全 文 ：攀枝花块菌－华山松菌根根际土壤可培养细菌的多样性研究∗
万山平１ꎬ２ꎬ３ꎬ 郑 毅１ꎬ 汤 利１ꎬ 刘培贵２ꎬ 王 冉２ꎬ 于富强２∗∗
(１ 云南农业大学 资源与环境学院ꎬ 昆明 ６５０１００ꎻ ２ 中国科学院昆明植物研究所 资源植物与生物技术所级
重点实验室ꎬ 昆明 ６５０２０１ꎻ ３ 云南农业大学 植物保护学院ꎬ 昆明 ６５０１００)
摘要: 块菌作为可食用的地下外生菌根真菌ꎬ 有着重要的经济价值和生态学意义ꎮ 中国白块菌资源虽然被
不断的描述和报道ꎬ 但形成机制尚未为人所知ꎮ 前人研究表明ꎬ 块菌的菌根根际土壤微生物群落对块菌的
形成有着重要的影响ꎮ 因此ꎬ 本研究以攀枝花块菌 (Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ)￣华山松 (Ｐｉｎｕｓ ａｒｍａｎｄｉｉ) 菌根根
际土壤为研究对象ꎬ 用可培养的方法揭示了其根际土壤的细菌多样性ꎮ 结果显示ꎬ 在所分离到的细菌中ꎬ
β￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ占了最大的比例 (３０ ９８％)ꎬ 以 Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ 为优势类群ꎬ 其次是以 Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ 为代表类
群的 γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (２８ ８％)ꎬ 另外ꎬ α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (１４ ６７％) 的主要代表类群为 Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ 和根
瘤菌 Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍꎻ 此外ꎬ 还分离到了分别以 Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ和 Ｂａｃｉｌｌｕｓ为优势菌群代表的 Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ (１２ ５％)
和 Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ (７ ６％)ꎻ Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ中只有唯一的代表菌株 Ｃｈｒｙｓｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｕｒｅｉｌｙｔｉｃｕｍꎮ 另外ꎬ 就目前对块
菌属子实体及其根际土壤内的可培养细菌多样性研究进行了比较和探讨ꎮ
关键词: 攀枝花块菌ꎻ 根际土壤ꎻ 细菌多样性ꎻ １６Ｓ ｒＤＮＡ
中图分类号: Ｑ ９３８ １ꎬ Ｑ １６ 文献标志码: Ａ 文章编号: ２０９５－０８４５(２０１５)０６－８６１－１０
Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ
Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐｉｎｕｓ ａｒｍａｎｄｉｉ
Ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ Ｓｏｉｌ
ＷＡＮ Ｓｈａｎ￣ｐｉｎｇ１ꎬ２ꎬ３ꎬ ＺＨＥＮＧ Ｙｉ１ꎬ ＴＡＮＧ Ｌｉ１ꎬ ＷＡＮＧ Ｒａｎ２ꎬ ＬＩＵ Ｐｅｉ￣ｇｕｉ２ꎬ ＹＵ Ｆｕ￣ｑｉａｎｇ２∗∗
(１ Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｒｅｓｏｕｒｃｅ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０１００ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ２ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｅｃｏｎｏｍｉｃ
Ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
３ Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０１００ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｔｒｕｆｆｌｅｓ ａｒｅ ｅｄｉｂｌｅ ｈｙｐｏｇｅｏｕｓ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ ｗｈｉｃｈ ｈａｖｅ ｇｒｅａｔ ｅｃｏｎｏｍｉｃ ｉｍｐｏｒｔａｎｃｅ ｆｏｒ ｔｈｅｉｒ ｏｒｇａ￣
ｎｏｌｅｐｔｉｃ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ａｎｄ ｈａｖｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｔｅｒｅｓｔｓ ｆｏｒ ｆｏｒｅｓｔｒｙ. Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｓｏｍｅ ｎｅｗ ｐｒｅｃｉｏｕｓ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｗｈｉｔｅ
ｔｒｕｆｆｌｅ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｃｏｎｓｔａｎｔｌｙꎬ ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｔｈａｔ ｃｏｎｔｒｏｌ ｔｒｕｆｆｌｅ ｂｏｄｙ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｒｅ ｌａｒｇｅｌｙ ｕｎ￣
ｋｎｏｗｎ. Ｉｔ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｈｙｐｏｔｈｅｓｉｚｅｄ ｔｈａｔ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ｍａｙ ｈａｖｅ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｓ ｏｎ ｔｒｕｆｆｌｅ ｐｒｏｄｕｃ￣
ｔｉｏｎ. Ｔｈｕｓꎬ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｗｅｒｅ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ
ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐｉｎｕｓ ａｒｍａｎｄｉｉ ｉｎ ｔｈｉｓ ｗｏｒｋ. Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ａ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｍｏｓｔｌｙ ａｆｆｉｌｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ ｗａｓ β￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (３０ ９８％). Ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｆｒａｃ￣
ｔｉｏｎ ｗｈｉｃｈ ｄｏｍｉｎａｔｅｄ ｂｙ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｗａｓ γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (２８ ８％) ｏｔｈｅｒ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｍｏｓｔｌｙ Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ａｎｄ Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍꎬ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (１４ ６７％)ꎬ ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ (１２ ５％) ａｎｄ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ (７ ６％) ｒｅｐｒｅ￣
ｓｅｎｔｅｄ ｂｙ Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ａｎｄ Ｂａｃｉｌｌｕｓꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｃｈｒｙｓｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｕｒｅｉｌｙｔｉｃｕｍ ｗａｓ ｔｈｅ ｏｎｌｙ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎ ｂｅｌｏｎｇ￣
ｉｎｇ ｔｏ Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ. Ｓｉｍｉｌａｒｉｔｉｅｓ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｏｆ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｏｆ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ａｎｄ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓ￣
植 物 分 类 与 资 源 学 报 ２０１５ꎬ ３７ (６): ８６１~８７０
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ＤＯＩ: １０.７６７７ / ｙｎｚｗｙｊ２０１５１５０３２
∗
∗∗
Ｆｕｎｄｉｎｇ: Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｎａｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎａ (３１４６０５５１ꎬ ３１３７００７０)ꎬ ｔｈｅ Ｊｏｉｎｔ Ｆｏｕｎｄｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ
Ｃｈｉｎａ ａｎｄ Ｙｕｎｎａｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ Ｇｏｖｅｒｎｍｅｎｔ (Ｕ１２０２２６２)
Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｆｑｙｕ＠ｍａｉｌ ｋｉｂ ａｃ ｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ ｄａｔｅ: ２０１５－０３－０４ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄ ｄａｔｅ: ２０１５－０６－２３
作者简介: 万山平 (１９８７－)ꎬ 女ꎬ 在读博士生ꎬ 主要从事菌物研究ꎮ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｗｓｐ８７１１１７＠１６３ ｃｏｍ
ｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｗｅｒｅ ｄｉｓｃｕｓｓｅｄ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅꎻ Ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌꎻ Ｂａｃｔｅｒｉａ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎻ １６Ｓ ｒＤＮＡ
Ｔｈｅ ｔｅｒｍ ‘ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ’ ｗａｓ ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ Ｈｉｌｔ￣
ｎｅｒ ｉｎ １９０４ ｔｏ ｄｅｎｏｔｅ ｔｈｅ ｒｅｇｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓｏｉｌ ｔｈａｔ ｉｓ
ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｒｏｏｔｓ ( Ｈｉｌｔｎｅｒꎬ
１９０４). Ｂｅｓｉｄｅｓꎬ Ｔｈｅ ｒｏｏｔｓ ｏｆ ｍｏｓｔ ｔｅｒｒｅｓｔｒｉａｌ ｐｌａｎｔｓ
ａｒｅ ｃｏｌｏｎｉｓｅｄ ｂｙ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ￣ｆｏｒｍｉｎｇ ｓｙｍｂｉｏｔｉｃ ｆｕｎｇｉ
(Ｍｏｌｉｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９２)ꎬ ｔｈｅ ｆｕｎｇｉ ａｌｓｏ ｇｒｏｗ ｏｎ ｔｈｅ
ｒｏｏｔ ｓｕｒｆａｃｅ ａｎｄ ｅｘｔｅｎｄ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｓｕｒｒｏｕｎｄｉｎｇ ｓｏｉｌꎬ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｅｘｐａｎｄｉｎｇ ｔｈｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｓｐａｃｅ ａｎｄ ｃａ￣
ｐａｂｉｌｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ (Ａｌｌｅｎꎬ １９９２). Ｈｅｎｃｅꎬ
ｔｈｅ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｃｏｎｃｅｐｔ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｗｉｄｅｎｅｄ ｔｏ ａｓｓｏｃｉ￣
ａｔｅ ｔｈｉｓ ｆｕｎｇａｌ ｅｆｆｅｃｔꎬ ｒｅｓｕｌｔｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ
ｔｅｒｍｓ “ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ” ａｎｄ “ｈｙｐｈｏｓｐｈｅｒｅ” (Ｒａｍ￣
ｂｅｌｌｉꎬ １９７３ꎻ Ｌｉｎｄｅｒｍａｎꎬ １９８８). Ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｃｏｍ￣
ｍｕｎｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｓｏｉｌ ｓｕｒｒｏｕｎｄｉｎｇ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｒｏｏｔｓ
ａｎｄ ｅｘｔｒａｍｅｔｒｉｃａｌ ｍｙｃｅｌｉｕｍ ａｒｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｒｏｍ ｔｈｏｓｅ
ｏｆ ｔｈｅ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ ｎｏｎ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｔｈｅ
ｂｕｌｋ ｓｏｉｌꎬ ｄｕｅ ｔｏ ｈｉｇｈｅｒ ａｖａｉｌａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｗａｔｅｒ ａｎｄ ｎｕ￣
ｔｒｉｅｎｔｓ (Ｋａｔｚｎｅｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９６２ꎻ Ｇａｒｂａｙｅ ａｎｄ Ｂｏｗ￣
ｅｎꎬ １９８７ꎬ １９８９ꎻ Ｇａｒｂａｙｅꎬ １９９１). Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ
ｔｈａｔ ｉｎｈａｂｉｔ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｅｒｖｅ ａｓ ａｎ ｉｎｔｅｒ￣
ｍｅｄｉａｒｙ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｐｌａｎｔｓꎬ ｗｈｉｃｈ ｒｅｑｕｉｒｅ ｓｏｌｕｂｌｅ
ｉｎｏｒｇａｎｉｃ ｎｕｔｒｉｅｎｔｓꎬ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｆｕｎｇｉꎬ ｗｈｉｃｈ
ｔｒａｎｓｆｅｒ ｅｎｅｒｇｙ ａｎｄ ｍａｔｅｒｉａｌꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｓｏｉｌꎬ ｗｈｉｃｈ
ｃｏｎｔａｉｎｓ ｔｈｅ ｎｅｃｅｓｓａｒｙ ｎｕｔｒｉｅｎｔｓ ｂｕｔ ｍｏｓｔｌｙ ｉｎ ｃｏｍ￣
ｐｌｅｘ ａｎｄ ｉｎａｃｃｅｓｓｉｂｌｅ ｆｏｒｍｓ. Ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｍｉｃｒｏｂｅｓ
ｔｈｕｓ ｐｒｏｖｉｄｅ ａ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｌｉｎｋ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｌａｎｔꎬ ｍｙｃｏｒｒｈｉ￣
ｚａ ａｎｄ ｓｏｉｌ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ.
Ｂａｓｅｄ ｏｎ ｄｅｃａｄｅｓ ｏｆ ｒｅｓｅａｒｃｈｅｓꎬ ｔｈｅ ｆｕｎｇａｌ
ｓｙｍｂｉｏｎｔｓ ｆｏｒｍｉｎｇ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ (ＥＣＭｓ)ꎬ ｆｏｒｍ ａ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｏｆ ｆｏｒｅｓｔ ｅｃｏｓｙｓｔｅｍｓ ｉｎ ｔｈｅ ｂｏ￣
ｒｅａｌꎬ ｔｅｍｐｅｒａｔｅ ａｎｄ Ｍｅｄｉｔｅｒｒａｎｅａｎ ｃｌｉｍａｔｅ ｚｏｎｅｓ
(Ｃｏｕｒｔｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｔｈｅ ＥＣＭｓꎬ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ｔｈｅｉｒ
ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ ｂｅｎｅｆｉｔ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｈｅａｌｔｈ ｏｆ
ｆｏｒｅｓｔ ｔｒｅｅｓ ａｎｄ ａｌｓｏ ｔｈｅ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ
ｏｆ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｉｎ ａ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｗａｙｓ ａｌｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ
ｍｏｓｔ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｒｏｌｅ ｉｓ ｅｎｈａｎｃｉｎｇ ｓｏｉｌ ｎｕｔｒｉｅｎｔ ｍｏｂｉｌｉ￣
ｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｕｐｔａｋｅ. Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｓｔｒａｉｎｓ ｍｏｓｔ
ｃｏｍｍｏｎｌｙ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｉｎｎｅｒ ａｎｄ ｏｕｔｅｒ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒ￣
ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｒ ｖｉｃｉｎｉｔｙ ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ ｎｉｃｈｅｓ ｗｅｒｅ Ａｃｔｉ￣
ｎｏｍｙｃｅｔｅｓꎬ Ａｚｏｔｏｂａｃｔｅｒꎬ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓꎬ Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａꎬ
Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒꎬ Ｈｅｒｂａｓｐｉｒｉｌｌｕｍꎬ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｎｄ Ａｇｒｏｂａｃｔｅ￣
ｒｉｕｍ ｅｔｃ. (Ｏｓｗａｌｄ ａｎｄ Ｆｅｒｃｈａｕꎬ １９６８ꎻ Ｍａｌａｊｃｚｕｋ
ａｎｄ ＭｃＣｏｍｂꎬ １９７９ꎻ Ｇａｒｂａｙｅ ａｎｄ Ｂｏｗｅｎꎬ １９８９ꎻ
Ｖａｒｅｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９６ꎻ Ｆｒｅｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ｂꎻ Ｔｉｍｏｎｅｎ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９９８ꎻ Ｇｌｉｃｋꎬ １９９５ꎻ Ｐｒｏｂａｎｚａ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９６ꎻ
Ｐｏｏｌｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１ꎻ Ａｓｐｒａｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６ꎻ Ｆｏｕｎｏｕｎｅ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１ꎬ ２００２ꎻ Ｍｅｌｌｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｔｈｏｓｅ
ｓｔｒａｉｎｓ ｅｎｈａｎｃｉｎｇ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ
ｔｅｒｍｅｄ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｔｉｏｎ ｈｅｌｐｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａ ( ＭＨＢ )
(Ｇａｒｂａｙｅꎬ １９９４). Ｐｉｏｎｅｅｒｉｎｇ ｗｏｒｋ ｉｎ ｔｈｉｓ ｆｉｅｌｄ ｈａｄ
ｂｅｅｎ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｏｎ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉꎬ Ｓｕｉｌｌｕｓꎬ
Ｐａｘｉｌｌｕｓꎬ Ｒｈｉｚｏｐｏｇｏｎ ａｎｄ Ｌａｃｃａｒｉａ ｓｙｎｔｈｅｓｅｄ ｗｉｔｈ
Ｐｉｎｕｓꎬ Ｐｉｃｅａꎬ Ｐｓｅｕｄｏｔｓｕｇａ ａｎｄ Ｑｕｅｒｃｕｓ ( Ｇａｒｂａｙｅ
ａｎｄ Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓꎬ １９９２ꎻ Ｇａｒｂａｙｅꎬ １９９４ꎻ Ｓｃｈｅｌｋｌｅ
ａｎｄ Ｐｅｔｅｒｓｏｎꎬ １９９６ꎻ Ｆｒｅｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ａꎻ Ｄｕｎｓｔａｎ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９９８ꎻ Ｐｅｄｅｒｓｅｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｐｏｏｌｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００１ꎻ ｖａｎ Ｔｉｃｈｅｌｅｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｆｅｗ
ｄａｔａ ａｒｅ ａｖａｉｌａｂｌｅ ａｂｏｕｔ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｔｈｒｉ￣
ｖｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｃｉｏｕｓ ＥＣＭＦ￣ｔｒｕｆｆｌｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａꎬ
ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｒｏｌｅ ｉｎ ｔｈｅ ｔｒｕｆｆｌｅ ｌｉｆｅｃｙｃｌｅ
(Ｍａｍｏｕｍ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８６ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００ꎬ ２００２ꎻ
Ｚａｃｃｈｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３). Ｉｎ Ｃｈｉｎａꎬ ｗｈｅｒｅ ｐｏｓｓｅｓｓｅｓ
ｔｒｅｍｅｎｄｏｕｓ ｔｒｕｆｆｌｅ ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｍｕｌｔｉｔｕｄｉｎｏｕｓ
ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｂｉｏｍａｓｓꎬ ｏｎｌｙ ａ ｈａｎｄｆｕｌ ｏｆ ｉｎ￣
ｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｏｎ ｔｒｕｆｆｌｅ￣ｒｅｌｅｖａｎｔ ｒｅ￣
ｓｅａｒｃｈｅｓꎬ ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｉｎ ｔｈｅ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｗｈｉｔｅ
ｔｒｕｆｆｌｅ. Ｉｎ ｔｈｉｓ ｐａｐｅｒꎬ ｗｅ ｆｏｃｕｓ ｏｎ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｍｉ￣
ｃｒｏｂｅｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｏｆ ａ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ Ｃｈｉｎａ ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣
Ｐｉｎｕｓ ａｒｍａｎｄｉｉꎬ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍ ｄｉ￣
ｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓꎬ ｔｏ ｃｏｌｌｅｃｔ ａｎｄ ｓｃｒｅｅｎ ＭＨＢ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｈｉｃｈ ｗｉｌｌ
ｌｉｋｅｌｙ ｂｅ ｕｔｉｌｉｚｅｄ ｆｏｒ ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ ａｎｄ ｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇ ｔｈｅ
ｍｙｃｅｌｉａ ｇｒｏｗｔｈꎬ ｔｈｅ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ
Ｔｕｂｅｒ ａｓｃｏｃａｒｐｓꎬ ｔｈｅ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ａｌｓｏ
ｔｈｅ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅꎬ
ｗｈｉｃｈ ｈａｖｅ ｎｏｔ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｉｎ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｒｅｓｅａｒ￣
ｃｈｅｓ.
２６８ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
１ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
１ １ Ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ
Ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ｏｆ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐ ａｒｍａｎｄｉｉ
ａｎｄ ｓｉｘ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｓａｍｐｌｅｓ ( ｅａｃｈ ｓａｍｐｌｅ ｈａｄ
ｔｗｏ ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ) ｗｅｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ Ｏｃｔｏｂｅｒ ｉｎ ｔｈｒｅｅ
ｔｏｗｎｓ ｏｆ Ｑｕｊｉｎｇ Ｐｒｅｆｅｃｔｕｒｅꎬ Ｙｕｎｎａｎꎬ Ｃｈｉｎａ (Ｔａｂｌｅ
１). Ｗｅ ｆｏｕｎｄ ｔｈｅ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ
ｉｎ ｎａｔｕｒｅ ｐｕｒｅ Ｐｉｎｕｓ ａｒｍａｎｄｉｉ ｗｏｏｄｌａｎｄꎬ ａｎｄ ｔｈｅｎ
ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ａｎｄ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ
( ｔｈｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｗｏｒｋ ｏｆ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ ｅｃｔｏ￣
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ｗｅｒｅ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｉｎ ｔｈｅ ｌａｂ). Ｅａｃｈ ｓａｍ￣
ｐｌｅ ｗａｓ ｃｏｍｐｏｓｅｄ ｏｆ ｆｒｅｓｈꎬ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ａｎｄ ｕｎｇａｌｌｅｄ
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｒｏｏｔｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ａｄｈｅｒｉｎｇ ｓｏｉｌ. Ｒｈｉｚｏ￣
ｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｗａｓ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｒｏｏｔｓ ａｆｔｅｒ ｒｅｍｏ￣
ｖｉｎｇ ｌｏｏｓｅｌｙ ａｔｔａｃｈｅｄ ｓｏｉｌ ｐａｒｔｉｃｌｅｓꎬ ａｎｄ ｓｔｏｒｅｄ ｉｎ ｉｃｅ
ｆｏｒ ｆｅｗ ｈｏｕｒｓ ｕｎｔｉｌ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ( Ｆｕｊｉｉꎬ ２００４). Ｏｎｅ
ｇｒａｍ ｏｆ ｓｏｉｌ ｆｒｏｍ ｅａｃｈ ｆｒｅｓｈ ｓａｍｐｌｅ ｗａｓ ａｓｅｐｔｉｃａｌｌｙ
ｗｅｉｇｈｅｄ ａｎｄ ｗａｓ ｈｏｍｏｇｅｎｉｚｅｄ ｉｎ ９ ｍＬ ｏｆ ｆｉｌｔｅｒ ｓｔｅｒｉ￣
ｌｉｚｅｄ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃ ｓｏｌｕｔｉｏｎ (０ ８５％ ＮａＣｌ). Ｂａｃｔｅｒｉａ
ｗｅｒｅ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｂｙ ｐｌａｔｉｎｇ ｓｅｒｉａｌ ｄｉｌｕｔｉｏｎｓ (１０－３ ｔｈｒｏｕ￣
ｇｈ １０－６ ｉｎ ｔｒｉｐｌｉｃａｔｅ) ｏｆ ｔｈｅ ｓｏｉｌ ｓａｍｐｌｅ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｉｎ
ｓｔｅｒｉｌｅ ｓａｌｉｎｅ ｏｎ ｔｒｙｐｔｏｎｅ ｓｏｙ ａｇａｒ (ＴＳＡ) ｐｌａｔｅｓ ａｎｄ
ｉｎｏｃｕｌａｔｅｄ ａｔ ２８ ℃ (ＴＳＡꎬ Ｄｉｆｃｏ). Ａｆｔｅｒ ４８ ｈꎬ ｔｈｅ
ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ＣＦＵ (ｃｏｌｏｎｙ ｆｏｒｍｉｎｇ ｕｎｉｔ) ｏｎ ｔｈｅ ｐｌａｔｅｓ
ｗａｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ａｎｄ ａｌｌ ｃｏｌｏｎｉｅｓ ｗｅｒｅ ｐｉｃｋｅｄ ａｎｄ ｉｎ￣
ｏｃｕｌａｔｅｄ ｉｎｔｏ １ ５ ｍＬ ｏｆ ｔｒｙｐｔｉｃ ｓｏｙ ｂｒｏｔｈ (ＴＳＢ) ｆｏｒ
２４ ｈ ａｔ ２８ ℃ .
１ ２ Ｉｓｏｌａｔｅ ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓａｔｉｏｎ
１ ２ １ ＰＣＲ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３ ｒｅｇｉｏｎ ａｎｄ
ｔｈｅ ＨＰＣＥ ＰＣＲ ｗｅｒｅ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｏｎ ａ ｔｈｅｒｍｏｃｙｃｌｅｒ
(Ｂｉｏｍｅｔｒａ￣Ｔｇｒａｄｉｅｎｔꎬ Ｇｅｒｍａｎｙ) ｉｎ ａ ｆｉｎａｌ ｖｏｌｕｍｅ ｏｆ
２５ μＬ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ １ μＬ ｏｆ ＤＮＡꎬ １μＬ (５ μｍｏｌＬ－１) ｏｆ
ｅａｃｈ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ２ μＬ ｏｆ １０ × ｂｕｆｆｅｒ (Ｍｇ２＋)ꎬ ０ ５ μＬ ｏｆ
Ｄｎｔｐ (１０ μｍｏｌＬ－１)ꎬ ０ ５ μＬ ＢＳＡ (１％)ꎬ １ ５ μＬ
ＭｇＣｌ２ꎬ ０ １ Ｕ ｏｆ Ｔａｑ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ (Ｔａｋａｒａ Ｔａｇꎬ
Ｔａｋａｒａ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ Ｄａｌｉａｎ Ｃｏ. Ｌｔｄ.ꎬ Ｃｈｉｎａ).
Ｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３ ｗｅｒｅ
ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｂｙ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ｆ３４１ (５′
－ＣＣＴＡＣＧＧＧＡＧＧＣＡＧＣＡＧ－３′) ａｎｄ ｒ５１８ (５′－ＡＴＴ￣
ＡＣＣＧＣＧＧＣＴＧＣＴＧＧ－３′) ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ. Ｔｈｅ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ
ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ (ＰＣＲ) ｐｒｏｔｏｃｏｌ ｗａｓ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｓ: １ ｃｙ￣
ｃｌｅ ｏｆ ５ ｍｉｎ ａｔ ９５ ℃ꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ３０ ｃｙｃｌｅｓ ｏｆ １ ｍｉｎ
ａｔ ９４ ℃ꎬ １ ｍｉｎ ａｔ ６０ ℃ ａｎｄ ７２ ℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎꎬ ｆｏｌ￣
ｌｏｗｅｄ ｂｙ １ ｃｙｃｌｅ ｏｆ １０ ｍｉｎ ａｔ ７２ ℃ . ２ μＬ ＰＣＲ
ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ ｃｈｅｃｋｅｄ ｏｎ ｔｈｅ １％ ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌ. Ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｎｔ ｓｉｚｅｓ ｏｆ ＤＮＡ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｓｃｒｅｅｎｅｄ ｂｙ ｈｉｇｈ
ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ( ＨＰＣＥ) ａｃ￣
ｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｓｉｚｅ ｏｆ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｔｉｃ ｂａｎｄｓ (Ｆｉｇ １).
Ｔａｂｌｅ １ Ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｓｃｒｅｅｎｅｄ ｆｒｏｍ ６ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｓａｍｐｌｅｓ
Ｓａｍｐｌｅ￣Ｎｏ Ｓａｍｐｌｅｓ ｌｏｃａｔｉｏｎ Ａｌｔｉｔｕｄｅ / ｍ Ｉｓｏｌａｔｅｓ Ｎｏ. ＯＴＵｓ ＣＦＵ ｇ－１
ＳＢ１ Ｌａｏｃｈａｎꎬ Ｈｕｉｚｅꎬ Ｑｕｊｉｎｇ ２０２６ ３１ ２１ ５ ８ ± ０ ６０ × １０８
ＳＢ２ Ｌａｏｃｈａｎ Ｈｕｉｚｅꎬ Ｑｕｊｉｎｇ ２１３０ ３７ １１ ２ ７ ± ０ ２２ × １０９
ＳＢ３ Ｙｉｃｈｅ Ｈｕｉｚｅꎬ Ｑｕｊｉｎｇ １９５７ ２４ １２ ４ ４ ± ０ ３３ × １０８
ＳＢ４ Ｙｉｃｈｅ Ｈｕｉｚｅꎬ Ｑｕｊｉｎｇ １９５０ ２７ ６ １ ６ ± ０ ６２ × １０９
ＳＢ５ Ｊｉｎｚｈｏｎｇ Ｈｕｉｚｅꎬ Ｑｕｊｉｎｇ ２３９０ ２６ １２ ８ ２ ± ０ ４６ × １０７
ＳＢ６ Ｊｉｎｚｈｏｎｇ Ｈｕｉｚｅꎬ Ｑｕｊｉｎｇ ２３０７ ２９ ８ ３ ４ ± ０ ２１ × １０８
Ｆｉｇ １ Ｐａｒｔｉａｌ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｓｃｒｅｅｎｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂａｎｄｓ ｏｆ ｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｂｙ
ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ (ＨＰＣＥ)
３６８６期 ＷＡＮ Ｓｈａｎ￣ｐｉｎｇ ｅｔ ａｌ.: Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐｉｎｕｓ
１ ２ ２ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ Ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ａｓｓｅｓｓ ｔｈｅ
ｒｉｃｈｎｅｓｓ ａｎｄ ｒｅｌａｔｉｖｅ ａｂｕｎｄａｎｃｅ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｓｓｏｃｉａｔ￣
ｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌꎬ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｆｕｒｔｈｅｒ ｉ￣
ｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｂｙ ｐａｒｔｉａｌ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎａｌｙ￣
ｓｉｓ. Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ｐｒｏｋａｒｙｏｔｉｃ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ６３ｆ (５′－ＣＡＧＧ￣
ＣＣＴＡＡＣＡＣＡＴＧＣＡＡＧＴＣ－３′) ａｎｄ １４９５ｒ (５′－ＣＴＡ￣
ＣＧＧＣＴＡＣＣＴＴＧＴＴＡＣＧＡ－３′) ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｔｏ ａｍｐｌｉｆｙ
１６ＳｒＤＮＡ ｇｅｎｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔａｒｇｅｔ ｉｓｏｌａｔｅｓ. Ｅａｃｈ ｃｏｍｐｏ￣
ｎｅｎｔ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ａｓ ｓａｍｅ ａｓ
ｔｈｅ ＰＣＲ ｆｏｒ ｂａｃｔｅｒｉａｌ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３ ｒｅｇｉｏｎꎬ ａｎｄ ｔｈｅ
ｃｙｃｌｉｎｇ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ ａｒｅ ｉｎｖａｒｉａｎｔ ｅｘｃｅｐｔ ａｎｎｅａｌｉｎｇ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｃｈａｎｇｅｄ ｔｏ ５６ ℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎ.
Ｔｈｅ ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ａｎｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅｄ ａｔ
Ｓａｎｇｏ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ ｉｎ Ｓｈａｎｇｈａｉꎬ Ｃｈｉｎａ. Ｔｈｅ
Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｗａｓ ａｎａｌｙｚｅｄ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ ＢＬＡＳＴ
ａｌｇｏｒｉｔｈｍ (Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌｓ) ａ￣
ｖａｉｌａｂｌｅ ｏｎ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｒｅ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎ￣
ｆｏｒｍａｔｉｏｎ (ＮＣＢＩ) ｗｅｂｓｉｔｅ ( ｈｔｔｐ: / / ｗｗｗ. ｎｃｂｉ. ｎｌｍ.
ｎｉｈ.ｇｏｖ / ) ｂｙ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ ｐｒｏｇｒａｍ ＦＡＳＴＡ.
１ ３ Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｔｈｅ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｖａｌｕｅｓ ｇｒｅａｔｅｒ ｔｈａｎ ９７％ ｗｅｒｅ ａｐ￣
ｐｌｉｅｄ ｔｏ ｄｅｆｉｎｅ ａｎ ｏｐｅｒａｔｉｏｎａｌ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｕｎｉｔ (ＯＴＵ).
Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ｗｅｒｅ ｉｎｆｅｒｒｅｄ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ
ｎｅｉｇｈｂｏｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ ｍｅｔｈｏｄꎬ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｇｅ￣
ｎｅｔｉｃｓ ａｎａｌｙｓｉｓ (ＭＥＧＡ) ｓｏｆｔｗａｒｅ ｖｅｒｓｉｏｎ ４ ０ (Ｓａｉｔｏｕ
ａｎｄ Ｎｅｉꎬ １９８７ꎻ Ｔａｍｕｒａꎬ ２００７). Ｔｈｅ ｍｅａｎ ｖａｌｕｅ ｏｆ
ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｆｒｏｍ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｏｉｌ ｗａｓ ｓｔａｔｉｓｔｉ￣
ｃａｌｌｙ ａｎａｌｙｚｅｄ ｗｉｔｈ ｏｎｅ￣ｆａｃｔｏｒ ＡＮＯＶＡ ( ｉｄｅｎｔｉｔｙ ｏｆ
ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ) .
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ
２ １ Ｓｉｚｅ ｏｆ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ
Ｉｎ ｔｏｔａｌꎬ １８４ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐ ａｒｍａｎｄｉｉ ｒｈｉ￣
ｚｏｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎｓ ｗｅｒｅ ｉｓｏｌａｔｅｄ. Ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｌｏｃａ￣
ｔｉｏｎꎬ ａｌｔｉｔｕｄｅ ａｎｄ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｓｈｏｗｎ ｉｎ
Ｔａｂｌｅ １. Ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｎｏ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｂｕｎｄａｎｃｅ ａｎｄ ｓｏｉｌ ｔｙｐｅ ａｎｄ ａｌｔｉｔｕｄｅ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｃｅ. Ｎｏ ｏｂｖｉｏｕｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｉｎ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ＣＦＵ ｏｆ
ｂａｃｔｅｒｉａ ｐｅｒ １ ｇ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｓｉｘ ｓｏｉｌ ｓａｍｐｌｅｓ (Ｐ ＝
０ ０８７).
２ ２ Ｔｈｅ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ
ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ
Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｓｉｘ ｍａｊｏｒ ｇｒｏｕｐｓ
ｏｆ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｄｏｍａｉｎꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ
Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ ｔｈｅ αꎬ β ａｎｄ γ ｓｕｂｄｉｖｉ￣
ｓｉｏｎｓꎻ ｔｈｅ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓꎻ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ ｔｈｅ Ｂａｃｔｅ￣
ｒｏｉｄｅｔｅｓ ｐｈｙｌａ. Ａｌｌ １８４ ｓｔｒａｉｎｓ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ５５ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｏｆ ２５ ｇｅｎｅｒａ. Ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ａｎａｌｙｓｅｓꎬ ｍｅｍ￣
ｂｅｒｓ (１３７ ｏｆ １８４ꎬ ７４ ４６％) ｂｅｌｏｎｇｉｎｇ ｔｏ Ｐｒｏｔｅｏｂａｃ￣
ｔｅｒｉａ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｔｈｅ ｐｒｅｖａｌｅｎｔ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｇｒｏｕｐꎬ ａｎｄ
ｔｈｅｙ ｗｅｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｍｏｒｅ ａｂｕｎｄａｎｔ ｔｈａｎ ｔｈｅ ｉｓｏ￣
ｌａｔｅｓ ｂｅｌｏｎｇｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｇｒｏｕｐｓ.
２ ２ １ Ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｄｉｖｉｓｉｏｎ Ｉｎ ｔｈｅ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎꎬ １４ ６７％ ｏｆ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｉｓｏｌａｔｅｓ
ｗｅｒｅ ａｆｆｉｌｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (２７ ｏｆ １８４)
(Ｆｉｇ ２). Ｔｈｅ ｍａｊｏｒｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅｍ ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｗｉｔｈ Ｐｈｙｌ￣
ｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｍｙｒｓｉｎａｃｅａｒｕｍ ( ４４ ４４％ꎬ １２ ｏｆ ２７)ꎬ
ａｎｄ ２６％ (７ ｏｆ ２７) ｗｅｒｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍꎬ ｔｈｅ
ｒｅｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
Ｆｉｇ ２ Ｎｅｉｇｈｂｏｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ ｔｒｅｅ ｏｆ α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｂａｓｅｄ ｏｎ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ. Ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｔ ｅａｃｈ ｂｒａｎｃｈ ｎｏｄｅ ａｒｅ ｔｈｅ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ
ｎｕｍｂｅｒｓ ｆｒｏｍ １ ０００ ｒｅ￣ｓａｍｐｌｉｎｇｓ. Ａｑｕｉｆｅｘ ｐｙｒｏｐｈｉｌｕｓ (Ｍ８３５４８) ｗａｓ ｕｓｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｏｕｔ ｇｒｏｕｐ
４６８ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
ｒｈｉｚｏｇｅｎｅｓ ( １８ ５％ꎬ ５ ｏｆ ２７) ａｎｄ Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ
ｎａｓｄａｅ (１１ １１％ꎬ ３ ｏｆ ２７).
Ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｅｓꎬ ３０ ９８％ (５７ ｏｆ １８４) ｏｆ
ｔｈｅｍ ｓｈｏｗｅｄ ａ ｍｏｓｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ β￣Ｐｒｏ￣
ｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ( Ｆｉｇ ３ ). Ｔｈｅｙ ｍｏｓｔｌｙ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ
Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ (５０ ８８％ꎬ ２９ ｏｆ ５７) ａｎｄ ｔｈｅ ｍａｊｏｒｉｔｙ
ｈａｄ ａ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｗｉｔｈ Ｂ ｓｅｄｉｍｉｎｉｃｏｌａꎬ ｔｈｅ
ｒｅｍａｉｎｄｅｒ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ Ｂ ｈｏｓｐｉｔａꎬ Ｂ ｓｏｒｄｉｄｉｃｏｌａꎬ
Ｂ ｘｅｎｏｖｏｒａｎｓꎬ Ｂ ｇｒａｍｉｎｉｓꎬ Ｂ ｐｈｙｔｏｆｉｒｍａｎｓ ａｎｄ ａｎ
ｕｎｄｅｓｃｒｉｂｅｄ Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ ｓｐ.
Ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔ ｗｉｔｈ Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａꎬ ｏｎｌｙ ａ ｆｅｗ ｉｓｏ￣
ｌａｔｅｓ ｇｒｏｕｐｅｄ ｔｏｇｅｔｈｅｒ ｗｉｔｈ ｓｅｖｅｎ ｇｅｎｅｒａ: Ｄｕｇａｎｅｌｌａ
ｚｏｏｇｌｏｅｏｉｄｅꎬ Ａｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒ ｓｐａｎｉｕｓꎬ Ｃｏｍａｍｏｎａｓ ｔｅｓ￣
ｔｏｓｔｅｒｏｎｅꎬ Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ ｎｅｃａｔｏｒꎬ Ｈｅｒｂａｓｐｉｒｉｌｌｕｍ ｈｉｌｔｎｅ￣
ｒｉꎬ Ｖａｒｉｏｖｏｒａｘ ｐａｒａｄｏｘｕｓꎬ Ｃｏｌｌｉｍｏｎａｓ ａｒｅｎａｅ ａｎｄ
Ｃ ｐｒａｔｅｎｓｉｓ.
Ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄ ｎｕｍｅｒｏｕｓ ｓｕｂｃｌａｓｓ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ Ｐｒｏ￣
ｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗａｓ γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (２８ ８％ꎬ ５３ ｏｆ １８４)
(Ｆｉｇ ４)ꎬ ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ ｔｈｅ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙꎬ ｗｅｒｅ ａｓｓｉｇｎｅｄ ｔｏ
ｓｉｘ ｇｅｎｅｒａ: Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ (６０ ３８％ꎬ ３２ ｏｆ ５３)ꎬ Ｓｔｅｎ￣
ｏｔｒｏｐｈｏｍｏｎａｓ ｒｈｉｚｏｐｈｉｌａ (９％ꎬ ５ ｏｆ ５３)ꎬ Ｃｅｄｅｃｅａ ｎｅ￣
ｔｅｒｉ (９％ꎬ ５ ｏｆ ５３)ꎬ Ｒａｏｕｌｔｅｌｌａ ｔｅｒｒｉｇｅｎａ (７ ５％ꎬ ４ ｏｆ
５３)ꎬ Ｅｒｗｉｎｉａ ｒｈａｐｏｎｔｉｃｉ (７ ５％ꎬ ４ ｏｆ ５３) ａｎｄ Ｅｎｔｅｒ￣
ｏｂａｃｔｅｒ ａｅｒｏｇｅｎｅｓ (３ ７８％ꎬ ２ ｏｆ ５３). Ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｐｓｅ￣
ｕｄｏｍｏｎａｓ ｗａｓ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｄｉｖｅｒｓｅꎬ ａｎｄ ｉｔ ｗａｓ ｃｏｍｐｏｓｅｄ
ｏｆ ｎｉｎｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ: Ｐ ａｓｐｌｅｎｉｉꎬ Ｐ ｆｒｅｄｅｒｉｋｓｂｅｒｇ￣
ｅｎｓｉｓꎬ Ｐ ｋｉｌｏｎｅｎｓｉｓꎬ Ｐ ｌｕｒｉｄａꎬ Ｐ ｐａｌｌｅｒｏｎｉａｎａꎬ Ｐ ｓｐ.ꎬ
Ｐ ｕｍｓｏｎｇｅｎｓｉｓꎬ Ｐ ｖａｎｃｏｕｖｅｒｅｎｓｉｓ ａｎｄ Ｐ ｋｏｒｅｅｎｓｉｓ.
Ｆｉｇ ３ Ｎｅｉｇｈｂｏｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ ｔｒｅｅ ｏｆ β￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｂａｓｅｄ ｏｎ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ. Ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｔ ｅａｃｈ ｂｒａｎｃｈ ｎｏｄｅ ａｒｅ ｔｈｅ
ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｎｕｍｂｅｒｓ ｆｒｏｍ １ ０００ ｒｅ￣ｓａｍｐｌｉｎｇｓ. Ａｑｕｉｆｅｘ ｐｙｒｏｐｈｉｌｕｓ (Ｍ８３５４８) ｗａｓ ｕｓｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｏｕｔ ｇｒｏｕｐ
５６８６期 ＷＡＮ Ｓｈａｎ￣ｐｉｎｇ ｅｔ ａｌ.: Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐｉｎｕｓ
Ｆｉｇ ４ Ｎｅｉｇｈｂｏｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ ｔｒｅｅ ｏｆ γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｂａｓｅｄ ｏｎ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ. Ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｔ ｅａｃｈ ｂｒａｎｃｈ ｎｏｄｅ ａｒｅ ｔｈｅ
ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｎｕｍｂｅｒｓ ｆｒｏｍ １ ０００ ｒｅ￣ｓａｍｐｌｉｎｇｓ. Ａｑｕｉｆｅｘ ｐｙｒｏｐｈｉｌｕｓ (Ｍ８３５４８) ｗａｓ ｕｓｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｏｕｔ ｇｒｏｕｐ
２ ２ ２ Ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ｄｉｖｉｓｉｏｎ Ａ ｓｉｇ￣
ｎｉｆｉｃａｎｔ ｇｒｏｕｐ ｏｆ ＯＴＵｓ ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙ￣
ｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｏｆ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐ ａｒｍａｎｄｉｉ
ａｌｓｏ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ
ｐｈｙｌｕｍ (１２ ５％ꎬ ２３ ｏｆ １８４) (Ｆｉｇ ５). Ｔｈｅ Ａｒｔｈｒｏｂ￣
ａｃｔｅｒ (３９ １３％ꎬ ９ ｏｆ ２３) ｇｒｏｕｐ ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｍａｎｙ ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ａｂｕｎｄａｎｔ ｂｅｉｎｇ Ａ ａｌｋａ￣
ｌｉｐｈｉｌｕｓꎬ Ａ ｄｅｆｌｕｖｉｉꎬ Ａ ｈｕｍｉｃｏｌａꎬ Ａ ｍｅｔｈｙｌｏｔｒｏｐｈｕｓꎬ
Ａ ｎｉｔｒｏｇｕａｊａｃｏｌｉｃｕｓ ａｎｄ Ａ ｒａｍｏｓｕｓ. Ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄ ｍａｊｏｒ
ｇｒｏｕｐ ｗｉｔｈｉｎ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗａｓ Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ (３０ ４３％ꎬ
７ ｏｆ ２３)ꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ Ｓ ａｔｒａｔｕｓꎬ Ｓ ａｔｒｏａｕｒａｎｔｉａｃｕｓꎬ
Ｓ ａｕｒｅｕｓꎬ Ｓ ｍｉｒａｂｉｌｉｓ ａｎｄ Ｓ ｓｉｏｙａｅｎｓｉｓ. Ｆｅｗ ｓｔｒａｉｎｓ
ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｗｉｔｈｉｎ Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓ (１３ ０４％ꎬ
３ ｏｆ ２３)ꎬ Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ (１７ ３９％ꎬ ４ ｏｆ ２３)ꎬ Ｒ ｂａｉ￣
ｋｏｎｕｒｅｎｓｉｓ ａｎｄ Ｒ ｑｉｎｇｓｈｅｎｇｉｉ.
２ ２ ３ Ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ ａｎｄ Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ
ｄｉｖｉｓｉｏｎ Ｍｏｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ (７ ６％ꎬ
１４ ｏｆ １８４) (Ｆｉｇ ５) ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ Ｂａｃｉｌｌｕｓ (６４ ２９％ꎬ
９ ｏｆ １４ ) ａｎｄ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ Ｂ ｗｅｉｈｅｎｓｔｅｐｈａｎｅｎｓｉｓ、
Ｂ ｃｉｒｃｕｌａｎｓ、 Ｂ ａｃｉｄｉｃｅｌｅｒ ａｎｄ Ｂ ｌｕｃｉｆｅｒｅｎｓｉｓ. Ａｍｏｎｇ
ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ ２１ ４３％ Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｅｐｉｄｅｒｍｉ￣
ｄｉｓ (３ ｏｆ １４) ａｎｄ １４ ２９％ Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆｒｉｇｏｒｉｔｏｌ￣
ｅｒａｎｓ (２ ｏｆ １４) ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｏｎｌｙ
ｏｎｅ ｉｓｏｌａｔｅ Ｔ６Ｂ３４ ｏｆ Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ (Ｆｉｇ ５) ｗａｓ ｄｅ￣
ｔｅｃｔｅｄ ｏｎ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｂｒａｎｃｈ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｃｈｒｙｓｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｕｒｅｉｌｙｔｉｃｕｍ ｗｉｔｈ ａ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ９９％.
６６８ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
Ｆｉｇ ５ Ｎｅｉｇｈｂｏｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ ｔｒｅｅ ｏｆ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａꎬ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓꎬ Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ. Ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｔ ｅａｃｈ ｂｒａｎｃｈ
ｎｏｄｅ ａｒｅ ｔｈｅ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｎｕｍｂｅｒｓ ｆｒｏｍ １ ０００ ｒｅ￣ｓａｍｐｌｉｎｇｓ. Ａｑｕｉｆｅｘ ｐｙｒｏｐｈｉｌｕｓ (Ｍ８３５４８) ｗａｓ ｕｓｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｏｕｔ ｇｒｏｕｐ
３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ａｎａｌｙｓｉｓꎬ ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｎｏ ｏｂｖｉ￣
ｏｕｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｓｉｘ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｏｉｌ ｓａｍｐｌｅｓ ｉｎ
ｔｈｅ ａｍｏｕｎｔ ｏｆ ＣＦＵ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ ｔｈｉｓ ｍｏｓｔｌｙ ｃｏｉｎｃｉｄｅｄ
ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｍ￣
ｍｕｎｉｔｙ ｏｆ ｔｒｕｆｆｌｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｒ
ｖｉｃｉｎｉｔｙ ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ ｎｉｃｈｅｓ ｂａｃｅｒｉａ ( Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００２ꎻ Ｍａｍｏｕｍ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８６). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔ
ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍ ｗｈｉｃｈ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔｌｙ
ｉｓｏｌａｔｅｄ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ ｂｏｒｃｈｉｉꎬ Ｔ ｍａｇｎ￣
ａｔｕｍꎬ Ｔ ｍａｃｕｌａｔｕｍ ａｎｄ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅꎬ ｔｈｅ ｄｉ￣
ｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓ ｍｏｒｅ
ｐｌｅｎｔｉｆｕｌ ｂｏｔｈ ｉｎ ｔｈｅ ａｂｕｎｄａｎｃｅ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｔｙ (Ｃｉｔｔｅ￣
ｒｉｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９５ꎻ Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７ꎻ Ｗａｎ ａｎｄ Ｌｉｕꎬ ２０１４).
Ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙꎬ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ａｐｐｒｏａｃｈ ｗａｓ ｕｓｅｄ
ｔｏ ａｎａｌｙｓｉｓ ｔｈｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｃｏｍｐｏｓｉｔｏｎ ｏｆ ａ ｎａｔｕｒａｌ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｏｆ ａ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅ ｅｃｔｏ￣
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅｓ ｇｅｎｅｒａｔｅｄ ａ ｈｉｇｈ ｖａｒｉｅｔｙ ｆｒｏｍ ｓｉｘ ｐｈｙｌｏｇｅ￣
７６８６期 ＷＡＮ Ｓｈａｎ￣ｐｉｎｇ ｅｔ ａｌ.: Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐｉｎｕｓ
ｎｅｔｉｃ ｇｒｏｕｐｓ: αꎬ βꎬ γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａꎻ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓꎻ
Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ. Ｔｈｅ ｌａｒｇｅｓｔ ｐｏｒｔｉｏｎ
ｏｆ ｔｈｅ ｏｐｅｒａｔｉｏｎａｌ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｕｎｉｔｓ ( ＯＴＵｓ) ｗｉｔｈｉｎ
ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ａｓ β￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ
ｍｏｓｔｌｙ ｗｉｔｈ ｃｌｏｓｅ ｒｅｌａｔｉｖｅｓ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ.
Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ ｗａｓ ａｌｓｏ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ
Ｔ ｍａｇｎａｔｕｍ ｗｉｔｈ ａ ｔｉｎｙ ｎｕｍｂｅｒ ａｎｄ ｏｎｌｙ ｏｎｅ ｓｐｅｃｉｅｓ
(Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｉｓ ｇｅｎｕｓ ｈａｄ ｎｏｔ
ｂｅｅｎ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ ｂｏｒｃｈｉｉ ａｎｄ
Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ (Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ Ｗａｎ ａｎｄ
Ｌｉｕꎬ ２０１４). Ｓｕｃｈ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ ｗｏｕｌｄ ｐｒｏｖｉｄｅ ａｄｄｉ￣
ｔｉｏｎａｌ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｓ ｔｏ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ａｓｓｏｃｉａ￣
ｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｔｕｂｅｒ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｒｅｌａｔｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎｓ
ａｎｄ ａｉｄ ｒｅｓｅａｒｃｈｅｒｓ ｉｎ ｆｏｃｕｓｉｎｇ ｆｕｔｕｒｅ ｓｔｕｄｉｅｓ ｔｏ￣
ｗａｒｄｓ ｆｕｎｇｕｓ￣ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ. Ｂｅｓｉｄｅｓꎬ
Ｖａｒｉｏｖｏｒａｘ ｐａｒａｄｏｘｕｓ ｏｆ β￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｈａｄ ａｌｓｏ
ｂｅｅｎ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｉｏｒ ｒｅｓｅａｒｃｈｅｓ ａｎｄ ｈａｄ ｂｅｅｎ
ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅｄ ａｓ ａ ｐｌａｎｔ￣ｇｒｏｗｔｈ￣ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ ｒｈｉｚｏｂａｃ￣
ｔｅｒｉｕｍ ｂｙ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ １￣ａｍｉｎｏｃｙｃｌｏｐｒｏｐａｎｅ￣１￣ｃａｒｂｏｘ￣
ｙｌａｔｅ ｄｅａｍｉｎａｓｅ (Ｂｅｌｉｍｏｖ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｎｏ ｒｅｐｏｒｔｓ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ａ￣
ｂｏｕｔ ｔｈｅ ｒｅｓｔ ｓｉｘ ｇｅｎｅｒａ ａｆｆｉｌｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ β￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅ￣
ｒｉａ ｉｎ Ｔｕｂｅｒ ｓｐｐ. ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｍｉｃｒｏｂｅｓ. γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅ￣
ｒｉａꎬ ａｓ ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄ ｍａｊｏｒ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｄｏｍｉｎａｔｅｄ ｂｙ
Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｎｄ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｖａｒｉｏｕｓ ｓｐｅｃｉｅｓｅｓ. Ｔｈｅ
ｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｉｓ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｇｒｏｕｐ ａｎｄ ｔｒｕｆｆｌｅ ａｓ￣
ｓｏｃｉａｔｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｗｅｒｅ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｉｎ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｉｎｖｅｓｔｉｇａ￣
ｔｉｏｎｓ (Ｃｉｔｔｅｒｉｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９５ꎻ Ｃｉｔｔｅｒｉｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１ꎻ
Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｂａｒ￣
ｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７ꎻ Ｍｅｌｌｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０ꎻ Ｗａｎ
ａｎｄ Ｌｉｕꎬ ２０１４ ). Ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ
Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｆｒｕｉｔｂｏｄｉｅｓ ｏｆ Ｔ ｂｏｒｃｈｉｉ
ｗｅｒｅ ｃａｐａｂｌｅ ｔｏ ａｄｈｅｒｅ ｔｏ ｔｈｅ ｈｙｐｈａｌ ｍａｔｒｉｘ ａｎｄ
ｈａｖｅ ａｎ ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｆｏｒ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｒ ｐｈｙｔｏｓｔｉｍｕｌａｔｏｒｙ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｔｏ ｒｅｓｔｒｉｃｔ
ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ ｐａｔｈｏｇｅｎ ａｎｄ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ
ａｎｄ ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｓｉｓ (Ｂｅｄｉｎｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０００ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１ꎻ Ｃｉｔｔｅｒｉｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００１). Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｅｃｔｏ￣
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ａｎｄ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ Ｌａｃｃａｒｉａ
ａｎｄ Ｒｈｉｚｏｐｏｇｏｎꎬ Ｌａｃｔａｒｉｕｓꎬ ｗｅｒｅ ａｂｌｅ ｔｏ ｅｎｈａｎｃｅ
ｆｕｎｇａｌ ｇｒｏｗｔｈꎬ ｒｏｏｔ ｃｏｌｏｎｉｓａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｕｂｓｅｑｕｅｎｔ ｅｓ￣
ｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｇ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ (Ｇａｒｂａｙｅ
ａｎｄ Ｂｏｗｅｎꎬ １９８９ꎻ Ｇａｒｂａｙｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９０ꎻ Ｇａｒｂａｙｅ
ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９４ꎻ Ｐｏｏｌｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１). α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ
ｗａｓ ａ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ ｃｏｎｓｔａｎｔ ａｎｄ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｂａｃｔｅｒｉａｌ
ｇｒｏｕｐ ｗｈｉｃｈ ｍａｉｎｌｙ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ａｎｄ Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍ. Ｐ ｍｙｓｉｎａｃｅａｒｕｍ ｗａｓ ｆｏｕｎｄ ｃｏｎｓｉｓｔ￣
ｅｎｔｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｒｕｆｆｌｅｓ ｓｔｕｄｉｅｄ (Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０００ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７ꎻ Ｗａｎ ａｎｄ Ｌｉｕꎬ
２０１４). Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍꎬ ｗｈｉｃｈ ｈａｓ ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｎｉｔｒｏｇｅｎ￣
ｆｉｘｉｎｇ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｎｏｄｕｌｅｓ ｈａｖｅ ａｌｓｏ ｂｅｅｎ ｄｅ￣
ｓｃｒｉｂｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ ｏｔｈｅｒ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ
(Ｓｐａｎｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８２ꎬ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７). Ｉｔ ｓｕｇ￣
ｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ｔｈｅｓｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｍｉｃｒｏｒｇａｎｉｓｍｓ ｃｏｕｌｄ ｐｌａｙ ａ
ｒｏｌｅ ｉｎ ｔｈｅ ｆｕｎｇａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｏｒ ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ｄｕｒｉｎｇ ａｓｃｏｃａｒｐｓ
ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ.
Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗｅｒｅ ｄｏｍｉｎａｎｔｅｄ ｂｙ Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ
ａｎｄ Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｉｎ ｏｕｒ ｓｔｕｄｙ. Ｔｈｉｓ ｃｌａｄｅ ｗａｓ ｃｏｎ￣
ｆｉｒｍｅｄ ａｓ ａ ｃｏｎｓｉｄｅｒａｂｌｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｂａｃｔｅｒｉａｌ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｉｎｈａｂｉｔｉｎｇ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ａｎｄ ａｓｃｏｃａｒｐｓ
ｏｆ ｔｒｕｆｆｌｅ (Ｍａｍｏｕｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８６ꎻ Ｂｅｄｉｎｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ
Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ Ｗａｎ
ａｎｄ Ｌｉｕꎬ ２０１４)ꎬ ａｎｄ ｉｔ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ａｓ ａ ｃｏｍｍｏｎ
ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅ ｗｉｔｈｉｎ Ｔｕｂｅｒ ｓｐｐ.. Ａｎｏｔｈｅｒ
ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｇｒｏｕｐ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓ￣
ｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｏｆ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐ ａｒｍａｎｄｉｉ ｗａｓ Ｆｉｒ￣
ｍｉｃｕｔｅｓ ａｎｄ ｒｅｆｅｒｒｅｄ ｔｏ Ｂａｃｉｌｌｕｓ. Ｔｈｅ ｆｒａｍｅｗｏｒｋ
ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ ｔｈａｔ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐｐ. ｗｅｒｅ ａｂｌｅ ｔｏ ｉｎｃｒｅａｓｅ
ｔｈｅ ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ Ｔ ｂｏｒｃｈｉｉ ａｎｄ ｏｔｈｅｒ ｅｃｔｏｍｙ￣
ｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ ( Ｇａｒｂａｙｅ ａｎｄ Ｂｏｗｅｎꎬ １９８９ꎻ Ｇａｒ￣
ｂａｙｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９０ꎻ Ｇａｒｂａｙｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９４ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００２). Ｍｏｒｅｏｖｅｒꎬ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐｐ. ａｓ ａ Ｎ￣ｆｉｘｉｎｇ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｐｅｃｉｅｓ ｐｒｅｓｅｎｔ ｉｎ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ
ｆｏｒｅｓｔ ｔｒｅｅｓ ｐｌａｙｅｄ ａｎ ｉｎｄｉｓｐｅｎｓａｂｌｅ ｒｏｌｅ ｉｎ ｅｎｅｒｇｙ
ｅｘｐｌｏｉｔａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｕｂｓｔａｎｃｅ ｒｅｃｙｃｌｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ｅｎｖｉｒｏｎ￣
ｍｅｎｔ (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９２ꎻ Ｓｅｎꎬ ２０００).
Ｉｎ ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎꎬ ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ
ｇｒｅａｔｌｙ ｅｘｔｅｎｄｅｄ ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｖａｉｌａｂｌｅ
ｏｎ Ｔｕｂｅｒ￣ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ ｂｕｔ ｎｏｎｅ ｐｒｔｉｃｕｌａｒ ｉｎ￣
ｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｔｒｕｆｆｌｅ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｆｌｏｒａｓ
ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ. Ｆｏｒ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｔｉｍｅꎬ ｏｕｒ ｗｏｒｋ ｄｅ￣
ｓｃｒｉｂｅｄ ｔｈｅ ｓｏｉｌ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ｉｎｈａｂｉｔｉｎｇ ａ
ｎａｔｕｒａｌ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅ￣ｇｒｏｕｎｄ. Ｗｅ ｏｐｅｎｉｎｇ
８６８ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
ｎｅｗ ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ ｏｎ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｏｃｃｕｒ￣
ｒｉｎｇ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ａｎｄ
ｆｏｒ ａ ｂｅｔｔｅｒ ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄｉｎｇ ｏｆ ｔｈｉｓ ｐｌａｎｔ￣ｆｕｎｇａｌ￣ｂａｃｔｅ￣
ｒｉａｌ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ. Ｔｈｒｏｕｇｈ ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓ
ｗｏｒｋꎬ ｆｉｖｅ ｇｅｎｅｒａ: Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓꎬ Ｂａｃｉｌｌｕｓꎬ Ｓｔｅｎｏｔｒ￣
ｏｐｈｏｍｏｎａｓꎬ Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｎｄ Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍꎬ ｗｅｒｅ
ｉｓｏｌａｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ (Ｗａｎ
ａｎｄ Ｌｉｕꎬ ２０１４)ꎬ ａｎｄ ａｌｓｏ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒ￣
ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｏｆ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ. Ｉｔ
ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ｔｈｅｓｅ ｓｔｒａｉｎｓ ｐｅｒｈａｐｓ ａｓ ｔｈｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔ￣
ａｔｉｖｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｆｒａｃｔｉｏｎ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ
ｗｉｔｈ Ｔ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅꎬ ａｎｄ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｐｌａｙ ａｎ ｉｎｄｉｓ￣
ｐｅｎｓａｂｌｅ ｃｈａｒａｃｔｅｒ ｉｎ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎ
ａｎｄ ａｓｃｏｃａｒｐ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｉｓ ｔｒｕｆｆｌｅ. Ｓｏｍｅ ｃｅｒｔａｉｎ
ｓｔｒａｉｎｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｄｓ ａｎｄ Ｂａｃｉｌｌｉꎬ ｗｈｉｃｈ
ｅｎａｂｌｅｄ Ｎ￣ｆｉｘｉｎｇ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｎｄ ｅｘｐｒｅｓｓ ｃｈｉｔｉｎｏｌｉｔｉｃ ａｃ￣
ｔｉｖｉｔｙꎬ ｗｅｒｅ ｃｈａｒａｃｔｅｒｅｄ ａｓ ＭＨＢｓ ａｎｄ ｗｅｒｅ ａｓｓｕｍｅｄ
ｔｏ ｂｅ ａｂｌｅ ｔｏ ａｆｆｅｃｔ ａｓｃｏｓｐｏｒｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ｆｒｕｉｔ
ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ ａｎｄ ｔｏ ｆａｃｉｌｉｔａｔｅ ａｓｃｕｓ ｏｐｅｎｉｎｇ ａｎｄ
ｍｙｃｅｌｉｕｍ ｇｒｏｗｔｈ (Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００２). Ｇｅｎｅｒａｌｌｙꎬ ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ ａｎｄ ｐｒｅｖａｌｅｎｔ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎｓ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｔｕｂｅｒ ｍａｙ ｂｅ ｕｓｅ￣
ｆｕｌ ｆｏｒ ｆｕｒｔｈｅｒ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｔｈｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｏｆ ｔｈｅ ＭＨ￣
Ｂｓ ａｎｄ ｗｉｌｌ ｂｅ ｅｆｆｉｃｉｅｎｔｌｙ ｕｔｉｌｉｚｅｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｅｃ￣
ｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ
ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
Ａｓｐｒａｙ ＴＪꎬ Ｆｒｅｙ ＰＫꎬ Ｊｏｎｅｓ ＪＥ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６. Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｔｉｏｎ ｈｅｌｐｅｒ
ｂａｃｔｅｒｉａ: ａ ｃａｓｅ ｏｆ ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ ｆｏｒ ａｌｔｅｒｉｎｇ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ａｒｃｈｉｔｅｃ￣
ｔｕｒｅ ｂｕｔ ｎｏｔ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ [ Ｊ ] . Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａꎬ １６:
５３３—５４１
Ａｌｌｅｎ ＭＦꎬ １９９２. Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ Ｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｇ: Ａｎ Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ Ｐｌａｎｔ￣Ｆｕｎ￣
ｇａｌ Ｐｒｏｃｅｓｓ [Ｍ]. Ｌｏｎｄｏｎ: Ｃｈａｐｍａｎａｎｄ Ｈａｌｌ
Ｂａｒｂｉｅｒｉ Ｅꎬ Ｂｅｒｔｉｎｉ Ｌꎬ Ｒｏｓｓｉ Ｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５. Ｎｅｗ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ｂａｃｔｅｒｉａｌ
ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ａｓｃｏｍａ ｏｆ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｕｓ Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ
Ｖｉｔｔａｄ [Ｊ] . ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｌｅｔｔｅｒｓꎬ ２４７: ２３—３５
Ｂａｒｂｉｅｒｉ Ｅꎬ Ｇｕｉｄｉ Ｃꎬ Ｂｅｒｔａｕｘ Ｊ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７. Ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ａｎｄ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ
ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ｉｎ Ｔｕｂｅｒ ｍａｇｎａｔｕｍ ｄｕｒｉｎｇ ｔｒｕｆｆｌｅ ｍａｔｕ￣
ｒａｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ ９: ２２３４—２２４６
Ｂｅｌｉｍｏｖ ＡＡꎬ Ｓａｆｒｏｎｏｖａ ＶＩꎬ Ｓｅｒｇｅｙｅｖａ ＴＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１. Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ ｒｈｉｚｏｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｐｏｌｌｕｔｅｄ
ｓｏｉｌｓ ａｎｄ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ １￣ａｍｉｎｏｃｙｃｌｏｐｒｏｐａｎｅ￣１￣ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ ｄｅａｍｉｎａｓｅ
[Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ ４７: ６４２—６５２
Ｂｅｄｉｎｉ Ｓꎬ Ｂａｇｎｏｌｉ Ｇꎬ Ｓｂｒａｎａ Ｃ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９. Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｄｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ
ｆｒｏｍ ｗｉｔｈｉｎ ｆｒｕｉｔ ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ ａｒｅ ｃａｐａｂｌｅ ｏｆ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ
ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｒ ｐｈｙｔｏｓｔｉｍｕｌａｔｏｒｙ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｉｎ ｐｕｒｅ ｃｕｌｔｕｒｅ
[Ｊ] . Ｓｙｍｂｉｏｓｉｓꎬ ２６: ２２３—２３６
Ｃｉｔｔｅｒｉｏ Ｂꎬ Ｃａｒｄｏｎｉ Ｐꎬ Ｐｏｔｅｎｚａ Ｌ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９５. Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ
ｆｒｏｍ ｓｐｏｒｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ ｍａｇｎａｔｕｍ Ｐｉｃｏꎬ Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ Ｖｉｔｔａｄ.
ａｎｄ Ｔｕｂｅｒ ｍａｃｕｌａｔｕｍ Ｖｉｔｔ.: ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｈａｒａｃ￣
ｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ [Ａ] / / Ｓｔｏｃｃｈｉ Ｖꎬ Ｂｏｎｆａｎｔｅ Ｐꎬ Ｎｕｔｉ Ｍꎬ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
ｏｆ Ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ: Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ａｐｐｒｏａｃｈｅｓ [Ｍ]. Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ: Ｐｌｅ￣
ｎｕｍꎬ ２４１—２４８
Ｃｉｔｔｅｒｉｏ Ｂꎬ Ｍａｌａｔｅｓｔａ Ｍꎬ Ｂａｔｔｉｓｔｅｌｌｉ Ｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１. Ｐｏｓｓｉｂｌｅ ｉｎｖｏｌｖｅ￣
ｍｅｎｔ ｏｆ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ ａｎｄ Ｂａｃｉｌｌａｃｅａｅ ｉｎ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｍｏｄ￣
ｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ ｆｒｕｉｔｂｏｄｉｅｓ [ Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ ４７: ２６４—２６８
Ｃｏｕｒｔｙ ＰＥꎬ Ｂｕéｅ Ｍꎬ Ｄｉｅｄｈｉｏｕ ＡＧ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｅｃｔｏｍｙ￣
ｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ｉｎ ｆｏｒｅｓｔ ｅｃｏｓｙｓｔｅｍ ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ: ｎｅｗ ｐｅｒｓｐｅｃ￣
ｔｉｖｅｓ ａｎｄ ｅｍｅｒｇｉｎｇ ｃｏｎｃｅｐｔｓ [ Ｊ] . Ｓｏｉｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ ＆ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ
４２: ６７９—６９８
Ｄｕｎｓｔａｎ ＷＡꎬ Ｍａｌａｊｃｚｕｋ Ｎꎬ Ｄｅｌｌ Ｂꎬ １９９８. Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｏｎ ｍｙ￣
ｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ａｎｄ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ ｃｏｎｔａｉｎｅｒ￣ｇｒｏｗｎ Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ
ｄｉｖｅｒｓｉｃｏｌｏｒ Ｆ. Ｍｕｅｌｌ. ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ [ Ｊ ] . Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｓｏｉｌꎬ ２０１:
２４１—２４９
Ｆｏｕｎｏｕｎｅ Ｈꎬ Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓ Ｒꎬ Ｂâ ＡＭ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１. Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ Ｈｅｌｐｅｒ
Ｂａｃｔｅｒｉａ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｓｙｍｂｉｏｓｉｓ ｏｆ Ａｃａｃｉａ ｈｏｌｏｓｅｒｉｃｅａ
ｗｉｔｈ Ｐｉｓｏｌｉｔｈｕｓ ａｌｂａ [Ｊ] . Ｎｅｗ Ｐｈｙｔｏｌｏｇｉｓｔꎬ １５３: ８１—８９
Ｆｏｕｎｏｕｎｅ Ｈꎬ Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓ Ｒꎬ Ｍｅｙｅｒ ＪＭ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２. Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｓｙｍｂｉｏｓｉｓ ａｎｄ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｄｓ ｏｎ
Ａｃａｃｉａ ｈｏｌｏｓｅｒｉｃｅａ: ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｈｅｌｐｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａ (ＭＨＢ)
ｆｒｏｍ ａ ＳｏｕｄａｎｏＳａｈｅｌｉａｎ ｓｏｉｌ [Ｊ] . ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｅｃｏｌｏｇｙꎬ ４１:
３７—４６
Ｆｒｅｙ ＫＰꎬ Ｂｒｕｌｅ Ｃꎬ Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ １９９７ａ. Ａ ｐｒｏｐｏｓｅｄ ｍｏｄｅｌ ｆｏｒ ｔｈｅ ｍｙ￣
ｃｏｒｒｈｉｚａ￣ｈｅｌｐｅｒ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ ＢＢｃ６ ｏｎ ｔｈｅ ｅｃ￣
ｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｓｙｓｔｅｍ Ｌａｃｃａｒｉａ ｂｉｃｏｌｏｒ Ｓ２３８Ｎ￣Ｄｏｕｇｌａｓ ｆｉｒ [ Ｃ].
４ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｗｏｒｋｓｈｏｐ ｏｎ Ｐｌａｎｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ Ｒｈｉｚｏｂａｃ￣
ｔｅｒｉａꎬ Ｓａｐｐｏｒｏꎬ Ｊａｐａｎ
Ｆｒｅｙ Ｐꎬ Ｆｒｅｙ ＫＰꎬ Ｇａｒｂａｙｅ Ｊ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ｂ. Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ａｎｄ ｇｅｎｏｔｙｐｉｃ
ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ ｏｆ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｄｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ
Ｄｏｕｇｌａｓ ｆｉｒ Ｌａｃｃａｒｉａ ｂｉｃｏｌｏｒ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ [ Ｊ] . Ａｐｐｌｙ Ｅｎｖｉ￣
ｒｏｎｍｅｎｔ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ ６３: １８５２—１８６０
Ｆｕｊｉｉ Ｙꎬ Ａｋｉｈｉｒｏ Ｆꎬ Ｓｙｕｎｔａｒｏ Ｈꎬ ２００４. Ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ｍｅｔｈｏｄ: ａ
ｎｅｗ ｂｉｏａｓｓａｙ ｔｏ ｅｖａｌｕａｔｅ ａ ｌｌｅｌｏｐａｔｈｙ ｉｎ ｔｈｅ ｆｉｅｌｄ [Ｃ]. Ｐｒｏｃｅｅｄ￣
ｉｎｇｓ ａｎｄ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ｐａｐｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｏｕｒｔｈ ｗｏｒｌｄ ｃｏｎｇｒｅｓｓ ｏｎ ａｌｌｅｌｏｐａ￣
ｔｈｙꎬ ４９０—４９２
Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ Ｂｏｗｅｎ ＧＤꎬ １９８７. Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｍｉｃｒｏｆｌｏｒａ ｏｎ ｔｈｅ ｓｕｃ￣
ｃｅｓｓ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｉｎｕｓ ｒａｄｉａｔｅ [ Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｏｒｅｓｔ Ｒｅｓｅａｒｃｈꎬ １７: ９４１—９４３
Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ Ｂｏｗｅｎ ＧＤꎬ １９８９. Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ
ｏｆ Ｐｉｎｕｓ ｒａｄｉａｔａ ｂｙ ｓｏｍｅ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｍａｎ￣
ｔｌｅ ｏｆ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ [Ｊ] . Ｎｅｗ Ｐｈｙｔｏｌｏｇｉｓｔꎬ １１２: ３８３—３８８
Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓ Ｒꎬ Ｗａｈｌ ＪＬꎬ １９９０. Ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ
９６８６期 ＷＡＮ Ｓｈａｎ￣ｐｉｎｇ ｅｔ ａｌ.: Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ￣Ｐｉｎｕｓ
Ｌａｃｃａｒｉａ ｌａｃｃａｔａ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ｏｒ ｓｐｏｒｏｃａｒｐｓ: ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ｓｙｍｂｉｏｓｉｓ
ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ｏｎ Ｄｏｕｇｌａｓ ｆｉｒ [Ｊ]. Ｓｙｍｂｉｏｓｉｓꎬ ９: ２６７—２７３
Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ １９９１. Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｉｎ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ [Ｊ] .
Ｅｘｐｅｒｉｅｎｔｉａꎬ ４７: ３７０—３７５
Ｇａｒｂａｙ Ｊꎬ Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓ Ｒꎬ １９９２. Ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ￣
ｔｉｏｎ ｈｅｌｐｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａ (ＭＨＢ) ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ Ｐｓｅｕｄｏｔｓｕｇａ ｍｅ￣
ｎｚｉｅｓｉｉ￣Ｌａｃｃａｒｉａ ｌａｃｃａｔａ ｓｙｍｂｉｏｓｉｓ [Ｊ] . Ｓｙｍｂｉｏｓｉｓꎬ １４: ３３５—３４４
Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ １９９４. Ｈｅｌｐｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａ: ａ ｎｅｗ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ ｔｏ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ
ｓｙｍｂｉｏｓｉｓ [Ｊ] . Ｎｅｗ Ｐｈｙｔｏｌｏｇｉｓｔꎬ １２８: １９７—２１０
Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ Ｇꎬ Ｍａｌａｔｅｓｔａ Ｍꎬ Ｐｉａｎｅｔｔｉ Ａ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９. Ｂａｃｔｅｒｉａ ａｓｓｏｃｉａｔ￣
ｅｄ ｔｏ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｕｓ Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ
Ｖｉｔｔａｄ [Ｊ] . Ｓｙｍｂｉｏｓｉｓꎬ ２６: ２１１—２１９
Ｇｌｉｃｋ ＢＲꎬ １９９５. Ｔｈｅ ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ｂｙ ｆｒｅｅ ｌｉｖｉｎｇ ｂａｃ￣
ｔｅｒｉａ [Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ ４１: １０９—１１７
Ｈｉｌｔｎｅｒ Ｌꎬ １９０４. üｂｅｒ ｎｅｕｅ Ｅｒｆａｈｒｕｎｇｅｎ ｕｎｄ Ｐｒｏｂｌｅｍｅ ａｕｆ ｄｅｍ Ｇｅｂｉ￣
ｅｔ ｄｅｒ Ｂｏｄｅｎｂａｋｔｅｒｉｏｌｏｇｉｅ ｕｎｔｅｒ ｂｅｓｏｎｄｅｒｅｒ Ｂｅｒüｋｓｉｃｈｔｉｇｕｎｇ ｄｅｒ
Ｇｒüｎｄüｎｇｕｎｇ ｕｎｄ Ｂｒａｃｈｅ [ Ｊ] . Ａｒｂ Ｄｔｓｃｈ Ｌａｎｄｗｉｒｔｓｃｈ Ｇｅｓꎬ ９８:
５９—７８
Ｋａｔｚｎｅｌｓｏｎ Ｈꎬ Ｒｏｕａｔｔ ＪＷꎬ Ｐｅｔｅｒｓｏｎ ＥＡꎬ １９６２. Ｔｈｅ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｅｆｆｅｃｔ
ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ａｎｄ ｎｏｎｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｒｏｏｔｓ ｏｆ ｙｅｌｌｏｗ ｂｉｒｃｈ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ
[Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ４０: ３７７—３８２
Ｌｉｎｄｅｒｍａｎ ＲＧꎬ １９８８. Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ:
ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｅｆｆｅｃｔ [Ｊ] . Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙꎬ ７８: ３６６—３７１
Ｌｉ ＣＹꎬ Ｍａｓｓｉｃｏｔｔｅꎬ ＨＢꎬ Ｍｏｏｒｅ ＬＶＨꎬ １９９２. Ｎｉｔｒｏｇｅｎ￣ｆｉｘｉｎｇ Ｂａｃｉｌｌｕｓ
ｓｐ. ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｄｏｕｇｌａｓ￣ｆｉｒ ｔｕｂｅｒｃｕｌａｔｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ [ Ｊ ] .
Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｓｏｉｌꎬ １４０: ３５—４０
Ｍａｌａｊｃｚｕｋ Ｎꎬ ＭｃＣｏｍｂ ＡＪꎬ １９７９. Ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｆｌｏｒａ ｏｆ ｕｎｓｕｂｅｒｉｚｅｄ ｒｏｏｔｓ
ｏｆ Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ ｍａｒｇｉｎａｔａ Ｄｏｎｎ ｅｘ Ｓｍ. ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｇｒｏｗｎ ｉｎ ｓｏｉｌ ｓｕｐ￣
ｐｒｅｓｓｉｖｅ ａｎｄ ｃｏｎｄｕｃｉｖｅ ｔｏ Ｐｈｙｔｏｐｈｔｈｏｒａ ｃｉｎｎａｍｏｍｉ Ｒａｎｄｓ. Ｉ.
Ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ Ａｃｔｉｎｏｍｙｃｅｔｅｓ ａｎｄ Ｆｕｎｇｉ [ Ｊ] . Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ２７: ２３５—２５４
Ｍａｍｏｕｎ Ｍꎬ Ｐｏｉｔｏｕ Ｎꎬ Ｏｌｉｖｉｅｒ ＪＭꎬ １９８６. Ｅｔｕｄｅ ｄｅｓ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｅｎｔｒｅ
Ｔｕｂｅｒ ｍｅｌａｎｏｓｐｏｒｕｍ Ｖｉｔｔ. Ｅｔ ｓｏｎ ｅｎｖｉｒｏｎｎｅｍｅｎｔ ｂｉｏｔｉｑｕｅ [Ａ] / /
Ｇｉａｎｉｎａｚｚｉ ＰＶꎬ Ｇｉａｎｉｎａｚｚｉ Ｓ ｅｄｓ.ꎬ Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ: Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ
Ｇｅｎｅｔｉｃｓ [Ｍ]. Ｐａｒｉｓ: ＩＮＲＡꎬ ７６１—７６５
Ｍｅｌｌｏ Ａꎬ Ｍｉｏｚｚｉ Ｌꎬ Ｖｉｚｚｉｎｉ Ａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｎｄ ｆｕｎｇａｌ ｃｏｍ￣
ｍｕｎｉｔｉｅｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｍａｇｎａｔｕｍ￣ ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ ｎｉｃｈｅｓ
[Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓꎬ １４４: ３２３—３３２
Ｍｏｌｉｎａ Ｒꎬ Ｍａｓｓｉｃｏｔｔｅ Ｈꎬ Ｔｒａｐｐｅ ＪＭꎬ １９９２. Ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ ｐｈｅｎｏｍｅｎａ ｉｎ
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｓｙｍｂｉｏｓｉｓ: ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ￣ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｏｎｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ａｎｄ
ｐｒａｃｔｉｃａｌ ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ [Ａ] / / Ａｌｌｅｎ Ｍ ｅｄｓ.ꎬ Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ Ｆｕｎｃｔｉｏ￣
ｎｉｎｇ: Ａｎ Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ Ｐｌａｎｔ￣Ｆｕｎｇａｌ Ｐｒｏｃｅｓｓ [Ｍ]. ＵＫ: Ｃｈａｐｍａｎ
ａｎｄ Ｈａｌｌ Ｌｏｎｄｏｎꎬ ３５７—４２３
Ｏｓｗａｌｄ ＥＴꎬ Ｆｅｒｃｈａｕ ＨＡꎬ １９６８. Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｏｎｉｆｅｒｏｕｓ
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｓｏｉｌꎬ ２８: １８７—１９２
Ｐｅｄｅｒｓｅｎ ＥＡꎬ Ｒｅｄｄｙ ＭＳꎬ Ｃｈａｋｒａｖａｒｔｙ Ｐꎬ １９９９. Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｏｎ ｄａｍｐｉｎｇ￣ｏｆｆꎬ ｒｏｏｔ ｒｏｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬ ａｎｄ ｅｃｔｏ￣
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｃｏｌｏｎｉａｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｏｄｇｅｐｏｌｅ ｐｉｎｅ ａｎｄ ｗｈｉｔｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ
[Ｊ] . Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ Ｆｏｒ Ｐｌａｎｔ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙꎬ ２９: １２３—１３４
Ｐｏｏｌｅ ＥＪꎬ Ｂｅｎｄｉｎｇ ＧＤꎬ Ｗｈｉｐｐｓ ＪＭ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１. Ｂａｃｔｅｒｉａ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ
ｗｉｔｈ Ｐｉｎｕｓ ｓｙｌｖｅｓｔｒｉｓ￣Ｌａｃｔａｒｉｕｓ ｒｕｆｕｓ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ
ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ ｖｉｔｒｏ [ Ｊ] . Ｎｅｗ Ｐｈｙｔｏｌｏｇｉｓｔꎬ
１５１: ７４３—７５１
Ｐｒｏｂａｎｚａ Ａꎬ Ｌｕｃａｓ ＪＡꎬ Ａｃｅｒｏ Ｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９６. Ｔｈｅ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｏｆ ｎａｔｉｖｅ
ｒｈｉｚｏｂａｃｔｅｒｉａ ｏｎ Ｅｕｒｏｐｅａｎ ａｌｄｅｒ (Ａｌｎｕｓ ｇｌｕｔｉｎｏｓａ (Ｌ.) Ｇａｅｒｔｎ.)
ｇｒｏｗｔｈ. Ｉ. Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｇｒｏｗｔｈ ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ ａｎｄ ｇｒｏｗｔｈ ｉｎｈｉｂｉ￣
ｔｉｎｇ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎｓ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｓｏｉｌꎬ １８２: ５９—６６
Ｒａｍｂｅｌｌｉ Ａꎬ １９７３. Ｔｈｅ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ [ Ａ] / / Ｍａｒｋｓ
ＧＣꎬ Ｋｏｚｌｏｗｓｋｉ ＴＴ ｅｄｓ.ꎬ Ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ: Ｔｈｅｉｒ Ｅｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ
Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ [Ｍ]. Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ: Ａｃａｄｅｍｉｃꎬ ２２９—３４３
Ｓａｉｔｏｕ Ｎꎬ Ｎｅｉ Ｍꎬ １９８７. Ｔｈｅ ｎｅｉｇｈｂｏｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ ｍｅｔｈｏｄ: ａ ｎｅｗ ｍｅｔｈｏｄ
ｆｏｒ ｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｎｇ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅｓ [ Ｊ] . Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ
Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ４ (４): ４０６—４２５
Ｓｂｒａｎａ Ｃꎬ Ｂａｇｎｏｌｉ Ｇꎬ Ｂｅｄｉｎｉ Ｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００. Ａｄｈｅｓｉｏｎ ｔｏ ｈｙｐｈａｌ ｍａ￣
ｔｒｉｘ ａｎｄ ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｒａｉｎｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ
Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ ａｓｃｏｃａｒｐｓ [ Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ
４６: ２５９—２６８
Ｓｂｒａｎａ Ｃꎬ Ａｇｎｏｌｕｃｃｉ Ｍꎬ Ｂｅｄｉｎｉ Ｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２. Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｔｏ Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ
ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｎ Ｔ ｂｏｒｃｈｉｉ ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ [Ｊ] . ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏ￣
ｂｉｏｌｏｇｙ Ｌｅｔｔｅｒꎬ ２１１: １９５—２０１
Ｓｃｈｅｌｋｌｅ Ｍꎬ Ｐｅｔｅｒｓｏｎ ＲＬꎬ １９９６. Ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｃｏｍｍｏｎ ｒｏｏｔ ｐａｔｈｏ￣
ｇｅｎｓ ｂｙ ｈｅｌｐｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ ｉｎ ｖｉｔｒｏ [ Ｊ] .
Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａꎬ ６: ４８１—４８５
Ｓｅｎ Ｒꎬ ２０００. Ｂｕｄｇｅｔｉｎｇ ｆｏｒ ｔｈｅ ｗｏｏｄ￣ｗｉｄｅ ｗｅｂ [ Ｊ] . Ｎｅｗ Ｐｈｙｔｏｌｏ￣
ｇｉｓｔꎬ １４５: １６１—１６５
Ｓｐａｎｏ ＳＤꎬ Ｊｕｒｇｅｎｓｅｎ ＭＦꎬ Ｌａｒｓｅｎ ＭＪ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８２. Ｎｉｔｒｏｇｅｎ￣ｆｉｘｉｎｇ
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０７８ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷