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Cloning and Expression Analysis of Chalcone Isomerase Gene cDNA from Camellia nitidissima

金花茶查尔酮异构酶基因全长克隆与表达的初步研究



全 文 :林业科学研究 2012,25(1):93 99
ForestResearch
  文章编号:10011498(2012)01009307
金花茶查尔酮异构酶基因全长克隆与表达的初步研究
周兴文1,2,李纪元1,范正琪1
(1中国林业科学研究院亚热带林业研究所,浙江 富阳 311400;2广西玉林师范学院,广西 玉林 537000)
收稿日期:20110628
基金项目:国家林业公益性行业科研专项(200704028);国家林业局"948"引进项目(2007404);国家国际合作项目(2011DFA30490)
作者简介:周兴文(1979—),男,河南南阳人,讲师,在读博士生,主要从事观赏植物分子育种研究.
通讯作者:李纪元(1964—),男,湖南湘阴人,研究员,博士,博士生导师,主要从事观赏植物与花卉分子育种研究.Email:jiyuan_li@
126.com
摘要:利用RT-PCR和 RACE技术,从我国珍稀濒危植物金花茶花瓣中获得了查尔酮异构酶(Chalconeisomerase,
CHI)基因的 cDNA全长,命名为 CnCHI,GenBank登录号 HQ2698051。碱基序列分析表明,CnCHI基因全长953
bp,包含56bp的5’非翻译区、204bp的3’非翻译区和一个长为693bp编码230个氨基酸的开放阅读框。氨基酸
序列比对分析表明,CnCHI基因编码蛋白与蔷薇科、杜鹃花科、茄科等植物的CHI蛋白同源性都在75%以上,与山
茶科山茶属茶树CHI蛋白同源性高达99%。相对荧光定量 PCR分析表明,CnCHI基因在金花茶花蕾发育过程中
呈现先急剧上升后平缓下降的趋势;在花器官的不同部位中,CnCHI基因表达量最高的是雌蕊,其次是雄蕊,在萼
片和花瓣中的表达量较低且相差不大。
关键词:金花茶;查尔酮异构酶基因;序列分析;相对定量PCR;表达特性
中图分类号:S71846 文献标识码:A
CloningandExpressionAnalysisofChalconeIsomeraseGenecDNA
fromCamelianitidissima
ZHOUXingwen1,2,LIJiyuan1,FANZhengqi1
(1.ResearchInstituteofSubtropicalForestry,ChineseAcademyofForestry,Fuyang 311400,Zhejiang,China;
2.YulinNormalUniversity,Yulin 537000,Guangxi,China)
Abstract:AfullengthcDNAsequenceofchalconeisomerase(CHI)genewasobtainedfrompetalsofCameliani
tidisimausingthemethodsofReverseTranscriptionPCRandRACE,namedCnCHI(GenBankaccessionNo.
HQ269805.1).SequenceanalysisindicatedthatCnCHIis953bpinfullengthandcontainsa5′untranslatedre
gion(5′UTR)of56bp,a3′UTRof204bp,andanopeningreadingframe(ORF)of693bpencodinga230pre
dictedaminoacids.SequencealignmentofaminoacidsrevealedthatCnCHIsharedmorethan75% homologywith
CHIfromplantsofRosaceae,Ericaceae,Solanaceaeand99% homologywithC.sinensis.RelativerealtimePCR
analysisindicatedthatCnCHIshowedthetendencyofasharpincreaseattheearlystageandthendecreasedslowly;
thehighesttranscriptabundanceincarpels,andthesecondinstamens,thetranscriptofCnCHIinsepalsandpet
alswerealmostatthesamelevel.
Keywords:Camelianitidisima;chalconeisomerasegene;sequenceanalysis;relativerealtimePCR;expression
character
金花茶组植物隶属于山茶科(Theaceae)山茶属
(CameliaL.),常绿灌木或小乔木,其模式植物为金
花茶(CamelianitidsimaChi)[1]。金花茶花色金黄,
具有很高的观赏价值,在国内被誉为“茶族皇后”、“植
物界中的大熊猫”,国外则称之为“幻想中的黄色山
茶”[2],是培育黄色山茶花新品种的重要亲本[3-6]。
金花茶花青苷的主要成分为槲皮黄酮7葡糖
苷(Quercetin7glucoside)[7],属于类黄酮色素群。
林 业 科 学 研 究 第25卷
查尔酮异构酶(Chalconeisomerase,CHI)是类黄酮合
成途径中的第2个关键酶,它能催化查尔酮异构化
为4’,5,7-三羟基黄烷酮(Naringenin),该中间产
物在经其它后续酶的催化下可形成其它黄酮类代谢
物质[8]。目前已从玉米(ZeamaysL.)[9]、矮牵牛
(PetuniahybridaVilm.)[10]、紫花苜蓿(Medicagosa
tivaL.)[11]等很多物种中克隆到了 CHI基因,利用
基因工程手段调控查尔酮异构酶的表达来改变花色
的研究也屡见报道[12]。但有关金花茶查尔酮异构酶
的研究尚未见报道。本研究利用 ReverseTranscrip
tionPCR(RTPCR)和 RACE技术,根据已发表的
CHI基因保守区从金花茶花瓣中克隆到了一个 CHI
基因cDNA全长,命名为CnCHI,并对该基因在金花
茶花发育不同阶段以及花器官不同部位的表达特性
进行了研究,旨在为进一步研究金花茶 CHI基因的
功能,探讨金花茶花色形成的分子机制提供理论依
据,为今后合理利用基因工程技术培育山茶新品种
提供理论基础及可操作基因。
1 材料与方法
1.1 材料、菌株和试剂
金花茶栽培于中国林科院亚热带林业研究所观
赏植物苗圃,于2010年2月盛开时采集花瓣,液氮
处理后,保存于-80℃冰箱备用。
RNA提取试剂盒(植物 RNAout)购自天泽基因
公司,反转录酶(AMV)购自 Fermentas公司,大肠杆
菌E.ColiDH5α购自 TaKaRa公司,pGEMTEasy
vector购自 Promage公司,SMARTerRACEcDNA
AmplificationKit(Cat.No.634923)为Clontech公司
产品,限制性内切酶、T4DNA连接酶和其它工具酶
均购自TaKaRa公司,质粒提取试剂盒购自 Axygen
公司。DNA凝胶回收试剂盒购自北京博大泰克公
司,PCR引物由生工生物工程(上海)有限公司合
成,测序由(上海)华大基因科技有限公司完成。
1.2 试验方法
1.2.1 引物设计 根据 GenBank公布的 CHI基因
的mRNA序列和CDS信息,通过分析查找CHI基因
保守区,用软件 Premier5.0设计正、反向引物 SP、
AP,经PCR扩增得到该基因的保守片段并测序;根
据测序结果设计 RACE特异引物 GSP1、GSP2,分别
用于全长 cDNA的 3’RACE、5’RACE扩增;最后
根据保守区、3’RACE、5’RACEcDNA序列的拼接
结果,在3’UTR和5’UTR区域设计引物P3、P4,用
于金花茶CHI基因cDNA全长扩增(表1)。
表1 金花茶CnCHI基因克隆及表达分析所用引物
引物名称 引物序列 用途
SP 5′CACGGCTATCGGAGTGTACCTC3′ 扩增保守序列
AP 5′GGCTTCCGGTTTCTCCTTCA3′
GSP1 5′GAAAGACGGTTCCTTACCTGAGACTGGG3′ 3’RACE
GSP2 5′CCAGTCTCAGGTAAGGAACCGTCTTTCG3′ 5’RACE
P3 5′AAGAGGTGCTGAGAGAGAAAGAG3′ 扩增全长
P4 5′CACGTAAACCAACTATGCCAAT3′
Y1 5′CGTCCAAGCCCTTCTTCCTC3′ 检测CnCHI表达
Y2 5′TGCAGTCTTGCCCTTCCACTT3′
18SF 5′GACTCAACACGGGGAAACTTACC3′ 扩增内参基因
18SR 5′CAGACAAATCGCTCCACCAAC3′
1.2.2 金花茶CnCHI基因cDNA全长的获得 金
花茶花瓣总RNA提取采用 RNA提取试剂盒(植物
RNAout2.0,天泽基因公司)说明书进行操作,然后
用Fermentas公司的反转录酶合成 cDNA第一链,以
反转录cDNA为模板用引物对 SP、AP进行扩增,扩
增条件为:94℃预变性 5min;94℃变性30s,554
℃退火30s,72℃延伸50s,共30个循环;最后,72
℃延伸7min。凝胶回收与预期目的片段大小一致
的泳带,电泳检测后连接克隆载体(pGEMTEasy
vector)并转化感受态细胞(E.ColiDH5α),通过蓝
白斑筛选及质粒酶切鉴定阳性克隆后,送交(上海)
华大基因科技有限公司测序。
根据所得的 cDNA片段序列,分别设计特异性
引物 GSP1、GSP2,按照 RACE试剂盒 SMARTer
RACEcDNAAmplificationKit(Cat.No.634923)说
明书采用TouchdownPCR程序进行cDNA末端快速
扩增,将测序所得该基因的 3’和 5’序列以及中间
序列进行拼接得到 cDNA全长,再根据所得全长设
计特异引物CHIFP、CHIRP以总cDNA为模板进行
扩增,扩增产物凝胶回收后测序,测序结果在 Gen
Bank中进行Blast分析。
1.2.3 金花茶CnCHI基因及其编码蛋白质的生物
信息学分析 利用 NCBI(htp://www.ncbi.nlm.
nih.gov)提供的在线 Blast进行同源序列比对分析
49
第1期 周兴文等:金花茶查尔酮异构酶基因全长克隆与表达的初步研究
等,采用ORFFinder在线查找CnCHI基因cDNA开
放阅读框。利用瑞士生物信息学研究所(Htp://
cn.expasy.org)提供的ProtParam软件进行氨基酸残
基数目、组成、蛋白质相对分子量、理论等电点、稳定
性及平均可塑性等参数的在线分析;利用 ProtScale、
HNN软件等在线分析 α螺旋(Alphahelix)、β转角
(Betaturn)、无规卷曲(Randomcoil)、延伸链(Ex
tendstrand)及疏水性等。采用 SWISSMODEL(ht
tp://www.expasy.org/swissmod)同源建模(Homolo
gymodeling)预测该基因编码蛋白质的三维结构。
利用软件DNAMAN进行cDNA全长电子拼接、系统
发育树构建和氨基酸序列比对等。
1.2.4 金花茶CnCHI基因在花蕾中的相对荧光定
量表 达 分 析   用 RNA 提 取 试 剂 盒 (植 物
RNAout20,天泽基因公司)提取金花茶不同发育时
期花蕾(表2)以及苞片、萼片、花瓣、雄蕊、雌蕊的总
RNA,然后各取1μg用 Fermenta公司的反转录酶合
成cDNA第一链。根据所获得的CnCHI基因序列,
按照荧光定量引物要求设计引物 Y1、Y2,扩增片段
长度为 143bp。以山茶(C.japonicaL.)18SRNA
(GenBank登录号 U428151)为内参设计其特异引
物18SF、18SR(表1)。反应在ABI7300实时荧光定
量PCR仪上进行,反应试剂采用 SYBRGreenPrime
ScriptTM RTPCRKit(TaKaRa)进行 RealTimePCR
反应,反应程式为两步法。每个试验设3次重复,利
用ABI7300实时荧光定量 PCR仪 SequenceDetec
tionsoftware软件和 Excel软件进行数据分析,每个
样品独立重复3次,数据分析采用2-ΔΔCT法[13]。
表2 金花茶花蕾不同发育时期及状态描述
时期 花蕾直径/cm 花蕾状态
幼蕾期 0.8±0.1 闭合 浅绿
初蕾期 1.1±0.1 闭合 黄绿
显色期 1.4±0.1 闭合 浅黄
半开期 2.2±0.2 半开 金黄
盛开期 4±0.5 盛开 金黄
2 结果与分析
2.1 金花茶 RNA提取及 CnCHI基因全长 cDNA
的获得
金花茶花瓣总RNA提取见图1。从图上可以看
出,28S亮度约为18S的2倍,说明提取的总RNA完
整无降解,质量较高,可以满足后续试验的要求。
M:DNA分子量标准DL2000;1、2:RNA样品
图1 金花茶花瓣总RNA提取
2.2 金花茶CnCHI基因cDNA全长的克隆
采用同源克隆方法,根据 CHI基因蛋白保守区
设计引物SP、AP(表1),以金花茶花瓣 cDNA为模
板经PCR扩增及测序后得到一个长为517bp的目
的cDNA片段(图2A)。将该片段所编码的蛋白在
NCBI上比对,发现与多个物种 CHI基因编码的蛋
白有90%以上的同源性。依据所得的同源特异片
段序列设计 RACE特异引物 GSP1、GSP2分别扩增
金花茶CHI基因的3’末端序列(图2B)和5’末端
序列(图2C),将测序后的3’、5’序列及RTPCR所
得中间序列拼接后得到了全长为953bp的金花茶
CHI基因序列,将该基因命名为 CnCHI,提交 Gen
bank,登录号为HQ2698051。根据电子拼接的 CHI
基因cDNA全长和ORFfinder分析的开放阅读框信
息,在该序列的3’UTR与5’UTR设计全长特异扩
增引物,经PCR扩增后得到744bp的目的基因全长
(图2D),测序结果表明所得序列与 CHI基因电子
拼接结果一致。
59
林 业 科 学 研 究 第25卷
M:DNA分子量标准DL2000;1:Cn-CHI基因特异片段;2:3’RCAE扩增产物;
3:5’RACE扩增产物;4:CnCHI基因全长扩增产物
图2 金花茶CHI基因扩增电泳图
2.3 金花茶Cn-CHI基因cDNA核苷酸序列分析
利用NCBI提供的 ORFFinder进行分析发现,
金花茶CnCHI基因包含一个长度为693bp的开放
读码框(Openreadingframe,ORF),5’非翻译区长56
bp,3’非翻译区长204bp,含有植物基因中典型的加
尾信号序列 AATAA以及 Poly(A)。表明该序列完
全符合一个完整基因序列的结构特征,是一条完整
的基因序列(图3)。
方框内分别表示起始密码子和终止密码子;下划线表示加尾信号序列;虚线表示Poly(A)结构
图3 CnCHI基因cDNA全长及预测的氨基酸序列
将该基因序列在 NCBI上进行序列比对分析,
发现该基因与西红柿(SolanumlycopersicumL.)、圆
叶牵牛(Ipomoeapurpurea(L.)Roth)、美洲葡萄
(VitislabruscaL.)、牡丹(PaeoniasufruticosaAn
dr.)等物种查尔酮异构酶基因的相似性达 75%
以上。
2.4 金花茶 CnCHI基因编码蛋白质的结构及功
能位点分析
2.4.1 金花茶 CnCHI基因编码蛋白质结构分
析 ORFFinder分析表明,Cn-CHI基因的开放阅
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第1期 周兴文等:金花茶查尔酮异构酶基因全长克隆与表达的初步研究
读框位于57 749bp区域,编码一条含有230个氨
基酸的蛋白质。ProtParam在线分析显示该蛋白的
分子量为24677kD,理论等电点(PI)为541,原子
总数3504,分子式为C1120H1763N277O340S4,无信号肽,
不稳定系数4782,为不稳定亲水性蛋白。
金花茶CnCHI基因编码蛋白质二级结构以无
规则卷曲为主,占 4304%;其次为 α螺旋,达
387%;延伸链占1826%;无 β转角分布区域,这
与其它多种植物的CHI基因编码蛋白的预测结果相
似[10]。蛋白质的功能很大程度上取决于其空间结
构,其中 α-螺旋主要功能是对蛋白质骨架起到稳
定作用,而无规卷曲结构决定了蛋白质的功能,特别
是酶的功能部位常常处于这种构象区域,通过对蛋
白质三级结构预测与分析,对理解该蛋白质功能与
结构之间的关系有着非常重要的意义。从图4可以
看出,CnCHI基因预测的编码蛋白质三级结构与二
级结构预测结果相符。
图4 CnCHI基因推导的编码蛋白三级结构
2.4.2 金花茶CnCHI基因编码蛋白质功能位点分
析 利用 NCBIConservedDomainSearch进行保守
域分析表明,CnCHI基因编码的蛋白属于查尔酮超
家族(图5)。
图5 CnCHI基因编码蛋白的保守域分析
进一步的功能位点分析表明,CnCHI蛋白含有
两个保守的氢键结合位点Thr(T52处)和 Tyr(Y110
处)(图6A),两个活性催化位点 Asn(N117处)和
Ser(S194处)[14](图 6B),底物结合位点 Arg40、
Gly41、Leu42、Phe51、Ile54、Lys113、Val114[15],这些
位点高度保守且相对位置保持不变。
2.5 金花茶 CnCHI基因编码蛋白序列多重比对
与同源性分析
为查明金花茶 CnCHI基因编码蛋白与其它物
种CHI蛋白的同源性,利用DNAMAN软件对金花茶
及其它多个物种的CHI蛋白氨基酸序列进行多序列
比对,结果发现金花茶 CHI蛋白与已知其它植物的
CHI蛋白序列具有很高的同源性。金花茶CHI蛋白
序列与山茶科山茶属植物茶树(C.sinensis(L.)O.
Kuntze)CHI蛋白同源性高达99%,与蔷薇科(Rosa
ceae)、杜鹃花科(Ericaceae)、茄科(Solanaceae)等植
物的CHI蛋白同源性都在75%以上(图7),金花茶
CHI蛋白与山茶科山茶属植物CHI蛋白的高同源性
表明,CHI在同属物种间的进化上是很保守的。
A:氢键结合位点;B:活性催化位点
图6 CnCHI基因蛋白功能位点三维分布
79
林 业 科 学 研 究 第25卷
物种后代码为该物种CHI蛋白氨基酸序列的GenBank登录号
图7 金花茶CHI与其它物种CHI氨基酸序列的同源性分析
2.6 金花茶CnCHI基因在花器官中的表达分析
2.6.1 金花茶CnCHI基因在花不同发育时期的表
达分析 以山茶18SrRNA基因为内参照基因,采用
荧光定量PCR的方法对金花茶花不同发育时期Cn
CHI基因的表达进行了检测,结果见图8。从相对表
达量来看,CnCHI基因在初蕾期的表达量最高,几
乎是幼蕾期的4倍。其次为显色期,在盛开期的表
达量最低。该基因整体的表达趋势为先急剧升高而
后慢慢降低。
图8 金花茶花不同发育时期CnCHI基因的相对表达量
2.6.2 金花茶CnCHI基因在花器官不同部位中的
表达分析 用荧光定量 PCR的方法对金花茶花器
官不同部位CnCHI基因的表达情况进行了检测,结
果见图9。可以看出,CnCHI基因在雌蕊中的表达
量最高,其次为雄蕊,在萼片和花瓣中的表达量比较
接近。
图9 金花茶花器官不同部位CnCHI基因的相对表达量
3 结论与讨论
本研究通过RTPCR和 RACE技术从金花茶花
瓣中成功分离出查尔酮异构酶的完整的同源基因
CnCHI。该基因包含有一个全长为693bp的开放
阅读框,编码230个氨基酸,其蛋白二级结构以无规
则卷曲为主,其次为 α螺旋,无 β转角分布区域。
蛋白质功能分析表明该基因编码的蛋白属于查尔酮
超家族,具有两个保守的氢键结合位点 Thr52和
Tyr110,两个活性催化位点Asn117和Ser194,7个底
物结合位点 Arg40、Gly41、Leu42、Phe51、Ile54、
Lys113、Val114,该基因编码的蛋白质与其它物种
CHI具有极为相似的蛋白结构特征[16]。CHI蛋白
氨基酸同源序列比对表明,金花茶CHI蛋白序列与
山茶科山茶属植物茶树的CHI蛋白同源性高达99%,
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第1期 周兴文等:金花茶查尔酮异构酶基因全长克隆与表达的初步研究
与蔷薇科、杜鹃花科、茄科等植物的 CHI同源性在
75%以上,这些结果表明 CHI在不同物种之间是相
对比较保守的。
通过相对荧光定量 PCR的方法对金花茶不同
发育时期及花器官不同部位中 CnCHI基因的表达
进行了研究,发现在金花茶花芽发育过程中 CnCHI
基因的表达呈现出先急剧上升而又平缓下降的趋
势,说明金花茶CnCHI基因主要在花芽发育的早期
阶段表达;对CnCHI基因在花器官中的表达研究发
现,金花茶CnCHI基因在苞片、萼片、花瓣、雄蕊、雌
蕊中均有表达,但在雌蕊中的表达量最高,在萼片和
花瓣中的表达相差不大,表明金花茶CnCHI基因的
表达具有一定的组织特异性。此外,H.I.McKhann
等对CHI基因在紫花苜蓿中的表达进行了研究,发
现CHI基因在幼根和根尖中的表达量最高,在叶片、
茎段中的表达量比较低[11]。周军等对巨峰葡萄
CHI基因的表达进行了研究,发现CHI基因在果皮、
果肉、种子、幼叶、幼根中均有表达,但主要在花后
2 4周的果皮中表达[17]。本试验结合上述研究结
果可以推测,CHI基因主要在生命活动较旺盛的部
位表达,其原因可能在于查尔酮异构酶处于植物体
内类黄酮合成途径的上游,对植物生命活动所需的
类黄酮等次生物质的合成具有重要的作用[8]。
前人研究表明CHI是类黄酮合成途径中的第2
个关键性限制因子,对植物花色素的合成具有非常
重要的作用。有关植物花色的研究中,降低 CHI活
性可导致查尔酮在植物体内的大量积累,从而使花
朵呈现黄色[18-19],利用 RNA干扰抑制烟草 CHI活
性能使花粉囊变得更黄[20]。本试验成功分离了金
花茶的CHI基因,并对该基因及其所编码的蛋白进
行了功能预测分析,对其在花发育过程及花器官不
同部位中的表达特性进行了研究,为进一步研究该
基因的功能及其在金花茶花色形成机制中的作用奠
定了基础,为山茶花色的分子育种提供了相关的理
论依据和可操作基因。
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