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葫芦科植物未授粉子房培育单倍体研究进展



全 文 :葫芦科植物未授粉子房培育单倍体研究进展
杨明贵,王毓洪,李林章,王超,陆莹莹
(浙江宁波市农业科学研究院蔬菜研究所,315040)
染色体加倍能快速纯化单倍体植株育种材料,
缩短育种年限,且使单倍体材料能在当代即表现出
显隐性基因型性状, 在育种方面发挥着重要作用,
在遗传学研究及基因图谱构建等方面也具有重要
的意义。 葫芦科(Cucurbitaceae)植物分布在中国的
有 130 多个种,其中甜瓜、黄瓜、南瓜、葫芦、西瓜等
都具有很高的经济价值, 其品种改良具有极大潜
力。在自然界中葫芦科植物自发产生单倍体的频率
极低[1],而长期的研究结果表明,通过花药和小孢子
培养在葫芦科植物中得到单倍体的几率很小,但通
过葫芦科植物雌核发育(gynogenesis)途径进行单倍
体研究是一条重要途径。雌核发育是指离体条件下
由未授粉胚囊产生单倍体胚和植株的过程 [2]。 雌核
发育培育单倍体主要有 2 种方式:一种是让精子入
卵后,保证精核不与卵核融合而退化,刺激卵核分
裂发育为胚,这种方式主要通过辐射处理花粉授粉
后将雌核离体培养;另一种是对未授粉子房或胚珠
进行离体培养,诱导雌核发育。 本文着重对未授粉
子房培养研究状况及影响因素作出简要概述。
1 葫芦科植物雌花未授粉胚珠离体培养单
倍体研究概况
未授粉胚珠离体培养是一种简单有效的加速
植物快速纯化的方法,而且为研究孤雌生殖或无配
子生殖的细胞胚胎学提供稳定的实验体系。
1985 年,Chamboner 等 [3]首次在西葫芦中采用
未授粉胚珠离体培养技术获得单倍体和二倍体的
植株。 Metwally 等 [4,5]对西葫芦品种 Eskandarani 开
花前 1 d的雌花,通过低温诱导和含不同浓度 2,4-D
的 MS 培养基进行培养,成功获得了西葫芦单倍体
植株。 随后国内学者陈学军等[6]、谢冰等[7]分别在西
葫芦中得到胚囊植株并驯化成功。 刘栓桃等 [8]利用
9个不同基因型的西葫芦材料,研究了激素、取样时
间和基因型 3 个因素对西葫芦未授粉胚珠离体培
养的影响。 南瓜子房未授粉子房培养试验 1988 年
获得初始成功[9]。 Shalaby[10]在 Metwally 等[4]的基础上
采用 1 mg/L 2,4-D 和 Kinetin 培养基对基因型、雌
摘 要:综述了近年来葫芦科植物未授粉子房培养单倍体状况,及葫芦科植物未授粉子房培养的取材、基因型、温
度、激素等几个因素影响的研究进展,进而对其当前问题及前景进行了探讨。
关键词:葫芦科;未授粉子房;单倍体
杨明贵(1978-),男,博士,农艺师,主要从事瓜菜遗
传育种与分子生物学研究,
E-mail:yangmg722@163.com
收稿日期:2012-12-14
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Research Progress on Authenticity and Seed Purity Identification of
Kidney Bean (Phaseolus vulgaris L.) Cultivars
ZHANG Xue, HAN Yuzhu
( College of Horticulture, Jilin Agricultural University, Changchun 130118 )
Abstract: In this paper, we summarized methods for identifying the authenticity and seed purity of kidney bean (Phaseolus
vulgaris L.) cultivars, including plot planting identification, seed morphological identification, electrophoretic band
identification and molecular marker identification, and we put forward feasible suggestions to provide reference for accurate
and quick identification of authenticity and seed purity of P. vulgaris L..
Key words: Phaseolus vulgaris L.; Cultivar; Authenticity; Purity
JOURNAL OF CHANGJIANG VEGETABLES
(学术版)
2013(2):9-12
DOI:10.3865/j.issn.1001-3547.2013.02.003
9- -
花位置、温度和蔗糖浓度 4 个因素进行研究并获得
了南瓜单倍体植株。
黄瓜的未授粉子房离体培养研究始于 1996年,
但起始效果不佳[11]。Gémes等[12]将黄瓜子房放置于诱
导培养基上,在不同温度下热激并暗处理 2~5 d,随
后转移到再生培养基进行培养。 结果表明,热激处
理通过优化雌配偶体发育提高雌核再生频率。并通
过组织观察发现雌性配子体的单倍体诱导的最佳
时期为胚囊形成阶段。 国内随后也对黄瓜基因型、
取样时期、 激素及处理温度对胚状体的诱导进行了
探讨[13~16],并获得了纯合的黄瓜材料。
Ficcadenti 等 [17]首次在甜瓜中采用未授粉胚珠
离体培养技术, 其选择了 2 个常规材料和 1 个 F1
代杂交种进行培养并获得再生胚。随后 Lotfi等[18]也
对甜瓜进行了未授粉胚珠离体培养。 Malik 等 [19]对
不同温度和几种不同激素对甜瓜未授粉子房培养效
果进行研究, 采用 SSR分析证实获得的双单倍体植
株为纯合双单倍体, 并通过 SSR标记证实这些获得
的双单倍体为纯合的雌配子的再生胚。
以上这些研究结果表明,未授粉子房培养技术
在葫芦科植物育种及科学研究中的重要地位受到
越来越多研究者的重视。而其复杂的影响因素对建
立高效稳定的技术体系有着严重阻碍,因此探讨其
最佳的培养条件对该项技术的应用有着重要意义。
以下对其影响因素相关研究进展进行概述。
2 未授粉葫芦科植物胚胎发生影响因素
2.1 取材状况
许多研究结果表明, 试验材料的播种时期、雌
花的发育时期及雌花的部位等对胚胎离体培养中
的胚诱导频率都有着重要的影响。 陈学军等[6]通过
对西葫芦开花前 3 d, 当日和开花后 2 d 未授粉子
房分别进行培养, 结果显示诱导率分别为 10.5%,
14.2%和 4.4%,表明开花当日子房离体培养效率最
高。 谢冰等[7]通过西葫芦不同开花时期取材试验证
实开花前 1 d 和开花当日胚珠诱导频率最高,秋播
材料诱导频率较夏播和春播的高。 Shalaby[10]对 2 个
南瓜 Giad和 Raad的 F1代的第一节雌花、第二节雌
花和第三节雌花分别进行未授粉胚珠离体培养研
究后发现,第二节雌花胚诱导和成苗效果最佳。 刘
栓桃等[8]对 9 种基因型西葫芦材料进行不同开花时
期取材试验,结果显示,除 1 个材料没能得到再生
植株外,其他均表现为开花当天的胚珠最适合诱导
培养,再生植株产率表现最高。
2.2 基因型
Ficcadenti 等 [17] 对 2 个甜瓜品种(reticulatus,
inodorus)及其杂交种进行了未授粉雌花子房培养,
结果显示,reticulatus 出胚率最高。 Shalaby[10]对 12
种不同基因型南瓜品种的未授粉雌花子房培养发
现,Raad F1代材料表现最佳, 胚诱导率为 48.4%,
每皿成苗 15株。刘栓桃等[8]对 9个不同基因型西葫
芦材料的未授粉胚珠诱导培养发现,再生植株产率
最高的能达到 33.33%,而最低的仅为 2.67%。 陈小
鹏等 [14]对 3 个黄瓜品种未授粉子房的胚状体诱导
试验结果表明,黄瓜基因型对雌核发育也有着重要
影响。 以上这些结果表明,基因型在甜瓜、南瓜、西
葫芦等葫芦科植物的雌核发育中有着重要作用。
2.3 温度预处理
温度处理极有可能促进雌核发育由正常配子
发育 (gametophytic development) 转换成腐生途径
(saprophytic pathway), 从而导致单倍体胚形成 [10]。
Kwack 等 [9]研究表明,南瓜在 5℃条件下预处理 2 d
能提高胚胎的发生几率。 Gémes等[12]将黄瓜子房放
置 于 诱 导 培 养 基 (induction media containing
thidiazuron)上,分别在 24,28,35℃环境下暗处理2~
5 d;随后转移到再生培养基(regeneration media α-
naphthaleneacetic acid and 6-benzylaminopurine),结
果表明,热激处理通过优化雌配偶体发育提高雌
核再生频率。 其中 35℃胚胎再生效果最好,其胚胎
发生频率为 18.4%,植株再生频率为 7.1%。 Shalaby [10]
将南瓜 Queen F1 代分别放置在 4℃和 32℃下预处
理0,4,7,12 d,结果显示 ,4℃或 32℃条件下都是
4 d 的处理效果最佳。 Diao 等[16]对黄瓜的研究结果
也表明, 在 35℃条件下热激 3 d的效果较 2 d和 4 d
的好。
此外在对葫芦科植物子房进行温度刺激预处
理的试验中,也有些结果表明,热激或冷激处理对
雌核诱导成单倍体有副作用。 Yang 等[20] 的研究结
果表明,许多物种中冷激处理对雌核培养具有副作
用 。 Metwally 等 [4] 通过将开花前 1 d 的西葫芦
(Eskandarani) 在 4℃分别进行 2,4,8 d 预处理,结
果发现不进行预处理的的材料具有最高的胚诱
导率。
2.4 激素处理
Kwack 等 [9]研究认为,植物激素对南瓜的胚发
生有着重要作用。 Metwally 等 [4]在诱导西葫芦未授
2013/02 杨明贵,等.葫芦科植物未授粉子房培育单倍体研究进展 10- -
粉胚胎分化时分别使用浓度为 0.1,1,5,10 mg/L的
2,4-D, 结果发现 1 mg/L 和 5 mg/L 2,4-D 处理的
胚诱导率较高。 Malik 等[19]在进行甜瓜未授粉子房
培养时发现,0.04 mg/L 和 0.02 mg/L的 TDZ 在诱导
培养基中显著增加胚珠愈伤产生,胚诱导率分别为
46.6%和 65.83%, 而浓度为 0.6 mg/L的 6-BA 激素
显著提高外植体再生率。
Diao 等 [16]认为 ,TDZ 能促进胚胎形成 ,以
0.04 mg/L的 TDZ 效果最佳。 而将 AgNO3加到诱导
培养基中对胚的诱导并没有显著影响,但会缩短胚
胎萌芽期和提高胚胎形成数目,其选用的材料之间
出胚率并无显著差异。 谢冰等[7]将西葫芦未授粉胚
珠接种至含不同浓度 2,4-D,NAA,BA 的 N6 培养
基上 ,结果发现 ,2 mg/L 2,4-D+0.5 mg/L NAA+
1 mg/L BA培养基上的胚状体诱导频率最高。 刘栓
桃等 [8]通过对 4 个西葫芦品种研究结果表明,在浓
度为 0.5 mg/L NAA 和 1.0 mg/L的 2,4-D 的培养基
上再生植株产率最高,达 28.33%。
2.5 琼脂和蔗糖浓度
陈学军等 [6]发现,西葫芦胚珠愈伤组织诱导成
苗阶段,蔗糖浓度为 20 g/L的培养基上芽诱导率最
高,为 15.6%。 Shalaby[10]在南瓜 Eskandrani胚珠诱导
时使用 30,60,90 g/L的蔗糖浓度梯度比较发现,蔗糖
浓度为 30 g/L 时,胚珠诱导效率最佳,而蔗糖浓度
为 90 g/L时,胚珠完全不能生长。 这些结果表明,在
愈伤组织芽分化时可能需要较低的渗透压。
此外,AgNO3是乙烯合成的抑制剂,Mohiuddin
等 [21]认为,AgNO3影响愈伤组织的内源激素代谢从
而有利于葫芦科植物植株的再生。 陈学军等[6]研究
发现 NO3-有利于不定根的形成。 韩丽华等[22]将甜瓜
胚珠用不同浓度的硝酸银进行处理,结果显示在硝
酸银浓度为 80 mg/L时出胚率最高,为 0.74%。
3 未授粉子房培养展望
葫芦科植物具有很高的经济价值,通过单倍体
离体诱导技术对葫芦科植物的品质、抗逆性、抗病
害能力等进行改良,将会在葫芦科植物的遗传育种
中开拓一条崭新的途径。自从 20世纪 60年代利用
未授粉子房培养单倍体获得成功以来 [23],自然界植
物的单倍体育种技术也取得长足的进步。通过未授
粉子房培养单倍体的技术快速纯化葫芦科植物基
因型,加快育种进度在葫芦科植物育种中具有重要
意义。当前通过未授粉子房培养单倍体的方式在育
种中已经取得了一些进步,但是当前葫芦科植物未
授粉胚珠离体培养的过程中仍存在许多复杂的影
响因素导致其诱导率、成胚率、成苗率较低等。因此
通过改进实验技术来提高诱导效率, 建立稳定性
好,重复性高的未授粉子房离体培养技术在葫芦科
植物育种中具有重要意义。
参考文献
[1] Savin F, Decomble V, Le Couviour M, et al. The X -ray
detection of haploid embryos arisen in muskmelon Cucumis
melo L. seeds, and resulting from a parthenogenetic
development induced by irradiated, pollen [J]. Cucurbit
Genetic Cooperative Report, 1988, 11: 39-42.
[2] San Noeum L H. In vitro induction of gynogensis in higher
plants [M]. Wageniegen: Proceedings of the Conference on
Broadening Genetic Base of Crops, 1979: 327-329.
[3] Chambonner D, Dumas de Vaulx R. Obtention of embryos
and plants from in vitro culture of unfertilizered ovules of
Cucurbita pepo[J]. Cucurbit Genet Coop Rpt, 1986, 8: 66.
[4] Metwally E I, Moustafa S A, EI -Sawy B I, er al.
Production of haploid plants from in vitro culture of
unpollinated ovules of Cucurbita pepo [J]. Plant Cell, Tiss
Org Cult, 1998, 53: 117-121.
[5] Metwally E I, Moustafa S A, EI-Sawy B I, et al. Haploid
plantlets derived by anther culture of Cucurbita pepo [J].
Plant Cell, Tiss Org Cult, 1998, 52: 171-176.
[6] 陈学军,邢国明,陈竹君 .西葫芦未授粉胚珠离体培养和
植株再生[J].浙江农业学报,2000,12(3):165-167.
[7] 谢冰,王秀峰,樊治成 .西葫芦未受精胚珠离体培养条件
的优化及胚囊植株的产生 [J]. 中国农业科学,2000,39
(1):132-138.
[8] 刘栓桃,赵智中,孙小镭,等.西葫芦未受精胚珠离体诱导
植株再生的关键因素 [J].华北农学报 ,2008,23(2):96-
100.
[9] Kwack S N, Fujieda K. Somatic embryogenesis in cultured
unfertilized ovules of Cucurbita moschata[J]. J Jpn Soc Hort
Sc, 1988, 57: 34-42.
[10] Shalaby T A. Factors affecting haploid induction through
in vitro gynogenesis in summer squash (Cucurbita pepo L.)
[J]. Scientia Horticulturae, 2007, 115 (1): 1-6.
[11] Gémes Juhász A, Venczel G, Balogh P. Haploid plant
induction in zucchini (Cucurbita pepo L. convar.
giromontiina Duch) and in cucumber (Cucumis sativus L.)
lines through in vitro gynogenesis [J]. Acta Hortic, 1996,
447: 623-625.
[12] Gémes Juhász A, Balogh P, Ferenczy A, et al. Effect of
optimal stage of female gametophyte and heat treatment on
in vitro gynogenesis induction in cucumber (Cucumis
(学术版) 2013 年 1 月下半月刊11- -
Research Progress on Obtaining Cucurbitaceous Haploid through
Un-pollinated Ovary Culture
YANG Minggui, WANG Yuhong, LI Linzhang, WANG Chao, LU Yingying
( Institute of Vegetables, Ningbo Academy of Agricultural Sciences, Zhejiang 315040 )
Abstract: In this paper, we summarized the recent research progresses on obtaining cucurbitaceous haploid through un-
pollinated ovary culture, and analyzed the factors affecting the culture, such as the stage of explants, genotype,
temperature pretreatments, auxin and so on. And we also discussed the existing problems and prospects of adopting the
un-pollinated ovary culture method to obtain cucurbitaceous haploid.
Key words: Cucurbitaceae; Un-pollinated ovaries; Haploid
sativus L.)[J]. Plant Cell Rep, 2002, 21(2): 105-111.
[13] 杜胜利,韩毅科,魏爱民,等 .黄瓜倍性鉴定方法的研究
[J].园艺学报,2002(29):280-281.
[14] 陈小鹏,刘栓桃,孙小镭,等 .黄瓜未授粉子房的胚状体
诱导研究初报[J].西北农业学报,2006,14(2):148-151.
[15] 韩毅科,杜胜利,魏爱民,等 .利用未受精子房培养技术
育成黄瓜新品种‘津美 3 号’[J].园艺学报,2010,37(3):
509-510.
[16] Diao W, Jia Y, Song H, et al. Efficient embryo induction
in cucumber ovary culture and homozygous identification
of the regenetants using SSR markers [J]. Scientia
Horticulturae, 2009, 119: 246-251.
[17] Ficcadenti N, Sestili S, Annibali S, et al. In vitro
gynogenesis to induce haploid plants in melon (Cucumis
melo L.)[J]. Journal of Genetics and Breeding, 1999, 53(3):
255-257.
[18] Lotfi M, Alan A R, Henning M J, et al. Production of
haploid and doubled haploid plants of melon (Cucumis
melo L.) for use in breeding for multiple virus resistance
[J]. Plant Cell Rep, 2003, 21(11): 1 121-1 128.
[19] Malik A A, Cui L, Zhang S, et al. Efficiency of SSR
makers for determining the origin of melon plantlets
derived through unfertilized ovary culture [J]. Hort Sci,
2011, 38(1): 27-34.
[20] Yang HY and Zhou C. In vitro induction of haploid plants
from unpollinated ovaries and ovules [J]. Theor Appl
Genet, 1982, 63: 97-104.
[21] Mohiuddin A K M, Choedhury M K U, Abdullah Z C, et
al. Influence of silver nitrate (ethylene inhibitor) on
cucumber in vitro shoot regeneration[J]. Plant Cell, Tissue
and Organ Culture , 1997, 51: 75-78.
[22] 韩丽华,王建设,陈贵林.AgNO3对甜瓜离体胚囊的影响
[J].河北农业大学学报,2005,28(2):48-50.
[23] Maheshwari N. In vitro culture of excised ovules of
Papaver somniferum L. [J]. Phytomorphology, 1961, 11:
307-314.
2013/02 杨明贵,等.葫芦科未授粉子房培育单倍体研究进展
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