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Effect of exogenous nitric oxide on seedling growth and physiological characteristics of maize seedlings under cadmium stress

外源NO对镉胁迫下玉米幼苗生长和生理特性的影响



全 文 :书外源犖犗对镉胁迫下玉米幼苗生长和
生理特性的影响
王芳1,2,3,常盼盼1,陈永平1,彭云玲1,2,3,方永丰1,2,3,王汉宁1,2,3
(1.甘肃农业大学农学院,甘肃 兰州730070;2.甘肃省干旱生境作物学重点实验室,甘肃 兰州730070;
3.甘肃省作物遗传改良与种质创新重点实验室,甘肃 兰州730070)
摘要:采用盆栽试验,研究了外源NO对镉(Cd)胁迫下玉米幼苗膜脂过氧化、渗透调节物质、抗氧化酶活性及叶绿
素含量等生理特性的影响。结果表明,与对照比较,100mg/L的Cd处理降低了玉米幼苗脯氨酸(Pro)和叶绿素含
量,减缓了可溶性蛋白和可溶性糖含量的积累,抗氧化酶活性下降,丙二醛(MDA)含量和超氧阴离子(O2-·)产生
速率增加、质膜透性增大;与100mg/LCd处理比较,添加100μmol/L硝普钠(SNP)处理显著增加了Cd胁迫下玉
米幼苗生物量,提高了超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)和过氧化氢酶(CAT)的活性,增加了幼苗叶绿素
和脯氨酸含量、促进了可溶性糖和可溶性蛋白的积累,降低了 MDA含量、细胞质膜的透性以及O2-·产生的速率。
因此,外源NO对Cd胁迫下玉米生长有一定的缓解作用,可以增强玉米幼苗对Cd毒害的抗性。
关键词:玉米;外源NO;镉胁迫;生理特性
中图分类号:S513.01;Q945.78  文献标识码:A  文章编号:10045759(2013)02017809
  镉(Cd)是植物非必需元素,具有较高的移动性和毒性,对各种生物有机体具有潜在的危害,能引起人类很多
的疾病,被视为是对人类最具威胁的重金属之一[1]。随着采矿、冶炼和镉处理工业的发展及农业生产上含重金属
的有机肥、化肥等的大量使用,土壤Cd污染日益严重[2]。研究表明,Cd在土壤中的积累对植物的危害很大,Cd
被植物吸收后,易导致植物遗传物质损伤和变异,损伤细胞膜,破坏叶绿体结构和功能,影响叶绿素的合成,从而
抑制光合及呼吸过程,降低酶的活性,影响植物的生理代谢活动[36],诱导植物产生过氧化损伤,影响生长发育。
而且,Cd还可导致农作物产量和质量下降,可以通过食物链危害人类的健康[7]。因此,研究植物Cd毒害的保护
措施对农业可持续发展具有重要意义。
一氧化氮(nitricoxide,NO)是植物体内最新发现的一种生物活性分子,通过酶促和非酶促途径产生。NO
对植物体具有保护和毒害2种效应,而且这种效应与细胞的生理环境和NO有效生理浓度有关,低浓度的NO可
作为抗氧化剂清除超氧离子等活性氧(ROS),并通过诱导抗氧化酶基因的表达而具有保护效应;高浓度NO则
与超氧离子相互作用生成过氧亚硝酸阴离子,后者经质子化形成具有强氧化性的过氧亚硝酸(HOONO),破坏生
物大分子的结构与功能,具有生物毒性[8]。已有大量研究表明,NO广泛存在于植物组织中,并参与种子萌发、植
株生长及对各种逆境胁迫的应答[9]等过程。NO对盐胁迫下玉米(犣犲犪犿犪狔狊)幼苗的生长具有缓解作用[10],NO
还能缓解盐胁迫对小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)幼苗的氧化损伤[11],增强番茄(犔狔犮狅狆犲狉狊犻犮狅狀犲狊犮狌犾犲狀狋狌犿)幼苗光能
的捕获和转换[12],提高NaCl胁迫下黄瓜(犆狌犮狌犿犻狊狊犪狋犻狏狌狊)幼苗的抗氧化酶活性,促进光合作用[13]。目前,已经
有NO参与植物对Cd2+胁迫的应答及反应调控研究[14],硝普钠(SNP)预处理能缓解Cd2+、Pb2+胁迫对白羽扇
豆(犔狌狆犻狀狌狊犪犾犫狌狊)根生长的抑制作用[15]、缓解Cd2+胁迫对向日葵(犎犲犾犻犪狀狋犺狌狊犪狀狀狌狌狊)植株的氧化损伤 [16]、减
缓Cd2+胁迫对绿豆(犘犺犪狊犲狅犾狌狊狉犪犱犻犪狋狌狊)幼苗根尖生长的抑制作用[17]。而对于施加外源的信号分子来进一步缓
解重金属对玉米的伤害却鲜有报道。为此,本研究以玉米为材料,研究了外源NO对镉胁迫下玉米幼苗主要几种
保护酶活性、脯氨酸积累和膜质过氧化的变化,以及玉米叶片叶绿体含量等生理特性的影响,探讨NO缓解镉胁
178-186
2013年4月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第22卷 第2期
Vol.22,No.2
收稿日期:20120919;改回日期:20121203
基金项目:973计划前期研究专项(2012CB722902)和甘肃农业大学盛彤笙科技创新基金(GSAU-STS-1229)资助。
作者简介:王芳(1980),女,甘肃民勤人,讲师,在读博士。Email:wangfang@gsau.edu.cn
通讯作者。Email:wanghn@gsau.edu.cn
迫的生理机理,为探明植物体内外源NO减轻镉毒害机理提供依据。
1 材料与方法
1.1 材料培养与处理
试验于2012年4月至7月进行,试验玉米品种为郑单958。挑选饱满均一的玉米种子,用0.1%的次氯酸钠
消毒10min后,漂洗干净,在25℃下,以蒸馏水浸种12h后播种到垫有清洗干净沙子的直径为15cm的培养皿
中,置于25℃培养箱中暗发芽,玉米出苗后,选取生长一致的三叶一心期的幼苗转移到塑料花盆中,每盆植苗8
株,于人工气候室内常规培养,每2d用1/5浓度的 Hoaglands营养液浇灌,待第4片叶长出后,选取长势良好和
长势一致的玉米幼苗进行镉胁迫试验。
NO供体硝普钠(sodiumnitropprusside,SNP,购自德国 Merck公司),先用蒸馏水配制100mmol/L的母
液,4℃保存,用时按试验所需的浓度进行稀释。Cd2+供体为硫酸镉(3CdSO4·8H2O,国产分析纯)。
试验首先设系列Cd2+(0,25,50,100,150,200mg/L)浓度梯度,对玉米幼苗进行 Hoagland营养液处理,培
养10d后根据幼苗相对生长速率,筛选出100mg/L为Cd2+胁迫浓度;然后在选出的100mg/LCd2+胁迫浓度
中加入系列SNP(0,10,50,100,150,200μmol/L)浓度梯度进行Hoagland营养液处理,培养10d后同样根据幼
苗相对生长速率选出浓度为100μmol/L的SNP用于进一步试验。因SNP分解产物除 NO 外,还会生成
NO2-,100μmol/LSNP最多降解生成1μmol/L的NO2
- [14],所以设1.0μmol/L的NO2
-处理作为对照,根据
筛选的Cd2+和SNP浓度,外源NO对Cd2+毒害缓解效应试验设置5个处理:1)对照(CK),Hoagland溶液;2)含
100mg/LCd2+的 Hoagland溶液,以Cd表示;3)含100μmol/LSNP的 Hoagland溶液,以SNP表示;4)含100
mg/LCd2+和100μmol/LSNP的 Hoagland溶液,以Cd+SNP表示;5)含100mg/LCd
2+ 和1.0μmol/L
NaNO2 的 Hoagland溶液,以Cd+NaNO2 表示。每处理5次重复,处理7d后进行各项指标的测定,每个指标
至少测3次重复,结果取平均值。
1.2 测定方法
鲜重和干重的测定:处理7d后,取不同处理的植株各10株,先用自来水冲洗,再用蒸馏水冲洗3次,用滤纸
吸干表面水分,立即称鲜重。再将鲜样品材料置105℃烘箱中杀青10min,转至65℃烘干,称其干重。
粗酶液的提取:取0.5g玉米叶片,加入5mL0.05mol/L(pH值为7)的磷酸缓冲液在冰浴下研磨至匀浆,
转入到5mL离心管中,再用PBS缓冲液洗涤研钵,将洗涤液全部转入离心管中,4℃下12000r/min离心20
min,上清液为粗酶液,4℃保存备用[18]。POD活性的测定采用愈创木酚法[19],以每min内A470值减少0.01为1
个过氧化物酶活力单位(U),酶活性以 U/(min·g)表示。CAT和SOD活性的测定按《植物生理学实验指
导》[20],以每min内A240减少0.1的酶量为1个酶活性单位(U)计算CAT活性,酶活性以 U/(min·gFW)表
示,SOD的测定用NBT法,以酶液用量(μL)为横坐标,以NBT光化还原的抑制率(%)为纵坐标绘制二者相关
曲线,NBT光化还原被抑制50%的酶液量为1个酶活单位,以U/gFW表示。脯氨酸含量的测定采用茚三酮显
色法[21],MDA含量的测定采用硫代巴比妥酸法[21],可溶性糖的测定采用蒽酮比色法[21],可溶性蛋白含量的测定
采用考马斯亮蓝法,参照邹琦主编的《植物生理学实验指导》[22],质膜相对透性的测定采用DDS11A电导仪法,
以相对电导率表示[22]。玉米幼苗叶绿素含量的测定采用冯双华[23]的方法。用羟胺氧化反应法测定O2-·产生
速率[24]。
1.3 数据统计分析
数据采用 MicrosoftExcel2003软件进行绘图,用SPSS16.0软件进行方差分析。
2 结果与分析
2.1 不同浓度镉处理对玉米幼苗生长的影响
用不同浓度(25~200mg/L)的Cd处理玉米幼苗,其株高、地上部和地下部鲜重和干重均呈下降趋势,与对
照相比,当Cd浓度为100mg/L,株高、地上鲜重、地上干重、地下鲜重和地下干重均达到显著水平,分别下降了
54.75%,57.52%,30.00%,47.92%和31.43%(表1)。
971第22卷第2期 草业学报2013年
表1 不同浓度镉处理对玉米幼苗生长的影响(平均数±犛犈)
犜犪犫犾犲1 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犆犱犮狅狀狋犲狀狋狊狅狀狋犺犲犵狉狅狑狋犺狅犳犿犪犻狕犲狊犲犲犱犾犻狀犵狊(犿犲犪狀±犛犈)
处理
Treatment
株高
Height
(cm)
地下鲜重
Rootfreshweight
(g/株Plant)
地下干重
Rootdryweight
(g/株Plant)
地上鲜重
Shootfreshweight
(g/株Plant)
地上干重
Shootdryweight
(g/株Plant)
CK 22.74±0.42a 1.13±0.02a 0.10±0.00a 3.84±0.21a 0.35±0.02a
25mg/LCd2+ 18.42±0.96b 0.97±0.06ab 0.10±0.00a 3.06±0.24ab 0.30±0.02ab
50mg/LCd2+ 14.50±0.98c 0.87±0.02b 0.10±0.00a 2.71±0.26b 0.29±0.02ab
100mg/LCd2+ 10.29±0.17d 0.48±0.02c 0.07±0.01b 2.00±0.08bc 0.24±0.01b
150mg/LCd2+ 9.78±0.44d 0.55±0.04c 0.06±0.00b 1.87±0.11c 0.22±0.02b
200mg/LCd2+ 8.94±0.84d 0.51±0.07c 0.05±0.00b 1.65±0.09c 0.20±0.01b
 注:不同小写字母表示不同处理间0.05水平差异显著。下同。
 Note:Differentsmallettersshowsignificantdifferenceatthe0.05levelamongthetreatments.Thesamebelow.
2.2 不同浓度外源NO对镉胁迫下玉米幼苗生长的影响
100mmol/LCd单独处理时,玉米幼苗株高、地上鲜重、地上干重、地下鲜重和地下干重均显著低于对照,分
别下降了64.46%,73.68%,58.33%,36.75%和20.00%。与100mmol/LCd胁迫处理相比,10~200μmol/L
SNP处理均使幼苗在镉胁迫下的生物量发生变化,不同浓度SNP处理对玉米幼苗生物量积累的影响存在差异,
其中以SNP100μmol/L处理效果最好,株高、地上鲜重、地上干重、地下鲜重和地下干重均显著高于Cd单独处
理,分别提高了16.52%,40.48%,20.00%,18.64%和13.64%。SNP浓度高于100μmol/L后,生物量积累呈
下降趋势(表2)。
表2 不同浓度外源犖犗对镉胁迫下玉米幼苗生长的影响(平均数±犛犈)
犜犪犫犾犲2 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犿犪犻狕犲狊犲犲犱犾犻狀犵犵狉狅狑狋犺狌狀犱犲狉犮犪犱犿犻狌犿狊狋狉犲狊狊(犿犲犪狀±犛犈)
处理
Treatment
株高
Height
(cm)
地下鲜重
Rootfreshweight
(g/株Plant)
地下干重
Rootdryweight
(g/株Plant)
地上鲜重
Shootfreshweight
(g/株Plant)
地上干重
Shootdryweight
(g/株Plant)
CK 19.50±0.10a 0.95±0.06a 0.12±0.01a 2.34±0.06a 0.25±0.01a
100mg/LCd2+ 6.57±0.03d 0.25±0.02d 0.04±0.01c 1.44±0.02f 0.19±0.00d
100mg/LCd2++10μmol/LSNP 6.47±0.07d 0.32±0.02b 0.05±0.00b 1.48±0.04d 0.20±0.01d
100mg/LCd2++50μmol/LSNP 6.93±0.15c 0.29±0.04b 0.05±0.01b 1.62±0.07cd 0.20±0.01d
100mg/LCd2++100μmol/LSNP 7.87±0.12b 0.42±0.02b 0.05±0.00b 1.77±0.02b 0.22±0.00b
100mg/LCd2++150μmol/LSNP 6.60±0.06cd 0.26±0.01d 0.04±0.00c 1.68±0.04c 0.22±0.00c
100mg/LCd2++200μmol/LSNP 6.33±0.18e 0.27±0.01c 0.04±0.00c 1.48±0.12e 0.19±0.00e
2.3 外源NO对镉胁迫下玉米幼苗鲜重和干重的影响
用100μmol/LSNP单独处理,玉米的单株鲜重和干重分别显著高于各自对照(图1),用100mg/L的Cd处
理,玉米幼苗的单株鲜重和干重分别显著低于各自对照,而用SNP100μmol/L+Cd100mg/L处理,其单株鲜重
和干重分别显著高于100mg/L的Cd处理,但是仍显著低于各自对照,而Cd+NaNO2 处理则无此效应。
2.4 外源NO对镉胁迫下玉米幼苗细胞质膜透性和 MDA含量的影响
用SNP单独处理,玉米幼苗的细胞质膜透性显著低于对照(图2A)。100mg/LCd胁迫使玉米幼苗叶片的
细胞质膜透性显著增加,与对照相比,增加了45.99%。Cd+SNP处理显著降低了叶片的细胞质膜透性,与单独
Cd胁迫相比,下降了30.90%,而用NaNO2+SNP则无此缓解效应。
081 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.2
用SNP处理,玉米幼苗的 MDA含量显著低于
图1 外源犖犗对镉胁迫下玉米幼苗生物量的影响
犉犻犵.1 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犫犻狅犿犪狊狊狅犳
犿犪犻狕犲狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉犮犪犱犿犻狌犿狊狋狉犲狊狊(犿犲犪狀±犛犈)
   图中不同小写字母表示不同处理间0.05水平差异显著。下同。Differ
entsmallettersshowsignificantdifferenceatthe0.05levelamongthe
treatments.Thesamebelow.
对照(图2B),与对照相比,Cd胁迫下玉米幼苗叶片
中 MDA含量显著提高,比对照增加了46.08%,说
明Cd胁迫诱导活性氧产生积累,使细胞结构受到
损伤,添加SNP处理显著降低了Cd胁迫下玉米叶
片中 MDA 的积累,使 MDA 含量下降,而 Cd+
NaNO2处理则无此效应,表明外源 NO能够缓解
Cd胁迫对膜脂的过氧化损伤。
2.5 外源NO对镉胁迫下玉米幼苗过氧化物酶活
性和超氧阴离子(O2-·)的影响
用SNP处理,玉米叶中CAT、POD和SOD的
活性分别高于相应对照(图3)。与对照相比,Cd处
理明显降低了玉米幼苗叶片中3种酶的活性,CAT
活性比对照降低了56.18%(图3A),POD活性比对
照降低了69.14%(图3B),其中,SOD活性变化最
为明显,比对照降低了88.55%(图3C);Cd+SNP处理明显缓解了Cd胁迫对3种酶活性的抑制作用,都达到了
显著作用,CAT、POD和SOD活性比Cd处理分别增加了31.25%,29.62%和73.38%。Cd+NaNO2 处理的
SOD、CAT、POD活性均与Cd处理无显著差异。
用SNP处理,玉米叶中O2-·产生速率低于对照,但差异不显著;用Cd处理,叶片O2-·产生速率分别显著
高于相应对照和单独用SNP处理,与对照相比增加了47.02%,而用SNP+Cd处理,叶片O2-·产生速率均低于
用Cd处理和Cd+NaNO2 处理,但仍高于对照(图3D)。
图2 外源犖犗对镉胁迫下玉米幼苗细胞膜透性和 犕犇犃含量的影响(平均数±犛犈)
犉犻犵.2 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀狋犺犲犿犲犿犫狉犪狀犲狆犲狉犿犲犪犫犻犾犻狋狔犪狀犱犕犇犃犮狅狀狋犲狀狋犻狀犿犪犻狕犲狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉犮犪犱犿犻狌犿狊狋狉犲狊狊
2.6 外源NO对镉胁迫下玉米幼苗叶片可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸含量的影响
可溶性糖是植物重要的渗透调节物质。用SNP处理后,玉米幼苗可溶性糖含量高于对照,但差异不显著。
与对照相比,Cd胁迫使可溶性糖的含量显著下降,比对照降低了45.89%,SNP+Cd处理与Cd胁迫相比,可溶
性糖含量增加了25.83%,而用Cd+NaNO2 处理的可溶性糖含量与Cd处理无显著差异(图4A)。
可溶性蛋白含量与植物的抗逆性关系密切,Cd胁迫抑制了可溶性蛋白的积累,与对照相比,下降了27.19%,
而SNP缓解了这种抑制作用,用SNP+Cd处理,可溶性蛋白含量增加,与Cd胁迫相比,增加了14.90%,而用
Cd+NaNO2 处理的可溶性糖含量与Cd处理无显著差异(图4B)。
181第22卷第2期 草业学报2013年
图3 外源犖犗对镉胁迫下玉米幼苗犛犗犇、犆犃犜和犘犗犇活性和超氧阴离子产生速率的影响(平均值±犛犈)
犉犻犵.3 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀狋犺犲犛犗犇,犆犃犜,犘犗犇犪犮狋犻狏犻狋狔犪狀犱犗2-·
犵犲狀犲狉犪狋犻狅狀狉犪狋犲犻狀犿犪犻狕犲狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉犮犪犱犿犻狌犿狊狋狉犲狊狊(犿犲犪狀±犛犈)
图4 外源犖犗对镉胁迫下玉米幼苗可溶性糖、
可溶性蛋白和脯氨酸含量的影响(平均数±犛犈)
犉犻犵.4 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀狋犺犲狊狅犾狌犫犾犲
狊狌犵犪狉,狊狅犾狌犫犾犲狆狉狅狋犲犻狀犪狀犱狆狉狅犾犻狀犲犮狅狀狋犲狀狋犻狀犿犪犻狕犲
狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉犮犪犱犿犻狌犿狊狋狉犲狊狊(犿犲犪狀±犛犈)
281 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.2
  脯氨酸是植物重要的渗透调节和抗氧化物质,Cd胁迫使脯氨酸的含量明显下降,与对照相比下降了6.33%,
用SNP+Cd处理,叶片中脯氨酸的含量明显增加,且达到显著水平(图4C)。Cd+NaNO2 处理的脯氨酸含量与
Cd处理无显著差异。
2.7 外源SNP对镉胁迫下玉米幼苗叶片叶绿素含量
的影响
与对照相比,Cd处理使玉米幼苗叶片的叶绿素a
含量、叶绿素b含量和叶绿素a+b含量分别下降了
20.93%,34.92%和32.13%,差异达显著水平(犘<
0.05)。添加SNP处理明显抑制了Cd胁迫导致的叶
绿素a含量、叶绿素b含量和叶绿素a+b含量的下
降,SNP+Cd处理分别比Cd处理提高了18.40%,
29.31%和24.81%,单独用SNP处理,玉米叶片的叶
绿素含量高于对照,而 NaNO2 处理的叶绿素含量与
Cd胁迫无明显变化(表3)。
3 讨论
表3 外源 犖犗对镉胁迫下玉米幼苗叶片叶绿素含量的影响
犜犪犫犾犲3 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀狋犺犲犮犺犾狅狉狅狆犺狔犾
犮狅狀狋犲狀狋犻狀犾犲犪狏犲狊狅犳犿犪犻狕犲狊犲犲犱犾犻狀犵狊狌狀犱犲狉犮犪犱犿犻狌犿狊狋狉犲狊狊
mg/gFW
处理
Treatment
叶绿素a含量
Chlorophyla
content
叶绿素b含量
Chlorophylb
content
叶绿素a+b含量
Chlorophyl (a+b)
content
CK 1.29±0.02ab 0.63±0.07b 2.21±0.10b
Cd 1.02±0.06b 0.41±0.03d 1.50±0.10c
SNP 1.33±0.01a 0.87±0.03a 2.55±0.07a
Cd+SNP 1.25±0.02ab 0.58±0.03c 2.00±0.06b
Cd+NaNO2 1.11±0.01b 0.44±0.01d 1.68±0.03c
  Cd是危害植物生长发育的有害元素[25],它能诱导活性氧的产生,导致膜质过氧化和生物大分子的损伤,叶
绿素含量降低,从而使光合作用等生理过程发生紊乱,抑制植株的生长[26],高浓度Cd2+则会明显抑制抗氧化酶
活性,加剧活性氧的释放,导致植物生长严重受抑制[27]。NO具有信号分子的作用,可以减少非生物胁迫下植物
体内ROS的积累,缓解各种胁迫造成的氧化损伤,从而增强植物的适应能力[28]。本研究结果表明,100mg/L的
Cd2+处理显著降低了玉米叶绿素含量,使 MDA含量和O2-·产生速率增加、质膜透性增大、抗氧化酶活性下降,
可溶性糖、可溶性蛋白、脯氨酸等渗透调节物质含量降低。因此,Cd2+多方面干扰玉米正常生理和生化代谢,最
终导致产量质量下降。添加100μmol/LSNP处理对Cd胁迫下玉米幼苗具有明显的保护作用,包括增加了玉米
幼苗生物量,延缓叶绿素降解、降低Cd胁迫导致的玉米幼苗叶片 MDA含量的上升和提高3种保护酶活性和可
溶性糖的含量等。
细胞膜对维持植物细胞的微环境和正常代谢起着重要作用,对物质具有选择透性的能力。MDA 是生物体
代谢和生物膜系统脂质过氧化作用下的产物,其含量的多少反映了细胞膜脂过氧化的程度,是一种重要的逆境生
理指标[29]。Elstner等[30]认为,镉与植物膜脂过氧化及体内活性氧清除酶系统有密切关系。本试验结果表明,用
100mg/L的Cd处理使 MDA含量和质膜透性增大,而添加100μmol/LSNP能明显缓解 MDA含量的增加和
细胞质膜透性的增大,说明外源NO对植物细胞膜具有良好的保护或修复作用,其原因可能是外源NO可以减少
植物对Cd2+的吸收,从而减轻Cd胁迫对植物造成的伤害。这与罗立新等[31]研究证实镉胁迫的小麦叶片中
MDA含量升高,从而破坏膜的结构和功能的结果一致。
植物抗氧化酶(POD、CAT、SOD等)普遍存在于植物的各种组织中[32],逆境条件下,植物细胞产生的自由基
增多,自由基通过启动膜脂过氧化作用从而导致膜的损伤和破坏,造成植物体内重要的活性氧清除酶(SOD、
CAT和POD等)活性降低。植物细胞内的POD、SOD和CAT等抗氧化酶在一定程度上可以清除各种逆境因
子导致的活性氧,使生物体内活性氧维持在一个低水平上,从而有效地阻止其在植物体内的积累[33]。因此,提高
逆境下植物体内的SOD、CAT和POD活性能减缓膜脂过氧化过程[34,35]。硝普钠(SNP)是一种重要的 NO供
体,研究表明,外源NO能提高低温胁迫下黑麦草(犔狅犾犻狌犿狆犲狉犲狀狀犲)保护酶活性,尤其是POD活性来增强其抗冷
性[36]。李源等[37]认为,外源 NO可提高镉胁迫下蚕豆(犞犻犮犻犪犳犪犫犪)幼苗抗氧化能力。Hsu和 Kao[38]认为在
Cd2+胁迫下,SNP通过释放NO,NO介导了清除其活性氧水平而减轻Cd对水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)的毒害作用;
Laspina等[16]认为,外源NO通过提高向日葵对重金属耐性而抵抗Cd毒害。本试验表明,100μmol/LSNP可
以增强镉胁迫下玉米幼苗的抗性,提高Cd胁迫下玉米幼苗SOD、CAT和POD的活性,并能维持在较高的水平
381第22卷第2期 草业学报2013年
上,尤其是SOD的活性,比单独镉胁迫处理增加了73.38%,说明SOD活性在抗镉胁迫的过程中起着关键作用,
显著提高镉胁迫下玉米幼苗清除活性氧的能力。SOD和POD是细胞内清除活性氧系统中的重要酶。SOD能
将 O2 歧化为 H2O2,抑制哈伯-韦斯反应,再由POD将 H2O2 分解成 H2O,将有毒的超氧阴离子转变成无毒的
H2O,使细胞内自由基维持在一个低水平,防止细胞受自由基的毒害[39]。这与 Kopyra和 Gwozdz[15]报道在
Cd2+和Pb2+胁迫下,NO通过激活白羽扇豆根SOD活性,直接清除O2-·,从而减轻重金属胁迫对根生长的抑制
作用的研究结果相一致。
逆境条件下,植物也通过渗透调节来提高对逆境的抵抗能力,可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸均为植物体内
的渗透调节物质,一定程度上反映了植物的抗逆性[32]。可溶性糖是参与细胞渗透调节的主要物质之一,糖的积
累可提高细胞渗透浓度,增加植物的抗性能力。植物体内的可溶性蛋白大多数是参与各种代谢的酶类,测其含量
是了解植物体总代谢的一个重要指标。研究表明,可溶性蛋白由于具有较强的亲水性,因而可以提高细胞保水
力,防止细胞脱水,是植物细胞质中的一种重要的有机溶剂[40]。可溶性蛋白含量升高有助于提高植物对逆境的
抵抗力。本试验也表明,Cd2+胁迫使玉米幼苗叶片可溶性蛋白含量明显下降,这可能与蛋白质合成受到抑制有
关,也可能是由于蛋白结构受到破坏降解所致。与单独Cd2+胁迫相比,SNP+Cd处理使玉米幼苗叶片可溶性蛋
白和可溶性糖含量明显升高,表明SNP可以缓解Cd胁迫下可溶性蛋白和可溶性糖含量的降低,从而缓解重金属
离子的毒害作用,提高玉米抗重金属镉毒害的能力。逆境条件下,植物体内的脯氨酸含量显著增加,一定程度上
反映了植物的抗逆性。本试验结果表明,外源NO处理的玉米幼苗在Cd胁迫下其脯氨酸含量增加明显高于对
照,脯氨酸能维持细胞的结构和调节渗透压,使植物具有一定抗性。本试验结果较好地反映了外源NO可缓解
Cd对玉米幼苗造成的伤害。
叶绿素是参与植物光合作用光能吸收、传递和转化的重要色素[41]。在Cd胁迫下,植物叶绿体结构受损,叶
绿素生物合成受阻,植物叶片失绿,叶绿素总量下降。VanAssche和Clijsters[42]认为是镉抑制了原叶绿素酸酯
还原酶活性引起的。本试验中,100mg/LCd胁迫使玉米叶片叶绿素含量明显降低,导致了植物的光合能力降
低,生长延缓。这与王林和史衍玺[43]在萝卜(犚犪狆犺犪狀狌狊狊犪狋犻狏狌狊)上的研究结果相似,施加外源NO处理叶绿素含
量显著高于Cd污染处理,这说明了外源NO能增加玉米幼苗的抗镉能力。
4 结论
综上所述,100mg/L的Cd2+处理使玉米幼苗抗氧化酶活性下降,叶绿素、可溶性糖、可溶性蛋白及脯氨酸含
量降低,O2-·产生速率增加、MDA含量增加、质膜透性增大。表明Cd2+多方面干扰玉米幼苗正常生理和生化代
谢,最终导致其生物量下降;外源NO使玉米幼苗叶绿素、可溶性糖、可溶性蛋白及脯氨酸含量和抗氧化酶活性上
升、O2-·产生速率减弱、MDA含量下降、质膜氧化损伤得以修复。因此,外源NO多方面修复玉米幼苗因Cd2+
引起的伤害,恢复和维持生理和生化代谢稳态,使玉米幼苗生长受Cd毒害的抑制作用得以缓解,增强玉米植株
的抗逆能力,但NO与镉胁迫下植株体内活性氧代谢的直接关系和调节机理有待进一步深入研究。
参考文献:
[1] 曾希柏,李莲芳,梅旭荣.中国蔬菜土壤重金属含量及来源分析[J].中国农业科学,2007,40(11):25072517.
[2] 张义凯,崔秀敏,杨守祥,等.外源NO对镉胁迫下番茄活性氧代谢及光合特性的影响应用[J].生态学报,2010,21(6):
14321438.
[3] 何俊瑜,任艳芳,朱诚,等.Cd对水稻根尖细胞的遗传损伤效应[J].农业环境科学学报,2008,27(6):23032307.
[4] DasP,SamantarayS,RoutGR.Studiesoncadmiumtoxicityinplants:areview[J].EnvironmentalPolution,1998,98(1):
2936.
[5] MiloneMT,SgherriC,ClijstersH.Antioxidativeresponsesofwheattreatedwithrealisticconcentrationofcadmium[J].En
vironmentalandExperimentalBotany,2003,50(3):265276.
[6] 罗立新,孙铁珩,靳月华.镉胁迫下小麦叶中超氧阴离子自由基的积累[J].环境科学学报,1998,18(5):495499.
[7] 李志博,骆永明,宋静,等.基于稻米摄入风险的稻田土壤镉临界值研究:个案研究[J].土壤学报,2008,45(1):7681.
481 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.2
[8] 刘建新,胡浩斌,王鑫.外源 NO对盐胁迫下黑麦草幼苗活性氧代谢、多胺含量和光合作用的影响[J].植物研究,2009,
29(3):313319.
[9] 阮海华,沈文飚,徐朗莱.一氧化氮调节盐胁迫下小麦幼苗根部质膜 H+2ATPase和焦磷酸酶活性提高耐盐性[J].植物学
报,2004,46(4):415422.
[10] 张艳艳,刘俊,刘友良.一氧化氮缓解盐胁迫对玉米生长的抑制作用[J].植物生理与分子生物学学报,2004,30(4):55
459.
[11] 阮海华,沈文飚,叶茂炳,等.一氧化氮对盐胁迫下小麦叶片氧化损伤的保护效应[J].科学通报,2001,46(23):1993
1997.
[12] 吴雪霞,朱月林,朱为民,等.外源一氧化氮对 NaCl胁迫下番茄幼苗生长和光合作用的影响[J].西北植物学报,2006,
26(6):12061211.
[13] 樊怀福,郭世荣,焦彦生,等.外源一氧化氮对NaCl胁迫下黄瓜幼苗生长、活性氧代谢和光合特性的影响[J].生态学报,
2007,27(2):546553.
[14] DeledonneM,XiaYJ,DixonRA.Nitricoxidefunctionsasasignalinplantdiseaseresistance[J].Nature,1998,394:585
588.
[15] KopyraM,GwozdzEA.Nitricoxidestimulatesseedgerminationandcounteractstheinhibitoryeffectofheavymetalsand
salinityonrootgrowthof犔狌狆犻狀狌狊犾狌狋犲狌狊[J].PlantPhysiologyandBiochemistry,2003,(4):10111017.
[16] LaspinaNV,GroppaMD,TomaroML,犲狋犪犾.NitricoxideprotectssunflowerleavesagainstCdinducedoxidativestress[J].Plant
Science,2005,169(2):323330.
[17] 王松华,周正义,陈庆榆,等.外源一氧化氮对镉胁迫下绿豆幼苗根尖抗氧化酶的影响[J].激光生物学报,2007,16(1):
6267.
[18] ChanderMS.Enzymicassociationswithresistancetorustandpowderymildewinpeas[J].IndianJournalofHorticulture,
1990,47(3):341345.
[19] 王韶唐.植物生理学实验指导[M].西安:陕西科学技术出版社,1986.
[20] 陈建勋,王晓峰.植物生理学实验指导[M].广州:华南理工大学出版社,2002.
[21] 李合生.植物生理生化实验原理和技术[M].北京:高等教育出版社,2000.
[22] 邹琦.植物生理学实验指导[M].北京:中国农业出版社,2000.
[23] 冯双华.水稻叶绿素含量的简易测定[J].福建农业科技,1997,4(2):104105.
[24] 王爱国,罗广华.植物超氧化自由基与羟胺反应的定量关系[J].植物生理学通讯,1990,26(6):5557.
[25] LagerwerffJV.Uptakeofcadmium,leadandzincfromsoilandair[J].JournalofSoilScience,1971,3:129133.
[26] 梁芳,郭晋平.植物重金属毒害作用机理研究进展[J].山西农业科学,2007,35(11):5661.
[27] SandalioLM,DalurzoHC,GomezM,犲狋犪犾.Cadmiuminducedchangesinthegrowthandoxidativemetabolismofpea
plants[J].JournalofExperimentalBotany,2001,364(52):21152126.
[28] 张绪成,上官周平,高世铭.NO对植物生长发育的调控机制[J].西北植物学报,2005,25(4):812818.
[29] 杜润峰,郝文芳,王龙飞.达乌里胡枝子抗氧化保护系统及膜脂过氧化对干旱胁迫及复水的动态响应[J].草业学报,2012,
21(2):5161.
[30] ElstnerEF,WagnerGA,SchutzW.Activatedoxygeningreenplantsinrelationonstresssituations[J].CurrentTopicsin
PlantBiochemistryandPhysiology,1988,7:159187.
[31] 罗立新,孙铁珩,靳月华.镉胁迫对小麦叶片细胞膜脂过氧化的影响[J].中国环境科学,1998,18(1):7275.
[32] 赫春长.外源钙对低温下麻疯树生理生化调节效应的研究[D].福州:福建农林大学,2010.
[33] 王罗霞,赵志光,王锁民.一氧化氮对水分胁迫下小麦叶片活性氧代谢及膜脂过氧化的影响[J].草业学报,2006,15(4):
104108.
[34] 高向阳,杨根平,许志强,等.水分胁迫下钙对大豆膜质过氧化保护酶系统的影响[J].华南农业大学学报,1999,20(2):
712.
[35] KeloggEW,FridovichI.Hydrogenperoxide,andsingleoxygeninlipidperoxidationbyacanthineoxidasesystem[J].Bio
chem,1975,250(22):88128817.
581第22卷第2期 草业学报2013年
[36] 马向丽,魏小红,龙瑞军.外源一氧化氮提高一年生黑麦草抗冷性机制[J].生态学报,2005,25(6):12691274.
[37] 李源,李金娟,魏小红.镉胁迫下蚕豆幼苗抗氧化能力对外源NO和 H2O2 的响应[J].草业学报,2009,18(6):186191.
[38] HsuYT,KaoKH.Cadmiumtoxicityisreducedbynitricoxideinriceleaves[J].PlantGrowthRegulation,2004,42(3):
227238.
[39] 鲁艳,李新荣,何明珠,等.Ni和Cu胁迫对骆驼蓬抗氧化酶活性的影响[J].草业学报,2012,21(3):147155.
[40] 宋家壮,李萍萍,付为国.水分胁迫及复水对!草生理生化特性的影响[J].草业学报,2012,21(2):6269.
[41] 张明生,谢波,谈锋,等.甘薯可溶性蛋白、叶绿素及 ATP含量变化与品种抗旱性关系的研究[J].中国农业科学,2003,
36(1):1316.
[42] VanAsscheF,ClijstersC.Effectsofmetalsonenzymeactivityinplants[J].PlantCelEnvironment,1990,13(3):195
206.
[43] 王林,史衍玺.镉、铅及其复合污染对萝卜生理生化特性的影响[J].中国生态农业学报,2008,16(2):411414.
犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀狊犲犲犱犾犻狀犵犵狉狅狑狋犺犪狀犱狆犺狔狊犻狅犾狅犵犻犮犪犾
犮犺犪狉犪犮狋犲狉犻狊狋犻犮狊狅犳犿犪犻狕犲狊犲犲犱犾犻狀犵狊狌狀犱犲狉犮犪犱犿犻狌犿狊狋狉犲狊狊
WANGFang1,2,3,CHANGPanpan1,CHENYongping1,PENGYunling1,2,3,
FANGYongfeng1,2,3,WANGHanning1,2,3
(1.ColegeofAgronomy,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China;2.Drought
EnvironmentCropCultivationofKeyLaboratoryinGansuProvince,Lanzhou730070,
China;3.GansuKeyLaboratoryofCropImprovementandGermplasm
Enhancement,Lanzhou730070,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:Thepresentstudywasconductedinpottoinvestigatetheeffectsofexogenousnitricoxide(NO)on
themembranelipidpermeability,osmoticadjustmentsubstances,antioxidantenzymeactivitiesandchlorophyl
contentofmaizeseedlingundercadmiumstress.Theresultsshowedthat:comparedwiththeCK,under100
mg/LCd2+stress,prolineandchlorophylcontentweredecreased,theaccumulationofsolubleproteinandsol
ublesugarcontentwereslowlyaccumulated,andtheantioxidantenzymesactivitiesweredecreased,butMDA
content,O2-·generationrateandmembranepermeabilitywereincreased.Comparedwith100mg/LCd,100
μmol/LSNP(sodiumnitroprusside)significantlyincreasedbiomassamounandimprovedtheactivityofsuper
oxidedismutase(SOD),peroxidase(POD)andcatalase(CAT),increasedthecontentofchlorophylandpro
line(Pro),andpromotedtheaccumulationofsolublesugarandsolubleproteincontent,butreducedMDAcon
tent,therateofaccumulationofO2-·andcel membranepermeability.Theresultsindicatedthatexogenous
nitricoxidehadasignificantlyeffectonthegrowthofseedlingsunder100mg/LCd2+stress,andenhancedthe
resistanceofmaizeseedlingtoCdtoxicity.
犓犲狔狑狅狉犱狊:maize(犣犲犪犿犪狔狊);nitricoxide;Cd2+stress;physiologicalcharacteristics
681 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.2