全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 21 期 2015 年 11 月

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五味子内生拮抗菌 JYg07 的定殖研究
金 岩 1, 2，高 洁 1*
1. 吉林农业大学农学院，吉林 长春 130118
2. 北华大学林学院，吉林 吉林 132013
摘 要：目的 检测内生拮抗菌 JYg07 在五味子 Schisandra chinensis 植株内的定殖情况。方法 利用抗生素标记法获得
JYg07 菌株的抗链霉素和利福平的双抗突变体菌株，采用灌根、喷雾、注射和刺伤叶片等方法接种，测定 JYg07 菌株在
五味子植株内的定殖情况。结果 JYg07 菌株可以通过自然孔口和伤口进入五味子体内，并能够在土壤中长期存活；菌液
浓度主要影响定殖高峰到来的时间；4 种接种方式均可以使 JYg07 菌株在五味子体内稳定的定殖并传导，并且在根中的定殖
能力要高于茎和叶。高浓度接种培养液、灌根接种的方式可以保证 JYg07 菌株在五味子植株中达到最佳定殖状态。结论
JYg07 菌株可以在五味子体内稳定定殖并传导，能够作为新的生防菌资源开发利用。
关键词：五味子；内生拮抗菌；抗生素标记；JYg07 菌株；定殖
中图分类号：R282.15 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2015)21 - 3242 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2015.21.021
Study on colonization of endophytic antagonistic strain JYg07 of Schisandra chinensis
JIN Yan1, 2, GAO Jie1
1. College of Agronomy, Jilin Agricultural University, Changchun 130118, China
2. Colleg of Forestry, Beihua University, Jilin 132013, China
Abstract: Objective The colonization of endophytic antagonistic bacteria in different parts of Schisandra chinensis was tested in the
meantime. Methods Using antibiotic notation method, mutant strains of JYg07 resistant to streptomycin and rifampin at the same
time were obtained. To test the colonization the labeled strains of JYg07 with different vaccination methods of root irrigation, spray,
injection, and stabbing leaves. Results Through the natural orifice and the wound, the strain JYg07 could enter the plant of S.
chinensis and long live in soil. Bacterial liquid concentration influenced the time of colonization peak. Using four vaccination methods,
the labeled strains of JYg07 could colonize and engraft rapidly in S. chinensis, and the colonization ability in the roots was higher than
that in the stems and leaves. High concentration of nutrient solution method and root irrigation method could make JYg07 in the best
colonization state in S. chinensis. Conclusion Strain JYg07 could colonize and engraft rapidly in S. chinensis, which could be
developedt and utilized as new resources of biocontrol bacteria.
Key words: Schisandra chinensis (Turcz.) Baill; endophytic antagonistic bacteria; antibiotic-resistance tag; strain JYg07; colonization

植物内生细菌与表生细菌相比，由于其定殖在
植物内部，不会受到外界不良环境的干扰，处于更
有利的生态环境中[1]。有益的内生细菌能够促进植
物的生长、提高植物抵抗病虫害能力[2]。内生细菌
与宿主植物共同进化，形成了互惠互利的相互关系。
研究二者关系的核心问题在于揭示出内生细菌对植
物体侵染定殖的规律。
本课题组已从健康五味子 Schisandra chinensis
(Turcz.) Baill 中分离出大量内生细菌，通过对植物
病原真菌的抑菌作用及室内防病实验，筛选出具有
拮抗活性的内生细菌[3]，JYg07 是其中一株拮抗活
性较强的菌株。本研究主要目的在于明确 JYg07 对

收稿日期：2015-06-15
基金项目：吉林省世行办质量安全项目（2011-Z24）
作者简介：金 岩（1976—），女，讲师，在读博士，研究方向为植物病害综合治理。
Tel: 18604498257 Fax: (0432)64656157 E-mail: wuyanhua100@163.com
*通信作者 高 洁（1964—），女，博士，教授，主要从事农作物病害鉴定诊断、综合治理技术及植物抗性基因工程研究工作。
Tel: 13844102189 E-mail: jiegao115@126.com
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五味子的侵染方式及其在五味子植物体内定殖的规
律，为阐明内生细菌与五味子植株的相互作用机制，
为今后有益内生菌的推广应用提供有效的理论依据
及数据参考，从而推动高效生防菌剂的开发与应用。
1 材料
1.1 供试植物
五味子植株由吉林农业科技学院左家药植园提
供，经吉林农业大学高洁教授鉴定为木兰科植物五
味子 Schisandra chinensis (Turcz.) Baill。
1.2 供试菌种
内生细菌 Bacillus thuringiensis（JYg07）由北
华大学林木病理实验室分离得到。五味子茎基腐病
菌 Fusarium oxysporum Schlecht 由吉林农业科技学
院范文忠教授提供。
1.3 抗生素
以 95%乙醇配制成质量浓度为 10 mg/mL 的利
福平（批号 H22022062，吉林隆泰制药集团有限责
任公司）母液。以蒸馏水配制成质量浓度为 100
mg/mL 的链霉素母液。
1.4 供试培养基
培养内生细菌采用牛肉膏蛋白胨培养基（NA），
培养病原菌用马铃薯蔗糖培养基（PDA），液体培
养采用为不加入琼脂的 NA 培养基（NB）。
上述培养基均在 0.1 MPa、121 ℃的条件下灭
菌 30 min，检查无菌后使用。
2 方法
2.1 内生拮抗菌 JYg07 的抗药性突变体筛选
将 JYg07 菌株在 NA 平板上进行活化，待长出
菌落后，挑取菌落接种于 NB 培养液中，在 28 ℃、
180 r/min 的振荡培养箱中培养至对数生长期，加入
链霉素母液，使链霉素在培养液中的质量浓度为 10
μg/mL，继续在同样的条件下振荡培养，过夜后，
取适量菌液涂布在含有相同浓度链霉素的平板上，
如有菌落长出，则从培养液中取出 1 mL 转移至含
有 20 μg/mL链霉素的NB培养液中，继续振荡培养，
等到培养液出现浑浊，再取 1 mL 培养液转入含有
40 μg/mL 链霉素的 NB 培养液中，继续重复上述实
验过程，直至链霉素浓度达到 100 μg/mL，即获得
了抗 100 μg/mL 链霉素的变异菌株。
将具有链霉素抗性的菌株继续进行菌株对利福
平抗药性的筛选。实验方法同上，逐步筛选，利福
平的最终质量浓度 300 μg/mL，最终筛选出抗 100
μg/mL 链霉素、300 μg/mL 利福平的 JYg07 双抗突
变体菌株（标记菌株），命名为 JYg07SR。
2.2 JYg07SR的稳定性检测
为保证 JYg07SR 的抗药性稳定，将 JYg07SR 在
含有相应浓度 2 种抗生素的 NA 培养基平板上划线
培养，待长出菌落后，挑选与原来菌株相同的菌落
纯化。纯化后的菌株置于 4 ℃下保存 7 d 后，接种
在不含抗生素的 NA 培养基平板上培养，至菌落长
出，再将次菌落接种到含 2 种相应质量浓度抗生素
的 NA 平板上培养，观察菌株的生长情况，重复 3
次，若菌株能稳定生长，就证明其抗药性稳定。将
生长的菌株划线纯化后保存。
2.3 JYg07SR的抑菌作用测定
将五味子茎基腐病菌 F. oxysporum 斜面保存菌
种转移至 PDA 培养基平板中，28 ℃培养 72 h 后，
在与中央等距离的 3 个点上分别接种 JYg07 自然菌
株、标记菌株、回收菌株（标记菌株入侵植物体后，
回收得到），重复 3 次实验，以不接种待测内生细菌
为对照，观察抑菌性。
2.4 抗生素标记菌株 JYg07SR 在五味子体内的定
殖和消长动态
2.4.1 标记菌株 JYg07SR 菌悬液的制备 将保存
于 4 ℃的双抗药性菌株 JYg07SR 接种到含链霉素
（100 μg/mL）和利福平（300 μg/mL）的 NB 培养
液中，在 28 ℃、180 r/min 条件下振荡培养 24 h，
将培养液离心（3 000 r/min，10 min），弃去上清液
保留沉淀，加入无菌水，将沉淀稀释，然后通过平
板菌落计数法测定菌液的浓度（达到 1×108
cfu/mL），备用。
2.4.2 内生拮抗菌 JYg07 SR的入侵途径 细菌进入
植物的方式主要是通过自然孔口和伤口，为测定内
生细菌进入五味子植株的途径，采用灌根接种法、
喷雾接种法、注射接种法和刺伤叶片接种法 4 种方
法接种标记菌株 JYg07SR，每处理设 3 次重复，每
重复 10 钵，每钵 1 株五味子，以无菌水为对照。
（1）灌根接种法：取 10 mL 浓度为 1×108
cfu/mL 的 JYg07SR培养液浇灌在五味子根部。
（2）喷雾接种法：将浓度为 1×108 cfu/mL 的
JYg07SR 培养液加入喷雾器中，对五味子叶面进行
喷雾直至叶面滴水，然后保湿 24 h。
（3）注射接种法：用无菌注射器吸取浓度为
1×108 cfu/mL 的 JYg07SR培养液，然后注射到五味
子茎部，0.5 mL/株。
（4）刺伤叶片接种法：用灭菌的接种针将五味
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子叶片刺伤，以无菌脱脂蘸取浓度为 1×108 cfu/mL
的 JYg07SR 培养液反复多次涂抹叶片，然后套袋保
湿 24 h。
2.4.3 双抗标记菌株 JYg07SR 的分离回收 在接种
15 d 时进行取样（供试五味子的根、茎、叶），将不
同接种方式取得的五味子根、茎、叶经表面消毒后
加入无菌水中，经充分研磨后静置 10 min，取上清
液涂布于含有链霉素（100 μg/mL）和利福平（300
μg/mL）的 NA 平板上，以涂布不加抗生素的 NA
平板为对照，28 ℃培养 3～5 d，长出菌落后计数，
每个处理重复 3 次取平均值，并进行菌落形态、染
色观察及抑菌性测定，以确保回收的菌株就是接种
的双抗标记菌株。
2.4.4 标记菌株在根际土壤中的消长动态观察 在
灌根接种法，分别于 1、3、6、9、12、15、20、25、
30 d 对根际土壤取样，按“2.4.3”项中方法回收标记
菌株 JYg07SR，测定菌株在根际土壤中的定殖情况。
2.4.5 以不同浓度标记菌株培养液接种的定殖动态
观察 将标记菌株 JYg07SR菌悬液分别稀释 10、100、
1 000 倍，以 20 mL 原液、稀释液分别浇灌在五味子
根部，每处理重复 3 次，每重复 10 钵，每 30 天对供
试五味子取样，回收标记菌株 JYg07SR，测定不同菌
液浓度下 JYg07SR在五味子植株内的定殖动态情况。
2.4.6 不同接种方法下标记菌株的定殖动态观察
根据“2.4.3”项方法，在接种 1、3、6、9、12、15、
20、25、30 d 时对五味子根、茎和叶取样，测定出
不同接种方法下 JYg07SR 在五味子植株内的定殖动
态情况。
3 结果与分析
3.1 标记菌株的稳定性
通过对获得的双抗突变菌株 JYg07SR 培养性
状、革兰氏染色，标记菌株与自然菌株一致（图
1）。JYg07SR 在不含抗生素的 NA 培养基上多次传
代后，仍可以在含有链霉素（100 μg/mL）和利福
平（300 μg/mL）的 NA 培养基上正常生长，这样
就可以证实筛选出来的双抗标记菌株 JYg07SR 是
可以稳定遗传和生长的，可用于其在五味子体内
定殖动态的检测。
3.2 标记菌株及回收菌株的抑菌作用
整个回收标记菌的过程中，在对照处理的平板
上均未分离到任何菌株，且回收的菌株在形态上与
原始自然菌株一致。同时自然菌株、标记菌株和回
收菌株的平板抑菌实验表明（图 2），标记菌株、回


图1 在显微镜下观察到的JYg07自然菌株 (A) 和标记菌株 (B)
Fig. 1 Electron micrographs of natural (A) and marked
(B) strains of JYg07

A-自然菌株 B-标记菌株 C-回收菌株
A-natural strain B-marked strain C-redemptory strain
图 2 JYg07 自然、标记与回收菌株的菌落形态和抑菌作用
Fig. 2 Colonial morphology and inhibitory effect of natural,
marked, and redemptory strains of JYg07
收菌株具有与原始自然菌株对五味子茎基腐病菌F.
oxysporum 相似的抑菌活性，差异不明显。这样进
一步证明利用抗生素标记的菌株进行定殖研究，结
果可靠。
3.3 标记菌株 JYg07SR的入侵途径及分布检测结果
利用 4 种接种方法将标记菌株接种到五味子体
内，15 d 时，从接种的五味子根、茎、叶中均回收
到标记菌株，而对照（未接种标记菌株的五味子）
则没有标记菌株。因此可以判断出菌株 JYg07SR 可
以通过自然孔口和伤口 2 种途径入侵到五味子体
内，并且可以从入侵部位向其他组织传导（表 1）。
A







B
C
B
A
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表 1 标记菌在不同入侵途径下的回收情况
Table 1 Recovery of marked strains in different invasion
pathways
JYg07SR(×103 cfu·g−1) 接种方式
根 茎 叶
灌根 7.43 a 5.32 b 1.34 c
喷雾 1.43 d 4.54 c 5.32 b
注射 5.56 b 10.27 a 1.83 c
刺伤叶片 2.38 c 4.63 c 9.67 a
对照 — — —
同列数据后小写字母表示 0.05 水平上显著差异（下同）
Means with different small letters in the same column are significantly
different at 0.05 level (same as below)
不同的接种方式在根、茎、叶中回收的菌量有
差异。灌根接种后，根中回收的菌量最多 7.43×103
cfu/g；用喷雾接种法，叶片中回收的菌量最多，
5.32×103 cfu/g；用注射接种法，茎中回收的菌量
最多，10.27×103 cfu/g；而刺伤叶片接种法，叶
片中回收的菌量最多，9.67×103 cfu/g。由此可见，
JYg07SR 在五味子植株内的分布受接种方式的影
响较大。
3.4 标记菌株 JYg07SR在根际土壤中的定殖
灌根接种实验中，将标记菌 JYg07SR 培养液浇
灌于五味子植株根部，按设定时间分离土壤中标记
菌，结果表明，在根际土壤中可以分离到标记菌，
而对照土壤中未分离到，说明 JYg07SR 可以在土壤
中长时间存活。
JYg07SR 菌株均能够较好地在五味子根际土壤
中定殖，随着接种时间的延长，菌量有一定的波动，
呈平缓减少趋势。接种 l d 后，在根际土壤中的初
始菌量较大，为 3.8×107 cfu/g。由图 3 可知，接种
3 d 后，菌量开始出现大幅度下降，由 107 量级下降

不同字母表示差异显著 P＜0.05
Different small letters are significantly different at 0.05 level P < 0.05
图 3 灌根接种 JYg07SR在五味子根际土壤中的定殖
Fig. 3 Colonization of irrigation and inoculation strains
JYg07SR in rhizosphere soil of S. chinensis
到了 105 个量级，3～12 d 菌量趋于平稳，随后菌量
逐渐减少，到 30 d，仍有一定量的标记菌存在。说
明 JYg07SR菌株能够在土壤中长期存活。
3.5 不同浓度 JYg07SR菌株在五味子体内的定殖
利用灌根接种法测试了不同浓度菌液下，
JYg07SR 菌株在五味子根、茎、叶中的定殖动态变
化，结果表明（图 4），菌液稀释倍数对菌株定殖
有影响，菌液稀释倍数小，在各组织不同时间里
回收到的菌量也相对较多，差异显著。接种 12 d
后 4 个稀释倍数回收的菌量均高于第 1 天，说明 4
个稀释倍数的菌液都能在五味子植株内定殖并传
导。JYg07SR菌株原液和稀释 10 倍菌液接种第 9 天
在根中定殖数量达到最大，稀释 100、1000 倍的菌
液接种第 12 天定殖数量达到最大，然后逐渐下降。
因此，菌液浓度对标记菌定殖的影响主要是定
殖高峰出现时间的影响，菌液浓度高，定殖高峰会
提前，菌液浓度低，则会推迟定殖高峰的到来。此
次实验结果根中定殖数量远远大于茎、叶中的定殖

图 4 不同接种稀释倍数下标记菌 JYg07SR 在五味子根 (A)、茎 (B) 和叶 (C) 的定殖动态
Fig. 4 Colonization dynamics of marked strains cultured by different inoculation dilution multiple in plants of S. chinensis
7.0
6.0
5.0
4.0
3.0
2.0
1.0
0
菌
量
/(×
10
5 c
fu
·g
−1
)
3 6 9 12 15 20 25 30
接种时间/d
a
a a
b
c
cd d
e
菌
量
/(×
10
4 c
fu
·g
−1
)
1 3 6 9 12 15 20 25 30
7.0
6.0
5.0
4.0
3.0
2.0
1.0
0
原液 稀释 10 倍 稀释 100 倍 稀释 1 000 倍
1.4
1.2
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0
1 3 6 9 12 15 20 25 30
菌
量
/(×
10
3 c
fu
·g
−1
)
菌
量
/(×
10
3 c
fu
·g
−1
)
原液 稀释 100 倍稀释 10 倍 原液
2.0
1.6
1.2
0.8
0.4
0
接种时间/d
稀释 1 000 倍原液 稀释10倍 稀释100倍 稀释 1 000 倍
1 3 6 9 12 15 20 25 30
A C B
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数量，可能与接种方式有关，灌根接种会使标记菌
最先侵入根部，然后向上传导。
3.6 不同接种条件下JYg07SR菌株在五味子体内的定殖
3.6.1 灌根接种 通过灌根接种，在五味子根、
茎、叶组织中均可以回收到 JYg07SR 菌株，并且
根中回收到的菌株数量高于茎、叶中的菌株数量
（图 5）。在接种后第 9 天，根内菌量为 1.224×104
cfu/g，达到最高点；茎内菌量在第 12 天达到最高
点 6.12×103 cfu/g，叶中菌量在第 15 天最多，为
1.34×103 cfu/g。30 d 时，根中的菌量远高于茎和叶
中的菌量。

图 5 灌根接种法 JYg07SR在五味子内的定殖动态
Fig. 5 Colonization dynamics of strains JYg07SR cultured by
irrigation and inoculation method in plants of S. chinensis
3.6.2 喷雾接种 将 JYg07SR 菌株喷雾接种到五味
子植株上，1 d 后均未检测到定殖菌株，从第 3 天开
始最先在叶片中回收到标记菌，然后是茎，最后是
根，说明标记菌能够从叶片入侵，向其他组织扩展
（图 6）。
JYg07SR菌株接种第 3 天在叶中回收到，第 6 天在
茎中回收到，第 12 天在根中回收到，并且出现定殖高
峰的时间上也同样，叶出现高峰的时间（15 d）要比根


根 茎 叶


图 6 喷雾接种法 JYg07SR在五味子内的定殖动态
Fig. 6 Colonization dynamics of strains JYg07SR by
spraying leaves in plants of S. chinensis
（25 d）和茎（20 d）要早，根和叶中菌量高峰值相近
分别为 5.29×103和 5.32×103 cfu/g。到第 30 天时，根
中的菌量要大于茎和叶中的菌量。
3.6.3 注射接种 将 JYg07SR 菌株注射到五味子茎
中，初期茎内菌量远远高于其他接种方式，随着时
间的延迟，菌量逐渐减少，根和叶中的菌量缓慢增
加，比较平缓，以茎中注射菌液，菌体可以定殖在
五味子体内，并可以由茎向根、叶扩展（图 7）。接
种后第 1 天茎中菌量较高，为 2.048×104 cfu/g，然
后逐步下降，到第 12 天又有所增长，随后平稳降低。
在根中，第 6 天开始出现标记菌株，在 12 d 和 20 d
有 2 个高峰，分别为 7.62×103 cfu/g 和 8.42×103
cfu/g，到 30 d 时，根与茎中的菌量接近，高于叶中
的菌量。

图 7 注射接种法 JYg07SR在五味子内的定殖动态
Fig. 7 Colonization dynamics of strains JYg07SR cultured
by injection inoculation in plants of S. chinensis
3.6.4 刺伤叶片接种 刺伤叶片接种后，根、茎、
叶中均可回收到 JYg07SR 菌株，并且叶中的菌量显
著高于根和茎中的菌量，并呈递减趋势，接种 1 d
后菌量最多，为 1.375×104 cfu/g（图 8）。根、茎中
的菌量呈由低到高再降低的趋势，接种第 12 天后，
根内才分离到 JYg07SR 菌株，菌量始终处于较低水
平，第 20 天达到最高峰菌量为 4.16×103 cfu/g。

根 茎 叶


图 8 刺伤叶片接种法 JYg07SR在五味子内的定殖动态
Fig. 8 Colonization dynamics of strains JYg07SR cultured
by via pin-puncturing leaves in plants of S. chinensis
1 3 6 9 12 15 20 25 30
1.4
1.2
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0
菌
量
/(×
10
4 c
fu
·g
−1
)
接种时间/d
根 茎 叶 2.5
2.0
1.5
1.0
0.5
0
菌
量
/(×
10
4 c
fu
·g
−1
)
1 3 6 9 12 15 20 25 30
接种时间/d
6.0
5.0
4.0
3.0
2.0
1.0
0
菌
量
/(×
10
3 c
fu
·g
−1
)
1 3 6 9 12 15 20 25 30
接种时间/d

1.6
1.4
1.2
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0
菌
量
/(×
10
4 c
fu
·g
−1
)
1 3 6 9 12 15 20 25 30
接种时间/d
根
根 茎 叶
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接种第 6 天茎中回收到 JYg07SR菌株，在茎中菌量最
高峰在第 15 天，为 4.63×103 cfu/g。到 30 d 时，根与
茎中的菌量接近，略低于叶中的菌量。
综合 4 种接种方式所得结果，4 种方式的菌株
JYg07SR 都可以进入五味子体内并定殖，且定殖的
量没有数量级上的差别，因此采用操作简便、对植
物没有伤害的灌根接种法是最佳的选择，同时可以
获得较高的定殖菌量。
4 讨论
多数学者认为内生细菌是通过自然孔口（气孔、
水孔、皮孔等）和伤口（自身形成或外力造成）等
途径进入植物体[4]。本实验采用灌根、喷雾、注射、
刺伤 4 种方式接种抗生素标记菌株 JYg07SR，每种
接种方式均可以在五味子体内回收到标记菌株，说
明分离到的内生拮抗细菌可以通过自然孔口和伤口
入侵五味子体内。王瑞芹[5]在研究油茶内生细菌时，
也证实分离到的内生拮抗细菌Y13通过自然孔口和
伤口入侵到油茶体内。
内生拮抗细菌能否在植物体内稳定定殖，是影
响其发挥生防作用的关键问题。黄勤知等[6]利用灌
根和涂叶法证实了红树内生细菌 AiL3 能够在大豆
体内的稳定定殖。胡伟等[7]从大豆中分离出一株能
够防治香蕉枯萎病的生防菌，并利用灌根法证实抗
生素标记菌株 AF11Rif 能定殖在香蕉的根和茎内。
本实验分别采用不同接种浓度和不同接种方法对
JYg07SR 标记菌株在五味子体内定殖情况进行长达
30 d 的监测，结果显示，不论哪种方式，JYg07SR
都可以在五味子体内稳定定殖，在根内的定殖能力
大于茎和叶。接种方式直接影响定殖高峰出现的时
间，采用灌根接种，定殖高峰在第 6～12 天，喷雾
接种在第 15～25 天，注射和刺伤叶片法接种，叶片
的定殖高峰在第 1 天，根和茎则要延迟到第 15～25
天，说明采用造成伤口的接种方式定殖菌量更高一
些。但在实际生产中，伤口会增加病原菌的侵入途
径，因此采用灌根的接种更为可靠，并且获得菌量
最稳定持久，接种的菌液在土壤中还能长期存活，保
证了根中内生菌的数量。接种不同稀释倍数的菌液，
均能在五味子不同的部位分离到标记菌，定殖数量也
能保持在较高水平上，说明菌液浓度对定殖的影响不
大。菌液稀释倍数越小，在各组织中回收到的菌量也
相对较多，达到定殖高峰的时间也较短。因此，在实
际生产中，通过灌根的方式接种较高浓度的菌液是获
得生防菌在五味子体内稳定定殖的最佳方式。
通过不同接种方法，无论是在五味子植株的哪
一个部位接种，在接种后，都会在其他的部位分离
到标记菌株，说明内生细菌进入植物体后，不是静
止不动的，而是要向植物体内的不同组织转移。杨
海莲等[8]证明了水稻内生阴沟肠杆菌能在宿主不同
组织中广泛定殖，不仅能在根细胞间定殖，也能在
根细胞内定殖。马同锁等[9]在辣椒叶片上接种内生
细菌 TS-3 后发现，TS-3 能够从接种的叶片向其他
部位传导。
抗药性标记法存在一定的局限性，不能明确拮
抗菌株进入宿主的动态过程、侵入的主要位点及传
导途径。因此，还需要进一步利用基因标记并结合
聚焦显微镜来更直观地揭示出内生拮抗细菌在五味
子体内的定殖规律，这还有待于进一步研究。
本研究阐明了内生拮抗菌 JYg07 在五味子体内
的定殖规律，并确定了其内生性，实验结果表明了
内生拮抗菌 JYg07 能够在五味子的体内转移、传导，
为开展利用内生拮抗菌株 JYg07 对五味子病害的生
物防治提供了理论依据。
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