddH2O 6.4 μL。荧光定量PCR反应
程序为: 95 ℃预变性10 min; 95 ℃ 15 s, 55或60 ℃
30 s, 72 ℃ 10 s, 40个循环。
表1 荧光定量PCR中所用引物序列
Table 1 The primer sequences used in real-time PCR
基因名称 正向引物(5→3) 反向引物(5→3)
NHX1 CCGCTTTCATTCTTATCCA ATTACGATTTGCTGCCTCCA
NHX2 ATACTGCCGTGCGAGTTA AGTCAGCAAGCCGAAAACCA
NHX3 ATGGTCTTCAGCGAGGAT TCTTCACTTGGAACCCTGC
BBD1 GGATAAACTGCTCGCAACCG CGAAACCACTCCGCTTGT
BBD2 GTCGGTCTTCCATCAGGT GACAAAGGAGCACCAGCTTC
Actin AGCCACACTGTGCCCATTTAT CAGCGAGATCCAAACGAAGAA
2.4 数据处理
愈伤组织产量为25 ℃下暗培养21 d时称取的
每皿愈伤组织重量; 绿苗产量为100 mg愈伤组织
分化的绿苗株数。采用Microsoft Office Excel 2003
植物生理学报1072
软件对数据进行统计分析。
实验结果
1 诱变剂及诱变方法对大麦小孢子培养和植株再
生的影响
经过EMS处理后的小孢子在NaCl胁迫培养下
的愈伤组织产量高于经过平阳霉素处理的; 形成
的愈伤组织在NaCl胁迫分化培养基中的绿苗产量
也高于经过平阳霉素处理的。5 mg·L-1平阳霉素处
理后的小孢子在NaCl胁迫培养基中虽然有愈伤组
织形成, 但愈伤组织在含NaCl的分化培养基上没
有分化成苗(图1)。
以60Co γ-射线辐照处理离体穗后分离小孢子, 小
孢子在NaCl胁迫下的愈伤组织产量较低, 且随辐照
剂量的增加而下降; 愈伤组织在含NaCl的分化培养
基中的绿苗产量更低, 只在5 Gy辐照剂量下获得绿苗。
‘花30’干种子经过60Co γ-射线辐照处理后, 小孢子在
NaCl胁迫下愈伤组织产量和绿苗产量都较高(图2)。
图2 离体穗和干种子经60Co γ-射线辐照处理后小孢子在NaCl胁迫下的愈伤组织产量和绿苗产量
Fig.2 Callus yield and green plantlet production under NaCl stress from the 60Co γ-irradiated spikes and dry seeds
从图3可以看出, ‘花30’的离体小孢子经EMS或
平阳霉素处理48 h后, 在300 mg·L-1 NaCl胁迫下愈伤
组织产量分别为123.71和26.96 mg, 愈伤组织在含3
g·L-1 NaCl的胁迫分化培养基上绿苗产量为35.51和
2.23株; 离体穗或干种子经60Co γ-射线辐照处理后,
在300 mg·L-1 NaCl胁迫下愈伤组织产量分别为23.28
和109.68 mg, 愈伤组织在含3 g·L-1 NaCl的胁迫分化
培养基上绿苗产量为1.95和17.14株。可见, 60Co γ-
射线辐照处理干种子和EMS诱变处理小孢子的效
果要优于辐照处理离体穗和平阳霉素处理的。
从小孢子脱分化形成愈伤组织的产量来看, 4
种诱变处理后的小孢子均可以在NaCl胁迫下脱分
化形成愈伤组织, 经平阳霉素处理后在NaCl胁迫
下形成的愈伤组织产量明显低于EMS处理的, 表
明EMS处理小孢子可以获得比平阳霉素处理更多
的耐盐愈伤组织。从愈伤组织分化形成绿苗产量
分析, 4种诱变处理后小孢子形成的愈伤组织都可
以在NaCl胁迫下分化成苗, 但是来源于不同诱变
处理的愈伤组织其耐盐性存在明显的差异, 离体
穗60Co γ-射线诱变和小孢子平阳霉素诱变后形成
的愈伤组织的耐盐性明显不如干种子60Co γ-射线
诱变和小孢子EMS诱变的。
2 再生植株自交一代的耐盐性表现
取源于干种子60Co γ-射线诱变后获得再生植
图1 EMS和平阳霉素处理后小孢子在NaCl胁迫下的愈伤组织产量和绿苗产量
Fig.1 Callus yield and green plantlet production under NaCl stress from the microspores treated with EMS and bleomycin
陆瑞菊等: 源于小孢子培养的大麦耐盐变异体获取 1073
株形成的自交一代种子, 播种于温室, 观察其从种
子萌发至成熟阶段的耐盐性表现。以0.5% NaCl作
为胁迫压, 原始品种‘花30’种子的萌发率为0, 供试
的16份株系中 , 11份株系的萌发率大于或等于
50%。然而, 盐胁迫对种子发芽后幼苗的生长产生
明显的抑制作用, 14份萌发的株系中3份材料的幼
苗未能进一步生长, 其余材料中成活率大于或等
于50%的有7份。盐胁迫对分蘖数、株高和单株产
量也产生明显的抑制作用, 在11份株系中, 有6份材
料的分蘖数和4份材料的株高与对照相比下降达
显著水平, 只有1份材料(A7-6)的单株产量显著高
于对照, 其余材料均低于对照(表2)。
图3 诱变方法、诱变对象及胁迫压对诱变效果的影响
Fig.3 Effect on the mutagenic result from mutation method, targets and stress pressure
表2 耐盐变异体温室鉴定结果
Table 2 The identification results of the salt-tolerant variants in the green house
材料
发芽率% 胁迫下的 分蘖数/个 株高/cm 单株产量/g
对照 盐胁迫 成活率/% 对照 盐胁迫 对照 盐胁迫 对照 盐胁迫
‘花30’ 100.0 0 — 8.8±2.3 — 36.5±3.9 — 5.9±2.4 —
A7-2 100.0 50.0 66.7 7.3±2.3 3.5±1.3* 33.5±3.0 27.3±3.8* 5.1±2.3 1.6±1.1*
A7-3 100.0 50.0 33.3 8.5±1.6 4.0±0* 33.5±2.7 35.5±2.1 4.2±0.8 1.5±1.1*
A7-6 83.3 66.7 25.0 6.0±1.7 7.5±0.7 38.0±2.3 39.0±1.4 3.9±1.2 5.2±0.1*
A7-7 91.7 75.0 33.3 7.8±3.3 3.0±3.5 31.8±5.4 27.0±12.1 4.8±2.4 1.9±2.7
A7-8 100.0 50.0 66.7 7.7±3.3 3.3±1.0* 33.2±3.1 32.8±2.9 4.4±1.9 1.1±0.3*
A7-9 100.0 91.7 100.0 7.0±1.7 3.2±1.3* 36.0±3.3 29.8±7.6 5.0±1.4 2.1±1.0*
A7-10 66.7 100.0 33.3 5.0±0.6 2.3±1.5* 42.5±2.9 28.0±7.9* 3.4±0.8 1.2±1.1*
A7-11 100.0 83.3 50.0 6.7±2.4 3.2±1.3* 38.2±1.2 28.4±4.5* 3.6±0.7 1.6±0.2*
A7-12 91.7 66.7 75.0 7.0±1.7 5.0±2.4 40.0±4.5 32.8±8.2 5.0±0.8 3.2±1.2*
A7-13 91.7 66.7 75.0 6.7±1.4 5.0±2.6 46.5±7.1 35.3±3.5* 5.7±1.7 2.1±1.3*
A7-14 100.0 16.7 100.0 8.2±2.0 2.5±2.1 38.8±5.0 27.0±9.9 5.8±1.9 1.5±1.6
A7-15 91.7 16.7 — 7.5±2.0 — 39.5±4.5 — 4.3±1.5 —
A7-16 100.0 50.0 — 4.7±1.4 — 46.8±4.3 — 3.2±1.7 —
A7-17 100.0 0 — 6.3±1.8 — 39.3±4.9 — 4.9±1.9 —
A7-18 66.7 0 — 5.7±2.4 — 40.2±8.1 — 3.6±1.2 —
A7-43 91.7 8.3 — 5.8±3.2 — 35.2±4.5 — 3.9±2.5 —
*表示在0.05水平差异显著。
从单株产量与分蘖数、株高的相关性分析
可以看出, 正常条件下单株产量与分蘖数显著正
相关(表3), 盐胁迫条件下单株产量与分蘖数极
显著正相关、与株高显著正相关(表4), 表明盐
胁迫下植株的分蘖数、株高对单株产量有较大影
响。
植物生理学报1074
综合分析可以看出, A7-9、A7-12和A7-13的
耐盐性较好, 胁迫下的分蘖较多, 单株产量也较高;
尤其是A7-6的表现比较特殊, 盐胁迫下的萌发率
表3 正常施肥条件下单株产量、分蘖数和株高间的相关系数
Table 3 Correlation coefficients among yield per plant, tiller
number and plant height under normal condition
单株产量 分蘖数
单株产量 —
分蘖数 0.61* —
株高 0.01 –0.56
*表示在0.05水平差异显著。
表4 盐胁迫下单株产量、分蘖数和株高间的相关系数
Table 4 Correlation coefficients among yield per plant, tiller
number and plant height under salt stress
单株产量 分蘖数
单株产量 —
分蘖数 0.91** —
株高 0.64* 0.86**
*和**分别表示在0.05和0.01水平差异显著和极显著。
和成活率不高, 但成活后植株在盐胁迫下的分蘖
数和植株高度与对照相近, 特别是单株产量显著
高于对照(图4)。
图4 再生植株自交1代的耐盐性表现
Fig.4 Salt-tolerant characters of selfing first-generation plants
A: ‘花30’苗期; B: A7-9苗期; C: A7-12苗期; D: A7-13苗期; E: A7-6抽穗期; F: A7-9抽穗期; G: A7-12抽穗期; H: A7-13抽穗期。
陆瑞菊等: 源于小孢子培养的大麦耐盐变异体获取 1075
3 变异体的耐盐分子机制
3.1 高盐胁迫下‘花30’与耐盐变异体地上部Na+/H+
逆向转运蛋白基因的表达变化
从图5-A可以看出 , 与‘花30’相比 , A7-9和
A7-13的基因表达模式相似, A7-9在整个胁迫处理
期间的表达量远高于‘花30’; A7-10和的表达模式与
‘花30’相比发生较大变化; A7-12在盐胁迫下NHX1
基因的表达模式与‘花30’相似, 但表达增强。
从图5-B可以看出, 在6个材料中NHX2基因表
达模式均是先降低后升高。‘花30’和A7-9在盐胁
迫0~12 h表达量降低后稍有增强趋势; A7-10、A7-
11、A7-12在24 h后表达量增强; A7-13在0~24 h表
达量先增强后下降, 24 h后表达量也有增强的趋
势。
从图5-C可以看出, ‘花30’在盐胁迫0~48 h,
NHX3基因的变化呈先下降后上升, 上升变化幅度
不大, 表达量均低于变异体材料; A7-10、A7-11、
A7-12表达变化模式与‘花30’相同; A7-9在24 h后
表达量稍有下降, 但差异不显著; A7-13表达量一
直呈增强趋势。
3.2 高盐胁迫下‘花30’与耐盐变异体地上部甜菜碱
醛脱氢酶基因的表达变化
从图6-A可以看出, 在盐胁迫下, A7-9、A7-
10、A7-11中BBD1的表达变化模式与‘花30’中的
图5 Na+/H+逆向转运蛋白基因在不同材料地上部中的表达变化
Fig.5 Changes of Na+/H+ antiporter gene expression in the aerial part of different materials
植物生理学报1076
相同, 但在盐胁迫48 h时的相对表达量显著高于
‘花30’; A7-12中BBD1的表达变化模式与‘花30’差异
较大, 盐胁迫24 h时表达量低至‘花30’水平, 48 h时
高于‘花30’; A7-13中BBD1表达变化模式与‘花30’相
似, 但在盐胁迫前后的表达量均高于‘花30’。
从图6-B可以看出, 在盐胁迫下, BBD2基因在
‘花30’和耐盐变异体材料中表达变化模式基本相
同, 盐胁迫0~12 h表达量基本上没有变化, 12 h以
后急剧增强, 除了A7-10 (24 h)和A7-13 (48 h), 其余
3个材料的相对表达量远高于对照‘花30’。
讨 论
利用单倍体技术诱导筛选变异体具有十分明
显的优点, 但也受到单倍体诱导技术的制约。获
得变异体的数量不仅受诱变剂、诱变方法、胁迫
压和筛选方法的影响, 更受小孢子培养植株再生
频率的影响, 凡是影响小孢子培养植株高频再生
的因子都会影响到获得变异体的数量。所以, 单
倍体诱变筛选体系必须建立在成熟的小孢子培养
再生体系之上, 而随着小孢子培养技术的不断成
熟, 单倍体诱变筛选技术会被应用于更多作物的
育种工作上(Germana 2011)。
诱变处理影响小孢子在盐胁迫下的愈伤组织
形成, 不同诱变处理的影响存在较大差异。60Co γ-
射线辐照离体穗的愈伤组织产量明显低于60Co γ-
射线辐照种子的处理, 可能与离体穗辐照后小孢
子活力受到影响有关 (雷春等2004; 许利彩等
2009)。平阳霉素与EMS处理小孢子后愈伤组织产
量存在差异, 可能是小孢子活力和耐盐性小孢子
数量不同所致。由小孢子的诱变效果可见, 单倍
体细胞水平的诱变可以产生耐盐性发生变异的含
单套基因的存活细胞, 经过染色体加倍后, 突变基
因和其他基因一次性纯合, 其所携性状的遗传稳
定性较好。在盐胁迫下形成的愈伤组织并进而分
化的绿苗产量存在较大差异, 可能的原因是由于
愈伤组织分化成苗的潜力及愈伤组织的耐盐性不
同。以种子诱变处理后的小孢子作为供试材料,
经过盐胁迫培养, 分化获得的再生植株, 自交一代
的种子在0.5%盐胁迫下的发芽率明显高于原始材
料‘花30’, 盐胁迫下植株的成活率、分蘖数、株高
图6 甜菜碱醛脱氢酶基因在不同材料地上部中的表达变化
Fig.6 Changes of betaine aldehyde dehydrogenase gene expression in the aerial part of different materials
陆瑞菊等: 源于小孢子培养的大麦耐盐变异体获取 1077
和单株产量存在明显差异。表明本研究获得的变
异体的耐盐性是可以遗传的。
大麦NHX1、NHX2、NHX3均是液泡膜Na+/
H+逆向转运蛋白, 具有将Na+在液泡内区隔化和将
Na+排出细胞外的功能, 是植物抵御盐胁迫的关键
因子, 与植物的耐盐性密切相关(钱永生和张晓琴
2007; 陈观平等2006; 李妍2007)。Roslyakova (2007)
研究表明, NHX1和NHX2在大麦叶中的表达变化不
明显, NHX3基因在盐胁迫下, 在耐盐品种和盐敏感
品种中数量上和动力上都有明显的增加。本研究
中NHX3基因在耐盐材料中的表达均高于对照‘花
30’, 结果与Roslyakova (2007)的一致, 推测NHX3
基因可能在Na+区隔化中起主要作用, 而‘花30’在
盐胁迫下叶片中NHX1和NHX2表达变化不明显,
而在耐盐材料A7-9和A7-10中, NHX1基因的表达
发生了明显的变化。据此推测, NHX1基因可能在
A7-9和A7-10的耐盐性上起一定的作用, 但导致
NHX1基因表达模式变化的原因还需要进一步的
研究; 这些结果同时也揭示了Na+/H+逆向转运蛋白
在大麦的耐盐中起着重要作用。
盐胁迫能够诱导甘氨酸甜菜碱的积累, 这种
积累和甜菜碱醛脱氢酶基因活性的增加相关, 而
该基因活性伴随着其蛋白和mRNA水平的增加而
增加(Ishitani等1995)。BBD1和BBD2基因是编码
大麦甜菜碱醛脱氢酶的两个同工酶基因, 它们在
mRNA表达模式上不同, 在叶片中, BBD2基因的表
达随着盐胁迫时间的延长明显上升, 表达量远高
于BBD1基因, 而BBD1基因在叶片中仅以低丰度表
达, 说明BBD2基因在保护大麦免受盐胁迫而合成
甘氨酸甜菜碱中起主要作用, 此结果与Nakamura
等(2001)研究结果一致。Ishitani等(1995)认为在甘
氨酸甜菜碱合成途径中基因表达量的改变调控或
部分调控盐胁迫下大麦植株体内甘氨酸甜菜碱含
量的累积。与对照‘花30’相比, 变异体中BBD2基
因在mRNA水平上表达量的显著提高可能导致了
甘氨酸甜菜碱含量的增加, 而甘氨酸甜菜碱的积
累量与品种耐盐性呈正相关(Nakamura等1996), 说
明甘氨酸甜菜碱参与了突变体植株对盐胁迫的调
节。本研究获得的关于变异体耐盐性分子机制的
研究结果表明, 耐盐性的提高与相关基因及其表
达存在联系。
参考文献
陈观平, 王慧中, 施农农, 陈受宜(2006). Na+/H+逆向转运蛋白与植
物耐盐性关系研究进展. 中国生物工程杂志, 26 (5): 101~106
顾宏辉, 张冬青, 张国庆, 周伟军(2003). 油菜离体小孢子诱变育种
研究进展. 浙江农业学报, 15 (5): 318~322
和江明, 王敬乔, 陈薇, 李根泽, 董云松, 寸守铣(2003). 用EMS诱变
和小孢子培养快速获得甘蓝型油菜高油酸种质材料的研究.
西南农业学报, 16 (2): 34~36
黄剑华(2003). 大麦细胞工程育种研究与展望. 见: 陆维忠, 郑企成
编. 植物细胞工程与分子育种技术研究. 北京: 中国农业科学
出版社, 74~87
黄剑华(2007). 小孢子和花药培养技术在作物定向遗传改良上的应
用. 作物研究, (3): 167~169
雷春, 陈劲枫, 钱春桃, 张永兵, 宋慧(2004). 辐射花粉授粉和胚培养
诱导产生黄瓜单倍体植株. 西北植物学报, 24 (9): 1739~1743
李鹏, 李新华, 张锋, 邱登林(2008). 植物辐射诱变的分子机理研究
进展. 核农学报, 22 (5): 626~629
李妍(2007). 液泡膜Na+/H+逆向转运蛋白研究进展. 安徽农学通报,
13 (5): 40~41
陆瑞菊, 陈志伟, 何婷, 王亦菲, 杜志钊, 高润红, 邹磊, 黄剑华, 陈佩
度(2011). 两份大麦品种单倍体细胞与植株水平耐盐性的关
系. 核农学报, 25 (2): 0226~0230
陆瑞菊, 王亦菲, 孙月芳, 周润梅, 黄剑华(2006). 利用青花菜单倍体
茎尖筛选耐热变异体. 核农学报, 20 (5): 388~391
钱永生, 张晓勤(2007). 盐胁迫下植物Na+/H+逆向转运蛋白研究进
展. 湖北农业科学, 46 (2): 314~319
石淑稳, 吴江生, 牛勤思(2007). 甘蓝型油菜小孢子离体诱变——紫
外线对小孢子胚状体再生的影响. 核农学报, 21 (1): 17~19
孙月芳, 陆瑞菊, 王亦菲, 周润梅, 黄剑华(2005). 大麦花药离体诱变
及铝胁迫下的培养反应. 核农学报, 19 (2): 95~98
孙月芳, 陆瑞菊, 王亦菲, 周润梅, 黄剑华(2006). NaCl胁迫对不同
基因型大麦花药离体培养的影响. 核农学报, 20 (1): 19~22
王亦菲, 黄剑华, 陆瑞菊, 孙月芳, 周润梅, 周志疆, 谢祝捷, 刘成洪
(2002). 利用油菜单倍体茎尖筛选抗菌核病变异体. 核农学报,
16 (6): 355~359
谢艳平(2008). 甘蓝型油菜小孢子离体EMS诱变技术研究[学位论
文]. 武汉: 华中农业大学
许利彩, 李海真, 沈火林, 葛志东(2009). 辐照花粉诱导西葫芦单倍
体. 中国蔬菜, (22): 13~19
宣朴, 徐利远, 瞿世洪, 余桂容, 尹春蓉, 岳春芳(2000). 小麦单倍体
辐射诱变育种技术研究. 核农学报, 14 (1): 17~20
袁金娥, 刘家娴, 先锐, 刘新春, 冯宗云(2011). 大麦耐盐性鉴定方法
及耐盐机理研究进展. 大麦与谷类科学, (4): 11~14
Barro F, Fernández-Escobar J, De la Vega M, Martín A (2002). Modi-
fication of glucosinolate and erucic acid contents in doubled
haploid lines of Brassica carinata by UV treatment of isolated
microspores. Euphytica, 129: 1~6
Chen QF, Wang CL, Lu YM, Shen M, Afza R, Duren MV, Brunner H
(2001). Anther culture in connection with induced mutations for
植物生理学报1078
rice improvement. Euphytica, 120 (3): 401~408
Das A, Gosal SS, Sidhu JS, Dhaliwal HS (2000). Induction of muta-
tions for heat tolerance in potato by usingin vitroculture and
radiation. Euphytica, 114 (3): 205~209
Germana MA (2011). Gametic embryogenesis and haploid technol-
ogy as valuable support to plant breeding. Plant Cell Rep, 30 (5):
839~857
Ishitani M, Nakamura T, Han SY, Takabe T (1995). Expression of the
betaine aldehyde dehydrogenase gene in barley in response to
osmotic stress and abscisic acid. Plant Mol Biol, 27: 307~315
Jain SM (2001). Tissue culture-derived variation in crop improve-
ment. Euphytica, 118 (2): 153~166
Khan AJ, Hassan S, Tariq M, Khan T (2001). Haploidy breeding and
mutagenesis for drought tolerance in wheat. Euphytica, 120:
409~414
Nakamura T, Nomura M, Mori H, Jagendorf AT, Ueda A, Takabe T
(2001). An isozyme of betaine aldehyde dehydrogenase in bar-
ley. Plant Cell Physiol, 42 (10): 1088~1092
Nakamura T, Oski M, Ando M, Tadano T (1996). Differences in
mechanisms of salt tolerance between rice and barley plants. Soil
Sci Plant Nutr, 42 (2): 303~3l4
Novak FJ, Brunner H (1992). Plant breeding: induced mutation tech-
nology for crop improvement. IAEA Bull, 4: 25~33
Roslyakova T (2007). A new isoform of putative Na+/H+ antiporter
HvNHX3 in barley: expression and immunochemical localiza-
tion under salt stress. Society for Experimental Biology Annual
Main Meeting Glasgow, Scotland. Comp Biochem Phys A, 146:
S264
Wu CA, Yang GD, Meng QW, Zheng CC (2004). The cotton GhNHX1
gene encoding a novel putative tonoplast Na+/H+ antiporter
plays an important role in salt stress. Plant Cell Physiol, 45 (5):
600~607