免费文献传递   相关文献

植物亚麻荠素的生物合成



全 文 :植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月 763
植物亚麻荠素的生物合成
李一蒙 1, 陈思学 2, 阎秀峰 1,*
1东北林业大学生命科学学院, 东北林业大学林木遗传育种与生物技术教育部重点实验室, 哈尔滨 150040; 2佛罗里达大学
植物学系, 盖恩斯维尔 FL 32611, 美国
Biosynthesis of Camalexin in Plant
LI Yi-Meng1, CHEN Si-Xue2, YAN Xiu-Feng1,*
1Key Laboratory of Forest Tree Genetic Improvement and Biotechnology, Ministry of Education, College of Life Science, Northeast
Forestry University, Harbin 150040, China; 2Department of Botany, University of Florida, Gainesville FL 32611, USA
提要: 文章介绍植物亚麻荠素合成过程中的中间体、催化酶和相关基因的研究进展。
关键词: 亚麻荠素; 生物合成; 拟南芥
收稿 2008-06-05 修定 2008-07-04
资助 国家自然科学基金海外青年学者合作研究基金(30528013)、
国家自然科学基金(30670325)和新世纪优秀人才支持计
划(N CET -05 -0 328 )。
* 通讯作者(E -m a i l : x fy a n @m a i l . h l . c n; T el : 0 4 5 1 -
8 2 1 9 0 0 5 2 )。
有些高等植物在抵抗病原体侵染过程中能诱
导合成一类具有抗微生物侵害活性的低分子量物
质——植保素(phytoalexin) (Smith 1996)。如亚麻
荠素(3-thiazol-2 -yl-indole, camalexin)是一种含硫
的吲哚生物碱, 是十字花科(Cruciferae)植物特有的
植保素, 也是拟南芥中发现的唯一的一类植保素。
亚麻荠素是首先在遭受甘蓝链格孢菌(Alternaria
brassicae)侵染的亚麻荠(Camelina sativa)叶中发现
的(Browne等 1991), 随后在受到丁香假单胞菌
(Pseudomonas syringae)侵染的拟南芥(Arabidopsis
thaliana)叶中也检测到了亚麻荠素(Tsuji等1992)。拟
南芥中的亚麻荠素能受细菌(Tsuji等1992; Glazebrook
和Ausubel 1994)、真菌(Glazebrook等 1997; Zook
和Hammerschmidt 1997; Thomma等 1999; Roetschi
等2001)和病毒(Callaway等1996; Dempsey等1997)
等诱导, 也可以受重金属(Tsuji等 1993)、UV-B辐
射(Mert-Turk等 2003)、镰刀菌酸(fusaric acid)
(Bouizgarne等 2006)和挥发性的异罗勒烯(a llo
ocimene) (Kishimoto等 2006)等诱导。亚麻荠素不
但能抵抗病原菌的侵染, 且有抗癌作用(Mezencev
等 2003), 因此其生物合成的研究引起了人们的注
视。
1 亚麻荠素的生物合成
亚麻荠素合成途径的研究开始于上世纪90年
代初, 主要是通过体内饲喂实验(in vivo feeding
experiment)和突变体筛选进行的, 目前已基本上鉴
定出亚麻荠素的合成前体以及一些关键步骤的中间
体和催化酶。图 1 是根据近年来的研究结果
(Glawischnig等 2004; Schuhegger等 2006; Nafisi等
2007)总结的亚麻荠素生物合成过程。亚麻荠素的
合成起始于色氨酸途径, 早期的研究未能确定色氨
酸途径中是哪种物质直接参与亚麻荠素的合成,
Glawischnig等(2004)发现细胞色素 P450酶的参与
基本上证明了色氨酸转化为吲哚-3-乙醛肟(indole-
3-acetaldoxime, IAOx)的过程。吲哚 -3-乙醛肟是
多种代谢产物合成的分支点, 同时与吲哚 -3-乙酸
和吲哚芥子油苷的合成途径有关联。Na fi s i 等
(2007)的研究表明, 亚麻荠素合成途径中吲哚-3-乙
醛肟受细胞色素P450酶CYP71A13催化形成吲哚-
3-乙腈(indole-3-acetonitrile, IAN)。但吲哚 -3-乙
腈到亚麻荠素的反应步骤还不是非常清晰 ,
Schuhegger等(2006)的工作证实亚麻荠素合成的最
后一步反应是由二氢亚麻荠酸(S-dihydrocamalexic
acid)到亚麻荠素。从吲哚 -3-乙腈到二氢亚麻荠酸
中的一个重要而未解的问题是亚麻荠素结构中噻唑
环部分的引入, 尽管Zook和Hammerschmidt (1997)
的体内饲喂实验已确定噻唑环部分来源于半胱氨
酸, 但是其中与半胱氨酸缩合的中间体始终未得到
研究通讯 Research Letter
植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月764
图 1 亚麻荠素的合成途径(Glawischnig等 2004; Schuhegger等 2006; Nafisi等 2007)
证实。
2 色氨酸转化为吲哚 -3-乙醛肟
亚麻荠素的合成起始于色氨酸途径, 色氨酸在
细胞色素P450酶的催化下转化为吲哚 -3-乙醛肟。
在亚麻荠素合成过程研究的早期, 研究者始终
未能确定色氨酸途径中的哪种物质直接参与亚麻荠
素的合成。拟南芥叶饲喂实验的结果显示, 邻氨基
苯甲酸(anthranilate)掺入到亚麻荠素合成过程的量
比色氨酸更高, 表明色氨酸没有直接参与亚麻荠素
的合成(Tsuji等 1993; Zook和 Hammerschmidt
植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月 765
1997)。这个结论在 3种色氨酸突变体中已得到证
实, 在trp1-100突变体(邻氨基苯甲酸合成酶基因发
生突变)中亚麻荠素含量显著下降, 而trp2-1突变体
(色氨酸合成酶的β亚基基因发生突变)和 trp3-1突
变体(色氨酸合成酶的α亚基基因发生突变)中亚麻
荠素的含量则无明显变化(Tsuji等 1993)。这些研
究虽然排除了色氨酸直接参与亚麻荠素合成的可
能, 但迄今始终未能确切预测哪种物质直接参与了
亚麻荠素的合成。
本世纪以来, 代谢突变体的筛选成为亚麻荠素
生物合成途径研究的新突破口。研究者在
cyp79B2/cyp79B3突变体拟南芥中鉴定出2个基因
位点, 它们所编码的细胞色素P450酶CYP79B2和
CYP79B3都能催化色氨酸转化为吲哚 -3-乙醛肟
(Hull等 2000; Mikkelsen等 2000)。吲哚 -3-乙醛肟
是多种含吲哚环代谢产物的前体, 能为CYP83B1酶
催化而进一步合成吲哚芥子油苷(Ba k等 200 1;
Hansen等2001), 同时吲哚-3-乙醛肟也是生长素的
一种前体(Bak等2001), 而且还是芸苔素(brassinin)
及其衍生的植保素的前体(Pedras等 2001)。拟南
芥cyp79B2/cyp79B3双缺失突变体中不仅完全缺少
吲哚芥子油苷, 生长素的含量也明显下降(Zhao等
2002)
在上述研究的基础上, 人们用 c y p 7 9 B 2 /
cyp79B3突变体重新研究了亚麻荠素的合成过程。
由于亚麻荠素与芸苔素结构相似, 人们曾猜测它们
具有相似的合成途径, 还有研究者猜测亚麻荠素是
由吲哚芥子油苷合成的。用硝酸银(硝酸银能够诱
导亚麻荠素的合成)处理 cyp79B2/cyp79B3突变体
拟南芥后, 莲座叶中几乎完全不能积累亚麻荠素; 另
外, 吲哚 -3-乙醛肟能够高效地掺入到亚麻荠素的
合成过程, 因此认为亚麻荠素是通过色氨酸转化为
吲哚 -3-乙醛肟后合成的(Glawischnig等2004)。完
全缺失吲哚芥子油苷的 sur1突变体能够诱导合成
亚麻荠素, 表明亚麻荠素不是由芥子油苷合成的
(Glawischnig等 2004; Mikkelsen等 2004)。虽然吲
哚 -3-乙醛肟是由CYP79B2和CYP79B3两种酶催
化形成的, 但用硝酸银处理(Glawischnig等2004)以
及用芸薹链格孢菌(Al te rnar ia brass ic ico la )
(Narusaka等 2003; van Wees等 2003)和丁香假单
胞菌(Glazebrook等 2003)侵染拟南芥后, CYP79B2
基因的表达量显著提高, 而CYP79B3基因的表达量
仅有微小变化。同时, 在cyp79B2单缺失突变体中,
亚麻荠素含量比野生型减少近 50%, 而在 cyp79B3
单缺失突变体中亚麻荠素含量则接近野生型
(Glawischnig等 2004)。以上结果表明, 不同代谢
途径中CYP79B2和CYP79B3基因的调控和表达是
有差异的, 在亚麻荠素诱导合成过程中发挥主要作
用的是 CYP79B2基因。CYP79B2基因过表达植株
中的亚麻荠素含量并未上升, 说明亚麻荠素合成的
限速步骤在吲哚 -3-乙醛肟的下游(Glawischnig等
2004)。
虽然已经证明亚麻荠素合成过程中的吲哚-3-
乙醛肟是来源于色氨酸, 但色氨酸则以很低的效率
掺入到亚麻荠素的合成过程, 并且 trp2-1和 trp3-1
突变体中亚麻荠素含量下降并不明显, 所以这些问
题仍然困扰着研究者。CYP79B2和CYP79B3酶是
在亚麻荠素合成过程中第一个得到鉴定的细胞色素
P450酶, 据此研究者猜测可能还有其它细胞色素
P450酶参与后续代谢反应, 如下文所述的吲哚 -3-
乙醛肟向吲哚-3-乙腈的转化和二氢亚麻荠酸向亚
麻荠素的转化。
3 吲哚 -3-乙醛肟转化为吲哚 -3-乙腈
随着CYP79B2和CYP79B3酶功能的鉴定, 近
年来吲哚-3-乙醛肟在亚麻荠素合成过程中的转化
过程又得到确认 , 其可为细胞色素 P 4 5 0 酶
CYP71A13催化为吲哚 -3-乙腈。
吲哚-3-乙醛肟转化过程的研究同样是以筛选
突变体进行的。拟南芥中 CYP71A13基因突变后,
植株对芸薹链格孢菌即明显表现出易感性, 并且被
芸薹链格孢菌和丁香假单胞菌侵染后, 亚麻荠素含
量显著低于野生型(Nafisi等2007)。将该基因基因
转入大肠杆菌(Escherichia coli)后, 其编码的细胞色
素P450单加氧酶CYP71A13即能催化吲哚-3-乙醛
肟脱水形成吲哚-3-乙腈, 将CYP79B2和CYP71A13
基因同时转入烟草(Nicotiana benthamiana)后, 它们
的瞬时表达能将色氨酸转化为吲哚 -3-乙腈, 此外,
向cyp71A13突变体施加外源吲哚-3-乙腈也能恢复
亚麻荠素的合成(Nafisi等2007)。野生型拟南芥基
因表达模式的研究表明, CYP71A13基因的表达与
亚麻荠素合成的另一种基因CYP71B15的表达有显
著的相关性(Nafisi等 2007)。以上研究表明, 在亚
麻荠素合成过程中, CYP71A13酶催化吲哚-3-乙醛
肟向吲哚 -3-乙腈转化。采用硝酸银处理拟南芥
植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月766
dgd1突变体(其吲哚 -3-乙腈含量是野生型拟南芥
的 45倍) (Dormann等 1995; Fiehn等 2000)后, 诱导
产生的亚麻荠素含量并不比野生型的高, 说明
CYP71A13酶催化吲哚-3-乙醛肟产生吲哚-3-乙腈
并不是亚麻荠素合成的限速步骤(Nafisi等 2007)。
正常拟南芥植株中有一定含量的吲哚-3-乙腈
(Ilic等1996), 它参与许多代谢反应, 不但是亚麻荠
素合成的中间体, 还在许多十字花科植物中被腈水
解酶(nitrilase)转化为生长素(Pollmann等2006)。拟
南芥在正常状态下含有一定水平的生长素, 而亚麻
荠素是在拟南芥受诱导后合成的, 因此, 吲哚-3-乙
腈向亚麻荠素与生长素的转化过程可能会受到环境
因子与植物自身的严格调控, 但其中的调控机制还
不清楚。
4 亚麻荠素噻唑环的引入
吲哚-3-乙腈经过几步转化后形成的未知中间
体与半胱氨酸缩合后, 亚麻荠素的中间体即转入噻
唑环。
Browne等(1991)曾提出亚麻荠素是由半胱氨
酸和吲哚 -3-甲醛(indole-3-carboxaldehyde)缩合后
经环化和脱羧形成的。用 35S-半胱氨酸和 35S-甲硫
氨酸分别饲喂受玉米圆斑病菌( C o c h l i o b o l u s
carbonum)感染的拟南芥后, 掺入到亚麻荠素合成过
程的半胱氨酸量比甲硫氨酸高10倍, 35S-半胱氨酸
和14C-半胱氨酸也可以同等的效率掺入到亚麻荠素
的合成过程, 从而证实亚麻荠素的噻唑环前体是半
胱氨酸(Zook和Hammerschmidt 1997)。参与这一
缩合过程的另一种物质是吲哚-3-甲醛的推测迄今
尚未得到证实, 因为施加外源吲哚 -3-甲醛并不能
恢复cyp79B2/cyp79B3双缺失突变体的亚麻荠素合
成能力(Schuhegger等 2006), 并且催化这一缩合反
应的相关酶也未得到鉴定。
5 二氢亚麻荠酸转化为亚麻荠素
具有噻唑环的未知中间体经过数步转化后形
成二氢亚麻荠酸, 二氢亚麻荠酸在细胞色素P450酶
CYP71B15的催化下形成终产物亚麻荠素。
二氢亚麻荠酸转化是亚麻荠素合成的最后一
步反应, 其研究是以亚麻荠素代谢突变体pad3进行
的。pad3是研究亚麻荠素功能中筛选得到的低含
量亚麻荠素突变体(Glazebrook和 Ausubel 1994;
Glazebrook等1997), 正因为这一突变体的组成型亚
麻荠素含量低, 所以它对病原体和诱导剂是不依赖
的, 因此在拟南芥和病原体相互作用的研究中得到
广泛的应用(Glazebrook和Ausubel 1994; Thomma
等 1999; Roetschi等 2001; Ferrari等 2003; Mert-
Turk等 2003; Bohman等 2004)。Zhou等(1999)采
用图位克隆(positional clone)技术鉴定 PAD3基因
(CYP71B15基因)发现它编码细胞色素 P450酶
CYP71B15。
近期的研究表明, 将CYP71B15基因转入酵母
后, CYP71B15酶能催化二氢亚麻荠酸转化为亚麻
荠素; 此外, 用硝酸银处理pad3突变体和野生型拟
南芥后, pad3突变体中的二氢亚麻荠酸含量约是野
生型的5倍; 同时, 向cyp79B2/cyp79B3双缺失突变
体施加外源二氢亚麻荠酸后, 此种突变体的亚麻荠
素诱导合成能力即恢复(Schuhegger等 2006)。这
些研究表明, CYP71B15酶能催化亚麻荠素合成中
的最后一步反应, 即二氢亚麻荠酸转化为亚麻荠素
(Schuhegger等 2006)。从 CYP71B15基因过表达
型拟南芥和用硝酸银处理后的野生型拟南芥中分离
的微粒体(microsome)也能催化上述反应, 而从pad3
突变体中分离的微粒体则不能, 从而证实CYP71B15
酶在亚麻荠素合成中是有作用的(Schuhegger等
2006)。CYP71B15酶可以催化二氢亚麻荠酸的氧
化脱羧反应, 这一反应在促使底物脱羧的同时引入
了C-C键, 这是在植物中最早发现细胞色素P450酶
可以催化这类反应的工作(Schuhegger等 2006)。
CYP71B15基因过表达型拟南芥受硝酸银处理后,
其亚麻荠素含量并不比野生型高出许多, 说明亚麻
荠素合成的最后一步反应也不是整个反应的限速步
骤(Schuhegger等 2006)。
6 结语
随着合成中间体吲哚 -3-乙醛肟的确认, 越来
越多的中间体和催化酶得到鉴定, 由此亚麻荠素合
成的研究日渐深入清晰, 可以预见未来还会发现更
多的细胞色素P450酶参与亚麻荠素的合成。但亚
麻荠素合成的限速步骤还未查明, 以致亚麻荠素代
谢工程的研究受到了一定的限制。另一方面, 多数
植物的防御物质都依赖于水杨酸、茉莉酸和乙烯
等介导的信号转导途径, 而亚麻荠素则表现出不依
赖于这些信号转导途径的特性(Glazebrook等1996;
Nawrath和Metraux 1999; van Wess等 2003), 因而
亚麻荠素合成的上游调控研究始终没有太多进展。
如果能鉴定出专一调控亚麻荠素的调节因子, 则可
能为这一领域的研究找出新的突破口。从亚麻荠
植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月 767
素的研究历程来看, 分离和鉴定各种突变体可能仍
然是亚麻荠素研究的最有效手段。
参考文献
Bak S, Tax FE, Feldmann KA, Galbraith DW, Feyereisen R (2001).
CYP83B1, a cytochrome P450 at the metabolic branch point
in auxin and indole glucosinolate biosynthesis in Arabidopsis.
Plant Cell, 13: 101~111
Bohman S, Staal J, Thomma BPHT, Wang M, Dixelius C (2004).
Characterisation of an Arabidopsis-Leptosphaeria maculans
pathosystem: resistance partially requires camalexin biosyn-
thesis and is independent of salicylic acid, ethylene and
jasmonic acid signalling. Plant J, 37: 9~20
Bouizgarne B, El-Maarouf-Bouteau H, Frankart C, Reboutier D,
Madiona K, Pennarun AM, Monestiez M, Trouverie J, Amiar
Z, Brault M et al (2006). Early physiological responses of
Arabidopsis thaliana cells to fusaric acid: toxin and signalling
effects. New Phytol, 169: 209~218
Browne LM, Conn KL, Ayer WA, Tewari JP (1991). The camalexins:
new phytoalexins produced in leaves of Camelina sativa
(Cruciferae). Tetrahedron, 47: 3909~3914
Callaway A, Liu W, Andrianov V, Stenzler L, Zhao J, Wettlaufer
S, Jayakumar P, Howell SH (1996). Characterization of cau-
liflower mosaic virus (CaMV) resistance in virus-resistant
ecotypes of Arabidopsis. Mol Plant Microbe Inter, 9: 810~818
Dempsey DA, Pathirana MS, Wobbe KK, Klessig DF (1997).
Identification of an Arabidopsis locus required for resistance
to turnip crinkle virus. Plant J, 11: 301~311
Dormann P, Hoffmann-Benning S, Balbo I, Benning C (1995).
Isolation and characterization of an Arabidopsis mutant
deficient in the thylakoid lipid digalactosyl diacylglycerol.
Plant Cell, 7: 1801~1810
Ferrari S, Plotnikova JM, De Lorenzo G, Ausubel FM (2003).
Arabidopsis local resistance to Botrytis cinerea involves
salicylic acid and camalexin and requires EDS4 and PAD2,
but not SID2, EDS5 or PAD4. Plant J, 35: 193~205
Fiehn O, Kopka J , Dormann P, Altmann T, Trethewey RN,
Willmitzer L (2000). Metabolite profiling for plant func-
tional genomics. Nat Biotechnol, 18: 1157~1161
Glawischnig E, Hansen BG, Olsen CE, Halkier BA (2004). Camalexin
is synthesized from indole-3-acetaldoxime, a key branching
point between pr ima ry and seconda ry metaboli sm in
Arabidopsis. Proc Natl Acad Sci USA, 101: 8245~8250
Glazebrook J , Ausubel FM (1994). Isolation of phytoalexin-
deficient mutants of Arabidopsis thaliana and characteriza-
tion of their interactions with bacterial pathogens. Proc
Natl Acad Sci USA, 91: 8955~8959
Glazebrook J, Chen W, Estes B, Chang HS, Nawrath C, Metraux JP,
Zhu T, Katagiri F (2003). Topology of the network inte-
grating salicylate and jasmonate signal transduction derived
from global expression phenotyping. Plant J, 34: 217~228
Glazebrook J , Rogers EE, Ausubel FM (1996). Isola tion of
Arabidopsis mutants with enhanced disease susceptibility by
direct screening. Genetics, 143: 973~982
Glazebrook J, Zook M, Mert F, Kagan I, Rogers EE, Crute IR, Holub
EB, Hammerschmidt R, Ausubel FM (1997). Phytoalexin-
deficient mutants of Arabidopsis reveal that PAD4 encodes
a regulatory factor and that four PAD genes contribute to
downy mildew resistance. Genetics, 146: 381~392
Hansen CH, Du L, Naur P, Olsen CE, Axelsen KB, Hick AJ, Pickett
JA, Halkier BA (2001). CYP83B1 is the oxime-metaboliz-
ing enzyme in the glucosinolate pathway in Arabidopsis. J
Biol Chem, 276: 24790~24796
Hull AK, Vij R, Celenza JL (2000). Arabidopsis cytochrome P450s
that catalyze the first step of tryptophan-dependent indole-
3acetic acid biosynthesis. Proc Natl Acad Sci USA, 97:
2379~2384
Ilic N, Normanly J, Cohen JD (1996). Quantification of free plus
conjugated indoleacetic acid in Arabidopsis requires correc-
tion for the nonenzymatic conversion of indolic nitr iles.
Plant Physiol, 111: 781~788
Kishimoto K, Matsui K, Ozawa R, Takabayashi J (2006). Analysis
of defensive responses activated by volatile allo-ocimene
treatment in Arabidopsis thaliana. Phytochemistry, 67:
1520~1529
Mert-Turk F, Bennet MH, Mansfield JW, Holub EB (2003).
Camalexin accumulation in Arabidopsis thaliana following
abiotic elicitation or inoculation with virulent or avirulent
Hyaloperonospora parasitica. Physiol Mol Plant Pathol, 62:
137~145
Mezencev R , Mojzi s J , P i la tova M, Ku tschy P (2 0 03 ) .
Antiproliferative and cancer chemopreventive activity of
phytoalexin: focus on indole phytoalexins from crucifers.
Neoplasma, 50: 239~245
Mikkelsen MD, Hansen CH, Wittstock U, Halkier BA (2000).
Cytochrome P450 CYP79B2 from Arabidopsis ca talyzes
the conversion of tryptophan to indole-3-acetaldoxime, a
precursor of indole glucosinolates and indole-3-acetic acid. J
Biol Chem, 275: 33712~33717
Mikkelsen MD, Naur P, Halkier BA (2004). Arabidopsis mutants
in the C-S lyase of glucosinolate biosynthesis establish a
critical role for indole-3-acetaldoxime in auxin homeostasis.
Plant J, 37: 770~777
Nafisi M, Goregaoker S, Botanga CJ, Glawischnig E, Olsen CE,
Halkier BA, Glazebrook J (2007). Arabidopsis cytochrome
P450 monooxygenase 71A13 cata lyzes the conversion of
indole-3-acetaldoxime in camalexin synthesis. Plant Cell,
19: 2039~2052
Narusaka Y, Narusaka M, Seki M, Ishida J, Nakashima M, Kamiya
A, Enju A, Sakurai T, Satoh M, Kobayashi M et al (2003). The
cDNA analysis using an Arabidopsis pad3 mutant reveals the
expression profiles and classification of genes induced by
Alternaria brassicicola attack. Plant Cell Physiol, 44: 377~
387
Nawrath C, Metraux JP (1999). Salicylic acid induction-dificient
mutants of Arabidopsis express PR-2 and PR-5 and accumu-
late high levels of camalexin after pathogen inoculation.
Plant Cell, 11: 1393~1404
Pedras MS, Montaut S, Xu Y, Khan AQ, Loukaci A (2001).
植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月768
Assembling the biosynthetic puzzle of crucifer metabolites:
indole-3-acetaldoxime is incorporated efficiently into phy-
toalexins but glucobrassincin is not. Chem Commun, 7:
1572~1573
Pollmann S, Muller A, Weiler EW (2006). Many roads lead to
“auxin”: of nitrilases, synthases, and amidases. Plant Biol, 8:
326~333
Roetschi A, Si-Ammour A, Belbahri L, Mauch F, Mauch-Mani B
(2001). Characterization of an Arabidopsis-Phytophthora
pathosystem: resistance requires a functional PAD2 gene
and is independent of salicylic acid, ethylene and jasmonic
acid signalling. Plant J, 28: 293~305
Schuhegger R, Nafisi M, Mansourova M, Petersen BL, Olsen CE,
Svatos A, Halkier BA, Glawischnig E (2006). CYP71B15
(PAD3) catalyzes the final step in camalexin biosynthesis.
Plant Physiol, 141: 1248~1254
Smith CJ (1996). Accumulation of phytoalexins: defence mecha-
nism and stimulus response system. New Phytol, 132: 1~45
Thomma BP, Nelissen I, Eggermont K, Broekaert WF (1999).
Deficiency in phytoalexin production causes enhanced sus-
ceptibility of Arabidopsis thaliana to the fungus Alternaria
brassicicola. Plant J, 19: 163~171
Tsuji J, Jackson EP, Gage DA, Hammerschmidt R, Somerville SC
(1992). Phytoalexin accumulation in Arabidopsis thaliana
during the hypersensitive reaction to Pseudomonas syringae
pv syringae. Plant Physiol, 98: 1304~1309
Tsuji J, Zook M, Somerville SC, Last RL, Hammerschmidt R
(1993). Evidence that trptophan is not a direct biosynthetic
intermediate of camalexin in Arabidopsis thanliana. Physiol
Mol Plant Pathol, 43: 221~229
van Wees SCM, Chang HS, Zhu T, Glazebrook J (2003). Charac-
terization of the early response of Arabidopsis to Alternaria
brassicicola infection using expression profiling. Plant
Physiol, 132; 606~617
Zhao Y, Hull AK, Gupta NR, Goss KA, Alonso J, Ecker JR,
Normanly J, Chory J , Celenza JL (2002). Trp-dependent
auxin biosynthesis in Arabidopsis: involvement of cyto-
chrome P450s CYP79B2 and CYP79B3. Genes Dev, 16:
3100~3112
Zhou N, Tootle TL, Glazebrook J (1999). Arabidopsis PAD3, a
gene required for camalexin biosynthesis, encodes a putative
cyto chrome P 4 5 0 mon ooxygena se. P la nt Cel l , 1 1 :
2419~2428
Zook M, Hammerschmidt R (1997). Origin of the thiazole ring
of camalexin, a phytoalexin from Arabidopsis thaliana.
Plant Physiol, 113: 463~468