全 文 ：’ 麻黄属植物染色体制片技术及核型分析研究
武季玲１，李胜１，姜寒玉１，高育红２，牛俊义２
（１．甘肃农业大学 生命科学技术学院，甘肃 兰州 ７３００７０；
２．甘肃农业大学 农学院，甘肃 兰州 ７３００７０）
［摘要］ 目的：对４种麻黄属植物的核型进行分析研究，为麻黄种质资源的鉴定和遗传多样性研究提供细胞学依据。方
法：以萌发种子根尖为材料，采用染色体制片技术，分析４种麻黄属植物的核型。结果：上午１０：２０－１０：４０为最佳取样时间，
且采用０００２ｍｏｌ·Ｌ－１８羟基喹啉预处理时间草麻黄为４ｈ，中麻黄５ｈ，木贼麻黄４５ｈ，膜果麻３５ｈ。膜果麻黄、木贼麻黄
为二倍体，染色体数目为２ｎ＝２ｘ＝１４，核型公式分别为２ｎ＝２ｘ＝１４＝２Ｍ＋８ｍ＋４ｓｍ，２ｎ＝２ｘ＝１４＝１０ｍ＋４ｓｔ；草麻黄和中麻黄
的染色体数目为２ｎ＝４ｘ＝２８，属四倍体，核型公式分别为２ｎ＝４ｘ＝２８＝２０ｍ（２ＳＡＴ）＋８ｓｔ，２ｎ＝４ｘ＝２８＝２０ｍ（ＳＡＴ）＋６ｓｔ＋
２ｓｍ；结论：４种麻黄的核型均为“２Ａ”型，属较对称核型。
［关键词］ 麻黄；有丝分裂；染色体；核型
［收稿日期］ ２００９０２２６
［基金项目］ 甘肃省科技厅自然基金项目（３ＺＳ０５１Ａ２５０６３）
［通信作者］ 牛俊义，博士，教授，博士生导师，主要从事作物栽培
及生态生理方面研究
［作者简介］ 武季玲，博士，副教授，主要从事植物生理学及组织培
养方面的研究，Ｔｅｌ：１３９９３１１０５５４，Ｅｍａｉｌ：ｗｕｊｌ＠ｇｓａｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
麻黄麻黄科 Ｅｐｈｅｄｒａｃｅａｅ麻黄属 Ｅｐｈｅｄｒａ植物，
为多年生草本状小灌木植物，我国现存１５种２变种
和１变型。麻黄是治疗风寒感冒、全身疼痛、咳嗽和
气喘的良药，也是提取麻黄素的唯一原料，《中国药
典》收载作为药用的麻黄植物有草麻黄 Ｅ．ｓｉｎｉｃａ
Ｓｔａｐｆ、中麻黄Ｅ．ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａＳｃｈｒｅｎｋｅｘＭｅｙ和木贼麻
黄Ｅ．ｅｑｕｉｓｅｔｉｎａＢｇｅ。麻黄中所含麻黄碱、挥发油、黄
酮类和鞣质及麻黄多糖等化学成分，具有平喘、升压、
收缩血管、利尿、降温的作用；除药用价值外，麻黄还
具有重要的生态价值，麻黄多生长在沙丘、黄土丘陵，
对防治水土流失，保护草场、改善沙地生态环境等发
挥着巨大作用［１］。目前，麻黄主要分布于我国的新
疆、内蒙古、青海、甘肃、宁夏等地，其中以新疆和内蒙
古的蕴藏量最大，主要以药典品种为主，还有膜果麻
黄Ｅ．ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉＳｔａｐｆ，蓝麻黄Ｅ．ｇｌａｕｃａＲｇｌ等，是兼
具经济效益和生态效益的重要种质资源。
麻黄属植物种类虽然不多，但其种质资源广泛
分布于北温带及南美的干旱和荒漠地区，取材非常
困难，并且可利用的真正有价值的分类性状不多，因
此系统地对该属植物进行研究的资料很少，探讨麻
黄不同基因型间的细胞学异同，了解它们之间的亲
缘关系，为育种和引种提供科学的染色体证据是有
实际意义的。有关麻黄细胞学方面的研究国内外报
道较少，麻黄属染色体数目前人已有过一些报
道［２５］，孔红等［６８］研究报道了３种麻黄属植物核型。
本研究对草麻黄、中麻黄、膜果麻黄和木贼麻黄４种
主要麻黄属植物的核型进行比较研究，其中中麻黄
和木贼麻黄核型分析结果为首次报道，以期为麻黄
种质资源的鉴定、起源、演化、良种培育等提供必要
的细胞学资料。
１ 材料
草麻黄Ｅ．ｓｉｎｉｃａ、中麻黄 Ｅ．ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａ、膜果麻
黄Ｅ．ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉ和木贼麻黄Ｅ．ｅｑｕｉｓｅｔｉｎａ种子由中
国科学院新疆吐鲁番沙漠植物园提供。
２ 方法
２．１ 不同取材时间有丝分裂前中期分裂相数比较
从上午９：３０－１１：００，每隔１０～２０ｍｉｎ取麻黄
种子根尖按下述方法制片、镜检，对单位视野面积内
处于分裂中期的细胞进行计数，以此参数为依据，确
定麻黄根尖中期分裂相的高峰期［９］及适宜的取材
时间。
２．２ 制片
２．２．１ 材料培养 选取饱满的麻黄种子，清水清
洗、０２％ ＫＭｎＯ４浸泡２０～３０ｍｉｎ，置于２５℃恒温培
养箱中，待幼根长到１０～１５ｃｍ时，于上午９：３０－
１１：００取幼根离体根尖。
·５２７２·
第３４卷第２１期
２００９年１１月
Ｖｏｌ．３４，Ｉｓｓｕｅ ２１
Ｎｏｖｅｍｂｅｒ，２００９
２．２．２ 预处理与固定 离体根尖用０００２ｍｏｌ·Ｌ－１
８羟基喹啉在避光条件下处理３～５ｈ，再以蒸馏水漂
洗２～３次，卡诺氏固定液（无水乙醇冰醋酸３∶１）固
定１２～２４ｈ，４℃下保存备用。
２．２．３ 解离 取固定后的根尖材料，蒸馏水漂洗
２～３次，于６０℃恒温水浴中用１ｍｏｌ·Ｌ－１盐酸解离
１０～１５ｍｉｎ，取出，用蒸馏水漂洗２～３次，经９５％，
８５％乙醇处理，各１０～１５ｍｉｎ，最后转入７０％乙醇
中，４℃保存备用。
２．２．４ 染色与压片 用改良卡宝品红溶液染色过
夜，吸去染液，用４５％醋酸脱色、软化材料，染色体
制片采用常规压片法。
２．２．５ 镜检 选取３０个染色体清晰且分散良好的
分裂中期细胞，统计染色体数目，８５％以上的细胞具
有恒定一致的染色体数，即为该麻黄种的染色体数
目。观察并选出染色体染色适度、清晰且分散良好、
着丝点清晰的片子制成永久制作，进行显微拍照，分
别测量和计算各对染色体的长度、臂长、臂比等核型
参数。根据染色体总长度的平均值，由长至短顺序
排列，并编出序号，进行同源染色体配对。染色体核
型分析依据Ｌｅｖａｎ等［１０］的方法进行，核型的对称性
按Ｓｔｂｂｅｉｎｒ的分类标准［１１］。核型不对称系数（Ａｓ．
Ｋ，％ ）根据Ａｒａｎｏ的计算方法，计算公式为 长臂总
长／全组染色体总长×１００［１２］。
３ 结果与分析
３．１ 不同取样时间对麻黄有丝分裂中期分裂相的
影响
草麻黄、中麻黄、膜果麻黄和木贼麻黄有丝分
裂中期分裂相的高峰期分别在上午１０：３０，１０：４０，
１０：３０，１０：２０，可观察到近１４％的中期分裂相。其
他取样时间也可观察到中期分裂相的细胞，但所
占比例较小，很难从中筛选出分散较好的染色体
分裂相，因此，麻黄根尖细胞的分裂具有一定的周
期性，上午１０：２０－１０：４０为观察染色体的最佳取
样时间（图１）。
３．２ 不同预处理时间对染色体收缩程度的影响
ａ草麻黄；ｂ中麻黄；ｃ膜果麻黄；ｄ木贼麻黄。
图１ 不同取样时间４种麻黄有丝分裂中期细胞的百分比
采用０００２ｍｏｌ·Ｌ－１的８羟基喹啉处理麻黄离
体根尖３５～５ｈ效果较好，染色体分散性良好，收
缩程度适中，着丝点清晰，适宜进行核型分析。草麻
黄、中麻黄、膜果麻黄和木贼麻黄离体根尖的预处理
时间分别为４，５，３５，４５ｈ。
３．３ 核型分析
３．３．１ 草麻黄 核型公式为 ２ｎ＝４ｘ＝２８＝２０ｍ
（２ＳＡＴ）＋８ｓｔ；染色体相对长度组成为２ｎ＝１８Ｍ２＋
６Ｍ１＋４Ｓ，相对长度变化范围为５１７％～８７６％，臂
比在１０５～４００；核型类别为“２Ａ”型；核型不对称
系数为６０２１％（表１，图２）。
３．３．２ 中麻黄 核型公式为 ２ｎ＝４ｘ＝２８＝２０ｍ
（ＳＡＴ）＋６ｓｔ＋２ｓｍ；染色体相对长度组成为 ２ｎ＝
１６Ｍ２＋１０Ｍ１＋２Ｓ，相对长度变化范围为 ５１５％ ～
８９５％；臂比在 １１８～３２８；核型类别属于“２Ａ”
型；核型不对称系数为５９３７％（表１，图２）。
·６２７２·
第３４卷第２１期
２００９年１１月
Ｖｏｌ．３４，Ｉｓｓｕｅ ２１
Ｎｏｖｅｍｂｅｒ，２００９
表１ ４种麻黄属植物染色体相对长度、臂比和类型
序号
相对长度／％
（长臂＋短臂＝全长）
相对长度
系数
类型
臂比
（长／短）
类型
Ａ１ ４４９＋４２７＝８７６ １２３ Ｍ２ １０５ ｍ
Ａ２ ４３８＋３６０＝７９８ １１２ Ｍ２ １２２ ｍ
Ａ３ ４３８＋３６０＝７９８ １１２ Ｍ２ １２２ ｍ
Ａ４ ４２７＋３６０＝７８７ １１０ Ｍ２ １１９ ｍ１）
Ａ５ ４４９＋３３７＝７８６ １１０ Ｍ２ １３３ ｍ
Ａ６ ４４９＋３３７＝７８６ １１０ Ｍ２ １３３ ｍ
Ａ７ ４３８＋３３７＝７７５ １０８ Ｍ２ １３０ ｍ
Ａ８ ４２７＋３３７＝７６４ １０７ Ｍ２ １２７ ｍ
Ａ９ ３９３＋３３７＝７３０ １０２ Ｍ２ １１７ ｍ
Ａ１０ ４２７＋２８１＝７０８ ０９９ Ｍ１ １５２ ｍ
Ａ１１ ４４９＋１２４＝５７３ ０８０ Ｍ１ ３６４ ｓｔ
Ａ１２ ４４９＋１１２＝５６１ ０７９ Ｍ１ ４００ ｓｔ
Ａ１３ ４２６＋１１２＝５３８ ０７５ Ｓ ３８０ ｓｔ
Ａ１４ ３９３＋１２４＝５１７ ０７２ Ｓ ３１８ ｓｔ
Ｂ１ ４８５＋４１０＝８９５ １２５ Ｍ２ １１８ ｍ
Ｂ２ ４８８＋３６１＝８４９ １１９ Ｍ２ １３５ ｍ
Ｂ３ ４７７＋３１４＝７９１ １１２ Ｍ２ １５２ ｍ
Ｂ４ ３９２＋３８９＝７８１ １０９ Ｍ２ １０１ ｍ
Ｂ５ ３９１＋３８９＝７８０ １０９ Ｍ２ １０１ ｍ
Ｂ６ ４１５＋３６３＝７７８ １０９ Ｍ２ １１８ ｍ
Ｂ７ ３９２＋３８１＝７７３ １０８ Ｍ２ １０３ ｍ
Ｂ８ ４１３＋３４２＝７５５ １０６ Ｍ２ １２０ Ｍ１）
Ｂ９ ３８４＋３１９＝７０３ ０９８ Ｍ１ １２０ ｍ
Ｂ１０ ４１２＋２６８＝６８０ ０９５ Ｍ１ １５３ ｍ
Ｂ１１ ４５４＋１４０＝５９４ ０８３ Ｍ１ ３２４ ｓｔ
Ｂ１２ ４１３＋１４３＝５５６ ０７８ Ｍ１ ２９３ ｓｍ
Ｂ１３ ４１５＋１２７＝５４２ ０７６ Ｍ１ ３２７ ｓｔ
Ｂ１４ ４０１＋１１４＝５１５ ０７２ Ｓ ３２８ ｓｔ
Ｃ１ ９０６＋７３２＝１６３８ １１５ Ｍ２ １２４ ｍ
Ｃ２ ８０９＋７７１＝１５８０ １１１ Ｍ２ １０５ ｍ
Ｃ３ ８６７＋６９４＝１５６１ １０９ Ｍ２ １２５ ｍ
Ｃ４ ７７１＋７７１＝１５４２ １０８ Ｍ２ １００ Ｍ
Ｃ５ ７７１＋５７８＝１３４９ ０９４ Ｍ１ １３３ ｍ
Ｃ６ ８６７＋３４７＝１２１４ ０８５ Ｍ１ ２５０ ｓｍ
Ｃ７ ７７１＋３４７＝１１１８ ０７８ Ｍ１ ２２２ ｓｍ
Ｄ１ ９８６＋７７２＝１７５８ １２３ Ｍ２ １２８ ｍ
Ｄ２ ８７４＋６７０＝１５４４ １０８ Ｍ２ １３０ ｍ
Ｄ３ ９０３＋５７４＝１４７７ １０４ Ｍ２ １５７ ｍ
Ｄ４ ８６８＋５８２＝１４５０ １０２ Ｍ２ １４９ ｍ
Ｄ５ ８２４＋６２２＝１４４６ １０１ Ｍ２ １３３ ｍ
Ｄ６ ９７８＋２２７＝１２０５ ０８４ Ｍ１ ４３１ ｓｔ
Ｄ７ ９２２＋１９６＝１１１８ ０７８ Ｍ１ ４７０ ｓｔ
注：１）随体长度不计算在内；Ａ．草麻黄；Ｂ．中麻黄；Ｃ．膜果麻黄；
Ｄ．木贼麻黄。
３．３．３ 膜果麻黄 核型公式为２ｎ＝２ｘ＝１４＝２Ｍ＋
８ｍ＋４ｓｍ；染色体相对长度组成为２ｎ＝８Ｍ２＋６Ｍ１，
相对长度变异范围 １１１８％ ～１６３８％；臂比在
１００～２５０变化；核型属于“２Ａ”型；核型不对称系
数为５７６１％（表１，图２）。
３．３．４ 木贼麻黄 核型公式为 ２ｎ＝２ｘ＝１４＝
１０ｍ＋４ｓｔ；染色体相对长度组成为２ｎ＝５Ｍ２＋２Ｍ１，
相对长度变异范围为 １１１８％ ～１７５８％；臂比在
１２８～４７０变化；核型属于“２Ａ”型；核型不对称系
数为６３５６％（表１，图２）。
４ 小结与讨论
４．１ 取材及预处理时间
不同植物的细胞周期及中期分裂高峰期各不相
同，尤以不同科属植物间的差异更为显著。细胞有
丝分裂中期分裂相的多少是随时间的变化而改变
的，一般中期持续时间约１０～３０ｍｉｎ［１３］。实际操作
中，只有少数细胞处于分裂中期，为获取更多中期分
裂相，在染色体研究中取材时间是关键。通过观察，
确定草麻黄、中麻黄、膜果麻黄和木贼麻黄的中期分
裂相所处高峰期分别在１０：３０，１０：４０，１０：３０，１０：２０
左右，此时间段内细胞中期分裂相较多。
在取材适宜的条件下，制片成功与否的最关键步
骤便是材料的预处理。研究中使用０００２ｍｏｌ·Ｌ－１
８羟基喹啉对麻黄根尖进行预处理的时间分别为草
麻黄４ｈ，中麻黄为５ｈ，木贼为４５ｈ，膜果麻黄３５
ｈ。预处理后，细胞中期分裂相较多，染色体收缩适
当，分散性好，形态清晰，适用于核型分析研究。
４．２ 麻黄细胞学分析
本研究的４种麻黄属植物中，膜果麻黄、木贼麻
黄为二倍体，染色体数目为２ｎ＝２ｘ＝１４，草麻黄和
中麻黄的染色体数目为２ｎ＝４ｘ＝２８，属四倍体。４
种麻黄核型类别均为２Ａ型，属较对称核型。草麻
黄和膜果麻黄的染色体数目、基数及倍性与前人研
究结果一致，核型上有差异，这与物种的地理分布及
生境有关。染色体是基因的载体，基因决定生物的
性状，一定的性状则适应特定的环境。虽然在一定
的生境中，植物的染色体是恒定的，但是大尺度的生
境异质性往往导致染色体水平的变异，从而增加了
物种的遗传多样性［１４］。
４种麻黄属植物，均未观察到衔接或连续随体。
仅发现草麻黄第４对染色体短臂端部具有端部核仁
组成区（ＮＯＲ）［１５］，中麻黄第８对染色体中的一条具
端部ＮＯＲ，但其同源染色体上没有发现，出现该现
象的原因可能是在有丝分裂或减数分裂时，同源染
色体上的ＮＯＲ易于粘连在一起不分离，其结果便会
出现一个同源染色体的 ＮＯＲ增大，另一个则丢失，
即发生ＮＯＲ联合现象，这也是产生 ＮＯＲ多态性的
机制之一。
·７２７２·
第３４卷第２１期
２００９年１１月
Ｖｏｌ．３４，Ｉｓｓｕｅ ２１
Ｎｏｖｅｍｂｅｒ，２００９
Ａ．草麻黄；Ｂ．中麻黄；Ｃ．膜果麻黄；Ｄ．木贼麻黄。
图２ ４种麻黄染色体核型及模式图
４．３ 核型分析与物种亲缘关系探讨
在植物核型的进化过程中，一般认为亚端部和
端部着丝粒染色体是由中部或亚中部着丝粒染色体
演化来的，在这一演化过程中，很可能与染色体的臂
内倒位有关［１６］，植物核型的发展趋势是从对称性到
较大的非对称性，但是这种趋势有时候会发生逆转。
本研究结果表明，从染色体类型组成来看，膜果麻黄
染色体包括１对正中部着丝粒染色体（Ｍ），４对中
部着丝粒染色体（ｍ），２对亚中部着丝粒染色体
（ｓｍ）；木贼麻黄、草麻黄和中麻黄染色体类型中除
中部、亚中部着丝粒染色体外，还存在亚端部着丝粒
染色体（ｓｔ）。从染色体大小来看，膜果麻黄和木贼
麻黄染色体相对长度变幅分别为 １１１８％ ～
１６３８％，１１１８％～１７５８％，较为接近；草麻黄染色
体相对长度变幅在 ５１７％ ～８７６％、中麻黄为
５１６％～８９５％，变化极小。４种麻黄种内染色体
类型较多，其遗传多样性较为丰富。从进化上讲，植
物中的多倍体植物可以认为是由二倍体植物进化来
的，植物染色体倍性由低到高，即由二倍体向四倍
体，再向更高倍的多倍体发展是进化的趋势［１７］，许
多多倍植物比二倍体有更高的抗逆性，更有利于在
复杂的生活环境中存活、发展和进化［１４］。膜果麻黄
和木贼麻黄为二倍体，草麻黄和中麻黄较属于四倍
体。因此，虽然４种麻黄属植物的核型均为２Ａ型，
但综合分析，笔者认为膜果麻黄可能是较木贼麻黄、
草麻黄和中麻黄更为原始的类型。研究麻黄属植物
·８２７２·
第３４卷第２１期
２００９年１１月
Ｖｏｌ．３４，Ｉｓｓｕｅ ２１
Ｎｏｖｅｍｂｅｒ，２００９
种间亲缘关系及演化趋向，还应从各物种不同居群
采集样本进行细胞学分析，并结合其地理分布和生
境、形态特征及分子生物学等方面的研究结果综合
考虑，才能得出符合实际的正确结论。
［参考文献］
［１］ 武季玲，牛俊义，严子柱，等．麻黄属６种植物茎叶表皮的扫
描电镜观察［Ｊ］．中国中药杂志，２００７，３２（１８）：１８５４．
［２］ ＣａｖｅＭＳ．Ｉｎｄｅｘｔｏｐｌａｎｔｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｎｕｍｂｅｒｓ１９５６１９６４［Ｍ］．
ＣｈａｐｅｌＨｉｌ：ＵｎｉｖＮｏｒｔｈＣａｒｏｌｉｎａＰｒｅｓｓ，１９６５．
［３］ ＧｏｌｄｂｌａｔＰ．Ｉｎｄｅｘｔｏｐｌａｎｔｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｎｕｍｂｅｒｓ１９７５１９７８［Ｍ］．Ｓｔ
Ｌｏｕｉｓ：ＭｉｓｓｏｕｒｉＢｏｔＧａｒｄｅｎ，１９８１．
［４］ ＧｏｌｄｂｌａｔＰ．Ｉｎｄｅｘｔｏｐｌａｎｔｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｎｕｍｂｅｒｓ１９７９１９８１［Ｍ］．Ｓｔ
Ｌｏｕｉｓ：ＭｉｓｓｏｕｒｉＢｏｔＧａｒｄｅｎ，１９８４．
［５］ ＧｏｌｄｂｌａｔＰ．Ｉｎｄｅｘｔｏｐｌａｎｔｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｎｕｍｂｅｒｓ１９８２１９８３［Ｍ］．Ｓｔ
Ｌｏｕｉｓ：ＭｉｓｓｏｕｒｉＢｏｔＧａｒｄｅｎ，１９８５．
［６］ 孔红，陈荃，马骥．麻黄属２种植物的核型研究［Ｊ］．兰州大学
学报：自然科学版，２００１，３７（３）：１００．
［７］ ＣｈｏｕｈｄｒｙＡＳ．Ｋａｒｙｏｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌａｎｄｃｙｔｏｇｅｎｅｔｉｃａｌｓｔｕｄｉｅｓｉｎ
Ｅｐｈｅｄｒａ［Ｊ］．ＪＳｃｉＨｉｒｏｓｈｉｍａＵｎｉｖ，ＳｅｒＢ，Ｄｉｖ２，１９８４，１９
（１）：５７．
［８］ 李红，燕玲，李佳桃．１５种珍稀濒危植物染色体数目及其核型
分析［Ｊ］．内蒙古农业大学学报：自然科学版，２００３：２０．
［９］ 李懋学，陈瑞阳．关于植物核型分析的标准化问题［Ｊ］．武汉
植物学研究，１９８５，３（４）：２９７．
［１０］ ＬｅｖａｎＡ，ＦｒｅｄｇｅＫ，ＳａｎｄｂｅｒｇＡＡ．Ｎｏｍｅｎｄａｔｕｒｅｆｏｒｃｅｎｔｒｏｍｅｒ
ｉｃｐｏｓｉｔｉｏｎｏｎｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ［Ｊ］．Ｈｅｒｅｄｉｔａｓ，１９６４，５２（２）：２０１．
［１１］ ＳｔｅｂｂｉｎｓＧＬ．Ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｅｖｏｌｕｔｉｏｎｉｎｈｉｇｈｅｒｐｌａｎｔｓ［Ｍ］．Ｌｏｎ
ｄｏｎ：ＥｄｗａｒｄＡｒｏｌｄ，１９７１：８７．
［１２］ ＡｒａｎｏＨ．Ｃｙｔｏｌｏｇｉｃａｌｓｔｕｄｉｅｓｉｎｓｕｂｆａｍｉｌｙｃａｒｄｕｏｉｄｅａｅ（Ｃｏｍｐｏｓｉ
ｔａｅ）ｏｆＪａｐａｎ［Ｊ］．ＩＸＢｏｔＭａｇ，１９６３，７６：３２．
［１３］ 朱澄．植物染色体及染色体技术［Ｍ］．北京：科学出版社，
１９８２：４３．
［１４］ 王琼，苏智先，宋会兴，等．植物染色体数目及其变异与生境
关系初探［Ｊ］．生态学杂志，２００１，２０（５）：８．
［１５］ 李懋学，张赞平．作物染色体及其研究技术［Ｍ］．北京：中国
农业出版社，１９９６：１．
［１６］ 李雅轩．植物细胞核型的进化［Ｊ］．生物学通报，２００１，３６（２）：１６．
［１７］ 洪德元．植物细胞分类学［Ｍ］．北京：科学出版社，１９９０：１９８．
Ｓｔａｉｎｉｎｇａｎｄｓｌｉｄｅｐｒｅｐａｒｉｎｇｔｅｃｈｎｉｑｕｅｏｆｍｉｔｏｔｉｃｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓａｎｄ
ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｉｎｋａｒｙｏｔｙｐｅｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｏｆＥｐｈｅｄｒａ
ＷＵＪｉｌｉｎｇ１，ＬＩＳｈｅｎｇ１，ＪＩＡＮＧＨａｎｙｕ１，ＧＡＯＹｕｈｏｎｇ２，ＮＩＵＪｕｎｙｉ２
（１．ＣｏｌｅｇｅｏｆＬｉｆｅＳｃｉｅｎｃｅｓ＆Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｌａｎｚｈｏｕ７３００７０，Ｃｈｉｎａ；
２．ＣｏｌｅｇｅｏｆＡｇｒｏｎｏｍｙ，ＧａｎｓｕＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｌａｎｚｈｏｕ７３００７０，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：ＴｏｓｔｕｄｙｔｈｅｋａｒｙｏｔｙｐｅｏｆｆｏｕｒＥｐｈｅｄｒａｐｌａｎｔｓｉｎｏｒｄｅｒｔｏｐｒｏｖｉｄｅｔｈｅｃｙｔｏｌｏｇｉｃｅｖｉｄｅｎｃｅｆｏｒｔｈｅｇｅｎｅｔｉｃ
ｄｉｖｅｒｓｉｔｙａｎｄｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｇｅｎｅｔｉｃｒｅｓｏｕｒｃｅｓｏｆＥｐｈｅｄｒａ．Ｍｅｔｈｏｄ：Ｔｈｅｒｏｏｔｓｏｆｇｅｒｍｉｎａｔｉｎｇｓｅｅｄｓｗｅｒｅｕｓｅｄｔｏｓｔｕｄｙｔｈｅｋａｒｙｏｔｙｐｅｏｆ
ｆｏｕｒＥｐｈｅｄｒａｐｌａｎｔｓｂｙｓｔａｉｎｉｎｇａｎｄｓｌｉｄｅｐｒｅｐａｒｉｎｇｔｅｃｈｎｉｑｕｅｏｆｍｉｔｏｔｉｃｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ．Ｒｅｓｕｌｔ：ｔｈｅｏｐｔｉｍａｌｒｏｏｔｓａｍｐｌｉｎｇｔｉｍｅｗａｓ
ａｂｏｕｔ１０∶２０－１０∶４０ａｍ．Ｕｓｉｎｇ０．００２ｍｏｌ·Ｌ－１８Ｈｙｄｒｏｘｙｑｕｉｎｏｌｉｎｅｔｏｐｒｅｔｒｅａｔｉｎｇｔｈｅｉｎｔｒａｖｉｔａｌｒｏｏｔｔｉｐｓ，ｔｈｅｏｐｔｉｍａｌｐｒｅｔｒｅａｔｍｅｎｔ
ｔｉｍｅｆｏｒＥ．Ｓｉｎｉｃａ，Ｅ．ｉｎｔｅｒｍｅｄｉｎａ，Ｅ．ｅｑｕｉｓｅｔｉｎａａｎｄＥ．ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｗａｓ４，５，４．５ａｎｄ３．５ｈ，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｅ．ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉａｎｄＥ．ｅｑ
ｕｉｓｅｔｉｎａｗｅｒｅｄｉｐｌｏｉｄ，Ｅ．ＳｉｎｉｃａａｎｄＥ．ｉｎｔｅｒｍｅｄｉｎａｗｅｒｅｂｅｌｏｎｇｅｄｑｕａｄｒｕｐｌｅ．Ｔｈｅｋａｒｙｏｔｙｐｅｆｏｒｍｕｌａｅｏｆｔｈｅｆｏｕｒｓｐｅｃｉｅｓｗｅｒｅ２ｎ＝
２ｘ＝１４＝２Ｍ＋８ｍ＋４ｓｍ，２ｎ＝２ｘ＝１４＝１０ｍ＋４ｓｔ，２ｎ＝４ｘ＝２８＝２０ｍ（２ＳＡＴ）＋８ｓｔ，ａｎｄ２ｎ＝４ｘ＝２８＝２０ｍ（ＳＡＴ）＋６ｓｔ＋２ｓｍ，
ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：ＡｌｔｈｅｋａｒｙｏｔｙｐｅｓｏｆｆｏｕｒＥｐｈｅｄｒａｓｐｅｃｉｅｓｗｅｒｅ２Ａｔｙｐｅ，ｗｈｉｃｈｗａｓｔｈｅｓｙｍｍｅｔｒｉｃｋａｒｙｏｔｙｐｅ．
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ Ｅｐｈｅｄｒａ；ｍｉｔｏｓｉｓ；ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ；ｋａｒｙｏｔｙｐｅ
［责任编辑 吕冬梅］
·９２７２·
第３４卷第２１期
２００９年１１月
Ｖｏｌ．３４，Ｉｓｓｕｅ ２１
Ｎｏｖｅｍｂｅｒ，２００９