免费文献传递   相关文献

Identification of Wild Segments Associated with Stem Termination, Pod Color and Seed Coat Color in Soybean

大豆结荚习性、荚色和种皮色相关野生片段分析


结荚习性、荚色和种皮色是大豆的重要形态性状,与进化密切相关。利用由151个家系组成的野生大豆(Glycinne soja Sieb et Zucc.)染色体片段代换系(CSSL)群体(SojaCSSLP1),通过不同表型CSSL组间比对,分别检测到与结荚习性、荚色和种皮色相关的1个、3个和2个野生片段(基因)。其中,5个野生片段(基因)分别与前人在栽培豆中检测到的无限结荚Dt1、荚色L1、荚色L2、绿种皮G和黑种皮i基因相对应,说明野生大豆与栽培大豆间、栽培大豆与栽培大豆间在这些片段上均存在等位变异分化,是与大豆进化相关的基因/片段。另一个与荚色相关的Satt273野生片段能使大豆表现黑荚,可能是本研究的新发现,但还需进一步验证。

Stem termination (ST), pod color (PC) and seed coat color (SCC) are important morphological traits, which are related to evolution in soybean. By using a wild soybean (Glycinne soja Sieb et Zucc.) chromosome segment substitution line (CSSL) population, designated as SojaCSSLP1 composed of 151 lines, one ST, three PC and two SCC wild segments/alleles were detected based on the comparison of different CSSL groups with a same phenotype on the respective trait. Among them, five wild alleles/segments identified in this study were corresponding to Dt1, L2, L1, G and em, respectively, which indicated that there existed allele differentiation happened between wild and cultivated soybean as well as between cultivated soybeans on these loci/segments and that the genes/segments involved with domestication and evolution. The wild segment of Satt273 for PC might be a novel gene/segment, which needed further verification. The identification of the genes/segments provide basic materials for cloning the wild alleles, studying the wild allele function and recombination of the wild alleles/segments.


全 文 :作物学报 ACTA AGRONOMICA SINICA 2013, 39(7): 1155−1163 http://www.chinacrops.org/zwxb/
ISSN 0496-3490; CODEN TSHPA9 E-mail: xbzw@chinajournal.net.cn

本研究由国家重点基础研究发展计划(973计划)项目(2009CB1184, 2011CB1093), 国家自然科学基金项目(31071442, 30900902), 国家
公益性行业(农业)科研专项经费项目(200803060), 江苏省优势学科建设工程专项和国家重点实验室自主课题, 国家现代农业产业技
术体系建设专项(CARS-04)和农业部大豆生物学与遗传育种创新团队项目资助。
* 通讯作者(Corresponding authors): 赵团结, E-mail: tjzhao@njau.edu.cn; 盖钧镒, E-mail: sri@njau.edu.cn
第一作者联系方式: E-mail: soybeanwang@163.com
Received(收稿日期): 2012-08-21; Accepted(接受日期): 2013-03-11; Published online(网络出版日期): 2013-04-23.
URL: http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1809.S.20130423.1336.015.html
DOI: 10.3724/SP.J.1006.2013.01155
大豆结荚习性、荚色和种皮色相关野生片段分析
王吴彬 何庆元 杨红燕 向仕华 邢光南 赵团结* 盖钧镒*
南京农业大学大豆研究所 / 国家大豆改良中心 / 农业部大豆生物学与遗传育种重点实验室(综合) / 作物遗传与种质创新国家重点实
验室, 江苏南京 210095
摘 要: 结荚习性、荚色和种皮色是大豆的重要形态性状, 与进化密切相关。利用由 151 个家系组成的野生大豆
(Glycine soja Sieb et Zucc.)染色体片段代换系(CSSL)群体(SojaCSSLP1), 通过不同表型 CSSL组间比对, 分别检测到
与结荚习性、荚色和种皮色相关的 1、3和 2个野生片段(基因)。其中, 5个野生片段(基因)分别与前人在栽培豆中检
测到的无限结荚 Dt1、荚色 L1、荚色 L2、绿种皮 G 和黑种皮 i 基因相对应, 说明野生大豆与栽培大豆间、栽培大豆
与栽培大豆间在这些片段上均存在等位变异分化, 是与大豆进化相关的基因/片段。另一个与荚色相关的 Satt273 野
生片段能使大豆表现黑荚, 可能是本研究的新发现, 但还需进一步验证。
关键词: 野生大豆; 染色体片段代换系; 荚色; 结荚习性; 种皮色
Identification of Wild Segments Associated with Stem Termination, Pod Color,
and Seed Coat Color in Soybean
WANG Wu-Bin, HE Qing-Yuan, YANG Hong-Yan, XIANG Shi-Hua, XING Guang-Nan, ZHAO Tuan-Jie*,
and GAI Jun-Yi*
Soybean Research Institute / National Center for Soybean Improvement / MOA Key Laboratory for Biology and Genetic Improvement of Soybean
(General) / National Key Laboratory of Crop Genetics and Germplasm Enhancement, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China
Abstract: Stem termination (ST), pod color (PC) and seed coat color (SCC) are important morphological traits, which are related
to evolution in soybean. By using a wild soybean (Glycine soja Sieb et Zucc.) chromosome segment substitution line (CSSL)
population, designated as SojaCSSLP1 composed of 151 lines, one ST, three PC and two SCC wild segments/alleles were detected
based on the comparison of different CSSL groups with a same phenotype on the respective trait. Among them, five wild al-
leles/segments identified in this study were corresponding to Dt1, L2, L1, G and i, respectively, which indicated that there existed
allele differentiation happened between wild and cultivated soybean as well as between cultivated soybeans on these
loci/segments and that the genes/segments involved with domestication and evolution. The wild segment of Satt273 for PC might
be a novel gene/segment, which needed further verification. The identification of the genes/segments provide basic materials for
cloning the wild alleles, studying the wild allele function and recombination of the wild alleles/segments.
Keywords: Wild soybean; Chromosome segment substitution line; Pod color; Stem termination; Seed coat color
大豆[Glycine max (L.) Merr.]原产于中国, 是当
今世界最重要的植物蛋白与植物油来源。野生大豆
(G. soja Sieb. et Zucc.)是栽培大豆的野生祖先, 具有
无限结荚、黑荚及黑种皮等典型特征。
大豆结荚习性 (stem termination, ST), 分为有
限、亚有限和无限 3 种类型。根据 SoyBase (http://
www.soybase.org/)的信息显示 , 大豆结荚习性与成
熟期[1]、株高[1-2]、叶面积[3]、产量[4]、倒伏性[2]、耐
旱性 [4]、油脂含量 [5]和百粒重 [6]等许多农艺性状相
关。Bernard [7]研究表明大豆结荚习性受 2 对基因
Dtl和 Dt2控制, Dtl为无限性, dt1为有限性, Dt2为亚
有限性, dt2为无限性, dt1对 Dt2有隐性上位作用。根
1156 作 物 学 报 第 39卷

据 Song等[8]公布的遗传图谱, Dtl被整合到大豆第 19
染色体(Chr.19)即 L连锁群(LG L)的 89.1 cM处, Dt2
被整合到 Chr.18(G)上 , 其中前者已被 Liu 等 [9]和
Tian等[10]克隆。
大豆荚色(pod color, PC)是一个重要的形态性状,
可以稳定遗传。野生大豆的荚色多为黑色, 而育成
品种多为黄色, 这与人工定向选择有关。Bernard [11]
指出大豆荚色受 2 对基因 L1和 L2控制, 其中 L1对
L2具有显性上位作用, 所以 L1-表现为黑荚, l1l1L2-表
现为棕荚, l1l1l2l2表现为黄荚。根据 Song等[8]公布的
遗传图谱, L1被整合到 Chr.19(L)染色体上的 48.3 cM
处, L2被整合到 Chr.3(N)的最顶端。关于大豆荚色的
分子遗传机理, 目前国内外报道较少。
大豆种皮色(seed coat color, SCC)也是育种中的
一个重要形态性状, 与大豆种子的商品质量及植株
的耐逆性等关系密切[12-13]。目前, 报道有 G、O、R、
I、T和 W1等 6个位点控制大豆种皮颜色, 同时位点
间存在互作, 遗传基础复杂[14]。G控制绿(青)色种皮;
g控制黄色种皮。R控制黑色种皮(与 T基因共存时);
rm控制褐色种皮并具黑色虎斑状斑纹; r控制褐色种
皮(与 T基因共存时)。O控制褐色种皮; o控制红褐
色种皮。T除控制棕毛外, 还促成产生黑色或褐色种
皮; t 除控制灰毛外, 还能冲淡皮色的作用, 产生不
完全黑色(即黑斑)或黄色种皮。W1除控制紫花外, 又
能使不完全黑色表现出来; w1 除控制白花外, 又能
冲淡 R的作用, 呈现黄褐色种皮。I能使色素全被抑
制或冲淡造成淡色脐, 当黑色基因存在时产生灰蓝
脐, 当褐色或黄褐色存在时造成淡色脐; ii将黑色或
褐色限制于脐内; ik将黑或褐色限制于脐两侧, 造成
马鞍状双色; i 无抑制作用, 使黑或褐色遍及全种皮
而成黑或褐种皮; 以上 I、ii、ik、i 依次前者对后者
为显性。根据 Song 等[8]公布的遗传图谱, G、O、R
和 W1 分别被整合到 Chr.1(D1a)的 100.8 cM 处、
Chr.8(A2)的 58.4 cM 处、Chr.9(K)的 97.1 cM 处和
Chr.13(F)的 28.9 cM处。这些基因中, 对 I和 T研究
较为深入[15], 其中 I 被定位在大豆 Chr.8(A2)上一个
富含查尔酮合成酶 (CHS)的区域 [16]; T 被定位到
Chr.6(C2)上 , 编码类黄酮 -3′-羟基化酶 (Flavonoid-
3′-hydroxylase, F3′H)[17]; 其余基因的分子机理研究
较少。
染色体片段代换系是指通过连续回交、自交及
分子标记辅助选择相结合的方法, 在受体的遗传背
景上代换一个(或少数几个)供体片段的家系。与初级
群体(如 F2:3家系、重组自交系等)相比, 遗传背景简
单, 能提高复杂农艺性状 QTL 定位的准确性, 已在水
稻、番茄、小麦和棉花等许多作物中成功应用[18-23]。
本实验室于 2006 年夏以来自熟期组(MG)V 的优良
栽培大豆 NN1138-2 为母本, 光周期反应不敏感(广
适性育种)和耐逆性强的野生大豆 N24852 为父本配
制杂交组合; 同年冬, 在海南以 NN1138-2为轮回亲
本与 F1回交获得BC1F1; 2007年夏, 在南京江浦种植
BC1F1, 继续与轮回亲本回交获得了约 182个BC2F1。
以后穿梭南京和海南两地进行回交和自交加代工
作。至 2008 年冬, 陆续获得了由 1100 个家系或单
株组成的高代回交群体。根据 Song等[8]公布的大豆
遗传图谱, 选择了 846个均匀分布于大豆 20条染色
体的 SSR 标记进行双亲多态性分析, 最后, 选取了
151个多态明显、均匀分布于 20条染色体的 SSR标
记进行 CSSL 的基因型分析和分子标记辅助选择,
并连续自交。至 2010年夏, 共获得 1、56、15、7、
16、33 和 23 个 CSSL, 分别来自 BC2F5:6、(BC2F3)
BC1F2:3、(BC2F2) BC1F3:4、(BC2F2) BC2F2:3、BC3F4:5、
BC4F3:4和 BC5F2:3等 7个不同世代。根据 151个 SSR
标记分析结果, 这些 CSSL 的受体背景回复率变化
在 80.4%~99.8%, 平均 95.7%; 其中 20个 CSSL携带
1个野生片段, 32个 CSSL携带 2个野生片段, 每个
CSSL 平均携带 3.2个纯合野生片段和 0.9 个分离片
段; 代换片段长度最小为 2.7 cM, 最大为整条染色
体 97.3 cM, 纯合野生片段平均长度为 24.0 cM。根
据 11 个大豆性状评价结果, 群体均值(多数 CSSL 的
表型)均回归到轮回亲本表型值, 并均能检测到与轮
回亲本差异显著(P<0.001)的 CSSL; 除开花期极端个
体回复到野生亲本表型外, 其余性状的极端个体仅
能表现部分程度的野生性, 反映了性状部分片段代
换的特点。相关研究结果参见Wang等[26]。
本研究主要目的: (1)利用 SojaCSSLP1对遗传基
础明确的结荚习性进行片段定位, 并与前人结果比
较, 检验定位结果可靠性; (2)利用该群体对大豆荚
色和种皮色相关基因进行初步定位, 解析其遗传基
础, 鉴定及评价影响这些性状的野生体片段, 为相
应野生等位基因的克隆、功能研究以及片段重组提
供材料基础。
1 材料与方法
1.1 试验材料
本研究所用材料: NN1138-2、N24852及由这 2
第 7期 王吴彬等: 大豆结荚习性、荚色和种皮色相关野生片段分析 1157


个亲本衍生的染色体片段代换系群体(Soja CSSLP1)。
其中 NN1138-2由国家大豆改良中心培育, 来自MG
V, 是南方大豆育种中的骨干亲本, 目前已完成了全
基因组测序, 该品种具有有限结荚、黄荚和黄种皮
等特点。野生大豆 N24852来自 MG III, 具有光周期
反应不敏感(广适性育种)和耐逆性强等特性, 表现
无限结荚、黑荚和黑种皮。SojaCSSLP1群体由 151
个家系组成, 每个家系携带有一个或几个野生片段,
该群体的基因型图如图 1 所示, 对角线上的野生片
段覆盖了野生大豆整个基因组, 有些家系间片段有
部分重叠。
1.2 田间试验和性状调查
田间试验于 2010年夏在南京农业大学国家大豆
改良中心江浦试验站进行, 完全随机区组设计, 3次
重复, 1行区, 2.0 m行长, 行距 0.5 m。田间管理同一
般大田。
田间观察和室内考种参照邱丽娟和常汝镇[27]方
法。结荚习性分有限 (determinate, DTM)、亚有限
(semi-determinate, SDTM) 和 无 限 (indeterminate,
IDTM)。荚色为大豆成熟时豆荚的颜色, 分黄(yellow,
YW)、棕(brown, BN)和黑(black, BK)[11]。种皮色分
黄(yellow, Y)、绿(green, G)和黑(black, B) [14]。
1.3 数据分析
用 Sigmaplot软件绘制表型数据的次数分布图。
根据不同表型 CSSL 组间比对的方法检测与性状相
关的野生片段(以标记表示)。按照某一性状表型的不
同 , 将 SojaCSSLP1 分为受体组(表型与受体亲本
NN1138-2 相同的 CSSL 组成)和供体组(表型与受体
亲本不同的 CSSL 组成), 如果供体组中存在表型差
异, 又可分成不同的亚组; 然后比较各供体组与受
体组在 151 个 SSR 位点(片段)上的差异。在理想条
件下, 如果野生片段与性状相关, 则其应仅存在于
供体组。CSSL分组时不考虑性状分离家系。
基因命名方法, 参考 QTL的命名[28], 即 g+目标
性状(英文缩写的大写字母)+所在染色体+基因序数,
基因的全名用斜体表示。
2 结果与分析
2.1 亲本及群体性状表现
NN1138-2表现有限结荚、黄荚和黄种皮, 而野
生大豆 N24852表现无限结荚、黑荚和黑种皮。从图
2中可以看出, 151个CSSL中, 多数表型已回归到轮
回亲本, 说明群体的遗传背景已基本回复到轮回亲
本水平。同时, 除结荚习性外, 荚色和种皮色均出现
了新的类型, 表明性状部分片段被代换的特点。如
SojaCSSLP1 中不仅存在黑荚 CSSL 和黄荚 CSSL,
而且还出现了棕荚。
2.2 大豆主要形态性状相关野生片段分析
按 Young 和 Tanksley[29]的方法估算野生片段所
占基因组的比例。首先, 不考虑 2个相邻标记间发生
的双交换事件, 当相邻两标记基因型均为野生亲本
基因型时, 则认为这 2 个标记之间的区段全为野生
片段; 当相邻两标记基因型均为栽培基因型时, 则
认为这 2 个标记间不含野生片段; 当相邻标记一个
为野生基因型另一个为栽培基因型时, 则认为这个
区段含有 50%的野生片段。如图 1所示, SojaCSSLP1
群体由 151 个家系组成, 根据 151 个 SSR 标记对角
线上野生大豆基因组被相应分解成大小不同的片段,
片段间可能有重叠, 但总加起来覆盖了整个野生大
豆基因组; 在非对角线区域各家系还存在一些其他
重复片段, 是 CSSL但还不是单片段代换系(SSSL)。
其中每个家系携带 1 个或少数几个野生片段, 利用
该群体进行基因定位时, 实际是将这些基因定位到
片段上。因此本研究利用基因/片段来代表所获得的
定位结果。
在 SojaCSSLP1 中, 累计共检测到与大豆结荚
习性、荚色和种皮色相关的 6 个基因/片段, 分别分
布在 Chr.1(D1a)、Chr.3(N)、Chr.8(A2)、Chr.9(K)和
Chr.19(L)上(图 3)。
2.2.1 大豆结荚习性相关野生片段分析 So-
jaCSSLP1中共有 6个 CSSL表现无限结荚(图 2), 组
成供体组; 其余 144个有限结荚习性的CSSL组成受
体组。通过不同表型 CSSL组间比对发现, 151个野
生片段(标记)中, 只有 Satt166 和 Sat_286 仅在供体
组中出现而在受体组中不出现。所以初步确定上述
2个野生片段与大豆结荚习性相关, 其在 6个无限结
荚 CSSL中的分布见图 4-A。从该图, 可以得到以下
结果: (1) CSSL52、CSSL96和 CSSL148携带 Sat_286
野生片段, 表型无限结荚, 说明该片段包含无限结
荚基因; (2) CSSL119、CSSL141和 CSSL143同时携
带 Satt166 和 Sat_286 野生片段, 表现无限结荚, 由
于无单独携带 Satt166 野生片段的 CSSL, 所以其与
大豆结荚习性是否相关还有待确定。
综合以上结果, 最后确定 Sat_286 野生片段包
含大豆无限结荚基因。
1158 作 物 学 报 第 39卷


图 1 SojaCSSLP1 的图示基因型(引自 Wang等[26])
Fig. 1 Graphical genotypes of SojaCSSLP1 (cited from Wang et al.[26])
每一行代表一个染色体片段代换系; 每一列代表一条染色体(连锁群); 白色区域和黑色区域分别代表 NN1138-2和 N24852的纯合片段;
灰色区域代表存在分离的片段。
Each row indicate a CSSL and each column represented a chromosome (linkage group). The white and black bars denote the segments ho-
mozygous for NN1138-2 and N24852 respectively; segregating segments are denoted with gray bar.
第 7期 王吴彬等: 大豆结荚习性、荚色和种皮色相关野生片段分析 1159



图 2 SojaCSSLP1 群体结荚习性、荚色和种皮色的次数分布图(江苏江浦, 2010)
Fig.2 Frequency distribution of ST, PC, and SCC in the SojaCSSLP1 (Jiangpu, Jiangsu, 2010)
A: 结荚习性(ST); B: 荚色(PC); C: 种皮色(SCC); DTM: 有限结荚; IDTM: 无限结荚;
YW: 黄荚; BN: 棕荚; BK: 黑荚; Y: 黄种皮; B: 黑种皮; G: 绿种皮。括号内数字代表 CSSL个数。
A: stem termination (ST); B: pod color (PC); C: seed coat color (SCC); DTM: determinate; IDTM: indeterminate;
YW: yellow pod; BN: brown pod; BK: black pod; Y: yellow seed coat; B: black seed coat; G: green seed coat.
The number in bracket represents the number of CSSLs.


图 3 大豆结荚习性、荚色和种皮色相关基因/片段在染色体上的分布
Fig. 3 Distribution of gene/segment for stem termination (ST), pod color (PC), and seed coat color (SCC) on soybean chromosomes


图 4 大豆结荚习性(ST)、荚色(PC)和种皮色(SCC)相关野生片段分析
Fig. 4 Analysis of wild segment associated with stem termination (ST), pod color (PC), and seed coat color (SCC)
A: 结荚习性; B: 荚色; C: 种皮色; DTM: 有限结荚; IDTM: 无限结荚; YN: 黄荚; BK: 黑荚; BN: 褐荚;
Y: 黄种皮; B: 黑种皮; G: 绿种皮; □: NN1138-2基因型; ■: N24852基因型。
A: stem termination (ST); B: pod color (PC); C: seed coat color (SCC); DTM: determinate; IDTM: indeterminate;
YW: yellow pod; BK: black pod; BN: brown pod; Y: yellow seed coat; B: black seed coat; G: green seed coat;
the number in bracket represents the number of CSSLs; □: the genotype of NN1138-2; ■: the genotype of N24852.

1160 作 物 学 报 第 39卷

2.2.2 大豆荚色相关野生片段分析 根据荚色将
SojaCSSLP1分成受体组(黄荚, 132个 CSSL)、棕荚
组(5个 CSSL)和黑荚组(13个 CSSL), 另一个荚色分
离 CSSL 不参与分组。通过不同表型 CSSL 组间比
对发现, 151 个位点的野生片段中, 只有 Satt273 和
Satt313 仅在黑荚组中出现而不在受体(黄荚)组中出
现, 所以这 2 个野生片段可能与大豆黑荚相关。在
受体组与棕荚组间, 虽然没有发现棕荚组独有的野
生片段, 但 CSSL20 为染色体单片段代换系, 仅携
带一个 Sct_195野生片段, 荚表现棕色。综上, 初步
确定 Satt273、Satt313和 Sct_195等 3个野生片段与
荚色相关。在 SojaCSSLP1 中, 共有 19 个 CSSL 的
荚色与轮回亲本不同, 其中有 7 个 CSSL 不携带本
研究检测到的 3 个野生片段, 另一个 CSSL 荚色分
离, 上述野生片段在剩余 11个 CSSL中的分布见图
4-B。从该图可以得到以下结果: (1) CSSL4、CSSL20
和 CSSL22 携带 Sct_195 的野生片段, 荚表现棕色,
说明该野生片段携带棕荚基因。 (2) CSSL70、
CSSL88、CSSL125和 CSSL140携带 Satt313的野生
片段 , 荚表现黑色 , 说明该野生片段携带黑荚基
因。(3) CSSL67 携带 Satt273 的野生片段, 荚为黑
色。CSSL101同时携带 Sct_195和 Satt273两个野生
片段 , 荚为黑色。CSSL68 同时携带 Satt273 和
Satt313两个野生片段, 荚为黑色。以上说明 Satt273
野生片段也可能携带黑荚基因。
综合以上结果, 最后确定 Satt273、Satt313 和
Sct_195 等 3 个野生片段与大豆荚色相关。其中
Sct_195 上的野生等位基因能使大豆荚表现棕色 ,
Satt273 和 Satt313 上的野生等位基因能使大豆荚表
现黑色。
2.2.3 大豆种皮色相关野生片段分析 按照种皮
色将 SojaCSSLP1 分为受体组(124 个 CSSL)、绿种
皮组(9个 CSSL)和黑种皮组(12个 CSSL)。根据不同
表型 CSSL 组间比对, 虽然没有发现与绿种皮组和
黑种皮组相特异的野生片段 , 但发现 SojaCSSLP1
中共有 6个 CSSL携带 Sat_160野生片段, 其中 5个
家系与轮回亲本相比种皮色有变化; 群体中共有 7
个 CSSL携带AW132402野生片段, 其中 6个家系表
现黑种皮, 所以这 2 个野生片段与种皮色相关的可
能性较大(如图 4-C)。
在 SojaCSSLP1 中共有 27 个 CSSL 种皮色与轮
回亲本不同, 然而其中仅有 9个CSSL携带本研究检
测的种皮色相关野生片段; 另一个家系 CSSL57 虽
同时携带 Sat_160和AW132402野生片段, 但种皮为
黄色; 其余 141个 CSSL均不携带这 2个野生片段。
Sat_160 和 AW132402 在上述 10 个 CSSL 中的分布
见图 4-C, 从该图可以得到以下结果: (1) CSSL9、
CSSL11 和 CSSL44 携带 Sat_160 的野生片段, 种皮
为绿色 , 说明该片段携带绿种皮基因 , 命名为
gSCC1。(2) CSSL29、CSSL54、CSSL58和 CSSL110
仅携带一个与种皮色相关的 AW132402 野生片段,
种皮色均表现黑色, 说明该片段携带有黑种皮基因,
命名为 gSCC8。(3) CSSL10 和 CSSL55 同时携带
Sat_160 和 AW132402 野生片段, 种皮为黑色, 说明
这 2 个片段上的种皮色基因间存在互作, 黑色掩盖
了绿色。
综合以上结果, 最后确定 Sat_160和 AW132402
野生片段与大豆种皮色相关。其中 Sat_160 野生片
段携带的种皮色基因能使大豆表现绿种皮 ,
AW132402 野生片段携带的种皮色基因能使大豆表
现黑种皮。
3 讨论
3.1 CSSL群体在质量性状定位中的应用
对质量性状进行定位, 常用的作图群体为 F2群
体[31]。这类群体仍需继续回交或自交构建高级作图
群体(高代回交群体和剩余杂合系等), 才能实现对
性状的精细定位和图位克隆。染色体片段代换系是
指在受体的遗传背景上代换了一个或少数几个供体
片段的家系 , 其特征是不同个体间遗传背景相似 ,
能使整个基因组上的多个基因/QTL分解为只存在一
个或几个基因/QTL的分离, 从而消除背景的干扰和
主效位点对微效位点的掩盖作用, 能明显提高基因
/QTL定位的准确性和灵敏度[18], 且通过不同家系间
直接比对就可完成初步定位, 检测效率高。同时, 通
过直接与轮回亲本杂交构建次级 F2群体, 可以快速
实现精细定位。如赵荣兵等[32]通过选育的高代回交
材料, 将 Rscmv1基因精细定位在一个 1.38 Mb的区
段内。赵亮等[33]利用陆地棉遗传背景的海岛棉染色
体置换系, 将红株基因 R1精细定位在 NAU4956 和
NAU6752之间, 与最近标记的遗传距离为 0.49 cM,
该结果为进一步克隆该基因及培育红色彩棉转基因
品种提供了研究基础。
对质量性状进行基因定位的方法主要有: (1)分
离群体分组分析法 [34](bulked segregant analysis,
BSA); (2)极端个体组和隐性组分析 [35](bulked ex-
第 7期 王吴彬等: 大豆结荚习性、荚色和种皮色相关野生片段分析 1161


tremes and recessive class analysis, BERCA); (3)DNA
池分析法[36]和(4)近等基因系分析[37]。由于本研究所
利用的 SojaCSSLP1 仍为初级染色体片段代换系群
体, 有的家系还携带多个供体片段及分离片段的情
况 , 还不能通过直接与轮回亲本比对进行基因定
位。所以采用了 BSA 的分组原理, 通过不同表型
CSSL 组间比对, 寻找与供体组相特异的野生片段,
进而完成基因/片段定位。该方法虽然能快速鉴定出
与特定质量性状相连锁的标记, 但分子标记与目标
基因之间有重组时将降低寻找与供体组相特异野生
片段的效率。
利用 SojaCSSLP1 对遗传基础明确的结荚习性
进行基因/片段定位, 检测到的基因/片段与Dt1紧邻,
说明利用该群体, 通过不同表型 CSSL 组间比对的
方法对质量性状进行野生片段定位是可行的。同时
利用该群体, 还检测到 3 个荚色和 2 个种皮色基因/
片段。然而本研究的定位结果并不能解释所有差异
CSSL 的表型变异, 如另 8 个荚色差异 CSSL 和 17
个种皮色差异代换系均不携带本研究检测到的野生
片段, 说明可能还有其他控制性状的基因存在。
3.2 检测到的大豆结荚习性、荚色和种皮色基因
/片段与文献结果的比较
利用 SojaCSSLP1, 本研究共检测到 5个与大豆
荚色和种皮色相关的基因/片段, 其中有 2 个荚色基
因/片段和 2个种皮色基因/片段与文献结果具有可比
性, 说明野生与栽培大豆间、栽培与栽培大豆间在
这些位点(片段)上均存在等位变异分化, 这些位点
(片段)可能是与大豆荚色和种皮色进化相关的重要
位点。
如表 1 所示, 本研究检测到一个大豆结荚习性
基因/片段, 该片段上的结荚习性基因 gST19 与 Dt1
基因的距离不足 2 cM [8], 且与 Liu等[30]在野生大豆
中检测到的大豆生长习性位点紧邻。
本研究检测到 3 个大豆荚色基因/片段, 根据
Song等[8]公布的分子遗传图谱, Sct_195片段上的荚
色基因 gPC3与 L2基因相距仅 2.4 cM; Satt313上的
荚色基因 gPC19与 L1基因相距约 15 cM [8]。另一个
荚色相关基因/片段 Satt273 未见与以往报道的荚色
基因有关, 可能为本研究新发现的基因/片段, 有待
进一步验证。
本研究检测到 2 个大豆种皮色基因/片段, 其中
Sat_160 上的种皮色基因 gSCC1 与 G 基因距离约 4
cM。AW132402上的种皮色基因 gSCC8与控制种皮
色的 O 和 i 紧邻, 而前人报道 O 基因能使大豆种皮
表现褐色, i 基因能使大豆表现黑种皮, 所以本研究
在 AW132402上发现的种皮色基因可能是 i基因。

表 1 大豆结荚习性、荚色和种皮色基因/片段与文献结果的比较
Table 1 Comparison gene/segments for ST, PC and SCC in present study with the results reported in literatures
基因
Gene
连锁标记
Linked marker
染色体(连锁群)
Chr. (LG)
位置 a
Position (cM) a
基因效应
Gene effect
母本
Female
父本 b
Male b
参考文献
Reference
结荚习性 Stem termination
gST19 Sat_286 19(L) 87.4 Indeterminate NN1138-2 N24852 (W) 本研究 In this study
Dt1 19(L) 89.1 Indeterminate Clark Harosoy Song et al. (2004)[8]
Sat_099 19(L) 81.9 Indeterminate Tokei 780 Hidaka 4 (W) Liu et al. (2007) [27]
荚色 Pod color
gPC3 Sct_195 3(N) 2.4 Brown NN1138-2 N24852 (W) 本研究 In this study
L2 3(N) 0 Brown Minsoy Noir 1 Song et al. (2004)[8]
gPC19 Satt313 19(L) 34.5 Black NN1138-2 N24852 (W) 本研究 In this study
L1 19(L) 48.3 Black Clark Harosoy Song et al. (2004)[8]
gPC9 Satt273 9(K) 56.2 Black NN1138-2 N24852 (W) 本研究 In this study
种皮色 Seed coat color
gSCC1 Sat_160 1(D1a) 104.3 Green NN1138-2 N24852 (W) 本研究 In this study
G 1(D1a) 100.8 Green Clark Harosoy Song et al. (2004)[8]
gSCC8 AW132402 8(A2) 67.9 Black NN1138-2 N24852 (W) 本研究 In this study
O 8(A2) 58.4 Brown Soysota Ogemaw Song et al. (2004)[8]
i 8(A2) 48.4 Black Clark Harosoy Song et al. (2004)[8]
a: 标记在公共图谱[8]上的位置; b: W代表野生大豆(G. soja)。
a: position in the consensus map[8]; b: W represent the wild soybean(G. soja).
1162 作 物 学 报 第 39卷

3.3 大豆荚色和种皮色的遗传基础
按 Bernard [11], 大豆荚色受 2对基因 L1和 L2控
制, 其中 L1对 L2具有显性上位作用, 所以 L1-表现为
黑荚, l1l1L2-表现为棕荚, l1l1l2l2表现为黄荚。而本研
究检测到的 3 个与大豆荚色相关的基因 /片段 ,
L1(qPC19)可能在 Satt313 上 , L2(qPC3)可能在
Sct_195 上 , 那么这里发现的第 3 个基因 /片段
Satt273 如何解释?若只考虑 L1L1和 L2L2 两对基因,
CSSL67 不携带 Satt313 和 Sct_195 野生生片段, 即
不携带 L1 和 L2, 则其荚色应为黄色而不是黑色 ;
CSSL101携带 Sct_195野生片段而不携带 Satt313野
生片段, 即仅携带 L2 基因, 其荚色应为棕色而不是
黑色; 现两者均为黑荚, 所以 2 对显性上位作用的
基因不能完全解释上述现象, 这只能从 Satt273野生
片段与黑荚有关去考虑。这样也可以解释 CSSL68
携带 Satt273 和 Satt313 野生片段, 其黑荚可能是由
L1或 gPC9决定的。不过, 承认了 3个片段与荚色有
关, 便必须进一步提出新的遗传模型来解释这些更
为复杂的遗传现象。这里也曾考虑到用片段内存在
重组去尝试新的解释 , 但鉴于本研究的数据有限 ,
难以圆满说明, 因而拟进一步建立这 3 个野生片段
和受体亲本的次级衍生群体后再验证它们是否都与
荚色有关, 并解析三者间的遗传关系。
本研究仅检测到 2个大豆种皮色基因/片段(表 1),
其中 Sat_160 野生片段上的种皮色基因可能为前人
报道的绿种皮基因 G, AW132402野生片段上的种皮
色基因 gSCC8可能是黑种皮基因 i。SojaCSSLP1中
未发现褐种皮 CSSL, 可能是双亲在 O 位点上的等
位基因相同, 均为隐性基因, 所以本研究未能检测
到该基因。
4 结论
共检测到 6 个与大豆结荚习性、荚色和种皮色
相关的基因/片段, 其中 5个基因/片段曾被前人在栽
培大豆中检测到, 说明这些位点(片段)为栽培大豆
和野生大豆共有的遗传分化位点, 可能是大豆进化
过程中的关键位点; 另外 1 个荚色基因/片段可能为
本研究利用野生大豆的新发现, 但其存在可能性仍
需进一步验证。三性状相关野生片段的检出为相应
野生等位基因的克隆、功能研究以及片段重组提供
了材料基础。
References
[1] Specht J E, Chase K, Macrander M, Graef G L, Chung J, Mark-
well J P, Germann M, Orf J H, Lark K G. Soybean response to
water: a QTL analysis of drought tolerance. Crop Sci, 2001, 41:
493–509
[2] Lee S H, Bailey M A, Mian M A R, Shipe E R, Ashley D A,
Parrott W A, Hussey R S, Boerma H R. Identification of quantita-
tive trait loci for plant height, lodging, and maturity in a soybean
population segregating for growth habit. Theor Appl Genet, 1996,
92: 516–523
[3] Orf J H, Chase K, Jarvik T, Mansur L M, Cregan P B, Adler F R,
Lark K G. Genetics of soybean agronomic traits: I. Comparison of
three related recombinant inbred populations. Crop Sci, 1999, 39:
1652–1656
[4] Specht J E, Chase K, Macrander M, Graef G L, Chung J, Mark-
well J P, Germann M, Orf J H, Lark K G. Soybean response to
water: a QTL analysis of drought tolerance. Crop Sci, 2001, 41:
493–509
[5] Hyten D L, Pantalone V R, Sams C E, Saxton A M, Landau-Ellis
D, Stefaniak T R, Schmidt M E. Seed quality QTL in a prominent
soybean population. Theor Appl Genet, 2004, 109: 552–561
[6] Mian M A R, Bailey M A, Tamulonis J P, Shipe E R, Carter T E,
Parrott W A, Ashley D A, Hussey R S, Boerma H R. Molecular
markers associated with seed weight in two soybean populations.
Theor Appl Genet, 1996, 93: 1011–1016
[7] Bernard R L. Two genes affecting stem termination in soybeans.
Crop Sci, 1972, 12: 235–239
[8] Song Q J, Marek L F, Shoemaker R C, Lark K G, Concibido V C,
Delannay X, Specht J E, Cregan P B. A new integrated genetic
linkage map of the soybean. Theor Appl Genet, 2004, 109:
122–128
[9] Liu B, Watanabe S, Uchiyama T, Kong F, Kanazawa A, Xia Z,
Nagamatsu A, Arai M, Yamada T, Kitamura K. The soybean stem
growth habit gene Dt1 is an ortholog of Arabidopsis TERMINAL
FLOWER1[W][OA]. Plant Physiol, 2010, 153: 198–210
[10] Tian Z, Wang X, Lee R, Li Y, Specht J E, Nelson R L, McClean P
E, Qiu L, Ma J. Artificial selection for determinate growth habit
in soybean. Proc Natl Acad Sci USA, 2010, 107: 8563–8568
[11] Bernard R L. The inheritance of pod color in soybeans. J Hered,
1967, 58: 165–168
[12] Hou F F, Thseng F S. Studies on the flooding tolerance of soy-
bean seed: varietal differences. Euphytica, 1991, 57: 169–173
[13] Takahashi R. Association of soybean genes I and T with
low-temperature induced seed coat deterioration. Crop Sci, 1997,
37: 1755–1759
[14] Gai J-Y(盖钧镒), Plant Breeding (Species) (作物育种学各论),
2nd Edn. Beijing: China Agriculture Press, 2006. pp 235–236 (in
Chinese)
[15] Song J(宋健), Guo Y(郭勇), Yu L-J(于丽杰), Qiu L-J(邱丽娟).
Progress in genes related to seed-coat color in soybean. Hereditas
(遗传), 2012, 34: 687–694 (in Chinese)
[16] Clough S J, Tuteja J H, Li M, Marek L F, Shoemaker R C, Vodkin
L O. Features of a 103-kb gene-rich region in soybean include an
第 7期 王吴彬等: 大豆结荚习性、荚色和种皮色相关野生片段分析 1163


inverted perfect repeat cluster of CHS genes comprising the I lo-
cus. Genome, 2004, 47: 819–831
[17] Toda K, Yang D, Yamanaka N, Watanabe S, Harada K, Takahashi
R. A single-base deletion in soybean flavonoid 3’-hydroxylase
gene is associated with gray pubescence color. Plant Mol Biol,
2002, 50: 187–196
[18] Eshed Y, Zamir D. An introgression line population of Lycoper-
sicon pennellii in the cultivated tomato enables the identification
and fine mapping of yield-associated QTL. Genetics, 1995, 141:
1147–1162
[19] Huang X Q, Cöster H, Ganal M W, Röder M S. Advanced back-
cross QTL analysis for the identification of quantitative trait loci
alleles from wild relatives of wheat (Triticum aestivum L.). Theor
Appl Genet, 2003, 106: 1379–1389
[20] Pillen K, Zacharias A, Léon J. Advanced backcross QTL analysis
in barley (Hordeum vulgare L.). Theor Appl Genet, 2003, 107:
340–352
[21] Kubo T, Aida Y, Nakamura K, Tsunematsu H, Doi K, Yoshimura
A. Reciprocal chromosome segment substitution series derived
from japonica and indica cross of rice (Oryza sativa L.). Breed
Sci, 2002, 52: 319–325
[22] Wan J-L(万建林), Zhai H-Q(翟虎渠), Wan J-M(万建民), Yasui
H, Yoshimura A. Mapping QTL for traits associated with resis-
tance to ferrous iron toxicity in rice (Oryza sativa L.), using ja-
ponica chromosome segment substitution lines. Acta Genet Sin
(遗传学报), 2003, 30: 893–898
[23] Hao W(郝伟), Jin J(金健), Sun S-Y(孙世勇), Zhu M-Z(朱美珍),
Lin H-X(林鸿宣). Construction of chromosome segment substi-
tution lines carrying overlapping chromosome segments of the
whole wild rice genome and identification of quantitative trait
loci for rice quality. J Plant Physiol Mol Biol (植物生理与分子
生物学学报), 2006, 32: 354–362 (in Chinese)
[24] Alpert K B, Tanksley S D. High-resolution mapping and isolation
of a yeast artificial chromosome contig containing fw2.2: a major
fruit weight quantitative trait locus in tomato. Proc Natl Acad Sci
USA, 1996, 93: 15503–15507
[25] Yamamoto T, Lin H X, Sasaki T, Yano M. Identification of head-
ing date quantitative trait locus Hd6 and characterization of its
epistatic interactions with Hd2 in rice using advanced backcross
progeny. Genetics, 2000, 154: 885–891
[26] Wang W B, He Q Y, Yang H Y, Xiang S H, Zhao T J, Gai J Y.
Development of a chromosome segment substitution line popula-
tion with wild soybean (Glycine soja Sieb. et Zucc.) as donor par-
ent. Euphytica, 2013, 189: 293–307
[27] Qiu L-J(邱丽娟), Chang R-Z(常汝镇). Descriptors and Data
Standard for Soybean (Glycine spp.) (大豆种质资源描述规范和
数据标准). Beijing: China Agriculture Press, 2006. p 59 (in Chi-
nese)
[28] McCouch S R, Cho Y G, Yano M, Paul E, Blinstrub M,
Morishima H, Kinoshita T. Report on QTL nomenclature. Rice
Genet Newslett, 1997, 14: 11–13
[29] Young N D, Tanksley S D. Restriction fragment length polymor-
phism maps and the concept of graphical genotypes. Theor Appl
Genet, 1989, 77: 95–101
[30] Liu B, Fujita T, Yan Z H, Sakamoto S, Xu D, Abe J. QTL map-
ping of domestication-related traits in soybean (Glycine max).
Ann Bot, 2007, 100: 1027–1038
[31] Maughan P J, Maroof M A S, Buss G R. Molecular-marker
analysis of seed-weight: genomic locations, gene action, and evi-
dence for orthologous evolution among three legume species.
Theor Appl Genet, 1996, 93: 574–579
[32] Zhao R-B(赵荣兵), Wang Y-X(王永霞), Ding J-Q(丁俊强),
Zhang X-C(张学才), Wu J-Y(吴建宇). Fine mapping of resis-
tance gene Rscmv1 to maize dwarf mosaic virus. J Maize Sci (玉
米科学), 2011, 19: 10–13 (in Chinese)
[33] Zhao L(赵亮), Cai C-P(蔡彩平), Zhang T-Z(张天真), Guo
W-Z(郭旺珍). Fine mapping of the red plant gene R1 in upland
cotton (Gossypium hirsutum). Chin Sci Bull (科学通报), 2009, 54:
888–891 (in Chinese)
[34] Michelmore R W, Paran I, Kesseli R V. Identification of markers
linked to disease-resistance genes by bulked segregant analysis: a
rapid method to detect markers in specific genomic regions by
using segregating populations. Proc Natl Acad Sci USA, 1991, 88:
9828–9832
[35] Zhang Q, Shen B Z, Dai X K, Mei M H, Saghai-Maroof M A, Li
Z B. Using bulked extremes and recessive class to map genes for
photoperiod-sensitive genic male-sterility in rice. Proc Natl Acad
Sci USA, 1994, 91: 8675–8679
[36] Giovannoni J J, Wing R A, Ganal M W, Tanksley S D. Isolation
of molecular markers from specific chromosomal intervals using
DNA pools from existing mapping populations. Nucl Acids Res,
1991, 19: 6553–6558
[37] Martin G B, Williams J G, Tanksley S D. Rapid identification of
markers linked to a Pseudomonas resistance gene in tomato by
using random primers and near-isogenic lines. Proc Natl Acad Sci
USA, 1991, 88: 2336–2340