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超高效液相色谱-串联质谱法鉴别十字花科植物中硫代葡萄糖苷



全 文 :化学分析计量
CHEMICAL ANALYSIS AND METERAGE
第 22卷,第 2期
2013年 3月
Vol. 22,No. 2
Mar. 201312
doi:10.3969/j.issn.1008–6145.2013.02.003
超高效液相色谱 –串联质谱法鉴别十字花科植物中
硫代葡萄糖苷 *
赵振东,李嘉诚,冯玉红,孟晓静,金彪
(海南大学材料与化工学院,海口 570228)
摘要 建立超高效液相色谱 –串联质谱法鉴别十字花科植物中硫代葡萄糖苷的分析方法。采用 70%甲醇水溶
液提取白芥种子中的硫代葡萄糖苷,通过反相 C18柱分离,电喷雾 –离子阱 –飞行时间质谱测定。利用硫代葡萄糖苷
二级质谱裂解产生的 m/z 195,241,259,275,291特征离子和伴随产生的 80,162,163,196,242 Da中性分子丢失规
律,共鉴别出 5种硫代葡萄糖苷。
关键词 硫代葡萄糖苷;十字花科;液相色谱;质谱
中图分类号:O657.63 文献标识码:A 文章编号:1008–6145(2013)02–0012–04
Separation and Identifi cation of Glucosinolates in the Cruciferae Crops by UPLC–MS/MS
Zhao Zhendong,Li Jiacheng,Feng Yuhong,Meng Xiaojing,Jin Biao
(Materials and Chemical Engineering of Hainan University,Haikou 570228, China)
Abstract A method for precise identification of glucosinolates in the Cruciferae Crops by UPLC–MS/MS was
established. The glucosinolates were extracted with methanol–water (volume ratio 70∶30),while the separation and
qualitative determination of the individual glucosinolates was achieved using RP-UPLC–ESI–IT–TOF. The glucosinolates
was confirmed with the use of product ions at m/z 195,241,259,275,291 in MS2. Further identification of the five
glucosinolates was based on the detection of compounds with a constant neutral loss of 80, 162, 163, 196, 242 Da in
collision-induced dissociation.
keywords glucosinolate; cruciferae; liquid chromatography; mass spectrometry
硫代葡萄糖苷 (简称硫苷 )是广泛存在于十字
花科植物中的含硫次级代谢产物,主要分布于植物
的根、茎和叶中。当植物细胞受到破坏 (如挤压、虫
咬等 )后,硫苷与植物内生的黑芥子酶接触,降解产
生异硫氰酸酯、恶唑烷酮和硫氰酸酯等化合物[1],其
中异硫氰酸酯具有良好的生物活性,而且对人畜无
害。因此硫苷及其降解产物的研究引起了科学工作
者的浓厚兴趣。根据侧链 R基团的不同,目前已发
现约 120种硫苷,其中有多种具有抗癌、抗肿瘤、杀
菌和杀虫活性的异硫氰酸酯,如吴华等[2]比较几种
异硫氰酸酯的杀线虫活性,发现烯丙基和丙烯酰基
异硫氰酸酯具有良好的杀线虫活性。大量研究表明
甲硫基己基异硫氰酸酯等具有良好的抗肿瘤活性,
是非常具有潜力的抗癌药物[3–6]。
硫苷的检测方法主要是传统的化学方法和现
代的仪器分析手段。化学方法耗时、误差大、操作繁
琐,只能测定硫苷总量。液相色谱法具有很高的分
离效率,但对于硫苷单体鉴别需要对照品,无法满足
快速鉴别硫苷的需要。笔者采用超高效液相色谱 –
离子阱 –飞行时间质谱联用技术,既能高效分离硫
苷,又能准确、快速鉴别硫苷。对于硫苷及降解产物
的研究具有重要意义,同时又能够提高工作效率。
1 实验部分
1.1 主要仪器与试剂
超高效液相色谱 –离子阱 –飞行时间质谱仪:
LCMS–IT–TOF型,日本岛津公司;
数显恒温水浴锅:HH–6型,常州澳华仪器有限
公司;
真空干燥箱:VD23型,德国 BINDER公司;
电子天平:AUY220型,日本岛津公司;
超声波清洗器:KS–120EI型,宁波海曙科生超
声设备有限公司;
*“十二五”科技支撑计划(2011BAE06B06–7,2011BAE06B04–7);
海南大学青年基金项目(qnjj1220)
联系人:冯玉红;E-mail: ljcfyh@263.net
收稿日期:2012–12–12
13 赵振东,等:超高效液相色谱 –串联质谱法鉴别十字花科植物中硫代葡萄糖苷
旋转蒸发仪:R–216型,瑞士 BUCHI公司;
台式高速离心机:H–1650型,长沙湘仪离心机
仪器有限公司;
研磨机:A11基本型,德国 IKA公司;
白芥种子:产地为湖北武汉;
正己烷、氯仿、乙酸铵、甲酸:分析纯,广州化学
试剂厂;
甲醇:色谱纯,美国 Fisher公司;
实验用水为美国 Pall公司 Purelab Ultra超纯水
系统制备的超纯水,电阻率为 18.2 MΩ · cm。
1.2 硫代葡萄糖苷提取[7–8]
白芥种子在 105℃干燥 3 h,以灭活黑芥子酶保
护硫苷。干燥种子经粉碎后,过 420 μm筛。称取
粗粉约 50 g于锥形瓶中,依次用正己烷 50 mL,氯
仿 50 mL 各 3次除脂。残渣经真空干燥,用 300 mL
沸腾的 70%甲醇水溶液浸泡,超声提取 30 min,连
续 2次,合并提取液,静置至室温。提取液经离心
分离,将清液真空下浓缩至原体积的 20%。取 1 mL
浓缩液经石墨化碳脱色,滤液供超高效液相色谱 –
串联质谱分析。
1.3 流动相配制
用电子天平准确称量乙酸铵 0.385 g,置于 1 L
量瓶中,加入 1 mL甲酸,用水溶解定容后,经 0.22
μm微膜过滤,超声波脱气后使用。
1.4 液质联用分析条件
(1)UPLC条件
ODS C18 柱 (100 mm×2.1 mm,3.5 μm,日本
岛津公司 );柱温:30℃;流动相 A:5 mmol/L乙
酸铵 –1‰甲酸溶液;流动相 B:甲醇;流动相流速:
0.2 mL/min;进样体积:20 μL;梯度洗脱:0~3
min,98% A;3~25 min,98%~20% A;25~30 min,
20%~20 % A;30~35 min,20%~98% A。
(2)MS条件
ESI 负离子模式;电压:–3.5 kV;雾化气:
N2,流量为 1.5 L/min;干燥气压力:100 kPa;碰
撞气:Ar;检测器电压:1.7 kV;Heat Block温度:
200℃;CDL温度:200℃;一级质谱扫描范围:m/z
300~700;母离子扫描范围:m/z 315~650;二级质
谱扫描范围:m/z 50~700;离子累积时间:10 ms;
CID碰撞能量:100%;碰撞气能量:100%。
2 结果与讨论
2.1 分析条件选择
硫苷在水溶液中是亲水性阴离子化合物,在反
相色谱柱中,保留时间短。优化实验发现,在 ODS–
C18柱上采用流动相 A(5 mmol/L的乙酸铵 +0.1%
甲酸 )和流动相 B(甲醇 )能够很好分离,并且有很
好的质谱响应。质谱 Heat Block和 CDL温度采用
200℃,温度过高会造成硫苷裂解,过低则影响离子
化和脱溶剂化效果。为获得比较丰富的二级离子碎
片信息,CID碰撞能量和碰撞气能量均采用 100%。
2.2 分析结果
按照 1.4分析条件检测白芥种子提取液,获取
硫苷提取离子流色谱图及其一、二级质谱图 (见图
1~图 11)。根据裂解机理,并参考文献[9–12],共鉴
定出 5种硫苷,结果见表 1。
图 1 白芥种子中硫代葡萄糖苷的提取离子流色谱图
图 2 progoitrin一级质谱图 (MS1)
图 3 progoitrin二级质谱图 (MS2)
图 4 Sinigrin一级质谱图 (MS1)
化学分析计量 2013年,第 22卷,第 2期14
图 5 Sinigrin二级质谱图 (MS2)
图 6 Gluconapin一级质谱图 (MS1)
图 7 Gluconapin二级质谱图 (MS2)
图 8 Glucobrassicanapin一级质谱图 (MS1)
图 9 Glucobrassicanapin二级质谱图 (MS2)
图 10 Gluconasturtiin一级质谱图 (MS1)
图 11 Gluconasturtiin二级质谱图 (MS2)
2.3 质谱碎片离子裂解机理
二级质谱特征离子,对于鉴别硫苷具有重要
意义。在 MS2中,母离子先后失去 SO3(80 Da)和
C6H10O5(162 Da) 后产生 242 Da 中性分子丢失,
氢重排后出现相对应的 R—C(SH)=N—O—离
子。另一裂解途径是硫苷上的氢发生重排后,失去
C6H11O5(163 Da)和 C6H12O5S(196 Da)中性碎片。与
此同时,二级质谱中还能观察到 m/z 195,241,259,
275,291的特征离子,这些离子是由于硫与相邻碳
原子发生断裂,并伴有氢重排形成的。
硫代葡萄糖苷负离子模式下主要特征二级碎
片离子裂解机理见图 12[13–14]。
3 结语
利用液相色谱 –串联质谱技术快速、高效、准确
的分离与鉴定十字花科植物中硫代葡萄糖苷,对硫
代葡萄糖苷二级质谱 80,162,163,196,242 Da中性
分子丢失和 m/z 195,241,259,275,291特征离子
裂解机理进行了阐述和总结,能够准确推测硫代葡
萄糖苷化学结构,对于十字花科植物的开发与利用
具有重要意义。
参 考 文 献
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15 赵振东,等:超高效液相色谱 –串联质谱法鉴别十字花科植物中硫代葡萄糖苷
表 1 白芥种子中硫苷主要二级质谱离子表
名称 保留时间/min
准分子离
子M– 主要二级碎片离子质荷比 (相对强度/%)
progoitrin 3.9 388.03 136(18),146(9),192(3),195(25),210(43),259(100),275(25),301(15),308(5),332(16)
Sinigrin 5.5 358.02 162(83),165(3),180(19),195(17),227(2),241(17),259(100),260(7),275(26),278(7),
Gluconapin 10.3 372.03 163 (8),176 (5),179 (5),181 (5),194 (31),195 (17),259 (100),260 (13),275 (40),292 (17)
Glucobrassicanapin 14.6 386.05 163(13),195(11),208(23),227(7),241(6),259(100),260(6),275(15),306(11),341(10)
Gluconasturtiin 17.2 422.05 163(5),180(19),195(13),229(12),241(13),244(18),259(100),260(4),275(29),342(17)
图 12 硫代葡萄糖苷质谱裂解规律示意图
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