全 文 ：植物科学学报　 ２０１４ꎬ ３２(３): ２２８~２３５
Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｊｏｕｒｎａｌ
　 　 ＤＯＩ: １０􀆰 ３７２４ / ＳＰ􀆰 Ｊ􀆰 １１４２􀆰 ２０１４􀆰 ３０２２８
基于核糖体 ＤＮＡ内转录间隔区 ＩＴＳ序列
的广义蓼属及近缘属分子系统学研究
孙 伟１ꎬ２ꎬ 安 超３ꎬ 郑希龙４ꎬ 万和文２ꎬ 陈延松２ꎬ６ꎬ 李大卫５ꎬ 周忠泽２∗
(１. 中国中医科学院中药研究所ꎬ 北京 １００７００ꎻ ２. 安徽大学资源与环境工程学院ꎬ 合肥 ２３０６０１ꎻ
３. 住房城乡建设部城乡规划管理中心ꎬ 北京 １００８３５ꎻ ４. 中国医学科学院药用植物研究所海南分所ꎬ 海南万宁 ５７１５３３ꎻ
５. 中国科学院武汉植物园ꎬ 中国科学院特色农业重点实验室ꎬ 武汉 ４３００７４ꎻ ６. 合肥师范学院生命科学系ꎬ 合肥 ２３０００９)
摘　 要: 通过对广义蓼属及近缘属共 ３２ 个代表种内转录间隔区 ＩＴＳ序列的分子系统学分析ꎬ 尝试研究备受争议
的广义蓼属及近缘属的物种族、 属、 组级的划分问题ꎬ 结果显示ꎬ 广义蓼属在系统发育树上并不能形成一个单
系类群ꎬ 这些物种共聚为 ３大支ꎬ 分别对应春蓼族、 蓼族及荞麦族ꎬ 其中荞麦属与翅果蓼属形成了一支独立于
春蓼族及蓼族之外的类群ꎮ 在春蓼族中ꎬ 冰岛蓼属与分叉蓼组形成一个单系类群ꎮ
关键词: 系统学ꎻ 蓼属ꎻ ＩＴＳ序列ꎻ 蓼科
中图分类号: Ｑ９４９􀆰 ７４５􀆰 １　 　 　 　 　 文献标识码: Ａ　 　 　 　 　 文章编号: ２０９５￣０８３７(２０１４)０３￣０２２８￣０８
　 　 　 收稿日期: ２０１３￣０７￣０１ꎬ 修回日期: ２０１３￣０９￣３０ꎮ
　 基金项目: 公益性行业(农业)科研专项(２０１３０３１１７)ꎮ
　 作者简介: 孙伟(１９８１－)ꎬ 男ꎬ 博士ꎬ 助理研究员ꎬ 研究方向为药用植物技术 (Ｅ￣ｍａｉｌ: ｔｃｍｓｕｎｗｅｉ＠ｏｕｔｌｏｏｋ􀆰 ｃｏｍ)ꎮ
　 ∗通讯作者(Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅ􀆰 Ｅ￣ｍａｉｌ: ｚｈｏｕｚｚ＠ａｈｕ􀆰 ｅｄｕ􀆰 ｃｎ)ꎮ
Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ Ｌ. ｓ. ｌａｔ. ａｎｄ Ｒｅｌａｔｅｄ
Ｇｅｎｅｒａ (Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ) Ｉｎｆｅｒｒｅｄ ｆｒｏｍ ｎｒＤＮＡ Ｉｎｔｅｒｎａｌ
Ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ Ｓｐａｃｅｒ ( ＩＴＳ) Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ
ＳＵＮ Ｗｅｉ１ꎬ２ꎬ ＡＮ Ｃｈａｏ３ꎬ ＺＨＥＮＧ Ｘｉ￣Ｌｏｎｇ４ꎬ ＷＡＮ Ｈｅ￣Ｗｅｎ２ꎬ
ＣＨＥＮ Ｙａｎ￣Ｓｏｎｇ２ꎬ６ꎬ ＬＩ Ｄａ￣Ｗｅｉ５ꎬ ＺＨＯＵ Ｚｈｏｎｇ￣Ｚｅ２∗
(１. Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｍａｔｅｒｉａ Ｍｅｄｉｃａꎬ Ｃｈｉｎａ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １００７００ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
２. Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇꎬ Ａｎｈｕｉ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｈｅｆｅｉ ２３０６０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ３. Ｕｒｂａｎ￣Ｒｕｒａｌ Ｐｌａｎｎｉｎｇ ａｎｄ
Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ Ｃｅｎｔｅｒꎬ Ｍｉｎｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｈｏｕｓｉｎｇ ａｎｄ Ｕｒｂａｎ￣Ｒｕｒａｌ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｐｅｏｐｌｅ􀆳ｓ Ｒｅｐｕｂｌｉｃ ｏｆ Ｃｈｉｎａꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １００８５３ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
４. Ｈａｉｎａｎ Ｂｒａｎｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｐｌａｎｔ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｗａｎｎｉｎｇꎬ Ｈａｉｎａｎ ５７１５３３ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
５. Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｇｅｒｍｐｌａｓｍ Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ａｎｄ Ｓｐｅｃｉａｌｔｙ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅꎬ Ｗｕｈａｎ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ
ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｗｕｈａｎ ４３００７４ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ６. Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔꎬ Ｈｅｆｅｉ Ｎｏｒｍａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｈｅｆｅｉ ２３０６０１ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｅｓ ｏｆ ３２ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ Ｌ. ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ ｗｅｒｅ
ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｎｒＤＮＡ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｕｓｉｎｇ ｍａｘｉｍｕｍ ｐａｒｓｉｍｏｎｙ. Ｒｅｓｕｌｔｓ
ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｄｉｄ ｎｏｔ ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅ ａ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ ｇｒｏｕｐꎬ ａｎｄ ｔｈａｔ ｏｎｅ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ
ｃｌａｄｅ ｏｆ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ａｎｄ Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍ ｎａｍｅｄ ｔｒｉｂｅ Ｆａｇｏｐｙｒｅａｅ ｗａｓ ｐｌａｃｅｄ ｏｕｔｓｉｄｅ ｔｈｅ ｔｗｏ
ｍａｊｏｒ ｃｌａｄｅｓ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ ｔｏ ｔｒｉｂｅｓ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ａｎｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ. Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ Ｋｏｅｎｉｇｉａ
ａｎｄ ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ｃｏｍｐｏｓｅｄ ａ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ ｇｒｏｕｐ ｗｉｔｈ ａ ｃｌｏｓｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｔｏ ｓｅｃｔ.
Ｂｉｓｔｏｒｔａ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｐｈｙｌｏｇｅｎｙꎻ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍꎻ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓꎻ Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ
　 　 Ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ Ｌ. (Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ) ｉｓ
ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｏｆ ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ ２３０ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｈｅｒｂｓ
ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｔｈｒｏｕｇｈｏｕｔ ｔｈｅ ｗｏｒｌｄ. Ａｌｌ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ
ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ ａｒｅ ａｎｎｕａｌ ａｎｄ ｐｅｒｅｎｎｉａｌ ｈｅｒｂｓꎬ ｒａｒｅｌｙ
ｓｈｒｕｂｓꎬ ａｎｄ ｂｅａｒｉｎｇ ｕｎｉｑｕｅ ｏｃｒｅａ. Ｔｈｅ ｍｏｒｐｈｏ￣
ｌｏｇｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｇｅｎｕｓ
ａｒｅ ｅｘｔｒｅｍｅｌｙ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔ ｔｏ ｑｕａｌｉｆｙꎬ ｗｉｔｈ ｍａｎｙ ｂｏｔａ￣
ｎｉｓｔｓ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｔ ｔｈｅ
ｓｕｐｒａ￣ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｌｅｖｅｌ.
Ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｗａｓ ｍａｄｅ ｂｙ Ｇｒｏｓｓ[１]ꎬ
ｗｈｏ ｄｉｖｉｄｅｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ￣ｌｉｋｅ ｐｌａｎｔｓ ｉｎｔｏ ｓｅｖｅｎ
ｇｅｎｅｒａ ( Ｐｌｅｕｒｏｐｔｅｒｕｓꎬ Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍꎬ Ｐｌｅｕｒｏｐ￣
ｔｅｒｏｐｙｒｕｍꎬ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｓｅｎｓｕ ｓｔｒｉｃｔｏꎬ Ｂｉｓｔｏｒｔａꎬ
Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ａｎｄ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ) ｏｎ ｔｈｅ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｖｅｇｅ￣
ｔａｔｉｖｅꎬ ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅꎬ ａｎｄ ｐｏｌｌｅｎ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ
ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ. Ｓｔｅｗａｒｄ[２] ｍａｄｅ ａ ｃｏｍｐｒｅｈｅｎ￣
ｓｉｖｅ ｒｅｖｉｓｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓｕｂｆａｍｉｌｙ Ｐｏｌｙｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｉｎ
Ａｓｉａ. Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｗａｓ ｓｕｂｄｉｖｉｄｅｄ ｉｎｔｏ ｓｅｃｔｉｏｎｓ
Ａｖｉｃｕｌａｒｉａꎬ Ｂｉｓｔｏｒｔａꎬ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａꎬ Ｃｅｐｈａｌｏｐｈｉｌｏｎꎬ
Ｔｉｎｉａｒｉａꎬ Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎꎬ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ａｎｄ Ｅｃｈｉｎｃａｕ￣
ｌｏｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ ａｃｈｅｎｅꎬ ｐｅｒｉａｎｔｈꎬ ｉｎｆｌｏｒｅｓｃｅｎｃｅꎬ
ａｎｄ ｏｃｒｅａ ｆｅａｔｕｒｅｓ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ Ｔｏｖａｒａ ａｎｄ Ｋｏｅ￣
ｎｉｇｉａ ｗｅｒｅ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ａｓ ｔｗｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｇｅｎｅｒａ.
Ｔｈｅ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ Ｈｅｄｂｅｒｇ[３] ｄｉｖｉｄ￣
ｅｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｉｎｔｏ ｓｅｖｅｎ ｇｅｎｅｒａ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ
ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｌｌｅｎ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓ (Ｋｏｅｎｉ￣
ｇｉａꎬ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａꎬ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｓｅｎｓｕ ｓｔｒｉｃｔｏꎬ Ｐｌｅｕ￣
ｒｏｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍꎬ Ｂｉｓｔｏｒｔａꎬ Ｔｉｎｉａｒｉａ ａｎｄ Ｆａｇｏｐｙ￣
ｒｕｍ) . Ｈａｒａｄｌｓｏｎ[４] ｄｅｖｅｌｏｐｅｄ ｔｈｅ ｓｕｂｆａｍｉｌｙ Ｐｏｌｙ￣
ｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ａｎａｔｏｍｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓ ｏｆ
ｓｔｅｍｓꎬ ｐｅｔｉｏｌｅｓꎬ ｌｅａｖｅｓ ａｎｄ ｔｒｉｃｈｏｍｅｓ. Ｔｈｅ ｒｅｐ￣
ｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ａｎｄ ｉｔｓ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ
ｗｅｒｅ ｐｌａｃｅｄ ｉｎｔｏ ｔｈｒｅｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｒｉｂｅｓ ( Ｐｏｌｙｇｏ￣
ｎｅａｅꎬ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅꎬ ａｎｄ Ｃｏｃｃｏｌｏｂｅａｅ) [４] .
Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ ａｎｄ Ａｋｅｒｏｙｄ[５] ｉｎｖｅｓｔｉｇａ￣
ｔｅｄ ａ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｆｌｏｒａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｓ (ｓｔａｍｅｎꎬ ｔｅｐａｌ
ａｎｄ ｆｌｏｒａｌ ｎｅｃｔａｒｉｅｓ) ａｎｄ ｃｏｎｃｌｕｄｅｄ ｔｈａｔ Ｐｏｌｙｇｏ￣
ｎｕｍ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｓｐｌｉｔ ｉｎｔｏ ｔｗｏ
ｔｒｉｂｅｓ: Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ (ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｓ. ｓ.ꎬ
Ｆａｌｌｏｐｉａ Ａｄａｎｓ.ꎬ Ｏｘｙｇｏｎｕｍ Ｂｕｒｃｈ.ꎬ Ｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍ
Ｊａｕｂ. ＆ Ｓｐａｃｈ.ꎬ Ａｔｒａｐｈａｘｉｓ Ｌ. ａｎｄ Ｃａｌｌｉｇｏｎｕｍ
Ｌ.) ａｎｄ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ( ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ
Ｍｉｌｌ.ꎬ Ｈａｒｐａｇｏｃａｒｐｕｓ Ｈｕｔｃｈ. ＆ Ｄａｎｄｙꎬ Ｐｅｒｓｉｃａｒ￣
ｉａ Ｍｉｌｌ ａｎｄ Ｋｏｅｎｉｇｉａ Ｌ.) . Ｔｈｅ ｓｕｒｖｅｙｓ ｗｅｒｅ ｂａｓｅｄ
ｏｎ ｔｅｐａｌ ｓｕｒｆａｃｅ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓꎬ ａｎｄ
ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ􀆳ｓ ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ ｔｈａｔ ａ
ｄｉｖｉｓｉｏｎ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ ａｎｄ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ｗａｓ ｒｅａ￣
ｓｏｎａｂｌｅ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｔｅｐａｌ ｓｕｒｆａｃｅ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉ￣
ｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓ ｏｆ ｓｏｍｅ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｒｅ ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｎｔꎬ ａｎｄ ｔｅｐａｌ ｓｕｒｆａｃｅ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓ
ｓｕｐｐｏｒｔ ｔｈｅ ｕｎｃｅｒｔａｉｎ ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ
Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ[６] .
Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ ｅｔ ａｌ.[７] ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ ｆｒｕｉｔ
ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓ ｉｎ ｔｒｉｂｅｓ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ａｎｄ
Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ. Ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｐｅｒｉｃａｒｐ ａｎａｔｏ￣
ｍｙ ｗａｓ ａ ｖａｌｕａｂｌｅ ｆｅａｔｕｒｅ ｉｎ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ ｆｏｒ ｄｅｌｉｍｉ￣
ｔｉｎｇ ｇｅｎｅｒａ ａｎｄ ｓｅｃｔｉｏｎｓ. Ｔｈｅ ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ ｆｒｏｍ
ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ａｌｍｏｓｔ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｄ ｔｏ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｒｅ￣
ｐｏｒｔｓ ｅｘｃｅｐｔ ｆｏｒ (１) ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ａｎｄ
Ｂｉｓｔｏｒｔａ ｆｒｏｍ ｓｅｃｔｉｏｎ ｔｏ ｇｅｎｕｓ ｌｅｖｅｌ ａｎｄ (２) ｐｒｏ￣
ｍｏｔｉｎｇ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｔｏ ｎｅｗ ｔｒｉｂｅ Ｆａｇｏ￣
ｐｙｒｅａｅ ｆｒｏｍ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ[７] .
Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ ｗａｓ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ａ ｓｉｓｔｅｒ ｇｒｏｕｐ
ｏｆ Ｐｌｕｍｂａｇｉｎａｃｅａｅ ｉｎ Ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌａｌｅｓ[８ꎬ９] ｔｈｏｕｇｈ
ｔｈｅ ｐｏｓｉｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ ａｎｄ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ
ｒｅｍａｉｎ ｕｎｃｌｅａｒ[１０] . ｒｂｃＬ ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ
Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｗａｓ ｌｅｓｓ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｐｏｌｙｇｏ￣
ｎｕｍ ｔｈａｎ ｔｏ Ｒｕｍｉｃｅａｅꎬ ｓｕｇｇｅｓｔｉｎｇ ｔｈａｔ Ｐｏｌｙｇｏ￣
ｎｕｍ ｗａｓ ｐａｒａｐｈｙｌｅｔｉｃ[１１] . Ｗｈｉｌｅ ｔｈｅ ｍｏｎｏｐｈｙｌｙ ｏｆ
Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｂｙ ｍｏｒｐｈｏ￣
ｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎａｌｙｓｅｓꎬ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ
ａｍｏｎｇ ｉｔｓ ｇｅｎｅｒａ ｈａｖｅ ｌｏｎｇ ｂｅｅｎ ｃｏｎｔｒｏｖｅｒ￣
ｓｉａｌ[１２] . Ｔｈｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ ｓｕｂｆａｍｉｌｉｅｓ
Ｅｒｉｏｇｏｎｏｉｄｅａｅ ａｎｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｗｅｒｅ ｎｏｔ ｒｅ￣
ｖｉｓｅｄ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｃｕｒｒｅｎｔ ｓｕｂｆａｍｉｌｙ ｄｅｌｉｍｉｔａｔｉｏｎ
ｕｓｉｎｇ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｅｖｉｄｅｎｃｅ[１１ꎬ１２] . Ｒｅｃｅｎｔ ｅｖｉ￣
ｄｅｎｃｅ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ａ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ ｔｒｉｂｅ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅ￣
ａｅꎬ ｗｉｔｈ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｎｏｔ
ｉｎｃｌｕｄｅｄ. Ｔｈｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ ｔｒｉｂｅ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｃａｔｅｇｏ￣
ｒｉｚｅｄ ａｓ ｐａｒａｐｈｙｌｅｔｉｃ ｓｉｎｃｅ ｔｈｅ ａｃｃｅｐｔａｎｃｅ ｏｆ ｅｖｉ￣
ｄｅｎｃｅ ｓｕｐｐｏｒｔｉｎｇ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ ａｓ ａ ｓｉｓｔｅｒ ｔｏ
Ｆａｌｌｏｐｉａ[１１ꎬ１２] . Ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙꎬ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ ｗａｓ
ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ ａｓ ａ ｍｅｍｂｅｒ ｏｆ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅ Ｃｏｃｃｏｌｏｂｅ￣
ａｅ[１３] . Ｃｕｒｒｅｎｔｌｙꎬ Ｓａｎｃｈｅｚ ａｎｄ Ｋｏｒｎ ｈａｖｅ ｅｘ￣
ｐａｎｄｅｄ ｔｈｅ ｓｃｏｐｅ ｏｆ ｓｕｂｆａｍｉｌｙ Ｅｒｉｏｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｔｏ
ｉｎｃｌｕｄｅ Ａｎｔｉｇｏｎｏｎ Ｅｎｄｌ.ꎬ Ｂｒｕｎｎｉｃｈｉａ Ｂａｎｋｓ ｅｘ
９２２　 第 ３期　 　 　 孙 伟等: 基于核糖体 ＤＮＡ内转录间隔区 ＩＴＳ序列的广义蓼属及近缘属分子系统学研究(英文)
Ｇａｅｒｔｎ.ꎬ Ｃｏｃｃｏｌｏｂａ Ｌ.ꎬ Ｒｕｐｒｅｃｈｔｉａ Ｃ. Ａ. Ｍｅｙｅｒꎬ
Ｔｒｉｐｌａｒｉｓ Ｌｏｅｆｌ. ｅｘ Ｌ. ａｎｄ Ｅｒｉｏｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｓ􀆰 ｓ.[１２] .
Ｔｈｉｓ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅ Ｃｏｃｃｏｌｏｂｅａｅ
Ｄｕｍ. Ｅｍｅｎｄ. Ｈａｒａ. ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ ｂｙ Ｂｒａｎｄｂｙｇｅ
ｗａｓ ｎｏｔ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃꎬ ａｎｄ ｓｏｍｅ ｇｅｎｅｒａ ｄａｔａ ｏｆ
ｔｒｉｂｅ Ｔｒｉｐｌａｒｉｅａｅ Ｍｅｉｓｎ. ｗａｓ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｆｒｏｍ ｓｕｂ￣
ｆａｍｉｌｙ Ｐｏｌｙｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｔｏ Ｅｒｉｏｇｏｎｏｉｄｅａｅ.
Ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｗｅ ａｉｍｅｄ ｔｏ: (１) ｃｏｎｓｔｒｕｃｔ ｔｈｅ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ
ｕｓｉｎｇ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｔｏ ｐｒｏｖｉｄｅ ａ ｍｏｒｅ ｃｏｍ￣
ｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄｉｎｇ ｏｆ ｔｒｉｂｅ ｃｉｒｃｕｍｓｃｒｉｐ￣
ｔｉｏｎꎻ ａｎｄ (２) ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄ ｔｈｅ ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ｐｏｓｉｔｉｏｎ
ｏｆ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍꎬ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａꎬ Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍ
ａｎｄ ｒｅｔｅｓｔｉｎｇ Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ ｂｙ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｎｇ
ｍｏｒｅ ｔａｘｏｎ.
１　 Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
Ｓｐｅｃｉｅｓ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ａ ｓｔｒａｔｅｇｙ ｔｏ (１)
ｉｎｃｌｕｄｅ ｍａｔｅｒｉａｌｓ ｏｆ ａｌｌ ｓｅｃｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ
ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ[１３]ꎬ
ａｎｄ ( ２ ) ｉｎｃｌｕｄｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅｓ ｏｆ ａｌｌ ｐｏｌｌｅｎ
ｔｙｐｅｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ[１４] . Ｔｈｅ
ｐｌａｎｔ ｍａｔｅｒｉａｌｓ ｕｓｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ａｒｅ ｌｉｓｔｅｄ ｉｎ
Ｔａｂｌｅ １.
Ｔａｂｌｅ １　 Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｆｒｏｍ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ Ｌ. ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ
Ｔａｘａ　 Ｓｏｕｒｃｅ　 　 　 Ｖｏｕｃｈｅｒ　 　 ＧｅｎＢａｎｋ
Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ａｖｉｃｕｌａｒｅ Ｌ. Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５４１０) ＤＱ４０６６２４
Ｐ. ｒｕｎｃｉｎａｔｕｍ Ｂｕｃｈ. Ｈａｍ. ｅｘ Ｄ. Ｄｏｎ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５３９５) ＤＱ４０６６２９
Ｐ. ｊａｐｏｎｉｃｕｍ Ｍｅｉｓｎ. Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５３９６) ＤＱ４０６６３４
Ｐ. ｏｒｉｅｎｔａｌｅ Ｌ. Ｄａｂｉｅｓｈａｎꎬ Ａｎｈｕｉ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５４４２) ＤＱ４０６６３１
Ｐ. ｇｒｉｆｆｉｔｈｉｉ Ｈｏｏｋ. Ｄｅｑｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (０５４４３) ＤＱ４０６６３２
Ｐ. ｓｉｎｏｍｏｎｔａｎｕｍ Ｓａｍ. Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５１６３) ＥＵ７１８４９５
Ｐ. ｍａｃｒｏｐｈｙｌｌｕｍ Ｄ. Ｄｏｎ. Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５１７７) ＥＵ７１８４９６
Ｐ. ｐｏｌｙｓｔａｃｈｙｕｍ Ｗａｌｌ. ｅｘ Ｍｅｉｓｎ. Ｊｉａｚｈａꎬ Ｔｉｂｅｔ Ｍ. Ｚ. Ｌｉｕ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５２３２) ＥＵ７１８４９７
Ｐ. ｄｉｖａｒｉｃａｔｕｍ Ｌ. Ｊｉａｚｈａꎬ Ｔｉｂｅｔ Ｍ. Ｚ. Ｌｉｕ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５２２５) ＥＵ７１８４９８
Ｐ. ｂｕｎｇｅａｎｕｍ Ｔｕｒｃｚ. Ｃｈａｎｇｃｈｕｎꎬ Ｊｉｌｉｎ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５２２２) ＤＱ４０６６７４
Ｐ. ｎｅｐａｌｅｎｓｅ Ｍｅｉｓｎ. Ｙａｏｌｕｏｐｉｎｇꎬ Ａｎｈｕｉ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｙ. Ｓ. Ｃｈｅｎ (ＡＮＵ ０５３４３) ＤＱ４０６６７５
Ｐ. ｃｙａｎａｎｄｒｕｍ Ｄｉｅｌｓ. Ｄｅｑｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５４２２ ) ＤＱ４０６６２６
Ｐ. ｃａｍｐａｎｕｌａｔｕｍ Ｈｏｏｋ. ｆ. Ｄｅｑｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５１６８) ＤＱ４０６６３０
Ｐ. ｖｉｖｉｐａｒｕｍ Ｌ. Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５１７１) ＤＱ３７２９０３
Ｐ. ｐｅｒｆｏｌｉａｔｕｍ Ｌ. Ｈｅｆｅｉꎬ Ａｎｈｕｉ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５１７４) ＤＱ３７２９０４
Ｐ. ｈｙｄｒｏｐｉｐｅｒ Ｌ. Ｄａｂｉｅｓｈａｎꎬ Ａｎｈｕｉ Ｗ. Ｓｕｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５１１０ ) ＤＱ３４６６６５
Ｐ. ｆｏｒｒｅｓｔｉｉ Ｄｉｅｌｓ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５３３４) ＤＱ４０６６３３
Ｐ. ｓａｇｉｔｔａｔｕｍ Ｌ. Ｙａｏｌｕｏｐｉｎｇꎬ Ａｎｈｕｉ Ｗ. Ｓｕｎ (ＡＮＵ ０６１１０) ＤＱ００６０３１
Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ ｇｉｒａｌｄｉｉ Ｄａｍｍ. ｅｔ Ｄｉｅｌｓ Ｓｏｎｇｓｈａｎꎬ Ｈｅｎａｎ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０４３２３) ＤＱ４０６６２７
Ｋｏｅｎｉｇｉａ ｉｓｌａｎｄｉｃａ Ｌ. Ｄｅｑｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５３９１) ＤＱ４０６６２５
Ｆａｌｌｏｐｉａ ｓｃａｎｄｅｎｓ (Ｌ.) Ｈｏｌｕｂ Ｈｅｆｅｉꎬ Ａｎｈｕｉ Ｈ. Ｗ. Ｗａｎ ＆ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５４００) ＤＱ４０６６５１
Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ ｊａｐｏｎｉｃａ Ｈｏｕｔｔ. Ｈｅｆｅｉꎬ Ａｎｈｕｉ Ｗ. Ｓｕｎ (ＡＮＵ ０５４１１０) ＤＱ４０６６６７
Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍ ｔｉｂｅｔｉｃｕｍ Ａ. Ｊ. Ｌｉ Ｊｉａｚｈａꎬ Ｔｉｂｅｔ Ｚ. Ｚ. Ｚｈｏｕ (ＡＮＵ ０５４１１１) ＥＵ７１８４９９
Ｒｕｍｅｘ ａｃｅｔｏｓｅｌｌａ Ｌ. ＧｅｎＢａｎｋ ＡＦ１８９７３０
Ｒ. ｎｅｐａｌｅｎｓｉｓ Ｓｐｒｅｎｇ ＧｅｎＢａｎｋ ＡＦ３３８２１９
Ｐ. ｆｉｌｉｆｏｒｍｅ (Ｎａｋａｉ) . Ｏｈｗｉ ＧｅｎＢａｎｋ Ｕ５１２７６
Ｐ. ｎｅｏｆｉｌｉｆｏｒｍｅ Ｎａｋａｉ ＧｅｎＢａｎｋ Ｕ５１２７３
Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｌｉｎｅａｒｅ (Ｓａｍ.) Ｈａｒａｌｄ. ＧｅｎＢａｎｋ ＡＢ０００３３０
Ｆａ. ｓｔａｔｉｃｅ (Ｌéｖｌ.) Ｈ. Ｇｒｏｓｓ ＧｅｎＢａｎｋ ＡＢ０００３２２
Ｆａ. ｔａｔａｒｉｃｕｍ Ｇａｅｒｔｎ. ＧｅｎＢａｎｋ ＡＢ０００３４１
Ｒ. ｓａｃｈａｌｉｎｅｎｓｉ (Ｆ. Ｓｃｈｍｉｄｔ) Ｒｏｎｓｅ Ｄｅｃｒ. ＧｅｎＢａｎｋ ＡＦ０４００７３
Ｆａｌ. ｄｅｎｔａｔｅ￣ａｌａｔａ (Ｆｒ. Ｓｃｈｍ.) Ｈｏｌｕｂ ＧｅｎＢａｎｋ ＡＦ０４００６６
Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ ｒｈｙｔｉｃａｒｙａ Ｆ. Ｍｕｅｌｌ. ＧｅｎＢａｎｋ ＡＦ１８９７３９
０３２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷　
　 　 Ｔｏｔａｌ ｇｅｎｏｍｉｃ ＤＮＡ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｓｉｌｉｃａ
ｇｅｌ ｄｒｉｅｄ ｌｅａｆ ｍａｔｅｒｉａｌｓ ｏｒ ｈｅｒｂａｒｉｕｍ ｓｐｅｃｉｍｅｎｓ
( Ｔａｂｌｅ １) ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｔｈｅ ＣＴＡＢ ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ ｗｉｔｈ
ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ[１５] . Ｔｈｅ ｔｗｏ ｉｎｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ
ｓｐａｃｅｒｓ ( ＩＴＳ￣１ꎬ ＩＴＳ￣２) ａｎｄ ５􀆰 ８Ｓ ｒＤＮＡ ｗｅｒｅ
ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｕｓｉｎｇ ｐｒｉｍｅｒｓ Ｐ１８Ｓ (５′￣ＣＧＴＡＡＣＡＡＧ￣
ＧＴＴＴＣＣＧＴＡＧＧＴＧＡＡＧ￣３′) ａｎｄ Ｐ２６Ｓ (５′￣ＴＴＡＴ￣
ＴＧＡＴＡＴＧＣＴＴＡＡＡＣＴＣＡＧＣＧＧＧ￣３′) . Ｗｅ ａｄｄｅｄ
１􀆰 ５ μＬ ｔｅｍｐｌａｔｅ ＤＮＡꎬ １ μＬ １０ ｐｍｏｌ ｏｆ ｅａｃｈ
ｐｒｉｍｅｒꎬ ０􀆰 ５ μＬ Ｔａｑ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅꎬ ３ μＬ １０ ×
ｂｕｆｆｅｒꎬ １􀆰 ８ μＬ ＭｇＣｌ２ꎬ ２ μＬ ｄＮＴＰｓ (５ Ｕ / μＬ)ꎬ
ａｎｄ １９􀆰 ２ μＬ Ｈ２Ｏ ｉｎｔｏ ３０ μＬ ＰＣＲ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｉｘ￣
ｔｕｒｅ. Ｔｈｅ ＰＣＲ ｒｅａｃｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｂｙ ｔｈｅ
ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ: ｉｎｉｔｉａｌ ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ ａｔ ９５℃
ｆｏｒ ４ ｍｉｎꎻ ３３ ｃｙｃｌｅｓ ａｔ ９５℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎꎻ ｏｎｅ ｃｙｃｌｅ
ａｔ ５２℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎꎻ ａｎｄ ａｔ ７２℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎꎬ ｆｏｌ￣
ｌｏｗｅｄ ｂｙ ａ ｆｉｎａｌ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ａｔ ７２℃ ｆｏｒ １０ ｍｉｎ. Ｔｈｅ
ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｏｎ １％ ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌｓ
ｕｓｉｎｇ ａ ＱＩＡｑｕｉｃｋ􀳏 ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔ ａｎｄ ｄｉｒｅｃｔｌｙ ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅｄ ｏｎ ａｎ ＡＢＩ ３７７０ ａｕｔｏｍａｔｅｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅｒ
( Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ.ꎬ Ｌｔｄ ａｎｄ Ｓａｎｇｏｎ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ.ꎬ Ｌｔｄ ) . Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｐｒｉｍｅｒｓ
ｗｅｒｅ ｔｈｅ ｓａｍｅ ａｓ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ＰＣＲ ａｎｄ
ｕｓｅｄ ｓｉｎｇｌｙ ｉｎ ｆｏｒｗａｒｄ ａｎｄ ｒｅｖｅｒｓｅ ｒｅａｃｔｉｏｎｓ.
Ｔｈｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ａｌｉｇｎｅｄ ｕｓｉｎｇ ＣＬＵＳＴＡＬ
Ｗ ｗｉｔｈ ｍｉｎｏｒ ｍａｎｕａｌ ａｄｊｕｓｔｍｅｎｔｓ. Ｐａｒｓｉｍｏｎｙ
ａｎａｌｙｓｅｓ ｗｅｒｅ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｕｓｉｎｇ ＰＡＵＰ∗ ４􀆰０ｂ４ａ
( ＰＰＣ ) [１６] . Ｃｈａｒａｃｔｅｒｓ ｗｅｒｅ ｗｅｉｇｈｔｅｄ ｅｑｕａｌｌｙ
ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒ ｓｔａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ｕｎｏｒｄｅｒｅｄꎬ
ａｎｄ ｇａｐｓ ｗｅｒｅ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ｍｉｓｓｉｎｇ ｄａｔａ. Ｔｏ
ｓｅａｒｃｈ ｆｏｒ ｉｓｌａｎｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｓｈｏｒｔｅｓｔ ｔｒｅｅｓꎬ ａ ｈｅｕｒｉｓ￣
ｔｉｃ ｓｅａｒｃｈ ｗａｓ ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ ｕｓｉｎｇ １０００ ｒａｎｄｏｍ
ｔａｘｏｎ ａｄｄｉｔｉｏｎ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓꎬ ｗｉｔｈ ｏｎｅ ｔｒｅｅ ｈｅｌｄ ａｔ
ｅａｃｈ ｓｔｅｐ ｄｕｒｉｎｇ ｓｔｅｐｗｉｓｅ ａｄｄｉｔｉｏｎ. Ｏｔｈｅｒ ｔｒｅｅ
ｓｅａｒｃｈ ｏｐｔｉｏｎｓ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ＴＢＲ ｂｒａｎｃｈ ｓｗａｐｐｉｎｇꎬ
ａｎｄ ｓｔｅｅｐｅｓｔ ｄｅｓｃｅｎｔ ｏｆ ＭｕｌＴｒｅｅｓ ｏｎ ａｎｄ ｎｏ
ｕｐｐｅｒ ｌｉｍｉｔ ｏｆ ＭａｘＴｒｅｅｓ. Ｉｎｔｅｒｎａｌ ｓｕｐｐｏｒｔ ｗａｓ
ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ａｎａｌｙｓｅｓ ｕｓｉｎｇ １０００ ｒｅ￣
ｓａｍｐｌｉｎｇ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｔｒｅｅ ｓｅａｒｃｈ
ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ ａｓ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ａｂｏｖｅꎬ ｅｘｃｅｐｔ ｆｏｒ ｓｉｍ￣
ｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｄｄｉｔｉｏｎ[１７] .
２　 Ｒｅｓｕｌｔｓ
Ｔｈｅ ｆｒａｇｍｅｎｔ ｌｅｎｇｔｈ ｏｆ ｔｈｅ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅꎬ
ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｔｈｅ ５􀆰 ８Ｓ ｇｅｎｅꎬ ｖａｒｉｅｄ ｆｒｏｍ ６８０ ｂｐ ｔｏ
７００ ｂｐ. Ｔｈｅ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｗａｓ ｅｓｔａｂ￣
ｌｉｓｈｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｂａｓａｌ ｇｒｏｕｐｓ ｏｆ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ａｎｄ
Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍ ( Ｆｉｇｕｒｅ １ ) . Ｔｈｅ ｉｎｇｒｏｕｐ ｗａｓ
ｓｐｌｉｔ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｌａｒｇｅ ｃｌａｄｅｓ. Ｃｌａｄｅ Ⅰꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ
ｍｏｄｅｒａｔｅｌｙ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄꎬ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ Ｆａｌｌｏｐｉａ ｔｈｒｏｕｇｈ
ｔｏ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｓｅｃｔ. Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍꎬ ｗｈｉｌｅ Ｃｌａｄｅ Ⅱ
( ｂｏｏｔｓｔｒａｐ < ５０％) ｃｏｎｔａｉｎｅｄ Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ
ｔｈｒｏｕｇｈ ｔｏ Ｋｏｅｎｉｇｉａ. Ｗｉｔｈｉｎ Ｃｌａｄｅ Ⅰꎬ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ
ｓｅｃｔ. Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｗａｓ ｓｉｓｔｅｒ ｔｏ ｔｈｅ ｒｅｓｔ ｏｆ ｔｈｅ
ｃｌａｄｅꎻ Ｆａｌｌｏｐｉａ ｗａｓ ｐａｒａｐｈｙｌｅｔｉｃ ａｎｄ Ｍｕｅｈｌｅｎ￣
ｂｅｃｋｉａ ｗａｓ ｎｅｓｔｅｄ ｗｉｔｈｉｎ Ｆａｌｌｏｐｉａ. Ｉｎ Ｃｌａｄｅ Ⅱꎬ
ｔｈｅ Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ ｓｐｅｃｉｍｅｎ ｆｏｒｍｅｄ ｓｕｂｃｌａｄｅ １
ｏｎ ｉｔｓ ｏｗｎꎬ ｗｈｉｌｅ ｔｈｅ ｒｅｓｔꎬ ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｏｆ ｓｉｘ ｓｕｂ￣
ｃｌａｄｅｓꎬ ｗｅｒｅ ｗｅａｋｌｙ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ( ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ＝
６１％) . Ｓｕｂｃｌａｄｅ ２ ａｎｄ ３ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ Ｐ. ｓａｇｉｔｔａｔｕｍ
ａｎｄ Ｐ. ｐｅｒｆｏｌｉａｔｕｍꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｓｕｂｓｅｑｕｅｎｔｌｙꎬ
ｓｕｂｃｌａｄｅ ４ ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｓｅｃｔ. Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ ａｎｄ Ａｎｔｅ￣
ｎｏｒｏｎ. Ｓｕｂｃｌａｄｅ ５ ｃｏｎｓｉｓｔｅｄ ｏｆ Ｐ. ｒｕｎｃｉｎａｔｕｍ
ａｎｄ Ｐ. ｎｅｐａｌｅｎｓｅ (ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ＝ ８４％)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｃｏｒ￣
ｒｅｓｐｏｎｄｅｄ ｗｉｔｈ ｓｅｃｔ. Ｃｅｐｈａｌｏｐｈｉｌｏｎ. Ｓｅｃｔｉｏｎ Ｂｉｓ￣
ｔｏｒｔａ ｗａｓ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｉｎ ｓｕｂｃｌａｄｅ ６ꎬ ａｎｄ ｓｕｂｃｌａｄｅ
７ ｗａｓ ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｏｆ ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ａｎｄ Ｋｏｅ￣
ｎｉｇｉａ. Ｔｈｅ ｍｏｎｏｐｈｙｌｙ ｏｆ ｓｅｃｔ. Ｂｉｓｔｏｒｔａ ｗａｓ ｓｕｐ￣
ｐｏｒｔｅｄ ( ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ＝ ９５％)ꎬ ａｎｄ Ｋｏｅｎｉｇｉａ ｗａｓ
ｎｅｓｔｅｄ ｗｉｔｈｉｎ ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ｉｎ ｓｕｂｃｌａｄｅ ７.
３　 Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ｏｕｒ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄａｔａ ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ ｔｈａｔ Ｐｏｌｙｇｏ￣
ｎｕｍ Ｌ. ｓ. ｌａｔ. ｗａｓ ｎｏｔ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃꎬ ａｓ ｓｕｇｇｅｓ￣
ｔｅｄ ｂｙ Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒｅａｎｅ ａｎｄ Ａｋｅｒｏｙｄ[５] . Ｔｈｅ
ｍａｊｏｒ ｃｌａｄｅｓ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｄ ｔｏ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｔｒｉｂｅ ｃｌａｓ￣
ｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ ｒｅｆｅｒ￣
ｒｉｎｇ ｔｏ ｔｒｉｂｅｓ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ａｎｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅꎬ ｗｉｔｈ
ｔｈｅ ｅｘｃｅｐｔｉｏｎ ｏｆ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ[５－７] . Ｔｈｅ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ
Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｗａｓ ｉｎｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｄｉｆｆｅｒｉｎｇ
１３２　 第 ３期　 　 　 孙 伟等: 基于核糖体 ＤＮＡ内转录间隔区 ＩＴＳ序列的广义蓼属及近缘属分子系统学研究(英文)
Fagopyrum
Parapteropyrum
subclade 7
Koenigia
AconogononSect.
subclade 6
Sect. Bistorta
subclade 5
Sect. Cephalophilon
subclade 4:
Sect. Persicaria
Antenoron
subclade 2,3:
Sect. Echinocaulon
subclade 1:
Pteroxygonum
Fallopia
Muehlenbeckia
PolygonumSect.
Clade :Ⅱ
Tribe Persicarieae
Clade :Ⅰ
Tribe Polygoneae
Rumex acetosella
R. nepalensis
Fagopyrum linear
Fag. statice
Fag. tataricum
Parapteropyrum tibeticum
Polygonum forrestii
Koenigia islandica
P. cyanandrum
P. campanulatum
P. divaricatum
P. polystachyum
P. griffithii
P. macrophyllum
P. viviparum
P. nepalense
P. runcinatum
P. hydropiper
P. japonicum
P. bungeanum
P. orientale
P. filiforme
P. neofiliforme
P. perfoliatum
P. sagittatum
Pteroxygonum giraldii
Reynoutria japonica
R. sachalinensis
Fallopia dentatealata
Fal. scandens
Muehlenbeckia rhyticarya
P. aviculare
100
71
100
98
94
91
95
74
95
85
78
69
50
50
61
60
62
57
100
50
Ｌ ( ｌｅｎｇｔｈ) ＝ ４５１ ｓｔｅｐｓꎬ ＣＩ (ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｃｙ ｉｎｄｅｘ) ＝ ０. ５３３ꎬ ＲＩ ( ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ ｉｎｄｅｘ) ＝ ０. ６８９２
ａｎｄ ＲＣ ( ｒｅｓｃａｌｅｄ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｃｙ ｉｎｄｅｘ) ＝ ０. ４０８０.
Ｆｉｇ􀆰 １　 Ｓｔｒｉｃｔ ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ ｏｆ ｔｈｅ １２ ｍｏｓｔ ｐａｒｓｉｍｏｎｉｏｕｓ ｔｒｅｅｓ ｒｅｓｕｌｔｉｎｇ ｆｒｏｍ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ＩＴＳ ｄａｔａｓｅｔ
(１１７ ｐａｒｓｉｍｏｎｙ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｖｅ ｃｈａｒａｃｔｅｒｓ)
２３２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷　
ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ￣ｂａｓｅｄ ｒｅｓｅａｒｃｈ. Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｈａｓ
ｂｅｅｎ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｉｎ
ｓｕｂｆａｍｉｌｙ Ｐｏｌｙｇｏｎｏｉｄｅａｅ[３] . Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ Ｇｒｏｓｓ[１]
ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ ｔｈｅ ｐｏｓｓｉｂｉｌｉｔｙ ｔｈａｔ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｗａｓ
ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｆａｌｌｏｐｉａꎬ ｍａｉｎｌｙ ｄｕｅ ｔｏ ｔｈｅｉｒ
ｓｉｍｉｌａｒ ｈａｂｉｔ. Ｈａｒａｌｄｓｏｎ[４] ｆｏｕｎｄ ａ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ
ｐｅｔｉｏｌｅ ａｎａｔｏｍｙ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｆａｌｌｏｐｉａ ａｎｄ Ｆａｇｏｐｙ￣
ｒｕｍ. Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ ａｎｄ Ａｋｅｒｏｙｄ[５] ｂｅｌｉｅｖｅｄ
ｔｈａｔ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｏｃｃｕｐｉｅｄ ａ ｂａｓａｌ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ
ｔｒｉｂｅ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅꎬ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ ｓｉｍｉｌａｒ ｆｅａｔｕｒｅｓ ｏｆ
ｔｅｐａｌ ｖｅｎａｔｉｏｎꎬ ｅｐｉｄｅｒｍａｌ ｃｅｌｌꎬ ｎｅｃｔａｒｙ ａｓ ｓｕｐ￣
ｐｏｒｔ ｅｖｉｄｅｎｃｅ. Ａｎｏｔｈｅｒ ｐｒｏｐｏｓａｌ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ
Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒｅａｅ ｅｔ ａｌ.[７] ｆｕｒｔｈｅｒ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ａ ｎｅｗ
ｔｒｉｂｅ Ｆａｇｏｐｙｒｅａｅ ｄｕｅ ｔｏ ｔｈｅ ａｂｅｒｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｆａｇｏ￣
ｐｙｒｕｍꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｉｔｓ ｐａｒｅｎｃｈｙｍａｔｉｃ ｅｘｏｃａｒｐ ａｎｄ
ｔｈｉｃｋｅｎｅｄ ｍｅｓｏｃａｒｐ. Ｌａｍｂ ａｎｄ Ｋｏｒｎ[５] ｃｏｎｓｔｒｕｃ￣
ｔｅｄ ａ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ ｕｓｉｎｇ ｒｂｃＬꎬ
ａｎｄ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｗａｓ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔ￣
ｅｄ ｔｏ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ａｎｄ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅ Ｒｕｍｉｃｅａｅ. Ｏｕｒ
ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｗｅｒｅ ｉｎｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｂｃＬ
ｒｅｓｕｌｔｓꎬ ａｎｄ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｔｏ ｂｅ ａ ｄｉｓ￣
ｔｉｎｃｔｉｖｅ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｆｒｏｍ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｏｕｒ
ＩＴＳ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｔｈｅ ｃｌｏｓｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍ ａｎｄ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍꎬ ｗｈｉｃｈ
ｗａｓ ａｌｓｏ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅｉｒ ｓａｍｅ ｔｏｐｏｌｏｇｙ ｔｒｅｅ
ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｔｒｎＬ￣Ｆ ｒｅｇｉｏｎ (Ｓｕｎ ｅｔ ａｌꎬ ｕｎｐｕｂ￣
ｌｉｓｈｅｄ)ꎬ ａｎｄ ｓｉｍｉｌａｒ ｐｏｌｌｅｎ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ( ｆｉｎｅ ｒｅ￣
ｔｉｃｕｌａｔｅ ｏｒｎａｍｅｎｔａｔｉｏｎꎬ ３￣ｃｏｌｐｏｒａｔｅ) .
３􀆰 １　 Ｃｌａｄｅ Ⅱ: ｔｒｉｂｅ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ
Ｒｅｃｅｎｔ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｒｅｖｉｓｉｏｎ ｏｆ Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ
ｂｙ Ｓｕｎ ｅｔ ａｌ.[１８]ꎬ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｔｈｅ ｉｎｃｌｕｓｉｏｎ ｏｆ
Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ ｉｎ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄａｔａ[５ꎬ６] ａｎｄ ｔｈｅ
ｔｒａｎｓｆｅｒ ｏｆ Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ ｆｒｏｍ Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ ｔｏ ｂｅ
ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ａｓ ａ ｍｏｎｏｔｙｐｉｃ ｇｅｎｕｓ[３ꎬ１３] . Ｉｎ ｔｈｉｓ
ｓｔｕｄｙꎬ ｗｅ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ｍｏｒｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ
ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ ｔｏ ｖｅｒｉｆｙ ｔｈｅ ａｂｏｖｅ ｃｏｎｃｌｕ￣
ｓｉｏｎꎬ ｗｈｉｃｈ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ Ｐｔｅｒｏｘｙｇｏｎｕｍ􀆳ｓ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ
ｏｆ ｉｔｓ ｏｗｎ ｓｕｂｃｌａｄｅ.
Ｉｎ ｐａｒｓｉｍｏｎｙ ａｎａｌｙｓｅｓꎬ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ
ｃｌａｄｅ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｓｅｖｅｒａｌ ｓｍａｌｌｅｒ ｓｕｂｃｌａｄｅｓ. Ｔｈｅ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｉｔｈｉｎ ｅａｃｈ ｓｕｂｃｌａｄｅ ｇｅｎｅｒａｌｌｙ ｓｈａｒｅｄ
ｓｉｍｉｌａｒ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｅｘｃｅｐｔｉｏｎ
ｏｆ Ｐ. ｓａｇｉｔｔａｔｕｍ ａｎｄ Ｐ. ｐｅｒｆｏｌｉａｔｕｍ ｉｎ ｓｅｃｔ. Ｅｃｈｉ￣
ｎｏｃａｕｌｏｎ. Ｉｎ ｓｕｂｃｌａｄｅ ２ ａｎｄ ３ ｏｆ ｓｅｃｔ. Ｅｃｈｉｎｏ￣
ｃａｕｌｏｎꎬ ｗｅ ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ ａｌｌ ｓｐｅｃｉｅｓ ｈａｄ ｒｅｃｕｒｖｅｄꎬ
ｓｐｉｎｅ￣ｌｉｋｅ ｔｒｉｃｈｏｍｅｓ[４] . Ｓｕｂｃｌａｄｅ ４ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ａｌｌ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ａｎｔｅｎｏｒｏｎ ａｎｄ ｓｅｃｔ. Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ. Ａｎｔｅ￣
ｎｏｒｏｎ ｗａｓ ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ ａｓ ａ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｔａｘｏｎꎬ ａｎｄꎬ
ｂａｓｅｄ ｏｎ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｏｆ ａ ｐｅｒｓｉｓｔｅｎｔ ｈｏｏｋｅｄ ｓｔｙｌｅ
ａｎｄ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｐｏｌｌｅｎ ( ｆｉｎｅ ｒｅｔｉｃｕｌａｔｅ ｏｒｎａｍｅｎｔａｔｉｏｎꎬ
１２ ｏｒ ３０￣ｐａｎｔｏｃｏｌｐａｔｅ)ꎬ ａｓ ａ ｇｅｎｕｓ ａｓ ｗｅｌｌ[２ꎬ１４] .
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｓｕｒｖｅｙｓ ｄｏｎｅ ｉｎ ｏｔｈｅｒ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ
ｈａｖｅ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎｓꎬ ｎａｍｅｌｙ ｔｈａｔ
Ａｎｔｅｎｏｒｏｎ ｗａｓ ａ ｓｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ａｎａｔｏｍｉｃａｌ ａｎｄ ｆｌｏｒａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓ[４ꎬ５] . Ｏｕｒ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ａ ｃｌｏｓｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ
Ａｎｔｅｎｏｒｏｎ ａｎｄ ｓｅｃｔ. Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ. Ｗｅ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ
Ａｎｔｅｎｏｒｏｎ ａｓ ａ ｓｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ ｆｒｏｍ ａｎａｌｙｓｉｓ
ｏｆ ｉｔｓ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｓｈａｒｅｄ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉｓ￣
ｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｔｈｒｏｕｇｈｏｕｔ Ｅａｓｔ Ｃｈｉｎａ. Ｓｕｂｃｌａｄｅ ５ ｃｏｍ￣
ｐｒｉｓｅｄ ｔｗｏ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｓｅｃｔ. Ｃｅｐｈａｌｏｐｈｉｌｏｎꎬ ｗｈｉｃｈ
ｓｈａｒｅｄ ｆｅａｔｕｒｅｓ ｏｆ ｃａｐｉｔａｔｅ ｉｎｆｌｏｒｅｓｃｅｎｃｅｓ[１３] .
Ｓｅｖｅｒａｌ ａｕｔｈｏｒｓ ｈｏｌｄ ｄｉｆｆｅｒｉｎｇ ｏｐｉｎｉｏｎｓ ｒｅｇａｒｄｉｎｇ
ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ｓｅｃｔ. Ｂｉｓｔｏｒｔａ ａｎｄ ｓｅｃｔ.
Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ. Ｓｏｍｅ ｃｏｎｓｉｄｅｒ ｓｅｃｔ. Ｂｉｓｔｏｒｔａ ａｎｄ
ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ａｓ ｔｗｏ ｓｅｃｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ
ｏｒ Ｐｅｒｉｃａｓｉｃａ[２ꎬ５ꎬ１３] . Ｒｅｃｅｎｔｌｙꎬ Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ
ｅｔ ａｌ.[７] ｒｅｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅｓ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ａｎｄ
Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｆｒｕｉｔ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ａｎｄ ａｎａ￣
ｔｏｍｙ ｓｔｕｄｉｅｓꎬ ａｎｄ ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ Ｂｉｓｔｏｒｔａ ａｎｄ Ａｃｏｎｏ￣
ｇｏｎｏｎ ｗｅｒｅ ｇｒｏｕｐｅｄ ｉｎ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｇｅｎｕｓ ａｓ ａ ｓｉｓｔｅｒ
ｔｏ Ｋｏｅｎｉｇｉａ ａｎｄ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ. Ｏｕｒ ｄａｔａ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ
ｔｈａｔ ｓｅｃｔ. Ｂｉｓｔｏｒｔａ ａｎｄ ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ｓｈｏｕｌｄ
ｂｅ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ｔｗｏ ｇｅｎｅｒａ ｏｆ ｔｒｉｂｅ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ
(ＢＳ ＝ ９５％ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｓｕｐｐｏｒｔ ａｎｄ ６２％ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ
ｓｕｐｐｏｒｔꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ ) . Ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙꎬ ｔｈｅ ｒｅｐｒｅ￣
ｓｅｎｔａｔｉｖｅｓ ｏｆ ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ａｎｄ Ｋｏｅｎｉｇｉａ
ｗｅｒｅ ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｉｎ ｓｕｂｃｌａｄｅ ７ꎬ ａｎｄ ｄａｔａ ａｌｓｏ
ｓｈｏｗｅｄ ａ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ
３３２　 第 ３期　 　 　 孙 伟等: 基于核糖体 ＤＮＡ内转录间隔区 ＩＴＳ序列的广义蓼属及近缘属分子系统学研究(英文)
ａｎｄ Ｋｏｅｎｉｇｉａ. Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｓｅｃｔ. Ｂｉｓｔｏｒｔａꎬ ｓｅｃｔ.
Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ ａｎｄ Ｋｏｅｎｉｇｉａ ａｒｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ａ
ｓｉｍｉｌａｒ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｒｅｇｉｏｎ ｏｆ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ Ｃｈｉｎａ.
Ｔｈｅｙ ａｒｅ ａｌｌ ｆｏｕｎｄ ｉｎ ｓｈｒｕｂｂｅｒｙ ａｎｄ ｇｒａｓｓｌａｎｄ
ｈａｂｉｔａｔｓ ｌｏｃａｔｅｄ ｏｎ ｍｏｕｎｔａｉｎ ｓｌｏｐｅｓ. Ｔｈｅ ｐｏｓｉｔｉｏｎ
ａｎｄ ｓｃｏｐｅ ｏｆ Ｋｏｅｎｉｇｉａ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｄｅｂａｔｅｄ ｆｏｒ ａ
ｌｏｎｇ ｔｉｍｅ. Ｔｈｅ ｓｃｏｐｅ ｏｆ Ｋｏｅｎｉｇｉａ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｉｎｖｅｓ￣
ｔｉｇａｔｅｄ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｐｏｌｌｅｎ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙꎬ ｇｙｎｏｅｃｉｕｍ
ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙꎬ ａｎａｔｏｍｙꎬ ｂａｓｉｃ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ｎｕｍ￣
ｂｅｒ ａｎｄ ａｔｐＢ￣ｒｂｃＬ ｒｅｇｉｏｎ ａｎａｌｙｓｅｓ[４ꎬ５ꎬ１９ꎬ２０] . Ｔｈｅ
ｇｅｎｕｓ ｃｏｎｔａｉｎｓ Ｋ. ｉｓｌａｎｄｉｃａꎬ Ｋ. ｄｅｌｉｃａｔｕｌａ ｓｕｂｓｐ.
Ｒｅｌｉｃｔａꎬ Ｋ. ｄｅｌｉｃａｔｕｌａ ｓｕｂｓｐ. ｄｌｉｃａｔｕｌａꎬ Ｋ. ｎｅ￣
ｐａｌｅｎｓｉｓꎬ Ｋ. ｐｉｌｏｓａꎬ Ｋ. ｆｏｒｒｅｓｔｉｉꎬ ａｎｄ Ｋ. ｎｕｍｍｕ￣
ｌａｒｉｆｏｌｉａ[１９] . Ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｒｏｍ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｐｒｏｖｉｄ￣
ｅｄ ｓｔｒｏｎｇ ｓｕｐｐｏｒｔ ｔｏ ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｐ. ｆｏｒｒｅｓｔｉ (ｓｅｃｔ. Ａｃ￣
ｏｎｏｇｏｎｏｎ) ａｎｄ Ｐ. ｃｙａｎａｎｄｒｕｍ ( ｓｅｃｔ. Ｃｅｐｈａｌｏ￣
ｐｈｉｌｏｎ) ｉｎｔｏ Ｋｏｅｎｉｇｉａ (１００％ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｓｕｐｐｏｒｔ) .
Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｗｅ ｓｕｐｐｏｒｔ Ｈｅｄｂｅｒｇ􀆳ｓ ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ.
Ｆｒｏｍ ｏｕｒ ｄａｔａꎬ Ｋｏｅｎｉｇｉａ ｓｅｅｍｅｄ ｔｏ ｂｅ ａｎ ｅｘ￣
ｔｒｅｍｅ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｆｏｒｍ ｏｆ ｓｅｃｔ. Ａｃｏｎｏｇｏｎｏｎ.
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｔｈｅ ｐｕｔａｔｉｖｅ ｌａｒｇｅ ｓｃｏｐｅ ｏｆ
Ｋｏｅｎｉｇｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｓ ａ ｗｈｏｌｅ ｉｓ ｎｅｃｅｓｓａｒｙ ｆｏｒ ｅｌｕ￣
ｃｉｄａｔｉｎｇ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ｏｆ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｗｉｔｈｉｎ ｉｔ.
３􀆰 ２　 Ｃｌａｄｅ Ｉ: ｔｒｉｂｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ
Ｈａｒａｌｄｓｏｎ[４] ｃｏｍｂｉｎｅｄ Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａꎬ Ｆａｌｌｏｐｉａꎬ
Ｈａｒｐａｇｏｃａｒｐｕｓꎬ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａꎬ Ｃｏｃｃｏｌｏｂａꎬ
Ａｎｔｉｇｏｎｏｎꎬ Ｂｒｕｎｎｉｃｈｉａꎬ Ｐｏｄｏｐｔｅｒｕｓ ｉｎｔｏ ｔｒｉｂｅ
Ｃｏｃｃｏｌｏｂｅａｅ. Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ ａｎｄ Ａｋｅｒｏｙｄ[５]
ｃｏｍｂｉｎｅｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｓ. ｓ.ꎬ Ｐｏｌｙｇｏｎｅｌｌａꎬ Ｆａｌｌｏ￣
ｐｉａꎬ Ｏｘｙｇｏｎｕｍꎬ Ａｔｒａｐｈａｘｉａꎬ Ｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍ ａｎｄ
Ｃａｌｌｉｇｏｎｕｍ ｉｎｔｏ ｔｒｉｂｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅꎬ ｕｓｉｎｇ ｓｉｍｉｌａｒ
ｆｉｌａｍｅｎｔ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓꎬ ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ ｏｆ
ｔｅｐａｌｓꎬ ｓｈａｐｅ ｏｆ ｏｕｔｅｒ ｔｅｐａｌ ａｎｄ ｔｅｐａｌ ｅｐｉｄｅｒｍｉｓ
ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ａｓ ｅｖｉｄｅｎｃｅ. Ｈｏｎｇ ｅｔ ａｌ.[６] ｓｔａｔｅｄ
ｔｈａｔ ｔｈｅ ｇｅｎｅｒａ (Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｓ. ｓ.ꎬ Ｐｏｌｙｇｏｎｅｌｌａꎬ
Ｆａｌｌｏｐｉａꎬ Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍꎬ Ｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍꎬ Ａｔｒａ￣
ｐｈａｘｉｓ ａｎｄ Ｃａｌｌｉｇｏｎｕｍ ) ｏｆ ｔｒｉｂｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ
ｓｈａｒｅｄ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｔｅｐａｌ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓ.
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｃｕｒｒｅｎｔ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓ ｓｕｇ￣
ｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ｐｏｌｙｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｗａｓ ａ ｎｏｎ￣ｍｏｎｏ￣
ｐｈｙｌｅｔｉｃ ｇｒｏｕｐ[１１ꎬ１２] . Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ Ｃｏｃｃｏｌｏｂａꎬ
Ｔｒｉｐｌａｒｉｓꎬ Ｒｕｐｒｅｃｈｔｉａꎬ ａｎｄ Ａｎｔｉｇｏｎｏｎ ｗｅｒｅ ｔｒａｎｓ￣
ｆｅｒｒｅｄ ｆｒｏｍ ｓｕｂｆａｍｉｌｙ Ｐｏｌｙｇｏｎｏｉｄｅａｅ ｔｏ ｓｕｂｆａｍｉｌｙ
Ｅｒｉｏｇｏｎｏｉｄｅａｅ[１１ꎬ１２] . Ｕｎｆｏｒｔｕｎａｔｅｌｙꎬ ｔｈｅ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ
Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ ｉｓ ｓｔｉｌｌ ｕｎｃｅｒｔａｉｎ. Ｊａｒｅｔｚｋｙ[２１] ｓｔａｔ￣
ｅｄ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ ｗａｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ Ｆａｌｌｏｐｉａ
ｓｅｃｔ. Ｐｌｅｕｒｏｐｔｅｒｕｓꎬ ｃｉｔｉｎｇ ｉｔｓ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒ￣
ｉｓｔｉｃｓ ａｓ ｅｖｉｄｅｎｃｅ. Ｈａｒａｌｄｓｏｎ[４] ｐｌａｃｅｄ Ｍｕｅｈｌｅｎ￣
ｂｅｃｋｉａ ｉｎｔｏ ｔｒｉｂｅ Ｃｏｃｃｏｌｏｂｅａｅꎬ ａｎｄ ｆｏｕｎｄ ｉｔ ｈａｄ
ａ ｃｌｏｓｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｗｉｔｈ Ｆａｌｌｏｐｉａ. Ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｉｄ
ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｔｈｅ ｉｎｃｌｕｓｉｏｎ ｏｆ
Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ ｉｎ ａ ｍｏｎｏｐｈｙｌｙ ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ Ａｔｒａ￣
ｐｈａｘｉｓꎬ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａꎬ Ｆａｌｌｏｐｉａꎬ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ
ｓ. ｓ.ꎬ ａｎｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｅｌｌａ[１１] . Ｏｕｒ ｄａｔａ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｔｈｅ
ｃｌｏｓｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ａｍｏｎｇ Ｆａｌｌｏｐｉａꎬ Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃ￣
ｋｉａ ａｎｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｓ. ｓ. ｉｎ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ.
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｏｕｒ ｄａｔａ ａｌｓｏ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｔｈｅ ｅｓ￣
ｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍꎻ ａｎ
ｏｐｉｎｉｏｎ ｔｈａｔ ｄｉｆｆｅｒｓ ｆｒｏｍ ａｎｙ ｐｒｅｅｘｉｓｔｉｎｇ ｃｏｎｓｔｒｕｃ￣
ｔｅｄ ｏｐｉｎｉｏｎｓ. Ｔｈｕｓꎬ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ａｍｏｎｇ Ｐｔｅｒｏ￣
ｐｙｒｕｍꎬ Ａｔｒａｐｈａｘｉｓꎬ Ｃａｌｌｉｇｏｎｕｍꎬ ａｎｄ Ｐａｒａｐｔｅｒｏｐｙ￣
ｒｕｍ ｉｓ ｓｔｉｌｌ ｕｎｃｌｅａｒ. Ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｅｅｍｅｄ ｔｏ ａｆｆｉｒｍ
ｔｈａｔ ｔｈｅｓｅ ｇｅｎｅｒａ ｄｏ ｎｏｔ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄ ｔｏ ａｎｙ ｍｅｍ￣
ｂｅｒｓ ｏｆ ｔｒｉｂｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ[５ꎬ７] ｏｒ Ａｔｒａｐｈａｘｉｄｅａｅ[１３] .
Ｍｏｒｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｍｕｓｔ ｂｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｓａｍ￣
ｐｌｅｓ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｅｌｌａꎬ Ｐｔｅｒｏｐｙｒｕｍꎬ Ａｔｒａｐｈａｘｉｓꎬ
ａｎｄ Ｃａｌｌｉｇｏｎｕｍꎬ ｔｏ ｔｈｏｒｏｕｇｈｌｙ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ
ｍｏｎｏｐｈｙｌｙ ｏｆ ｔｒｉｂｅ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ ｕｓｉｎｇ ｅｘｐａｎｄｅｄ
ｓａｍｐｌｉｎｇ ａｔ ｔｈｅ ｇｅｎｅｒｉｃ ｌｅｖｅｌ[５ꎬ７] .
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
[ １ ] 　 Ｇｒｏｓｓ Ｈ. Ｂｅｉｔｒäｇｅ ｚｕｒ Ｋｅｎｎｔｎｉｓ ｄｅｒ Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅｅｎ
[ Ｊ ] . Ｂｏｔａｎｉｓｃｈｅ Ｊａｈｒｂüｃｈｅｒ ｆüｒ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｋꎬ
１９１３ꎬ ４９: ２３４－３３９.
[ ２ ] 　 Ｓｔｅｗａｒｄ ＡＮ. Ｔｈｅ Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ ｏｆ Ｅａｓｔｅｒｎ Ａｓｉａ
[ Ｊ] . Ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ Ｇｒａｙ Ｈｅｒｂａｒｉｕｍ ｏｆ
Ｈａｒｖａｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ １９３０ꎬ ５: １－１２９.
[ ３ ] 　 Ｈｅｄｂｅｒｇ Ｏ. Ｐｏｌｌｅｎ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｉｎ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｐｏｌｙ￣
ｇｏｎｕｍ Ｌ. ｓ. ｌａｔ. ａｎｄ ｉｔｓ ｔａｘｏｎｏｍｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ
[Ｊ] . Ｓｖｅｎ Ｂｏｔ Ｔｉｄｓｋｒꎬ １９４６ꎬ ４０: ３７１－４０.
[ ４ ] 　 Ｈａｒａｌｄｓｏｎ Ｋ. Ａｎａｔｏｍｙ ａｎｄ Ｔａｘｏｎｏｍｙ ｉｎ Ｐｏｌｙ￣
ｇｏｎｏｉｄｅａｅ Ｍｅｉｓｎ. ｅｍｅｎｄ. Ｊａｒｅｔｚｋｙ[Ｊ] . Ａｃｔａ Ｕｎｉ￣
４３２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷　
ｖｅｒｓｉｔａｔｉｓ Ｕｐｓａｌｉｅｎｓｉｓ Ｓｙｍｂ Ｂｏｔ Ｕｐｓꎬ １９７８ꎬ ２２:
１－９５.
[ ５ ] 　 Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ ＬＰꎬ Ａｋｅｒｏｙｄ ＪＲ. Ｇｅｎｅｒｉｃ ｌｉｍｉｔｓ
ｉｎ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ (Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ)
ｏｎ ｔｈｅ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｆｌｏｒａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｓ [ Ｊ] . Ｂｏｔ Ｊ Ｌｉｎｎ
Ｓｏｃꎬ １９８８ꎬ ９８: ３２１－３７１.
[ ６ ] 　 Ｈｏｎｇ ＳＰꎬ Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ ＬＰꎬ Ｓｍｅｔｓ Ｅ. Ｓｙｓ￣
ｔｅｍａｔｉｃ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ ｔｅｐａｌ ｓｕｒｆａｃｅ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｉｎ
ｔｒｉｂｅｓ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ａｎｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ (Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ)
[Ｊ] . Ｂｏｔ Ｊ Ｌｉｎｎ Ｓｏｃꎬ １９９８ꎬ １２７: ９１－１１６.
[ ７ ] 　 Ｒｏｎｓｅ Ｄｅ Ｃｒａｅｎｅ ＬＰꎬ Ｈｏｎｇ ＳＰꎬ Ｓｍｅｔｓ Ｅ. Ｓｙｓ￣
ｔｅｍａｔｉｃ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ ｆｒｕｉｔ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ａｎｄ ａｎａｔｏ￣
ｍｙ ｉｎ ｔｒｉｂｅｓ Ｐｅｒｓｉｃａｒｉｅａｅ ａｎｄ Ｐｏｌｙｇｏｎｅａｅ (Ｐｏｌｙｇｏ￣
ｎａｃｅａｅ)[ Ｊ] . Ｂｏｔ Ｊ Ｌｉｎｎ Ｓｏｃꎬ ２０００ꎬ １３４: ３０１－
３７７.
[ ８ ] 　 Ｓａｖｏｌａｉｎｅｎ Ｖꎬ Ｃｈａｓｅ ＭＷꎬ Ｈｏｏｔ ＳＢꎬ Ｍｏｒｔｏｎ ＣＭꎬ
Ｓｏｌｔｉｓ ＤＥꎬ Ｂａｙｅｒ Ｃꎬ Ｆａｙ ＭＦꎬ ｄｅ Ｂｒｕｉｊｎ ＡＹꎬ Ｓｕｌｌｉ￣
ｖａｎ Ｓꎬ Ｑｉｕ ＹＬ. Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ ｐｌａｎｔｓ
ｂａｓｅｄ ｏｎ ａ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄ ａｔｐＢ ａｎｄ
ｒｂｃＬ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ[ Ｊ] . Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ ２０００ꎬ ４９: ３０６ －
３６２.
[ ９ ] 　 Ｓｏｌｔｉｓ ＤＥꎬ Ｓｏｌｔｉｓ ＰＳꎬ Ｃｈａｓｅ ＭＷꎬ Ｍｏｒｔ ＭＥꎬ Ａｌｂａｃｈ
ＤＣꎬ Ｚａｎｉｓ Ｍꎬ Ｓａｖｏｌａｉｎｅｎ Ｖꎬ Ｈａｈｎ ＷＨꎬ Ｈｏｏｔ ＳＢꎬ
Ｐｒｉｎｃｅ ＬＭꎬ Ｋｒｅｓｓ ＷＪꎬ Ｎｉｘｏｎ ＫＣꎬ Ｆａｒｒｉｓ ＪＳ. Ａｎｇｉｏ￣
ｓｐｅｒｍ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｉｎｆｅｒｒｅｄ ｆｒｏｍ １８Ｓ ｒＤＮＡꎬ ｒｂｃＬꎬ
ａｎｄ ａｔｐＢ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ[Ｊ] . Ｂｏｔ Ｊ Ｌｉｎｎ Ｓｏｃꎬ ２０００ꎬ
１３３: ３８１－４６１.
[１０] 　 Ｃｕéｎｏｕｄ Ｐꎬ Ｓａｂｏｌｅｉｎｅｎ Ｖꎬ Ｃｈａｔｒｏｕ ＬＷꎬ Ｐｏｗｅｌｌ
Ｍꎬ Ｇｒａｙｅｒ ＲＪꎬ Ｃｈａｓｅ ＭＷ. Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ
ｏｆ Ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌａｌｅｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｎｕｃｌｅａｒ １８Ｓ ｒＤＮＡ ａｎｄ
ｐｌａｓｔｉｄ ｒｂｃＬꎬ ａｔｐＢꎬ ａｎｄ ｍａｔＫ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ
[Ｊ] . Ａｍ Ｊ Ｂｏｔꎬ ２００２ꎬ ８９: １３２－１４４.
[１１] 　 Ｌａｍｂ Ｆｒｙｅ ＡＳꎬ Ｋｒｏｎ ＫＡ. ｒｂｃＬ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ａｎｄ
ｃｈａｒａｃｔｅｒ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｉｎ Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ[Ｊ] . Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ
２００３ꎬ ２８: ３２６－３３２.
[１２] 　 Ａｄｒｉａｎａ Ｓａｎｃｈｅｚꎬ Ｋｒｏｎ ＫＡ. Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｐｏ￣
ｌｙｇｏｎａｃｅａｅ ｗｉｔｈ ａｎ ｅｍｐｈａｓｉｓ ｏｎ ｔｈｅ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ
Ｅｒｉｏｇｏｎｏｉｄｅａｅ[Ｊ] . Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ ２００８ꎬ ３３(１): ８７－
９６.
[１３] 　 Ｌｉ ＡＪꎬ Ｂａｏ ＢＪ. Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ[Ｍ]. Ｗｕ ＺＹꎬ Ｒａｖｅｎ
ＰＨꎬ ｅｄｓ. Ｆｌｏｒａ ｏｆ Ｃｈｉｎａ. Ｂｅｉｊｉｎｇ: Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｅｓｓꎻ
Ｓｔ. Ｌｏｕｉｓ: Ｍｉｓｓｏｕｒｉ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎ Ｐｒｅｓｓꎬ
２００３ꎬ ５: ２７７－３５０.
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( Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ ) ｏｎ ｔｈｅ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙꎬ
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ｂｅｒｇ (Ｐｏｌｙｇｏｎａｃｅａｅ)[Ｊ] . Ｂｏｔ Ｊ Ｌｉｎｎ Ｓｏｃꎬ １９９７ꎬ
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[２０] 　 Ｌｉｕ ＭＺꎬ Ｚｈｏｕ ＺＺꎬ Ｑｉｕ ＹＸꎬ Ｓｕｎ Ｗꎬ Ｄｏｎｇ Ｘ.
Ｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎｇ ｏｆ Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ ｃｙａｎａｎｄｒｕｍ ａｎｄ Ｐ. ｆｏｒ￣
ｒｅｓｔｉｉ ｔｏ Ｋｏｅｎｉｇｉａ ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｅｖｉｄｅｎｃｅ
[Ｊ] . Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｔａｘｏｎ Ｓｉｎꎬ ２００７ꎬ ４５: ２２７－２３３.
[２１] 　 Ｊａｒｅｔｚｋｙ Ｒ. Ｂｅｉｔｒäｇｅ ｚｕｒ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｋ ｄｅｒ Ｐｏｌｙｇｏ￣
ｎａｃｅａｅ ｕｎｔｅｒ Ｂｅｒüｃｋｓｉｃｈｔｉｇｕｎｇ ｄｅｓ Ｏｘｙｍｅｔｈｙｌａｎ￣
ｔｈｒａｃｈｉｎｏｎ￣Ｖｏｒｋｏｍｍｅｎｓ: Ｆｅｄｄｅｓ Ｒｅｐｅｒｔｏｒｉｕｍ
Ｓｐｅｃｉｅｒｕｍ Ｎｏｖａｒｕｍ Ｒｅｇｎｉ Ｖｅｇｅｔａｂｉｌｉｓ[Ｊ] . Ｒｅｐｅｒ￣
ｔｏｒｉｕｍ Ｎｏｖａｒｕｍ Ｓｐｅｃｉｅｒｕｍ Ｒｅｇｎｉ Ｖｅｇｅｔａｂｉｌｉｓꎬ
１９２５ꎬ ２２: ４９－８３.
(责任编辑: 张 平)
５３２　 第 ３期　 　 　 孙 伟等: 基于核糖体 ＤＮＡ内转录间隔区 ＩＴＳ序列的广义蓼属及近缘属分子系统学研究(英文)