免费文献传递   相关文献

Study on in vitro propagation and tube plant vitrification of Dianthus chinensis

中国石竹离体快繁与试管苗玻璃化研究



全 文 :书广 西 植 物 Guihaia 32(4):531-535                                2012年 7 月  
DOI:地10.3969/j.issn.1000-3142.2012.04.020
中国石竹离体快繁与试管苗玻璃化研究
程云清1,刘剑锋1,刘春明1,邹振峰2,王淑范3
(1.吉林师范大学 生命科学学院,吉林 四平136000;2.四平市林业科学研究院,
吉林 四平136000;3.四平市园林管理局,吉林 四平136000)
摘 要:研究了培养基组成成分对中国石竹品种Diana F1White组培程序中种子萌发、诱芽增殖、试管苗玻璃
化及生根等重要环节的影响。结果表明:(1)种子适宜的萌发培养基为1/2MS,在此培养基中种子萌发率为
83.33%,播种后30d时无菌苗高度达6.99cm,叶片数达26.7。(2)在芽诱导阶段玻璃化苗发生率最高可达
53.85%。将光照强度提高至2 000lx后,采用培养基MS+6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3mg/L+琼脂8.0g/L
+蔗糖8.0g/L进行诱芽培养,玻璃化苗发生率降至3.33%,外植体出芽率达到90%,单个外植体出芽数达
到7.2个。(3)适宜的生根培养基为1/2MS+1.0mg/L IBA+琼脂8g/L+蔗糖40g/L,培养30d时生根率
为100%,平均根条数达到24.7条,平均根长度达到4.7cm。试管苗在消毒后的腐殖土中移栽,成活率达
95%。该研究结果为Diana F1试管苗的快速繁殖提供科学依据。
关键词:中国石竹;组培快繁;玻璃化
中图分类号:S792.11  文献标识码:A  文章编号:1000-3142(2012)04-0531-05
* Studyon in vitro propagation and tube plant
vitrification of Dianthus chinensis
CHENG Yun-Qing1,LIU Jian-Feng1,LIU Chun-Ming1,
ZOU Zhen-Feng2,WANG Shu-Fan3
(1.College of Life Sciences,Jilin Normal University,Siping 136000,China;2.Siping Academy of Forestry
Science,Siping 136000,China;3.Garden Bureau of Siping City,Siping 136000,China)
Abstract:Effects of medium ingredients on seeds germination,buds inducement proliferation,tube plant vitrification
and rooting were studied in order to establish efficient rapid propagation technology system of Dianthus chinensis cul-
tivar Diana F1 White.The results showed that proper seeds germination medium was 1/2MS,and seed germination
ratio was 83.33%.Height of aseptic tube plant reached to 6.99cm,and leaf number per plant was 26.7on 30th day
after sowing in medium.Max.vitrification plant ratio was 83.33%during bud inducement period for tube plant of Di-
ana F1White.The optimal medium for buds inducement was MS+6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3mg/L+agar 8.0g/
L+sugar 8.0g/L after light intensity was promoted to 2 000lx.Bud inducement ratio and buds number per explant
were 90%and 7.2respectively,and the ratio of vitrification tube plants decreased to 3.33%after 30days’culture.
The optimal rooting medium was 1/2MS+1.0mg/L IBA+agar 8g/L+sugar 40g/L,and rooting percent,roots
number and average root length was 100%,24.7and 4.7cm respectively after 30days’culture.Survival rate of tube
plant was more than 95%after they were transplanted in disinfected humus.The above results would provide scien-
tific base for micro propagation of D.chinensis cultivar Diana F1 White.
Key words:Dianthus chinensis;tissue culture and rapid propagation;vitrification
* 收稿日期:2011-08-20  修回日期:2011-12-29
基金项目:国家自然科学基金(31000691)[Supported by the National Natural Science Foundation of China(31000691)]
作者简介:程云清(1977-),女,湖北枝江人,博士,讲师,主要从事植物生物技术等研究,(E-mail)Chengyunqing1977@163.com。
   中 国 石 竹 (Dianthus chinensis)是 石 竹 科
(Caryophylaceae)石竹属(Dianthus)的多年生草本
花卉植物,是我国传统名花之一。中国石竹原产于
东北、华北、长江流域及东南亚地区,除华南以外,几
乎全国各地均有分布。中国石竹在世界各地广为栽
培,品种繁多,然而由我国自行培育的优良品种很少
(黄莺等,2003)。中国石竹常用播种、扦插和分株等
方式进行繁殖。四平市林业科学研究院于2009年
自荷兰引入一批石竹新品种,其中品种 Diana F1
White颇具观赏价值,但因是杂交种,并不适宜留种
繁殖,建立组培快繁技术体系对其栽培应用具有重
要的现实意义。香石竹(D.caryophyllus)的组培快
繁技术已有较多报道,香石竹可通过叶片、茎段再生
途径进行扩繁,也可通过体细胞胚胎发生途径进行
增殖(Aparna等,2003;Federico等,2010;Karami
等,2006;Karami等,2007;Pareek等,2003)。与之
相比较,中国石竹的组培技术快繁研究较少,已有的
研究主要集中于试管花的诱导、体细胞胚胎诱导等
方面(陈以俊等,1999;黄莺等,2003;唐定台等,
1996),利用茎段再生进行快繁的研究尚不多见,未见
到试管苗玻璃化的报道。为建立完善的中国石竹
(Dianthus Chinensis)品种Diana F1White组培快繁技
术体系,作者进行了两年的研究,现对中国石竹品种
Diana F1 White完善的组培快繁技术体系进行报道。
1 材料与方法
1.1材料
中国 石 竹 品 种 Diana F1 White(Dianthus
chinensis)的种子引自荷兰,由四平市林业科学研究
院提供。室内试验于2009~2011年在吉林师范大
学生命科学学院组培室进行。
1.2方法
1.2.1材料表面消毒处理 取Diana F1 White
种子,置流水冲洗数次,用洁净滤纸吸干表面水分,
70%(V/V)乙醇浸泡30s,用无菌水冲洗4~5次后
转入质量百分比为0.1%的升汞(含 Tween-20数
滴)中浸泡10min,用无菌水冲洗4~5次去除升汞
与乙醇残留。
1.2.2初代培养 经过表面消毒的种子接入 MS与
1/2MS两种基本培养基中进行初代培养,及时去除
污染的外植体材料。如培养基中添加GA3,GA3 经
过滤除菌后在无菌条件下加入到温热培养基中。培
养时间约为30d,比较培养基种类与GA3 对种子萌
发与无菌苗生长的影响(表1)。
1.2.3增殖培养 取初代培养中获得的无菌苗,切
分成2cm左右的茎段,接入附加不同浓度6-BA与
NAA的 MS培养基中(表2),比较植物生长物质浓
度配比对中国石竹芽增殖的影响。
1.2.4琼脂、蔗糖浓度对玻璃化苗发生率的影响 
比较培养基中不同琼脂、庶糖浓度对玻璃化苗发生
率的影响(表3)。
1.2.5生根培养 基本培养基选用1/2MS,添加不
同质量浓度NAA、IBA进行生根诱导培养,比较不
同浓度NAA、IBA对试管苗生根的影响(表4)。
1.2.6培养条件 以上培养基pH 为5.8~6.0,在
1.2kg/cm2 压力下高温灭菌20min。接种后置于
培养温度(25±2)℃,光照强度为1 500~2 000lx,
每天光照12h的组培室条件下进行培养。
1.2.7统计分析 以上试验重复3次,每次重复10瓶
以上,实验结果为3次重复的平均值。采用统计软件
SAS8.2中的GLM过程进行差异显著性分析。结果
如为百分数,经反正弦转换后进行统计分析。
2 结果与分析
2.1培养基种类与GA3 对中国石竹种子萌发与无菌
苗生长的影响
  由表1可见,Diana F1 White种子在这四种培
养基中萌发率均较高,最低也可达70%,其中,采用
1/2MS培养基的两个处理其种子萌发率显著高于
采用 MS培养基的两个处理(P<0.05)。采用相同
培养的处理相比较,GA3 的加入没有显著提高种子
萌发率(P>0.05)。接种于4种培养基中的无菌苗
高度存在一定的差异,采用 MS培养基的两个处理
其无菌苗高度显著高于采用1/2MS培养基的两个
处理(P<0.05)。采用相同培养的处理相比较,
GA3 的加入对无菌苗高度也无显著影响(P>
0.05)。Diana F1White接种后30d时,无菌苗叶片
数均可达20片以上,不同处理相比较,无菌苗叶片
数以1/2MS+GA3 和1/2MS为最高。种子萌发
后无菌苗的生长情况如图1:A所示。
2.2植物生长物质浓度配比对中国石竹芽增殖的影响
  取上述无菌苗,切分为2cm左右的茎段,置于
培养基 MS+30g蔗糖+6g琼脂中进行培养,光照
强度为1 000~1 500lx,培养周期为30d。然后取
235 广 西 植 物                  32卷
试管苗再切分为2cm左右的茎段进行培养,3轮循
环培养后,获得大量可用于增殖培养的试管苗(图
1:B)。为进一步提高繁殖效率,以2cm左右的试
管苗茎段为外植体,采用 MS为基本培养基,通过添
加不同浓度的6-BA与NAA,组成5种诱芽培养基
配方,芽诱导的结果如表2所示。随着6-BA浓度
的升高和NAA浓度的下降,出芽率、单个外植体出
芽数、玻璃化苗发生率均呈逐渐上升趋势。从出芽
率和单个外植体出芽数来看,6-BA浓度大于或等于
3.0mg/L的3个处理出芽率明显高于6-BA浓度
小于3.0mg/L的2个处理;从玻璃化苗发生率来
看,6-BA浓度超过3.0mg/L后,玻璃化苗发生率
迅速上升。综上所述,在本研究的5个处理中,MS
+6-BA3.0mg/L+NAA 0.3mg/L对于芽诱导比
较适 宜,但 玻 璃 化 苗 发 生 率 仍 然 偏 高,达 到
26.67%。玻璃化苗的大量存在大幅降低了 Diana
F1 White组培快繁的效率(图1:C),因此,有必要采
取措施降低玻璃化苗发生率。
表1 培养基种类与GA3对Diana F1 White种子萌发与无菌苗生长的影响
Table 1 Effects of hormone type and GA3on seed germination and sterile plantlets growth of Dianthus chinensis
培养基
Medium
GA3 浓度
GA3concentration
(mg/L)
外植体数目
No.of
explants
种子萌发率
Germination
ratio of seed(%)
无菌苗高度
Length of sterile
tube plant(cm)
无菌苗叶片数
Leaf No.of
sterile tube plant
MS  0.2  30  73.33b 7.72a 23.4b
MS  0  30  70.00b 7.37ab  22.6b
1/2MS  0.2  30  86.67a 6.83b 24.6ab
1/2MS  0  30  83.33a 6.99b 26.7a
 注:以上培养基含琼脂6g/L,蔗糖25g/L。同列数据后不同字母表示差异显著(P<0.05)。下同。
 Note:6g/L agar and 25g/L sucrose were contained in medium above.The same letter within a column indicated significant at 0.05levels.
The same below.
表2 植物生长物质浓度配比对中国石竹芽增殖的影响
Table 2 Effects of plant growth substances concentration and ratio on buds proliferation of D.chinensis
6-BA浓度
6-BA concentration
(mg/L)
NAA浓度
NAA concentration
(mg/L)
外植体数目
No.of
explant
出芽率
Germination
ratio(%)
单个外植体出芽数
Buds No.
per explant
玻璃化苗发生率
Ratio of vitrification
tube plant(%)
5.0  0.1  39  92.31a 7.9a 53.85a
4.0  0.2  32  90.63a 7.4ab  37.50b
3.0  0.3  30  86.67a 6.9bc  26.67c
2.0  0.4  27  70.37b 6.4c 22.22d
1.0  0.5  36  63.89b 5.2d 19.44d
表3 琼脂、蔗糖含量对中国石竹玻璃化苗发生率、出芽率和单个外植体出芽数的影响
Table 3 Effects of agar and sucrose content on vitrification ratio,germination
ratio and buds No.of D.chinensis tube plant
光照强度
Light
intensity(lx)
琼脂浓度
Agar concentration
(g/L)
蔗糖浓度 (g/L)
Sucrose
concentration
外植体数目
No.of
explants
玻璃化苗发生率
Ratio of vitrification
tube plant(%)
出芽率
Germination
ratio(%)
单个外植体出芽数
Buds No.
per explant
1 500  7  30  30  26.67a 86.67bc  6.9cd
2 000  7  30  30  16.67b 90.00ab  8.3a
2 000  8  30  30  10.00c 86.67bc  7.5b
2 000  9  30  30  10.00c 80.00cd  6.4de
2 000  7  40  30  6.67d 93.33a 8.5a
2 000  8  40  30  3.33e 90.00ab  7.2bc
2 000  9  40  30  3.33e 83.33bc  6.2e
2 000  7  50  30  6.67d 73.33de  6.4de
2 000  8  50  30  3.33e 66.67ef  5.3f
2 000  9  50  28  3.57e 57.14f 4.7g
 注:以上培养基含6-BA mg/L 3.0mg/L,NAA 0.3mg/L。
 Note:3.0mg/L 6-BA mg and 0.3mg/L NAA were contained in medium above.
3354期          程云清等:中国石竹离体快繁与试管苗玻璃化研究
表4 不同浓度的NAA与IBA对中国石竹组培苗生根的影响
Table 4 Effects of different NAA and IBA concentration on tube plant rooting of D.chinensis
植物生长物质类型
Type of plant
growth substances
浓度
Concentration
(mg/L)
外植体数目
No.of explant
生根率
Rooting
ratio(%)
平均根条数
Average root
No.per plantlet
平均根长度
Average root
length(cm)
NAA  2.0  30  90.00b 22.4b 2.5d
1.0  30  93.33b 17.2c 2.3d
0.5  30  73.33c 9.8e 1.7e
IBA  2.0  30  100.00a 23.6ab  3.4c
1.0  30  100.00a 24.7a 4.7a
0.5  30  93.33b 12.9d 4.2b
图1 中国石竹组培快繁体系建立过程 A.种子萌发形成的无菌苗;B.继代后的无菌苗;C.玻璃化苗;D.增殖培养中的试管苗;
E.用于生根的健壮试管苗;F.试管苗生根。
Fig.1 Establishment of tissue and organ culture process of D.chinensis A.Sterile tube plant germinated from a seed;B.Sterile tube plant
after subculture;C.Vitrification tube plant;D.Tube plant during proliferation process;E.Tube plant before rooting;F.Tube plant after rooting.
2.3琼脂、蔗糖含量对中国石竹玻璃化苗发生率、出
芽率和单个外植体出芽数的影响
  为降低玻璃化苗发生率,本研究将光照强度增
加至2 000lx,在此光照条件下,检测培养基中琼
脂、蔗糖浓度增加后对玻璃化苗发生率、出芽率和单
个外植体出芽数等指标的影响,结果如表3所示。
与采用1 500lx光照条件的处理相比较,2 000lx条
件下玻璃化苗发生率下降了10%。总的看来,2 000
lx光照强度、相同蔗糖浓度条件下,随着琼脂浓度
的增加,玻璃化苗发生率下降,同时,出芽率与单个
外植体出芽数也随之下降;2 000lx光照、相同琼脂
浓度条件下,随着蔗糖浓度的增加,玻璃化苗发生率
下降,出芽率与单个外植体出芽数也随之下降。因
此,适当增加琼脂浓度与蔗糖浓度对于降低玻璃化
苗发生率均是有效的。在本研究中,琼脂浓度如超
过8g/L,或蔗糖浓度超过40g/L,继续增加琼脂或
蔗糖浓度不能降低玻璃化苗发生率,而出芽率和单
个外植体出芽数则呈继续下降趋势。在本研究的
10个处理中,琼脂浓度与蔗糖浓度分别以8g/L和
40g/L的处理玻璃化苗发生率较低,仅3.33%,出
芽率和单个外植体出芽数分别可以达到90%和7.2
个,培养30d后,增殖效率高,试管苗的生长健壮,
如图1:D所示。
2.4不同浓度的NAA与IBA对中国石竹组培苗生
根的影响
  诱导获得的芽体如长度小于3cm,在 MS+6-
BA 3.0mg/L+NAA 0.3mg/L+琼脂8g/L+蔗
糖40g/L的培养基上继代1次,继代后的试管苗生
长健壮。继代培养周期为20d,试管苗长度一般可
达5cm(图1:E)。取长度5cm以上,叶片数大于
435 广 西 植 物                  32卷
20的试管苗用于生根培养。基本培养基采用1/2
MS,培养基中的琼脂与蔗糖浓度分别为8g/L和
40g/L,附加不同种类与浓度的植物生长物质用于
生根诱导,培养4~7d后开始在基部形成白色的根
须。由表4可见,NAA与IBA诱导Diana F1 White
生根的能力明显不同,采用IBA进行生根诱导的3
个处理其生根率显著高于相同浓度的NAA处理(P
<0.05)。使用1/2MS+1.0mg/L IBA培养基的
处理试管苗生根率可达100%,其生根数目与平均
根长度也高于其它处理,根系的生长十分旺盛(图
1:F)。因此,Diana F1 White的生根诱导以1/2MS
+1.0mg/L IBA+琼脂8g/L+蔗糖40g/L为宜。
2.5中国石竹组培苗的移栽
健壮的生根苗可移栽至育苗温室进行栽培。移
栽时将组培瓶移入温室放置3~5d,然后开盖继续
炼苗2~3d。栽培土壤需要消毒,每100kg土施
50%的多菌灵粉剂5克,拌土后,覆盖塑料薄膜3~
5d。移栽时,用镊子取出小苗并洗净根部琼脂,置
于500mg/L IBA溶液中浸泡10min,移栽于消毒
后的腐殖土中,浇透水,并加盖透光塑料膜保湿。每
天检查幼苗存活情况,每2天揭膜通风1次,每次通
风时间为30min,2周后完全揭开塑料膜。此时,组
培苗有较多新根发生,成活率在95%以上。
3 结论与讨论
石竹科植物种子有休眠的特征(Vandelook等,
2008),因此,以种子为初始培养材料进行石竹科植
物的组培快繁研究需要考虑种子的休眠问题。GA3
被证实对许多种子打破休眠十分有效(Wiliam等,
2006),在本研究中,Diana F1 White种子在4种种
子萌发培养基中萌发率最低也可达70%,种子播种
于1/2MS培养基中萌发率可达83.33%,播种后
30d,无菌苗高度可达6.99cm,叶片数达26.7,长
势良好。GA3 是一种热敏性物质,不耐高温灭菌,
需要经过过滤除菌后加入到温热培养基中,这明显
增加了实际操作的复杂性。然而,培养基中加入
GA3 没有显著提高种子的萌发率(P>0.05)(表
1),在本研究中,Diana F1 White种子在培养基中的
萌发似乎无需GA3 处理来打破其休眠。强休眠水
稻品种4628种子内源激素赤霉素(GA)等含量低于
休眠性差品种996,这被认为与两者休眠期差异相
关(张桂莲等,2011)。本研究中GA3 处理没有显著
提高种子的萌发率可能与Diana F1 White种子具浅
休眠的特征或种子在萌发前已经越过休眠期有关。
综上,在本研究中Diana F1 White种子萌发培养基
采用1/2MS较为适宜。
在本研究中,Diana F1 White试管苗生长速度
快,在培养基中播种后30d,试管苗高度在6.5cm
以上(表1;图1:A)。Diana F1 White试管苗存在玻
璃化苗比例偏高的问题,最高达53.85%(表2);从
形态上看,玻璃化的Diana F1 White试管苗高大细
弱,许多叶片白化呈水浸状(图1:C)。6-BA的浓度
与玻璃化苗发生率呈正相关关系(余彭娜等,2009),
本研究玻璃化苗发生率随着6-BA浓度的增加而加
大,考虑到外植体出芽率与单个外植体出芽的数量,
6-BA 3.0mg/L和 NAA 0.3mg/L的组合为最优,
其出芽率、单个外植体出芽数保持在86.67%和6.9
个,但玻璃化苗发生率仍达到26.67%(表2)。光照
强度、琼脂和蔗糖浓度与试管苗的玻璃化发生率呈
负相关关系(Tsay等,1998),考虑到光照强度的增
加将大幅增加试管苗生产过程中的成本,因此,本研
究只将光照强度提高至2 000lx,主要通过增加琼
脂与蔗糖用量的方法进一步降低玻璃化苗比例,结
果表明,培养基中的琼脂浓度与蔗糖浓度分别增加
至8g/L和40g/L时,可有效降低玻璃化苗发生
率,在此条件下玻璃化苗发生率仅3.33%,出芽率
和单个外植体出芽数分别达到90%和7.2个(表
3),培养30d后,试管苗增殖效率高,试管苗的生长
健壮(图1:D)。Diana F1 White试管苗的生根以1/
2MS+1.0mg/L IBA+琼脂8g/L+蔗糖40g/L为
宜,在此培养基中,试管苗生根可达100%(表4),根
须数量多而长(图1:F),有利于试管苗向土壤中移
栽。本研究成功建立了中国石竹品种 Diana F1
White的组培快繁技术体系,并较好解决了快繁过
程中试管苗高速生长导致的玻璃化问题,其结果为
Diana F1 White试管苗的生产提供科学依据。
参考文献:
Aparna P,Kothari SL.2003.Direct somatic embryogenesis and
plant regeneration from leaf cultures of ornamental species of
Dianthus[J].Sci Hortic,98(4):449-459
Chen YJ(陈以俊),Shen HJ(沈惠娟).1999.Correlation between
endogenious polyamine contents and flower bud formation in
Dianthus chinensis(石竹花芽发生与内源多胺含量的关系)
[J].Acta Hortic Sin(园艺学报),26(5):341-342
Federico A,Gutiérrez M,Lourdes A,et al.2010.Optimization of
(下转第547页Continue on page 547)
5354期          程云清等:中国石竹离体快繁与试管苗玻璃化研究
Caicedo AL,Wiliamson S,Hernandez RD,et al.2007.Genome-
wide patterns of nucleotide polymorphism in domesticated rice
[J].Plos Genet,3(9):1 745-1 756
Chen Dong(陈冬),Wu Dengjun(吴登俊).2008.Approaches for
SNP genotyping(单核苷酸多态性检测方法的研究进展)[J].
Biotech Bull,2:94-96
Chu YG(褚延广),Su XH(苏晓华).2008.Research progress
of single nucleotide polymorphisms in forest trees(单核苷酸
多态性在林木中的研究进展)[J].Hereditas(遗传).30
(10):1 272-1 278
Ge XJ,Yu Y,Zhao NX.2003.Genetic variation in the endangered
Inner Mongolia endemic shrub Tetraena mongolica Maxim.(Zy-
gophylaceae)[J].Biol Cons,111:427-434
Heuertz M,De Paoli E,Klman T,et al.2006.Multilocus pat-
terns of nucleotide diversity,linkage disequilibrium and demo-
graphic history of Norway spruce[Picea abies(L.)Karst][J].
Genetics,174(4):2 095-2 105
Karron JD.1991.Patterns of Genetic Variation and Breeding Sys-
tems in Rare Plants[M]//Falk DA,Holsinger KE(eds).Ge-
netics and conservation of rare plants.New York:Oxford Uni-
versity Press:87-98
Lewis PO,Crawford DJ.1995.Pleistocene refugium endemics exhib-
it greater alozymic diversity than widespread congeners in the ge-
nus Polygonella(Polygonaceae)[J].Am J Bot,82:141-149
Liu JB(刘金波),Yang GJ(杨古几).2006.The animal and plant
resources and protection in Mamize Nature Reserve(麻咪泽自然
保护区的动植物资源及保护)[J].J Sichuan Fore Sci Technol
(四川林业科技),27(2):89-92
Maguire TL,Sedgley M.1997.Genetic diversity in Banksiaand
Dryandra(Proteaceae)with emphasis on Banksia cuneata,a rare
and endangered species[J].Heredity,79:394-401
Nordborg M,Hu TT,Ishino Y,et al.2005.The pattern of
polymorphism in Arabidopsis thaliana[J].PLoS Biol,3
(7):1 289-1 299
Rafalski JA.2002.Novel genetic mapping tools in plants:SNP and
LD based approaches[J].Plant Sci,162(3):329-333
Song SB(宋昭彬),Zou FD(邹方东),Guo C(郭聪),et al.2004.
Floristic analysis on seed plants of Meigu Dafengding national
nature reserve(美姑大风顶自然保护区种子植物区系分析)
[J].Guihaia(广西植物),24(3):207-213
Spiess EB.1989.Genetic in Population[M].Second edtion.New
York:John Wiley &Sons,773-774
Tenailon MI,Sawkins MC,Long AD,et al.2001.Patterns of
DNA sequence polymorphism along chromosome 1of maize(Zea
mays ssp.mays)[J].PNAS,9(16):9 161-9 166
Tuskan GA,DiFazio S,Jansson S,et al.2006.The genome of
black cotton wood,Populus trichocarpa(Torr &Gray)[J].
Science,313(5 793):1 596-1 604
Wang J,Tang Y,Xie ZH,et al.2009.Autecology and conserva-
tion status of Magnolia sargentiana Rehder & Wilson(Magnoli-
aceae)in the Dafengding region,southern Sichuan Province,China
[J].J Syst Evol,47(6):525-534
Xu XH(徐志豪),Zhou DG(周定国),Zhang JG(张建国).2003.
Review on the applications of the Magnoliaceous species(木兰科
植物应用综述)[J].Ningbo Agric Sci Technol(宁波农业科
技),(2):
櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢
9-12
(上接第535页Continue from page 535)
 growth regulators and silver nitrate for micropropagation of Di-
anthus caryophyllus with the aid of a response surface experi-
mental design[J].In Vitro Cell Dev-Pl,46:57-63
Huang Y(黄莺),Fan YP(范燕萍),Wang WS(王文生),et al.
2003.The induction of calus and plantlet regeneration in Dian-
thus chinensis(石竹愈伤组织诱导及植株再生)[J].J S Chin
Agric Univ:Nat Sci Edit(华南农业大学学报·自然科学版),
24(1):50-52
Karami O,Deljou A,Esna-Ashari M,et al.2006.Effect of sucrose
concentrations on somatic embryogenesis in carnation(Dianthus
caryophyllus)[J].Sci Hortic,110:340-344
Karami O,Deljou A,Pour AM.2007.Repetitive somatic embryo-
genesis in carnation on picloram supplemented media[J].J
Plant Growth Regul,51:33-39
Pareek A,Kothari SL.2003.Direct somatic embryogenesis and
plant regeneration from leaf cultures of ornamental species of
Dianthus[J].Sci Hortic,98:449-459
Tang DT(唐定台),Xu MX(徐民新),Feng YH(冯永红).1996.In
vitro flowering from explants in Dianthus chinensis and factors in-
fluenced flower formation(石竹试管花的诱导及其影响因子的
研究)[J].Acta Hortic Sin(园艺学报),23(3):277-278
Tsay H,Tsay HS,Drew RA.1998.Effects of medium composi-
tion at different recultures on vitrification of carnation(Dianthus
caryophyllus)in vitro shoot proliferation[J].Acta Hortic,461:
243-249
Vandelook F,Van de Moer D,Van Assche JA.2008.Environmental
signals for seed germination reflect habitat adaptations in four
temperate Caryophylaceae[J].Funct Ecol,22(3):470-478
Wiliam E,Finch S,Gerhard LM.2006.Seed dormancy and the con-
trol of germination[J].New Phytol,171(3):501-523
Yu PN(余彭娜),Zhou QG(周启贵),Long Y(龙云),et al.2009.
Optimization of factors for decreasing vitrification of watermelon
plantlets in vitro(降低西瓜试管苗玻璃化因素的优化)[J].J
Southwest Univ:Nat Sci Edit(西南大学学报·自然科学版),
31(10):35-38
Zhang GL(张桂莲),Zhang ST(张顺堂),Tong JL(童佳丽),et
al.2011.Study on physiologicalcharacteristics of seed dormancy
in rice(水稻种子休眠生理特性研究)[J].Chin Agric Sci
Bull(中国农学通报),27(27):65-69
7454期        王佳媛等:基于SNP分子标记的凹叶木兰遗传多样性初步研究