全 文 ：植物病理学报
ＡＣＴＡ ＰＨＹＴＯＰＡＴＨＯＬＯＧＩＣＡ ＳＩＮＩＣＡ　 ４３(４): ４１１￣４１７(２０１３)
收稿日期: ２０１２￣０８￣０６ꎻ 修回日期: ２０１３￣０４￣１４
基金项目: 国家公益性行业(农业)专项(２０１１０３０１６)ꎻ 南京农业大学青年科技创新基金(ＫＪ２０１２００５)
通讯作者: 周明国ꎬ教授ꎬ主要从事植物病害化学防治研究ꎻ Ｔｅｌ: ０２５￣８４３９５６４１ꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｍｇｚｈｏｕ＠ｎｊａｕ. ｅｄｕ. ｃｎ
第一作者: 侯毅平ꎬ男ꎬ讲师ꎬ主要从事杀菌剂毒理与抗药性研究ꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｈｏｕｙｉｐｉｎｇ＠ｎｊａｕ. ｅｄｕ. ｃｎꎮ
枯草芽胞杆菌 ＮＪ￣１８ 对油菜菌核病的
防治效果及其定殖动态
侯毅平ꎬ 章四平ꎬ 王建新ꎬ 陈长军ꎬ 周明国∗
(南京农业大学植物保护学院ꎬ 农作物生物灾害综合治理教育部重点实验室ꎬ 南京 ２１００９５)
摘要: 菌株 ＮＪ￣１８ 是从油菜田土壤中分离筛选到的一株具有抗真菌活性的枯草芽胞杆菌ꎮ 试验结果表明菌株 ＮＪ￣１８ 与油
菜菌核病菌对峙培养能形成 ３. ４ ｃｍ的抑菌圈ꎻ能抑制油菜菌核病菌菌丝生长发育ꎻ强烈影响菌丝生长量ꎬＮＪ￣１８ 发酵滤液
稀释 ６２. ５ 倍时对菌丝生长量抑制率高达 ９６. ７ ％ ꎬ稀释 １ ０００ 倍时抑制率 １６. ７ ％ ꎮ 油菜离体叶片试验表明ꎬＮＪ￣１８ 发酵液
原液对菌核病的防治效果高达 １００ ％ ꎬ原液稀释 ２００ 倍后防效 １０ ％ ꎮ 大田试验结果表明ꎬＮＪ￣１８ 发酵液稀释 ５００ 倍对油菜
菌核病的防治效果高达 ５７. ４ ％ ꎬ明显高于用量为 １５０ ｇ ａ. ｉ. / ｈｍ２ 的醚菌酯 ４８. １ ％的防治效果ꎮ 采用浸根法研究 ＮＪ￣１８ 在
油菜上的定殖动态表明ꎬ菌株 ＮＪ￣１８ 能够在油菜体内定殖ꎬ并能从油菜的根部向叶子扩散ꎮ
关键词: 枯草芽胞杆菌 ＮＪ￣１８ꎻ 油菜菌核病菌ꎻ 菌丝ꎻ 防治效果ꎻ 定殖
Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｒａｐｅｓｅｅｄ ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｔｅｍ ｒｏｔ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ
ｗｉｔｈ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ ＮＪ￣１８ ａｎｄ ｉｔｓ ｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎ ｄｙｎａｍｉｃｓ ｏｎ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ 　 ＨＯＵ Ｙｉ￣ｐｉｎｇꎬ
ＺＨＡＮＧ Ｓｉ￣ｐｉｎｇꎬ ＷＡＮＧ Ｊｉａｎ￣ｘｉｎꎬ ＣＨＥＮ Ｃｈａｎｇ￣ｊｕｎꎬ ＺＨＯＵ Ｍｉｎｇ￣ｇｕｏ 　 (Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｆｏｒ Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ ａｎｄ
Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅｓ ａｎｄ ＩｎｓｅｔｓꎬＭｉｎｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｅｄｕｃａｔｉｏｎꎬ Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｐｌａｎｔ ＰｒｏｔｅｃｔｉｏｎꎬＮａｎｊｉｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ ＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＮａｎ￣
ｊｉｎｇ ２１００９５ꎬＣｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ ｗａｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｓｏｉｌ ｏｆ ｏｉｌｓｅｅｄ ｒａｐｅ ｆｉｅｌｄ ａｎｄ ｓｈｏｗｅｄ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｉｃ
ａｂｉｌｉｔｙ ａｇａｉｎｓｔ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ. Ｔｈｅ ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ ａｓｓａｙ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｚｏｎｅ ｏｆ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８
ｒｅａｃｈｅｄ ３. ４ ｃｍ ｂｙ ｄｕａｌ ｃｕｌｔｕｒｅ ｍｅｔｈｏｄ ａｇａｉｎｓｔ Ｓ. ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ａｎｄ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ
ｆｕｎｇａｌ ｍｙｃｅｌｉｕｍ. ６２. ５ ｔｉｍｅｓ ａｎｄ １ ０００ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｅｄ ｃｅｌｌ ｆｒｅｅ ｆｉｌｔｒａｔｅｓ ｏｆ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ ９６. ７％ ａｎｄ
１６􀆰 ７％ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ Ｓ. ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｍｙｃｅｌｉｕｍ ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｉｃａｃｙ ｏｆ ｔｈｅ ｐｕｒｅ ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ａｎｄ ｉｔｓ
２００ ｔｉｍｅ ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ ｔｈｅ ｄｉｓｅａｓｅ ｏｎ ｔｈｅ ｄｅｔａｃｈｅｄ ｌｅａｖｅｓ ｉｎｏｃｕｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｓ. ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｂｙ １００％ ａｎｄ １０％
ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｉｎ ｆｉｅｌｄ ｔｒａｉｌꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｉｃａｃｙ ｏｆ ５００ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ａｇａｉｎｓｔ ｒａｐｅｓｅｅｄ ｓｃｌｅｒｏ￣
ｔｉｎｉａ ｓｔｅｍ ｒｏｔ ｒｅａｃｈｅｄ ５７. ４％ ꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｈｉｇｈｅｒ ｔｈａｎ ４８. １％ ｏｆ Ｋｒｅｓｏｘｉｍ￣ｍｅｔｈｙｌ ｅｆｆｉｃａｃｙ ａｔ １５０ ｇ ａ. ｉ. / ｈｍ２
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ ｃｏｕｌｄ ｃｏｌｏｎｉｚｅ ｉｎ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ｏｆ ｏｉｌｓｅｅｄ
ｒａｐｅ ａｎｄ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｔｏ ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｆｒｏｍ ｓｏｉｌ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ꎻ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍꎻ ｍｙｃｅｌｉｕｍꎻ ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｉｃａｃｙꎻ ｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎ
中图分类号: Ｓ４８２. ２ꎻＳ４７６　 　 　 　 　 文献标识码: Ａ　 　 　 　 　 文章编号: ０４１２￣０９１４(２０１３)０４￣０４１１￣０７
　 　 油菜菌核病在世界油菜生产国和地区均有分
布ꎬ在我国各油菜产区均有发生ꎬ尤以长江流域和
东南沿海地区最为普遍和严重[１]ꎬ轻病年减产
１０％ ~ ２０ ％ ꎬ重病年减产 ５０ ％左右[２]ꎮ 油菜是我
国的主要油料作物之一ꎬ菌核病的发生对我国油菜
生产构成了严重的威胁ꎬ由于油菜对菌核病不表现
　
植物病理学报 ４３ 卷
垂直抗性ꎬ至今国内还没有培育出有效的抗病品
种[２]ꎮ 长期以来ꎬ对该病害主要依靠化学药剂进
行防治ꎬ如多菌灵、菌核净等杀菌剂ꎬ但是ꎬ由于长
期施用这些选择性化学农药ꎬ自然界的菌核病菌产
生了抗药性ꎬ生产上常常出现防治失败的现象ꎮ 早
在 １９９８ 年和 ２０００ 年 Ｐａｎ等[３]和 Ｓｈｉ[４]等分别报道
了江苏及其他省区油菜菌核病菌群体中出现了对
多菌灵极高抗性水平的优势群体ꎬ继续使用这些化
学农药不仅达不到防治目的ꎬ而且还造成不必要的
环境污染ꎮ
针对油菜菌核病菌对常用杀菌剂的抗药性及
其对环境的污染等问题ꎬ开展油菜菌核病菌的生物
防治研究得到了国内外学者的高度重视ꎬ已从自然
界筛选到对油菜菌核病菌具有一定拮抗作用的生
防菌[５ ~ １４]ꎮ ＮＪ￣１８ 是从油菜田土壤中分离筛选到
的一株具有广谱抗菌活性的枯草芽胞杆菌[１５]ꎬ为
了明确该菌株对油菜菌核病菌的生防价值ꎬ为实际
应用提供理论依据ꎬ本文对枯草芽胞杆菌 ＮＪ￣１８ 防
治油菜菌核病菌的效果及其定殖动态进行了研究ꎮ
１　 材料与方法
１. １　 材料
供试菌株 Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ꎬ是本实
验室从油菜田土壤中分离筛选到的一株具有抗真
菌活性的枯草芽胞杆菌[１５]ꎮ 油菜菌核病菌(Ｓｃｌｅ￣
ｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ)由本实验室保存ꎮ 油菜种子
红油 ３ 号ꎬ购自江苏省农业科学院ꎮ 培养基 ＰＤＡ
(Ｐｏｔａｔｏ Ｄｅｘｔｒｏｓｅ Ａｇａｒ)、ＮＡ (Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ Ａｇａｒ)培养
基的配置参照文献[１６]ꎮ
１. ２　 对油菜菌核病菌的拮抗能力测定
在直径为 ９ ｃｍ的 ＰＤＡ平板中央接种一环 ＮＪ￣
１８ 菌株ꎬ四周 ２. ５ ｃｍ 处接种一个直径为 ６ ｍｍ 的
油菜菌核病菌菌碟ꎬ置于 ２５℃黑暗条件下培养 ７２
ｈꎬ测量抑菌圈宽度ꎬ试验重复 ３ 次ꎮ
１. ３　 对油菜菌核病菌菌丝生长发育的影响
参照 Ｊｉａｎｇ等[１２]的方法ꎬ在无菌玻片表面铺上
一层 ＰＤＡ 培养基ꎬ挑取少量油菜菌核病菌菌丝接
种在 ＰＤＡ上ꎬ置 ２５℃预培养ꎮ 菌株 ＮＪ￣１８ 在液体
培养基 ＮＢ (Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ Ｂｒｏｔｈ)中 ２８℃、１８０ ｒｐｍ条件
下摇培 ４８ ｈꎬ经细菌滤器 (孔径 ０. ２２ μｍ)过滤
后ꎬ取过滤液备用ꎮ 待核盘菌菌丝开始生长时ꎬ在
一部分玻片的菌丝表面加数滴无菌过滤液ꎻ另一部
分玻片加数滴液体培养基 ＮＢ 作对照ꎮ 继续培养
１ ｄ后ꎬ在显微镜下检查菌丝形态变化ꎮ
１. ４　 对油菜菌核病菌菌丝生长量的影响
采用液培法ꎬ在 １００ ｍＬ 的 ＰＤ ( Ｐｏｔａｔｏ Ｄｅｘ￣
ｔｒｏｓｅ)培养基中分别加入体积不等的 ＮＪ￣１８ 发酵滤
液(经孔径为 ０. ２２ μｍ的细菌过滤器过滤除菌)ꎬ
滤液浓度分别为 １ / １０００ 、１ / ５００ 、１ / ２５０、 １ / １２５、
１ / ６２. ５ ꎬ设加入等量的 ＮＢ 培养基作为对照ꎻ然后
在每个摇瓶中接入 ４ 个直径为 ６ ｍｍ 的油菜菌核
病菌菌碟ꎬ在 ２５℃、１８０ ｒｐｍ条件下光照摇培 ９６ ｈꎬ
用干净的纱布过滤获得菌丝ꎬ把过滤后的菌丝放在
８０℃的烘箱中干燥约 ２４ ｈ 至菌丝完全干燥ꎬ再测
定菌丝的干重ꎬ每个处理设 ３ 个重复ꎬ试验重复 ３
次ꎬ计算菌丝生长抑制率ꎮ
抑制率(％ ) ＝ [(对照菌丝干重 －发酵滤液处
理后的菌丝干重) /对照菌丝干重] ×１００
１. ５　 离体叶片上对油菜菌核病的防病试验
摘取油菜顶部嫩叶ꎬ自来水冲洗干净ꎬ晾干ꎬ置
于垫有湿滤纸的大培养皿中ꎬ采用喷雾法ꎬ把菌株
ＮＪ￣１８ 发酵液原液及其 ２００ 倍、１００ 倍、５０ 倍、３０
倍、１０ 倍和 ２ 倍的稀释液分别喷到叶片上ꎬ每处理
５ 张叶片ꎬ设喷施 ＮＢ 培养基的叶片为对照ꎬ待叶
片晾干后ꎬ每张叶片接种一个直径为 ６ ｍｍ的油菜
菌核病菌菌碟ꎬ然后置于 ２０℃ꎬ１６ ｈ光照 / ｄ条件下
保湿培养ꎬ３ ｄ后测量病斑直径ꎮ 试验重复 ３ 次ꎮ
１. ６　 田间小区防病试验
田间小区试验在江苏省姜堰市沈高镇河横村
油菜田油菜的盛花期进行ꎮ 将 ２８℃、１８０ ｒｐｍ条件
下摇培 ４８ ｈ 的 ＮＪ￣１８ 发酵液用清水分别稀释 １００
倍、２５０ 倍和 ５００ 倍ꎬ加入终浓度 ０. ０５ ％的吐温
２０ꎬ设清水和 １５０ ｇ ａ. ｉ. / ｈｍ２ 醚菌酯为对照ꎮ 无风
时用新加坡利农喷雾器将上述浓度的药液均匀喷
雾至油菜花上ꎬ生防细菌用量为 ７５０ Ｌ / ｈｍ２ꎬ每处
理 ６ 个小区ꎬ每小区 ３０ ｍ２ꎬ随机区组排列ꎬ一周后
对每个浓度处理的 ３ 个小区进行相应浓度的第 ２
次喷药ꎮ 乳熟后期ꎬ按每小区棋盘式 ５ 点取样ꎬ每
点 ４０ 穗ꎬ逐穗记载严重度ꎬ分级ꎬ计算病情指数、防
治效果ꎮ
２１４
　
　 ４ 期 　 　 侯毅平ꎬ等:枯草芽胞杆菌 ＮＪ￣１８ 对油菜菌核病的防治效果及其定殖动态
１. ７　 耐利福平标记菌株的诱导
参照 Ｍｕ等[１７]采用的含利福平肉汤梯度与平
板梯度交替培养法ꎬ对 ＮＪ￣１８ 菌株进行利福平抗性
标记ꎮ 首先用一定量的 ９５ ％酒精配成 １０ ０００ μｇ /
ｍＬ的利福平母液ꎬ过滤除菌后于 ４℃保存备用ꎮ
测定 ＮＪ￣１８ 菌株对利福平敏感浓度为 １. ５ μｇ / ｍＬꎬ
配制利福平含量分别为 １、５、１０、３０、６０、１００、２５０ 和
５００ μｇ / ｍＬ 的肉汤培养基及各自加琼脂的肉汤平
板ꎮ 将 ＮＪ￣１８ 菌株分别在含上述药剂浓度的肉汤
中培养 ４８ ｈꎬ每一级培养后均用相同浓度的平板进
行稀释涂板ꎬ选择生长最快的单菌落ꎬ直至获得抗
５００ μｇ / ｍＬ的利福平标记菌株ꎮ 将抗性菌株在不
含利福平的无药肉汤和平板上交替培养 ５ 代ꎬ再回
接含 ５００ μｇ / ｍＬ 的利福平培养基上生长ꎬ同时比
较抗性菌株与出发菌株对油菜菌核病菌的抑菌活
性及生长速率ꎬ最终获得生长速率无明显变化、稳
定耐 ５００ μｇ / ｍＬ利福平及抑菌活性不变的标记菌
株ꎮ
１. ８　 拮抗细菌 ＮＪ￣１８ 在油菜上的定殖动态
采用浸根法[１８]接种 ＮＪ￣１８ꎬ将按照 １. ７ 方法获
得的耐利福平标记菌株在含 ５００ μｇ / ｍＬ 利福平
ＮＡ培养液中 ２８℃、１８０ ｒｐｍ 条件下摇培 ４８ ｈ(菌
体浓度约为 ７. ６ ×１０８ｃｆｕ / ｍＬ)ꎬ然后将在无菌土中
育苗 ７ ｄ的油菜小苗轻轻拔出ꎬ放置在菌体悬浮液
中浸根 ９０ ｍｉｎꎬ设 ＮＡ 培养液浸根 ９０ ｍｉｎ 的油菜
小苗作为对照ꎬ将这些小苗分别移栽到装有无菌土
和自然土的盆钵中ꎮ 移栽 １、４、７、１０、１５、２０、２５、
３０、３５、４０ ｄ后ꎬ随机轻轻连根拔取油菜小苗ꎬ无菌
土和自然土中各拔取 １０ 株ꎬ冲洗干净ꎬ小苗剪成
根、茎、叶 ３ 段ꎬ称重ꎬ研磨ꎬ取其汁液涂布到含 ４５０
μｇ / ｍＬ利福平 ＮＡ平板上ꎬ于 ２８℃培养 ２４ ｈꎬ检查
菌落数ꎬ测定抑菌活性ꎮ
２　 结果与分析
２. １　 ＮＪ￣１８ 对油菜菌核病菌的拮抗能力及菌丝
形态的影响
通过平板对峙试验ꎬ从图 １￣Ａ 可以看出ꎬ油菜
菌核病菌在生长时ꎬ靠近 ＮＪ￣１８ 端的菌丝变褐色ꎬ
枯死ꎬ呈现明显的抑菌圈ꎬ直径达 ３. ４ ｃｍꎮ 显微镜
下ꎬ与正常情况下的菌丝(图 １￣Ｃ)相比ꎬ油菜菌核
病菌与菌株 ＮＪ￣１８ 互作后ꎬ其菌丝畸形ꎬ顶端膨大ꎬ
细胞质浓缩(图 １￣Ｂ)ꎮ
２. ２　 ＮＪ￣１８ 对菌丝生长的影响
液培法测定 ＮＪ￣１８ 发酵滤液对油菜菌核病菌
菌丝生长的影响ꎬ不同浓度 ＮＪ￣１８ 发酵滤液对菌
丝生长都有很强烈的抑制作用ꎮ 发酵滤液稀释
６２. ５ 倍时ꎬ对菌丝生长的抑制效果高达 ９６. ７％ ꎬ
随着发酵滤液不断的稀释ꎬ其抑制效果呈明显的
下降趋势ꎬ当发酵滤液稀释 １０００ 倍ꎬ其抑制效果
仍有 １６􀆰 ７％ (表 １)ꎬ这说明 ＮＪ￣１８ 能产生一种对
油菜菌核病菌具有很强抑制活性的可溶型的拮
抗物质ꎮ
Ｆｉｇ. １　 Ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｉｃ ａｂｉｌｉｔｙ ａｎｄ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ＮＪ￣１８ ｏｎ ｍｙｃｅｌｉｕｍ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ
ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ
Ａ: Ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｉｃ ａｃｔｉｏｎ ｏｆ ＮＪ￣１８ ｏｎ Ｓ. ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍꎻ Ｂ: Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ＮＪ￣１８ ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ ｏｎ ｍｙｃｅｌｉｕｍ
ｏｆ Ｓ. ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍꎻ Ｃ: Ｎｏｒｍａｌ ｍｙｃｅｌｉｕｍ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｓ. ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ.
３１４
　
植物病理学报 ４３ 卷
Ｔａｂｌｅ １　 Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ￣ｆｉｌｔｒａｔｅｄ ｏｆ ＮＪ￣１８ ｏｎ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
Ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ
ｍｙｃｅｌｉｕｍ / ｇ
Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ
ｒａｔｅ / ％
１ / ６２. ５ ０. ０４ ９６. ７
１ / １２５ ０. ３２ ７３. ３
１ / ２５０ ０. ４０ ６６. ７
１ / ５００ ０. ６０ ５０. ０
１ / １ ０００ １. ００ １６. ７
ＣＫ １. ２０ －
２. ３　 离体叶片防治效果
油菜离体叶片试验可以看出(图 ２)ꎬＮＪ￣１８ 对
油菜菌核病菌也表现出明显的抑制作用ꎬ发酵原液
表现的抑制作用极其显著ꎬ抑制率高达 １００％ ꎬ原
液稀释 １０ 倍后表现出的抑制效果显著下降ꎬ稀释
２００ 倍时ꎬ抑制效果仅为 １０. ９％ (表 ２)ꎮ
２. ４　 ＮＪ￣１８ 在田间小区试验中防病试验效果
ＮＪ￣１８ 发酵液在大田生态环境中对油菜菌核
病具有较好的防治效果(表 ３)ꎬ其发酵液稀释 ５００
倍时施药一次ꎬ防治效果最好ꎬ达到 ５７. ４％ ꎬ明显
高于用量为 １５０ ｇ ａ. ｉ. / ｈｍ２ 的醚菌酯防治效果
４８􀆰 １％ ꎬ其发酵液稀释 １００ 倍时ꎬ防治效果略低于
醚菌酯原药ꎮ 从表 ３ 还可以看出ꎬＮＪ￣１８ 发酵液喷
药 １ 次和喷药 ２ 次的防效没有显著差异ꎮ
２. ５　 ＮＪ￣１８ 在油菜上的定殖动态
ＮＪ￣１８ 接种油菜后从油菜体内只回收到了一
种耐利福平的菌株(图 ３)ꎬ该菌株菌落形态与耐利
福平标记的 ＮＪ￣１８ 完全相同ꎬ而且对油菜菌核病菌
同样具有拮抗活性ꎮ 用 ＮＡ 培养基浸根的油菜植
株体内没有分离到耐利福平的菌株ꎮ 据此可以判
断ꎬ从油菜体内分离出来的该菌株就是接种过的利
福平标记的 ＮＪ￣１８ 菌株ꎮ
Ｆｉｇ. ２　 Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ＮＪ￣１８ ａｇａｉｎｓｔ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ
ｏｎ ｄｅｔａｃｈｅｄ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｏｉｌｓｅｅｄ ｒａｐｅ
Ａ: Ｗａｔｅｒꎻ Ｂ: Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ｌｉｑｕｉｄꎻ Ｃ: ２ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｉｏｎꎻ Ｄ: １０ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｉｏｎꎻ Ｅ: ３０ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｉｏｎꎻ
Ｆ: ５０ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｉｏｎꎻ Ｇ: １００ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｉｏｎꎻ Ｈ: ２００ ｔｉｍｅｓ ｄｉｌｕｔｉｏｎ.
４１４
　
　 ４ 期 　 　 侯毅平ꎬ等:枯草芽胞杆菌 ＮＪ￣１８ 对油菜菌核病的防治效果及其定殖动态
Ｔａｂｌｅ ２　 Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ＮＪ￣１８ ａｇａｉｎｓｔ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｏｎ
ｄｅｔａｃｈｅｄ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｏｉｌｓｅｅｄ ｒａｐｅ
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ Ｌｅｓｉｏｎ ｄｉａｍｅｔｅｒ / ｍｍ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ｒａｔｅ / ％
Ｗａｔｅｒ ４８. ６ －
Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ｌｉｑｕｉｄ ０ １００
Ｄｉｌｕｔｅｄ ２￣ｆｏｌｄ ８. １ ８３. ３
Ｄｉｌｕｔｅｄ １０￣ｆｏｌｄ ２８. ３ ５０. ０
Ｄｉｌｕｔｅｄ ３０￣ｆｏｌｄ ３０. ０ ３８. ３
Ｄｉｌｕｔｅｄ ５０￣ｆｏｌｄ ３６. １ ２５. ７
Ｄｉｌｕｔｅｄ １００￣ｆｏｌｄ ３６. ７ ２３. ３
Ｄｉｌｕｔｅｄ ２００￣ｆｏｌｄ ４３. ２ １０. ９
Ｔａｂｌｅ ３　 Ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｉｃａｃｙ ｏｆ ＮＪ￣１８ ｄｉｌｕｔｅｄ ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ａｇａｉｎｓｔ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｉｎ ｆｉｅｌｄ ｔｒｉａｌ
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ Ｄｉｓｅａｓｅ ｉｎｄｅｘ Ｅｆｆｉｃａｃｙ / ％
Ｄｉｌｕｔｅｄ １００￣ｆｏｌｄ
１ ｔｉｍｅ
２ ｔｉｍｅｓ
１２. １ Ａａ
１１. ２ Ａ
４０. １
４４. ６
Ｄｉｌｕｔｅｄ ２５０￣ｆｏｌｄ
１ ｔｉｍｅ
２ ｔｉｍｅｓ
１２. ９ Ａ
１０. ６ Ａ
３６. ４
４７. ５
Ｄｉｌｕｔｅｄ ５００￣ｆｏｌｄ
１ ｔｉｍｅ
２ ｔｉｍｅｓ
８. ６ Ａ
８. ８ Ａ
５７. ４
５６. ７
Ｋｒｅｓｏｘｉｍ￣ｍｅｔｈｙｌ
Ｗａｔｅｒ
１ ｔｉｍｅ
１ ｔｉｍｅ
１０. ５
２０. ２
４８. １
－
“ａ”ꎬ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ ＬＳＤ ｔｅｓｔ (Ｐ ＝０. ０１) .
Ｆｉｇ. ３ 　 Ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ ｓｔｒａｉｎｓ ｒｅｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ
ｒａｐｅｓｅｅｄ ｏｎ ｔｈｅ Ｒｉｆ￣ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｐｌａｔｅ
Ａ: Ｒｅｃｌａｉｍｅｄ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｇｒｏｗｎ ｏｎ ＮＡ ｃｕｌｔｕｒｅꎻ Ｂ: Ｒｅ￣
ｃｌａｉｍｅｄ Ｂ. ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｇｒｏｗｎ ｏｎ ＮＡ ｃｕｌｔｕｒｅ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｒｉｆａｍｐｉ￣
ｃｉｎꎻ Ｃ: Ｒｅｃｌａｉｍｅｄ Ｂ. ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｏｆ Ｂ ｄｉｌｕｔｅｄ １０￣ｆｏｌｄ ｇｒｏｗｎ ｏｎ
ＮＡ ｃｕｌｔｕｒｅ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｒｉｆａｍｐｉｃｉｎ.
　 　 从油菜体内分离到的 ＮＪ￣１８ 菌落数(表 ４)显
示ꎬＮＪ￣１８ 不但能够在移栽到自然土和灭菌土中的
油菜体内定殖ꎬ而且能够从根部传导到叶部ꎮ 在
ＮＪ￣１８ 接种 １ ｄ后ꎬ从栽培在灭菌土的油菜根部回
收到的 ＮＪ￣１８ 比栽培在自然土的油菜根部回收到
的 ＮＪ￣１８ 显著增多ꎬ这说明土壤中的微生物对 ＮＪ￣
１８ 在油菜根部的定殖有显著的影响ꎬ但接种 ７ ｄ
后ꎬ栽培在无菌土和自然土中的油菜体内定殖的
ＮＪ￣１８ 数量相差不显著ꎬ基本都维持在 １０３ ｃｆｕ / ｇ 鲜
重范围内ꎮ ＮＪ￣１８ 在油菜茎部的定殖规律与其在
根部定殖规律相似ꎮ 栽培在自然土和灭菌土中油
菜体内的 ＮＪ￣１８ 定殖数量都是根部 >茎部 >叶部ꎬ
而且在叶部定殖的时间要短于在根部定殖时间ꎮ
除在灭菌土的根部外ꎬＮＪ￣１８ 在油菜各组织内的定
殖数量都是先增加后下降的趋势ꎬ１０ ｄ 后在植株
各组织内的数量变化较小ꎬ趋于稳定ꎮ
５１４
　
植物病理学报 ４３ 卷
Ｔａｂｌｅ ４　 Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｄｙｎａｍｉｃｓ ｏｆ Ｒｉｆ ｍａｒｋｅｄ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ ｉｎ ｒａｐｅ ｏｉｌｓｅｅｄ
ｏｒｇａｎｓ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｄａｙｓ ａｆｔｅｒ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ ( ×１０３ ｃｆｕ / ｇ ＦＷ)
Ｓｏｉｌ
ｔｙｐｅ
Ｐｌａｎｔ
ｃｕｌｔｕｒｅ
Ｄａｙｓ ａｆｔｅｒ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｎｇ Ｒｉｆ ｍａｒｋｅｄ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ / ｄ
１ ４ ７ １０ １５ ２０ ２５ ３０ ３５ ４０
Ｓｔｅｒｉｌｉｚｅｄ
ｓｏｉｌ
Ｒｏｏｔ ４６７. ００ ６２. ７０ １２. ４０ ５. ７３ ４. ５８ ４. ２０ ３. ２５ ２. ３２ １. ３７ １. ２４
Ｓｔｅｍ １７. ５０ ３２. ４０ １２. １０ ４. ３５ ３. ２３ ２. ９０ ２. ４３ １. １７ １. ０２ ０. ９７
Ｌｅａｆ ０. ００ ２. ８３ ６. ７１ ４. １２ １. ３３ ０. ９６ ０. ７３ ０. ６８ ０. ４７ ０. ００
Ｎａｔｕｒａｌ
ｓｏｉｌ
Ｒｏｏｔ ２０. ００ ２３. ８０ １１. ６０ ７. ２５ ４. ８７ ３. ３８ ３. ２５ ２. １３ １. ３１ ０. ８６
Ｓｔｅｍ ０. ４３ ４. ７９ ７. ５８ ４. ３３ ２. ３７ １. ７４ １. ２７ ０. ９２ ０. ００ ０. ００
Ｌｅａｆ ０. ００ ０. ３３ ０. ８３ １. ８７ ０. ７７ ０. ６６ ０. ５９ ０. ００ ０. ００ ０. ００
３　 讨论
生防细菌 ＮＪ￣１８ 是本实验室从油菜田土壤中
筛选分离到的一株生防细菌ꎮ 在平板上对峙培养
能形成 ３. ４ ｃｍ的抑菌圈ꎬ比已报道[１２ꎬ１９]的生防菌
抑菌圈大ꎮ 显微镜下观察到 ＮＪ￣１８ 可使油菜菌核
病菌菌丝畸形ꎬ菌丝细胞顶端膨大ꎬ细胞质浓缩ꎬ这
与 Ｌｉ等[２０]和 Ｊｉａｎｇ 等[１２]报道的结果相似ꎮ ＮＪ￣１８
发酵滤液对菌丝生长量影响明显ꎬ这说明 ＮＪ￣１８ 能
代谢产出一种拮抗物质ꎬ抑制菌丝生长ꎬ该拮抗物
质有待进一步研究ꎮ
通过离体叶片及田间小区试验可以看出ꎬＮＪ￣
１８ 对油菜菌核病具有较好的防治效果ꎮ 田间小区
试验发现ꎬＮＪ￣１８ 发酵液喷药 １ 次和喷药 ２ 次对油
菜菌核病的防治效果没有显著差异ꎬ这说明 ＮＪ￣１８
防治油菜菌核病的效果与喷药的时期有很大的关
系ꎬ第一次喷药是在油菜的盛花期ꎬ这是防治油菜
菌核病的关键时期[１]ꎬ而第二次喷药是在一周后ꎬ
油菜菌核病的防治时期已过ꎬ此时喷药对油菜菌核
病的防治效果极低或没有效果ꎮ 另外ꎬ在田间试验
中ꎬＮＪ￣１８ 发酵液稀释的倍数越高ꎬ菌体的浓度越
低ꎬ防治的效果反而越好ꎬ其原因有待进一步研究ꎮ
ＮＪ￣１８ 能在油菜体内定殖ꎬ并能从油菜的根部
传导到叶部ꎬ这是国内外首次报道非内生细菌也能
在植物的体内定殖ꎮ 浸根移栽 １ ｄ 后ꎬ移栽到灭菌
土的油菜体内回收的 ＮＪ￣１８ 菌株ꎬ明显多于移栽到
自然土中油菜体内分离到的 ＮＪ￣１８ 菌株数ꎬ但一周
后从移栽到不同的土壤中的油菜体内分离到的
ＮＪ￣１８ 菌株没有明显差别ꎬ这说明土壤中的微生物
只对 ＮＪ￣１８ 在油菜体内的初始定殖量有影响ꎮ 无
论是移栽到自然土还是灭菌土中的油菜ꎬＮＪ￣１８ 在
油菜不同组织中定殖的数量都是呈根部 >茎部 >
叶部ꎬ而且在叶部定殖时间较短ꎬ这可能与 ＮＪ￣１８
是从油菜田土壤中分离到的有关ꎬ土壤生境是其最
适宜的生存环境ꎬ所以越接近土壤ꎬ定殖的数量越
多ꎬ时间也越长ꎮ
本研究通过从室内到田间的一系列试验结果
表明ꎬＮＪ￣１８ 是一株能够在油菜体内定殖并对油菜
菌核病具有很高防治效果的生防菌株ꎬ在农业生产
上具有很好的开发利用前景ꎮ
参考文献
[１] 　 Ｃｈｅｎ Ｌ Ｆꎬ Ｘｕ Ｊ Ｙ. Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ ｐｌａｎｔ ｐａｔｈｏｌｏｇｙ ( ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ) [Ｍ] . Ｂｅｉｊｉｎｇ: Ｃｈｉｎａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｐｒｅｓｓ(北
京:中国农业出版社)ꎬ ２００１. ２１１ －２１５.
[２] 　 Ｘｉｅ Ｙꎬ Ｊｉａｎｇ Ｑꎬ Ｈｕａｎｇ Ｂ Ｑ. Ｔｈｅ ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｏｆ ｓｔｕｄｙｉｎｇ
ｏｎ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｏｆ ｒａｐｅｓｅｅｄ( ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ)[Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｙｉｃｈｕｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ(宜春学院
学报)ꎬ ２００７ꎬ ２９(６): １ －２ ＋１６７.
[３] 　 Ｐａｎ Ｙ Ｌꎬ Ｗｕ Ｈ Ｚꎬ Ｙａｎｇ Ｊ Ｈꎬ ｅｔ ａｌ. Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ
ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ
ｔｏ ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ(ＭＢＣ) ａｎｄ ｉｔｓ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｉｎ Ｊｉａｎｇｓｕ
Ｐｒｏｖｉｎｃｅ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ)[Ｊ] . Ｊｉａｎｇｓｕ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌ￣
ｔｕｒｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ(江苏农业学报)ꎬ １９９８ꎬ １４(３): １５９ －
１６３.
[４] 　 Ｓｈｉ Ｚ Ｑꎬ Ｚｈｏｕ Ｍ Ｇꎬ Ｙｅ Ｚ Ｙꎬ ｅｔ ａｌ. Ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｍｏｎｉ￣
ｔｏｒｉｎｇ ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｔｏ ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ ( ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ) [ Ｊ] . Ｊｉａｎｇｓｕ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ
(江苏农业学报)ꎬ ２０００ꎬ １６(４): ２２６ －２２９.
[５] 　 Ｌｉ Ｇ Ｑꎬ Ｈｕａｎｇ Ｈ Ｃꎬ Ａｃｈａｒｙａ Ｓ Ｎ. Ａｎｔａｇｏｎｉｓｍ ａｎｄ
６１４
　
　 ４ 期 　 　 侯毅平ꎬ等:枯草芽胞杆菌 ＮＪ￣１８ 对油菜菌核病的防治效果及其定殖动态
ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｏｆ Ｕｌｏｃｌａｄｉｕｍ ａｔｒｕｍ ｏｎ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ
ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ [Ｊ] . Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｏｎｔｒｏｌꎬ ２００３ꎬ ２８: １１ －
１８.
[６] 　 Ｋａｍｅｎｓｋｙ Ｍꎬ Ｏｖａｄｉｓ Ｍꎬ Ｃｈｅｔ Ｉꎬ ｅｔ ａｌ. Ｓｏｉｌ￣ｂｏｒｎｅ
ｓｔｒａｉｎ ＩＣ１４ ｏｆ Ｓｅｒｒａｔｉａ ｐｌｙｍｕｔｈｉｃａ ｗｉｔｈ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｍｅｃｈ￣
ａｎｉｓｍｓ ｏｆ ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｐｒｏｖｉｄｅｓ ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ Ｂｏｔ￣
ｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａ ａｎｄ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｄｉｓｅａｓｅｓ[ Ｊ] .
Ｓｏｉｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ ＆Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ２００３ꎬ ３５: ３２３ －３３１.
[７] 　 Ｅｌａｄ Ｙ. Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｈａｒｚｉａｎｕｍ Ｔ３９ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｆｏｒ
ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｄｉｓｅａｓｅｓ￣ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ Ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａꎬ
Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ａｎｄ Ｃｌａｄｏｓｐｏｒｉｕｍ ｆｕｌｖｕｍ
[Ｊ] . Ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ ２０００ꎬ １０
(４): ４９９ －５０７.
[８] 　 ＭｃＱｕｉｌｋｅｎ Ｍ Ｐꎬ Ｍｉｔｃｈｅｌｌ Ｓ Ｊꎬ Ｂｕｄｇｅ Ｓ Ｐꎬ ｅｔ ａｌ.
Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ Ｃｏｎｉｏｔｈｙｒｉｕｍ ｍｉｎｉｔａｎｓ ｏｎ ｓｃｌｅｒｏｔｉａｌ ｓｕｒｖｉｖａｌ
ａｎｄ ａｐｏｔｈｅｃｉａｌ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｔａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｉｎ
ｆｉｅｌｄ￣ｇｒｏｗｎ ｏｉｌｓｅｅｄ ｒａｐｅ[ Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙꎬ １９９５ꎬ
４４: ８８３ －８９６.
[９] 　 Ｘｕｅ Ｐ Ｑꎬ Ｌｉｕ Ｆꎬ Ｑｉａｏ Ｊ Ｑꎬ ｅｔ ａｌ. Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ｏｆ Ｂａｃｉｌ￣
ｌｕｓ ｓｔｒａｉｎｓ ｗｉｔｈ ｈｉｇｈ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｎ ｒａｐｅ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ
ｄｉｓｅａｓｅ ａｎｄ ｉｔｓ ｌｉｐｏｐｅｐｔｉｄｅ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ( ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ)[Ｊ] . Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｐｈｙｌａｃｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ(植物保护
学报)ꎬ ２０１１ꎬ ３８(２): １２７ －１３２.
[１０] Ｇａｏ Ｘ Ｎꎬ Ｃｈｅｎ Ｊ Ｙꎬ Ｈｕａｎｇ Ｌ Ｌꎬ ｅｔ ａｌ. Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ｏｆ
ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｉｃ ｅｎｄｏｐｈｙｔｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｒｏｌｅｓ ｉｎ ｃｏｎ￣
ｔｒｏｌ ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｉｎ ｃａｎｏｌａ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ)
[Ｊ] . Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ(农药学学
报)ꎬ ２０１０ꎬ １２(２): １６１ －１６７.
[１１] Ｚｈａｎｇ Ｙꎬ Ｂａｉ Ｃꎬ Ｒａｎ Ｇ Ｈꎬ ｅｔ ａｌ. Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ
ｅｎｄｏｐｈｙｔｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎ ＹＳ４５ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｃｉｔｒｕｓ ｘｙｌｅｍ
ａｎｄ ｉｔｓ ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｇａｉｎｓｔ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｔｅｍ ｒｏｔ ｏｆ
ｒａｐｅｓｅｅｄ ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ ) [ Ｊ ] . Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａ
Ｓｉｎｉｃａ(植物病理学报)ꎬ ２００９ꎬ ３９(６): ６３８ －６４５.
[１２] Ｊｉａｎｇ Ｍ Ｌꎬ Ｚｈａｏ Ｒꎬ Ｈｕ Ｘ Ｊꎬ ｅｔ ａｌ. Ｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ
ａｎｔｉｆｕｎｇ ａ ｌｅｎｄｏ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ ＢＹ￣２ ｉｎ ｏｉｌｃｒｏｐ ｒａｐｅ ａｎｄ ｉｔｓ
ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ｄｉｓｅａｓｅ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉ￣
ｏｒｕｍ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ) [ Ｊ] . Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ
(植物病理学报)ꎬ ２００７ꎬ ３７(２): １９２ －１９６.
[１３] Ｈｕ Ｘ Ｊꎬ Ｒｏｂｅｒｔｓ Ｄ Ｐꎬ Ｊｉａｎｇ Ｍ Ｌ. Ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｉｎｃｉｄｅｎｃｅ
ｏｆ ｄｉｓｅａｓｅ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｔａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ａｎｄ ｉｍ￣
ｐｒｏｖｅｄ ｐｌａｎｔ ｖｉｇｏｒ ｏｆ ｏｉｌｓｅｅｄ ｒａｐｅ ｗｉｔｈ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ
Ｔｕ￣１００ [ Ｊ] . Ａｐｐｌ. Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ. Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ. ꎬ ２００５ꎬ
６８: ８０２ －８０７.
[１４] Ｙａｎ Ｌ Ｙꎬ Ｚｈｏｕ Ｌ Ｃꎬ Ｔａｎ Ｙ Ｊꎬ ｅｔ ａｌ. Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ
ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ｂａｃｔｅｒｉａ ｆｒｏｍ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ
ｒａｐｅｓｅｅｄ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ)[Ｊ] . Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｏｉｌ Ｃｒｏｐ
Ｓｃｉｅｎｃｅｓ(中国油料作物学报)ꎬ ２００５ꎬ ２７(２): ５５ －
６１.
[１５] Ｚｈａｎｇ Ｓ Ｐꎬ Ｋｕａｎｇ Ｊꎬ Ｗａｎｇ Ｊ Ｘꎬ ｅｔ ａｌ. Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ
ｏｆ ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎ ＮＪ￣１８ ａｎｄ ｉｔｓ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｉｃ
ａｃｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｓｅｖｅｒａｌ ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｆｕｎｇｉ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ)
[Ｊ] . Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ(中国农学
通报)ꎬ２００９ꎬ２５(３): ２１３ －２１７.
[１６] Ｆａｎｇ Ｚ Ｄ. Ｐｌａｎｔ ｐａｔｈｏｌｏｇｙ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｍｅｔｈｏｄ ( ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ) [ Ｍ ] . Ｂｅｉｊｉｎｇ: Ｃｈｉｎａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｐｒｅｓｓ
(北京:中国农业出版社)ꎬ１９９８.
[１７] Ｍｕ Ｃ Ｑꎬ Ｌｉｕ Ｘꎬ Ｌｕ Ｑ Ｇꎬ ｅｔ ａｌ. Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ
ｒｉｃｅ ｂｌａｓｔ ｂｙ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ Ｂ￣３３２ ｓｔｒａｉｎ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ)
[Ｊ] . Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｐｈｙｌａｃｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ (植物保护学报)ꎬ
２００７ꎬ３４(２):１２３ －１２８.
[１８] Ｌｉ Ｑ Ｑꎬ Ｌｕｏ Ｋꎬ Ｌｉｎ Ｗꎬ ｅｔ ａｌ. Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｎ ｔｈｅ ｃｏｌｏｎｉ￣
ｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｎｔｏｐｈｙｔｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａ Ｂ４７ ａｎｄ ｉｔｓ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｎ ｔｏ￣
ｍａｔｏ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｗｉｌｔ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ) [ Ｊ] . Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｐｈｙ￣
ｌａｃｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ(植物保护学报)ꎬ ２００６ꎬ ３３(４): ３６３ －
３６８.
[１９] Ｃｈｅｎ Ｓ Ｙꎬ Ｙａｎｇ Ｂ Ｙꎬ Ｇａｏ Ｍ Ｙꎬ ｅｔ ａｌ. Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ
Ｓｃｌｅｒｏｔｉａ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ ｂｙ Ｂａ￣
ｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ) [ Ｊ ] . Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ(应用与环
境生物学报)ꎬ ２００５ꎬ １１(３): ３７３ －３７６.
[２０] Ｌｉ Ｇ Ｑꎬ Ｗａｎｇ Ｄ Ｂ. Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｓ
ｆｏｒ ｕｓｅ ａｓ ｔｈｅ ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ａｇｅｎｔｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｄｉｓ￣
ｅａｓｅ ( Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ) ｏｆ ｒａｐｅｓｅｅｄ ( ｉｎ Ｃｈｉ￣
ｎｅｓｅ)[Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｕａｚｈｏｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ
(华中农业大学学报)ꎬ １９９１ꎬ １０(１): ３０ －３５.
责任编辑:于金枝
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