全 文 ：作物学报 ACTA AGRONOMICA SINICA 2011, 37(7): 1196−1204 http://www.chinacrops.org/zwxb/
ISSN 0496-3490; CODEN TSHPA9 E-mail: xbzw@chinajournal.net.cn

本研究由国家重点基础研究计划(973计划)项目(2006CB101600)资助。
∗ 通讯作者(Corresponding author): 官春云, E-mail: guancy2000@yahoo.com.cn
第一作者联系方式: E-mail: fengymz1983@hotmail.com, Tel: 15974188123
Received(收稿日期): 2010-12-24; Accepted(接受日期): 2011-03-26.
DOI: 10.3724/SP.J.1006.2011.01196
DOF转录因子 AtDof1.7 RNA干扰载体的构建及拟南芥的遗传转化
尹明智 官 梅 肖 钢 李 栒 官春云*
湖南农业大学油料作物研究所 / 国家油料作物改良中心湖南分中心, 湖南长沙 410128
摘 要: DOF (DNA binding with one finger)转录因子是植物特有的转录因子家族, 含有一个独特的富含 Cys残基的单
锌指 DNA 结合区域, 在植物生长发育中参与多种生物学过程。本研究根据拟南芥 AtDof1.7 基因(GenBank 登录号为
AT1G51700)序列设计含有不同酶切位点的特异性扩增引物, 以拟南芥总 DNA 为模板, 扩增 AtDof1.7 基因片段, 将
AtDof1.7基因正向反向分别插入表达载体的相应位置, 构建成 AtDof1.7基因的 RNA干扰载体 pADOF1。利用改良的
floral-dip方法将干扰载体 pADOF1成功转入野生型拟南芥, 经草甘膦抗性筛选和 PCR检测获得 5株阳性转基因植株。
利用 RT-PCR 技术和气相色谱法分别分析了 AtDof1.7 基因的表达和种子脂肪酸组成, 结果表明, 5 株转基因植株中
AtDof1.7基因的表达量不同程度低于野生型植株, 种子油酸含量明显上升, 亚麻酸含量明显下降, 说明 AtDof1.7转录
因子与拟南芥种子脂肪酸代谢途径有一定的关系, 为进一步研究其在脂肪酸代谢过程中的调控作用以及在油菜中研
究该类转录因子的功能奠定了基础。
关键词: DOF转录因子; AtDof1.7; 拟南芥; RNA干扰载体; 脂肪酸代谢途径
RNAi Vector Construction of AtDof1.7 Transcription Factors and Genetic
Transformation into Arabidopsis thaliana
YIN Ming-Zhi, GUAN Mei, XIAO Gang, LI Xun, and GUAN Chun-Yun*
Oilseed Crops Institute / National Oil Crops Improvement Center, Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China
Abstract: The DOF (DNA binding with one finger) transcription factors are members of a family of plant-specific transcription
factors that have a highly conserved DNA-binding domain, namely Dof domain which contains a single C2C2-type zinc-finger-
like motif and specifically recognizes an (A/T)AAAG sequence as the recognition core. It suggests that the Dof transcription fac-
tors play diverse roles in specific biological processes in plants. Members of this protein family in plants are found to be involved
in the gene regulation of many processes, but the roles in fatty acid metabolism are rarely reported. To investigate whether At-
Dof1.7 Dof transcription factor can regulate fatty acid metabolism, on the basis of the sequence of AtDof1.7 (GenBank accession
No. AT1G51700), we designed the specific primer containing different enzyme sites. With the template of Arabidopsis thaliana
DNA, the AtDof1.7 gene fragment was isolated, which was inserted into the expression vector by forward and reverse ways re-
spectively. The RNA interference vector of pADOF1 containing AtDof1.7 gene fragment was constructed. Using floral-dip
method, pADOF1 was successfully transformed into wide-type Arabidopsis thaliana. Glyphosate resistance screening and PCR
detection showed that five positive transgenic plants were obtained. The result of RT-PCR showed that transgenic plants had lower
expression level of AtDof1.7 gene than the wild type. Fatty acid content was analyzed by gas chromatography which showed that
the content of oleic acid increased and the content of linolenic acid decreased drastically in each transgenic plant compared with
wide-type plants. These results indicated that AtDof1.7 transcription factor has certain relation with fatty acid metabolic pathway
in Arabidopsis thaliana seed which provides a good foundation for further study on the function of AtDof1.7 transcription factor
in fatty acid metabolic regulation.
Keywords: DOF transcription factors; AtDof1.7; Arabidopsis thaliana; RNA interference vector; Fatty acid metabolic pathway
第 7期 尹明智等: DOF转录因子 AtDof1.7 RNA干扰载体的构建及拟南芥的遗传转化 1197


RNAi 技术在 RNA 水平抑制基因的表达, 为基
因组研究进入后基因组时代提供了一种有力的工
具。已有大量研究证实 RNAi 技术作为一项快速、
高效、便于操作的技术, 可以特异性抑制特定基因
的表达, 非常有效地鉴定特异基因的功能, 表现出
优越的特性, 因而成为分析功能基因组的有效工具,
应用于大规模复杂的功能基因组学研究[1-3]。
DOF (DNA binding with one finger)转录因子是
植物所特有的一类转录因子, 其含有一个独特的富
含 Cys 残基的单锌指 DNA 结合区域, 命名为 DOF
结构域。通过特异地识别 T/AAAAG核心序列, DOF
结构域与目的 DNA 相结合[4-5]。目前, 在拟南芥、
烟草、南瓜、大麦、小麦和水稻等植物中研究表明
DOF转录因子在植物生长发育中参与多种生物学过
程[6-8]。有些 DOF 转录因子在种子发育期间调控储
藏蛋白的表达 , 如玉米的 PBF 基因(prolamin box
binding factor, PBF)、大麦中的 BPBF 和小麦中的
WPBF, 都能对种子储藏蛋白基因的转录进行时空
调控[9-12]; Imaizumi等[13]研究表明, 拟南芥 CDF1转
录因子能与 FKF1 (FLAVIN-BINDING, KELCH
REPEAT, F-BOX 1)蛋白相互作用, 并与 CONSTANS
(CO)基因的启动子相结合调节 CO 基因的转录, 从
而调节拟南芥的光周期开花; 大豆中的 GmDof4 和
GmDof11 能分别与乙酰辅酶 A 羧化酶(acetyl CoA
carboxylase, ACCase)和长链乙酰 CoA 合成酶
(long-chain-fatty-acyl CoA)基因的启动子区域相结
合, 激活这 2个基因的表达 , 从而增加种子中油脂
的含量, 结果表明这 2 个基因可以通过调控与脂肪
酸生物合成途径相关基因的表达, 提高大豆种子中
的油脂含量, 可为转基因大豆工程提供新的目标基
因[14]。Yanagisawa 等[15]早期研究发现, ZmDof1 和
ZmDof2 特异性地作用于玉米 C4磷酸烯醇式丙酮酸
羧化酶(phosphoenolpyruvate carboxylase, PEPCase)
的启动子, 参与光诱导和碳代谢的调控。后来研究
发现 ZmDof1 在拟南芥中过量表达可促进与碳骨架
合成有关酶表达的增加, 激活拟南芥的 PEPCase 和
丙酮酸激酶(pyruvate kinase, PK)基因的表达[16-17]。
潘丽峰[18]将拟南芥 AtDof1.7 转录因子转化烟草, 也
增强了 PEPCase 和 PK 的酶活性, 提高了烟草对氮
素营养的利用率。磷酸烯醇丙酮酸(PEP)作为油脂和
蛋白质生物合成的共同底物, 可在 PEPCase 催化下
合成草酰乙酸进入蛋白质代谢; 同时也可经 PK 催
化形成丙酮酸, 进而形成乙酰-CoA, 而后在ACCase
催化下合成丙二酰-CoA 进入脂肪代谢 [19], 这说明
AtDof1.7 转录因子有可能参与种子中蛋白质代谢与
脂肪酸代谢之间复杂关系的调控。
植物 RNA 干扰技术主要是构建具有目的基因
特定序列正、反向序列的表达载体, 将其转化到植
物体内实现干扰作用。本研究利用种子特异性表达
的 NapinA启动子, 构建具有拟南芥 AtDof1.7基因序
列的种子特异性表达的 RNAi 载体, 并成功转入拟
南芥, 为进一步揭示该基因的功能奠定基础, 也为
在油菜中研究该类转录因子提供新的参考。
1 材料与方法
1.1 试验材料
哥伦比亚野生型(Arabidopsis thaliana Col-0)拟
南芥、甘蓝型油菜湘油 15、大肠杆菌 DH5α、根癌
农杆菌 LBA4404、pFGC5941 表达载体均由湖南农
业大学国家油料改良中心湖南分中心提供; T4-DNA
连接酶和 pMD18-T载体购自TaKaRa公司; Pfu DNA
聚合酶和 A-Tailing试剂盒、Taq DNA聚合酶、质粒
提取试剂盒、DNA 片段纯化/回收试剂盒均购自北
京天根生化科技公司; Plant Total RNA提取试剂盒
购自安比奥公司; 限制性内切酶和 cDNA Synthesis
试剂盒购自 Fermentas; DNA Marker 购自北京索莱
宝科技生物公司; 其他试剂为进口分装或国产分析
纯。
1.2 植物总 DNA的提取
以哥伦比亚野生型(Arabidopsis thaliana Col-0)
拟南芥和甘蓝型油菜 XY15 为材料, 采用 CTAB 法
分别提取其幼苗总 DNA, 用普通琼脂糖电泳检测所
提 DNA, 核酸蛋白分析仪测定其浓度后备用。
1.3 NapinA启动子序列的克隆
根据 NCBI中公布的油菜(Brassica napus) Nap-
inA基因启动子全长序列(GenBank登录号为 J02798)
设计引物扩增 NapinA 启动子片段 , 并根据
pFGC5941 表达载体序列分别在引物的 5′端引入
EcoR I 和 Nco I 的酶切位点, 其引物序列为 NA-F:
5′-GAATTCCAAGCTCTTCATCGGTGATGAT-3′
(EcoR I), NA-R: 5′-CCATGGCATGAGTAGAGTG
AAGCGATGAGT-3′ (Nco I), 扩增长度为 1 120 bp。
采用 Pfu聚合酶进行扩增, 反应条件为 94℃ 5 min;
94℃ 40 s, 56℃ 40 s, 72℃ 2 min, 30个循环; 72℃稳
定 5 min, 4℃保存。PCR产物经琼脂糖凝胶电泳检
1198 作 物 学 报 第 37卷

测正确后, 用 A-Tailing 试剂盒加 A 尾与 pMD18-T
载体连接成 pMD18-T-NA 载体, 热激法转化大肠杆
菌 DH5α, 重组子经检测正确后送南京金斯瑞生物
科技公司测序。
1.4 AtDof1.7基因片段的克隆
根据拟南芥AtDof1.7基因序列(GenBank登录号
为 AT1G51700)设计特异引物, 并根据 pFGC5941载
体特点, 在引物的 5端分别加入 Swa I/BamH I 和
Nco I/Xba I位点, 引物序列为 A1-F: 5′-ATTTAAAT
GGATCCTTCCGATCAAAGATTGTGTGC-3′ (Swa I/
BamH I); A1-R: 5′-CCATGGTCTAGAGACCAAAT
TACCCTTCGCCTC-3′ (Nco I/Xba I), 扩增片段长度
为 685 bp。PCR 反应采用 Pfu 聚合酶扩增, 退火温
度为 58℃, 循环 28次。将 PCR产物经加 A尾后与
pMD18-T 载体连接成 pMD18-T-ADOF1 载体, 以热
激法将此连接载体转化到大肠杆菌 DH5α 感受态细
胞中, 挑取阳性克隆送南京金斯瑞生物科技公司测
序。
1.5 种子特异性表达载体 pFGC5941.NA的构建
通过 EcoR I和 Nco I分别双酶切 pMD18-T-NA
载体和 pFGC5941表达载体, 再将切出的 NapinA片
段与切除了 CaMV35S 启动子的 pFGC5941 载体相
应位点相连接, 回收纯化后进行质粒 PCR和双酶切
检测, 并命名为 pFGC5941.NA。
1.6 AtDof1.7基因 RNA干扰载体 pADOF1的构
建及鉴定
先以 BamH I/Xba I 分别双酶切 pFGC5941.NA
载体和 pMD18-T-ADOF1 载体, 将切下的 AtDof1.7
基因片段反向插入 pFGC5941.NA 载体的相应位点,
构建成 pFGC5941.NA-ADOF1-1 载体。再用 Swa I/
Nco I 分别双酶切 pFGC5941.NA-ADOF1-1 载体和
pMD18-T-ADOF1 载体, 将切下的 AtDof1.7 基因片
段正向插入 pFGC5941.NA-ADOF1-1 载体相应位点,
构建成 pFGC5941.NA-ADOF1 载体, 简称 pADOF1,
即 AtDof1.7 基因的 RNA 干扰载体。回收纯化质粒
后进行质粒 PCR和酶切检测。由于在载体构建过程
中引入 BamH I和 Xba I酶切位点, 因而可以通过用
BamH I和 Xba I分别对构建好的干扰载体进行单酶
切验证, 其中 BamH I 单酶切获得 1 350 bp 片段
(CHSA Intron), Xba I单酶切获得 2 750 bp左右片段
(CHAS Intron+ AtDof1.7)(图 1)。

图 1 RNA干扰载体 pADOF1结构图
Fig. 1 Sketch map of pADOF1 vector
AtDof1.7+: 正向插入片段; AtDof1.7–: 反向插入片段。
AtDof1.7+: inserted positively; AtDof1.7–: inserted negatively.

1.7 拟南芥的遗传转化
采用冻融法将干扰载体 pADOF1转入根癌农杆
菌 LBA4404 中, 提取纯化质粒后进行质粒 PCR 和
BamH I和 Xba I分别单酶切方法鉴定正确后制备工
程菌, 然后参照 Martinez-Trujillo等[20]改良的 floral-
dip方法, 将 pADOF1载体转化入哥伦比亚野生型拟
南芥中。
1.8 转基因拟南芥植株的筛选及分子检测
根据 pFGC5941 载体上具有筛选标记基因 bar
基因, 先将收获的 T0代籽粒播于含 1.0 mg L–1的草
丁膦(glufosinate, PPT)的 1/2MS 培养基中[21], 选择
具有抗性的转基因植株, 再按 CTAB 法提取转基因
苗总 DNA进行 PCR检测。
首先根据 NapinA 启动子序列为油菜基因组特
异序列, 用引物 NA-F/NA-R 对转基因苗进行 PCR
检测; 再根据 pADOF1 载体的结构特点, 即: 目的
基因片段是正向反向插入到查尔酮合成酶内含子
(CHSA Intron)两侧, 正向片段插在 NapinA启动子与
CHSA Intron 之间, 反向片段插在 CHSA Intron 与
polyA 信号序列之间 , 可以通过判断这两段序列
PCR 产物的大小来判断正反片段的正确插入与否,
以及检测抗性苗是否为阳性转化苗。于是设计了 2
对引物分别用于检测干扰载体的正向片段和反向片
段。正向片段检测引物序列为 ZF: 5′-GGAATTCC
TCTCATCCCCTCCTATGCCAACC-3′, ZR: 5′-TCC
CCTCTGTCTACCTTCCCACAAG-3′, 扩增片段为
1 193 bp; 反向片段检测引物序列为 FF: 5′-CACTCC
第 7期 尹明智等: DOF转录因子 AtDof1.7 RNA干扰载体的构建及拟南芥的遗传转化 1199


ACGGATAGAGAAACTGACG-3′, FR: 5′-CTCAGG
CTGGTTACAACGTGCACGT-3′, 扩增片段为 1 086
bp (图 2)。
1.9 RT-PCR检测 AtDof1.7基因的表达水平
为了检测 AtDof1.7基因在转基因拟南芥中的转
录表达水平, 以哥伦比亚野生型拟南芥和 5 株转基
因植株的未成熟种子 cDNA 为模板进行半定量
RT-PCR 分析。按照安比奥公司(Ambiogen)植物总
RNA 提取试剂盒说明书提取总 RNA, 采用 Revert-
Aid First Strand Synthesis Kit (Fermentas)合成 cDNA
第一链。以拟南芥 Actin8基因为内参照基因[22], PCR
扩增引物为 ACT8-F: 5′-GGTGATGGTGTGTCT-3′;
ACT8-R: 5′-ACTGAGCACAATGTTAC-3′, PCR反应
体系 25 μL, 采用 BIOMETRA PCR仪进行 PCR反应,
Actin8 基因的 PCR 扩增程序是 94℃预变性 5 min;
94℃变性 40 s, 55℃退火 40 s, 72℃延伸 1 min, 循环
36次; 最后 72℃保温 10 min。用 AtDof1.7基因编码
区特异引物 AD1-F: 5′-ACCGTCGCTGAGAAACC
T-3′; AD1-R: 5′-CCCACCCATCTGCATATT-3′, 进
行 AtDof1.7 基因的半定量 RT-PCR 分析, PCR 扩增
程序是 57℃退火 40 s, 循环 36 次 , 其他条件同
Actin8基因。

图 2 转基因植株 PCR检测体系引物设计原理
Fig. 2 Primer design principle of PCR detection in transgenic plants

1.10 转基因拟南芥 T1代种子脂肪酸分析
将转基因T1代和哥伦比亚野生型拟南芥同时种
植于同一培养室中, 相同的试验管理, 收获的种子
自然晾干 , 参照 Stoutjesdijk 等 [23]的方法 , 先取
10~15粒种子, 磨碎后置于 2 mL玻璃管中, 依次加
入 1∶1 石油醚-乙醚 500 μL 和 0.4 mol L−1氢氧化
钾-甲醇溶液 250 μL, 室温反应 4 h以上, 再加入适
量蒸馏水, 静置片刻, 使其分层, 待取样检测, 每个
样品测定 5 次, 求其平均值, 以提高测定值的准确
性。采用 HP 6890N气相色谱仪, 分别测定种子样本
中棕榈酸(16:0)、硬脂酸(18:0)、油酸(18:1)、亚油酸
(18:2)、亚麻酸(18:3)、二十碳烯酸(20:1)含量。运用
SPSS软件分析数据。
2 结果与分析
2.1 目的基因片段的克隆与分析
用引物 NA-F/NA-R 和 A1-F/A1-R 分别扩增
NapinA启动子和 AtDof1.7基因, 获得了 1 120 bp (图
3)和 685 bp (图 4)左右的条带, 扩增片段大小与预期
结果一致。将目的基因片段切胶回收后连入
pMD18-T 载体, 热激法转化到大肠杆菌 DH5α 感受
态细胞中, 选取阳性克隆送往生物公司测序, 测序
结果表明扩增的 NapinA 启动子和 AtDof1.7 基因序
列与网上公布的序列一致, 表明克隆结果正确, 可
用于下一步实验。

图 3 NapinA启动子的 PCR扩增
Fig. 3 PCR amplification of NapinA promoter
M: DNA marker 100 bp; 1~2: NapinA启动子 PCR结果。
1–2: PCR products of NapinA promoter.

图 4 AtDof1.7基因的 PCR扩增
Fig. 4 PCR amplification of AtDof1.7 gene
M: DNA marker DL2000; 1~2: AtDof1.7基因 PCR结果。
1–2: PCR products of AtDof1.7 gene.

1200 作 物 学 报 第 37卷

2.2 种子特异性表达载体 pFGC5941.NA的验证
用引物 NA-F/NA-R 质粒 PCR 检测 pFGC5941.
NA 载体得到大小为 1 120 bp左右的片段 (图 5);
用 EcoR I 和 Nco I 双酶切检测得到 1 120 bp 左右
的小片段(图 6), 表明 pFGC5941.NA 载体已构建
成功。

图 5 pFGC5941.NA载体的 PCR分析
Fig. 5 PCR analysis of pFGC5941.NA vector
M: DNA markers DL2000; 1~2: PCR产物。
1–2: PCR products of pFGC5941.NA.

图 6 pFGC5941.NA载体的酶切分析
Fig. 6 Restriction analysis of pFGC5941.NA vector
M: DNA markers DL2000; 1: 未酶切的质粒 pFGC5941.NA;
2~3: EcoR I和 Nco I双酶切。
1: undigested pFGC5941.NA vector; 2–3: digested by EcoR I and
Nco I.

2.3 RNAi载体 pADOF1的构建与验证
用 BamH I和 Xba I分别单酶切 pADOF1载体得
到预期大小的小片段泳带(图 7), 其中 BamH I 单酶
切获得 1 350 bp片段, Xba I单酶切获得 2 750 bp左
右片段, 表明 pADOF1干扰载体构建成功。
2.4 转基因拟南芥再生植株的获得及鉴定
2.4.1 转基因植株 PCR检测体系引物的验证
为确定转基因植株 PCR检测体系中所设计的 ZF/ZR
和 FF/FR 2对检测引物是否合理。用这 2对引物, 分
别以干扰载体 pADOF1 和 pFGC5941 为模板, 进行
PCR 验证。以 ZF/ZR 为引物, 以干扰载体 pADOF1
和 pFGC5941为模板分别获得约 1 193 bp和 508 bp
大小的泳带; 以 FF/FR为引物, 则分别获得 1 086 bp
和 401 bp大小的泳带(图 8)。两对引物进行 PCR验
证都得到预期的结果, 说明可以采用这两对引物对
转基因植株进行 PCR检测, 也进一步的说明所构建
的干扰载体 pADOF1是正确的。

图 7 pADOF1 RNA干扰载体的酶切验证
Fig. 7 Restriction analysis of pADOF1 RNA interference
vector
M1: DNA marker 100 bp; M2: DNA marker B032; 1~2: BamH I单
酶切; 3~4: Xba I单酶切; 5: 未酶切的 pADOF1载体。
1–2: digested by BamH I; 3–4: digested by Xba I; 5: undigested
pADOF1 vector.

图 8 转基因植株 PCR检测体系引物的验证
Fig. 8 Primer detection of transgenic plants PCR
M: DNA marker 100 bp; 1~4: 引物 ZF/ZR扩增结果; 5~8: 引物
FF/FR扩增结果。
1–4: PCR products by ZF/ZR primer; 5–8: PCR products by FF/FR
primer.

2.4.2 转基因油菜再生植株的获得及检测 将通
过改良的 floral-dip 法遗传转化获得的 T0代籽粒播
于含 0.7 mg L–1的草丁膦(glufosinate, PPT)的 1/2MS
培养基中, 选择长势较好的 5 株抗性苗按 CTAB 法
提取总 DNA进行分子鉴定。先用 NapinA基因引物
NA-F/NA-R进行 PCR检测(图 9), 获得了 1 120 bp
左右大小的泳带, 与预期结果一致; 同时分别用引
物 ZF/ZR和 FF/FR进行 PCR扩增验证, 也都扩增得
到预期的结果(图 10), 说明筛选到的 5株抗性苗全
为阳性转基因植株。
第 7期 尹明智等: DOF转录因子 AtDof1.7 RNA干扰载体的构建及拟南芥的遗传转化 1201



图 9 转基因拟南芥的 NapinA基因检测
Fig. 9 Detection of NapinA gene in transgenic Arabidopsis
M: DNA marker DL2000; 1~5: 转基因拟南芥 NapinA基因检测;
WT: 哥伦比亚野生型拟南芥。
1–5: detection of NapinA gene; WT: wild-type Arabidopsis Col-0.

图 10 转基因拟南芥的 PCR检测
Fig. 10 PCR detection of transgenic Arabidopsis
M: DNA marker III; A1~A5: 引物 ZF/ZR检测; B1~B5: 引物
FF/FR检测。
A1–A5: detection by ZF/ZR primer; B1–B5: detection by FF/FR
primer.

2.5 转基因植株的 RT-PCR分析
半定量 RT-PCR分析结果显示 AtDof1.7在 5个
转基因拟南芥 T1代植株中都能正常转录表达, 但表
达量不同程度地低于未转化的植株, 说明在转基因
拟南芥中该基因的表达受到了抑制(图 11)。

图 11 AtDof1.7基因的半定量 RT-PCR检测
Fig. 11 Semi-quantitative RT-PCR detection of AtDof1.7 gene
1~5: 转基因拟南芥; WT: 哥伦比亚野生型拟南芥。
1–5: transgenic plants; WT: wild-type Arabidopsis Col-0.

2.6 转基因植株 T1代种子脂肪酸的测定
与未转化的野生型拟南芥相比, 转基因拟南芥
种子脂肪酸各组分比例发生改变, 其中变化最明显
的是油酸(C18:1)和亚麻酸(C18:3), 油酸含量极显著
高于野生型, 亚麻酸含量极显著低于野生型(表 1)。
这说明通过 RNAi 技术干扰内源 AtDof1.7 基因, 拟
南芥种子脂肪酸各组分的相对含量发生了改变 ,
AtDof1.7转录因子与脂肪酸代谢有一定的关系。
3 讨论
本研究选用的是美国俄亥俄州立大学拟南芥生
物资源中心(Arabidopsis biological resource center,
ABRC)构建的双子叶植物 RNAi载体 pFGC5941, 其
具有 1 352 bp 的豌豆查耳酮合成酶基因内含子
(CHSA Intron)序列。这个载体最大优点在于只需要
一对引物和连接一次 T 载体就可以完成表达载体构
建。设计特异引物, 并在引物 5′两端各引入两个限
制性酶切位点 , 如本实验中上游引物包含 Swa I/
BamH I的酶切位点, 下游引物含 Xba I/Nco I的酶切
位点。在载体构建过程中要注意先通过 BamHI/ Xba
I 两个酶切位点将反向片段插入相应位点, 再通过
Swa I/Nco I两个酶切位点将正向片段插入表达载体相
应位点; 若先插入正向片段, 那么当通过 BamH I/

表 1 转基因拟南芥种子脂肪酸组成
Table 1 Composition of the major fatty acid of transgenic Arabidopsis seeds
植株
Plant
棕榈酸
Palmitic (16:0)
硬脂酸
Stearic (18:0)
油酸
Oleic (18:1)
亚油酸
Linoleic (18:2)
亚麻酸
Linolenic (18:3)
二十碳烯酸
Eicosenoic (20:1)
其他
Other
TP1 9.30±0.35 5.12±0.94 23.70±0.60 a 31.90±0.53 11.05±0.48 a 15.64±0.72 3.19±1.41
TP2 9.61±0.40 5.47±0.80 23.74±0.55 a 32.30±0.44 10.64±0.54 a 15.21±0.59 3.02±0.92
TP3 9.20±0.54 4.61±0.57 23.43±0.31 a 32.20±0.87 10.80±0.30 a 15.36±0.87 4.20±1.49
TP4 9.21±0.39 5.11±0.87 23.60±0.67 a 32.01±0.60 10.85±0.18 a 15.60±0.43 3.45±1.80
TP5 9.62±0.19 5.57±0.30 24.27±0.55 a 31.93±0.69 10.94±0.46 a 15.50±0.30 2.17±0.46
WT 9.83±0.81 5.51±1.40 15.92±0.93 32.04±0.80 17.48±0.41 15.13±1.00 4.00±1.26
TP: 转基因植株; WT: 野生型拟南芥。每一个值都是 5 次重复的平均值。数值=平均值±标准差, a 表示同种物质与野生型相比
P<0.01, 即差异达到极显著水平。
TP: transgenic plants; WT: wild-type Arabidopsis Col-0. Each value is the mean of five replicates. Values are Mean ± SD. “a” represent
significant difference at P<0.01 compared with wild-type Arabidopsis Col-0 values for the same compound.
1202 作 物 学 报 第 37卷

Xba I两个酶切位点插入反向片段时, 就会把之前插
入的正向片段切出, 导致载体构建失败。Wesley等[24]
评价了使用几种不同结构的 RNAi 载体转基因后植
株的相应基因被抑制的比例, 发现由 1 个内含子连
接 2 个反向重复序列形成 ihpRNA (intron-spliced
hpRNA)结构的 RNAi 载体效果较好, 基因表达受抑
制的平均比例高达 90%以上。本研究将 AtDof1.7基
因片段以正反 2个方向插入表达载体 pFGC5941中,
2个片段用 1个 CHSA Intron连接, 构建了一个能够
表达 ihpRNA 结构的 RNAi 表达载体 pADOF1。同
时本实验为了特异性地研究 AtDof1.7转录因子在拟
南芥种子中的作用 , 将 pFGC5941 载体中原有的
CaMV35S 启动子置换成种子特异性表达的 NapinA
启动子, 并取得了较好的结果。通过 PCR反应检测
NapinA启动子和 AtDof1.7基因正反向插入片段的方
法, 来检测目的片段是否已经成功地插入拟南芥基
因组中。检测结果表明, 目的片段已成功导入拟南
芥基因组中, 获得的 5 株抗性植株都是阳性转化植
株。AtDof1.7基因的 RT-PCR分析表明, AtDof1.7基
因转录水平比野生型植株有了一定的降低。证明
RNAi表达载体构建成功, 以及以构建双链 RNAi表
达载体来沉默 AtDof1.7基因是可行的。
由于油菜籽脂肪酸组成在应用上的重要性及其
在遗传上的复杂性, 因而改良油菜籽脂肪酸组成一
直是油菜研究热点。学者们不仅对主要脂肪酸组分
进行了 QTL定位[25-29], 而且克隆分析了与脂肪酸代
谢途径相关的多个关键酶的编码基因 [30-32]。目前 ,
通过调控脂肪酸代谢途径中的单一步骤的关键酶 ,
来改良种子脂肪酸组成已经取得了一定进展 [33-34],
但关于这些关键酶的调控因子还不是很清楚。找出
这些调控因子加以利用将是改良种子脂肪酸组成的
一种新的有效途径。本研究将构建好的 AtDof1.7基
因的种子特异性表达的 RNA 干扰载体导入拟南芥,
使转基因拟南芥种子中脂肪酸各组分的相对含量发
生了变化, 油酸的含量极显著高于野生型, 亚麻酸
的含量极显著低于野生型, 说明 AtDof1.7 转录因子
与脂肪酸代谢途径有一定的关系。在脂肪酸代谢途
径中, 以油酸为前体物可分为两条途径, 一是碳链
的延长, 油酸在 Fae1 的作用下随着碳原子的增加,
分别形成廿碳烯酸和芥酸; 另一途径是脂肪酸不饱
和程度的增加(也就是双价的增多), 即油酸在 Fad2
和 Fad3减饱和酶作用下, 形成亚油酸和亚麻酸[29,35]。
AtDof1.7 转录因子可能参与这个代谢过程中关键酶
的转录调控, 从而调节脂肪酸的含量。
与双低油菜籽油相比“高油酸、低亚麻酸”(high
oleic-low linolenic acid, HOLL)的菜油在食用油营养
健康和食品工业的应用上都具有更高的竞争力。一
方面, 高油酸油可降低血液中低密度脂蛋白胆固醇
的含量, 并且在阻止动脉血管硬化中, 单不饱和脂
肪酸的油酸比多不饱和脂肪酸更具有优越性; 另一
方面 , 亚麻酸的含量高会降低菜油的氧化稳定性 ,
不耐储存和易产生难闻的气味, 而高亚麻酸能提高
菜油的稳定性[36-37]。此外, HOLL菜油的价格也比普
通双低品种的菜油价格高 40%左右。因此, 在双低
的基础上 , 进一步改良油菜籽品质 , 培育出“高油
酸、低亚麻酸”油菜品种成为油菜育种首要目标。
Cargill公司早已育成油酸含量超过 85%、亚麻酸含
量为 2%~3%的杂交种, 而我国在这方面的研究才刚
刚起步[38]。本研究通过干扰抑制 AtDof1.7基因的表
达 , 明显提高了油酸含量 , 降低了亚麻酸含量 , 这
将为在油菜中研究 DOF 类转录因子的功能以及创
造“高油酸、低亚麻酸”优质油菜种质资源提供新的
参考。
4 结论
构建了AtDof1.7基因的种子特异性表达的RNA
干扰载体, 成功将其转入拟南芥基因组中, 获得 5
株阳性转基因植株。转基因植株中 AtDof1.7基因的
表达受到了抑制, 种子脂肪酸各组分相对含量发生
了变化, 说明 AtDof1.7 转录因子与拟南芥种子脂肪
酸代谢途径有关。
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