全 文 ：学 报
Journal of China Pharmaceutical University 2016，47(4) :469 － 473
收稿日期 2015-09-30 * 通信作者 Tel:0771 － 5605911 E-mail:qlydmyyq@ 163. com
基金项目 广西自然科学基金资助项目(No. 2013GXNSFBB053001) ;广西教育厅高校科研项目资助(No. 200911MS26)
5 种马鞭草科药用植物的抗补体活性
焦 杨
1
，邹录惠
1
，邱 莉
1，2*
，谢云峰
1
，罗 艳
1
，谢集照
1
(1广西医科大学药学院，南宁 530021;2广西高校生物分子医学研究重点实验室，南宁 530021)
摘 要 采用细胞溶血法考察了千解草(Pygmaeopremna herbacea)、白花灯笼(Clerodendrum fortunatum L. )、尖尾枫［Calli-
carpa longissima(Hemsl.)Merr. ］、赪桐［Clerodendrum japonicum(Thunb. )Sweet］及臭茉莉(Clerodendrum philippinum Schauer
var. simplex Moldenke)等 5 种马鞭草科药用植物提取物经典途径和旁路途径的抗补体活性。结果表明:千解草水提取物、白
花灯笼水提取物和醇提取物、尖尾枫水提取物和醇提取物、赪桐醇提取物及臭茉莉醇提取物有较强的经典途径抗补体活
性，对经典途径的抗补体活性(CH50)分别为 0. 092 ± 0. 008，0. 074 ± 0. 008，0. 088 ± 0. 006，0. 134 ± 0. 017，0. 123 ± 0. 010，
0. 380 ± 0. 080 及 0. 200 ± 0. 015 g /L;仅千解草和尖尾枫水提取物及白花灯笼醇提取物具有旁路途径抗补体活性，对旁路途
径的抗补体活性(AP50)分别为 0. 533 ± 0. 033，0. 758 ± 0. 031 和 0. 362 ± 0. 029 g /L。因此，5 种植物均具有不同程度的抗补
体活性，其中白花灯笼醇提取物抗补体活性最强。
关键词 马鞭草科;白花灯笼;赪桐;臭茉莉;尖尾枫;千解草;抗补体活性
中图分类号 Ｒ284 文献标志码 A 文章编号 1000 － 5048(2016)04 － 0469 － 05
doi:10． 11665 / j． issn． 1000 － 5048． 20160413
引用本文 焦杨，邹录惠，邱莉，等 . 5 种马鞭草科药用植物的抗补体活性［J］．中国药科大学学报，2016，47(4) :469 － 473.
Cite this article as:JIAO Yang，ZOU Luhui，QIU Li，et al. Anticomplementary effects of the extracts of five Verbenaceae herbs in vitro［J］． J China
Pharm Univ，2016，47(4) :469 － 473.
Anticomplementary effects of the extracts of five Verbenaceae herbs in vitro
JIAO Yang1，ZOU Luhui1，QIU Li1，2* ，XIE Yunfeng1，LUO Yan1，XIE Jizhao1
1Department of Pharmacology， Guangxi Medical University， Nanning 530021; 2 Key Laboratory of Biological Molecular Medicine
Ｒesearch of Guangxi High Education，Guangxi Medical University，Nanning 530021，China
Abstract The inhibition effects of the extracts of five Verbenaceae herbs，Clerodendrum fortunatum L. ，Cleroden-
drum japonicum ( Thunb. ) Sweet，Clerodendrum philippinum Schauer var. simplex Moldenke，Callicarpa longissi-
ma ( Hemsl. ) Merr. and Pygmaeopremna herbacea，were investigated by cell hemolysis model in vitro on classical
and alternative complement activation pathways. The water extracts of Pygmaeopremna herbacea，the water extract
and the ethanol extract of Clerodendrum fortunatum L. ，the water extract and the ethanol extract of Callicarpa
longissima ( Hemsl. ) Merr. ，the ethanol extracts of Clerodendrum japonicum ( Thunb. ) Sweet and Clerodendrum
philippinum Schauer var. simplex Moldenke showed inhibition cell hemolysis effects on the classical path-
way. Their CH50 values were 0. 092 ± 0. 008，0. 074 ± 0. 008，0. 088 ± 0. 006，0. 134 ± 0. 017，0. 123 ± 0. 010，
0. 380 ± 0. 080，and 0. 200 ± 0. 015 g /L，respectively. The water extracts of Pygmaeopremna herbacea and Calli-
carpa longissima ( Hemsl. ) Merr. and the ethanol extract of Clerodendrum fortunatum L． showed inhibition cell
hemolysis effects on alternative pathway. Their AP50 values were 0. 533 ± 0. 033，0. 758 ± 0. 031，and 0. 362 ±
0. 029 g /L， respectively. Five Verbenaceae herbs appear good anticomplementary effects in vitro. The ethanol
extract of Clerodendrum fortunatum L. showed the best inhibitory activity.
Key words Verbenaceae; Clerodendrum fortunatum L. ; Clerodendrum japonicum ( Thunb. ) Sweet; Clerodendrum
philippinum Schauer var. simplex Moldenke; Callicarpa longissima ( Hemsl. ) Merr. ; Pygmaeopremna
964
学 报 Journal of China Pharmaceutical University 2016，47(4):469 － 473 第 47 卷
herbacea; anticomplementary effect
This study was supported by the Natural Science Foundation of Guangxi Province ( No. 2013GXNSFBB053001) ; and the Ｒesearch
Foundation of Guangxi Department of Education ( No. 200911MS26)
全世界有 3 000 余种马鞭草科(Verbenaceae)
植物，主要分布于热带和亚热带地区，少数延至温
带［1］，我国有 175 种 31 变种 10 变型。马鞭草科植
物具有清热解毒等功效，为滇、桂、黔等少数民族地
区的习用药材［2－ 3］，其药效及其物质基础研究甚
少，有待深入开展。清热解毒是大部分马鞭草科药
用植物所共有的功效，通常认为，清热解毒类中药
有抗炎作用，能够改善炎症早期的毛细管通透性增
加、渗出、水肿等情况，而补体系统是体内非特异性
免疫系统的重要组成部分，其过度激活会引起严重
的炎症反应［4］。本研究采用细胞溶血法，考察赪
桐、臭茉莉、白花灯笼、尖尾枫及千解草等 5 种常用
的广西地产马鞭草科药用植物的抗补体活性。
1 材 料
1. 1 药品与试剂
Alsever液保存的绵羊红细胞、新西兰兔红细
胞、豚鼠补体血清冻干粉、兔抗羊红细胞抗体(溶
血素) (郑州百基生物技术有限公司) ;巴比妥钠、
巴比妥(美国 Armsco 公司) ;乙二醇-双(α-氨基乙
基醚)-四乙酸(EGTA) (国药集团化学试剂有限公
司) ;肝素钠注射液(上海第一生化药业有限公
司) ;其他试剂均为市售分析纯。
1. 2 试 药
赪桐、臭茉莉、白花灯笼、尖尾枫及千解草等 5
种药材均于 2014 年 9 月采自广西壮族自治区来宾
市金秀县，经广西壮族自治区食品药品检验所韦家
福中药师鉴定为赪桐 Clerodendrum japonicum
(Thunb. )Sweet、臭茉莉 Clerodendrum philippinum
Schauer var. simplex Moldenke、白花灯笼 Cleroden-
drum fortunatum L.、尖尾枫 Callicarpa longissima
(Hemsl.)Merr. 及千解草 Pygmaeopremna herbacea。
分别取各药材粗粉约 50 g，加入 10 倍量 85%
乙醇回流提取 3 次，每次 2 h，合并提取液，45 ℃旋
转蒸发仪真空浓缩到少量体积后，冷冻干燥，得到
赪桐醇提取物 5. 4 g、臭茉莉醇提取物 5. 8 g、白花
灯笼醇提取物 4. 2 g、尖尾枫醇提取物 4. 8 g、千解
草醇提取物 5. 1 g。
分别取各药材粗粉约 50 g，加入 10 倍量蒸馏
水回流提取 3 次，每次 2 h，合并提取液，50 ℃旋转
蒸发仪真空浓缩到少量体积后，冷冻干燥，得到赪
桐水提取物 6. 2 g、臭茉莉水提取物 7. 4 g、白花灯
笼水提取物 6. 5 g、尖尾枫水提取物 7. 1 g、千解草
水提取物 5. 8 g。
1. 3 仪 器
FD-1A-50 型冷冻干燥器(北京博医康实验仪
器有限公司) ;Jouan MＲ22i型低温高速离心机(法
国 Jouan 公司) ;Spectra Max Plus 384 型连续光谱
扫描式酶标仪(美国 Molecular Devices公司)。
2 方 法
2. 1 溶液的配制
巴比妥缓冲液(BBS) :将巴比妥钠 0. 58 g 溶
于热水 250 mL中，加入 NaCl 18. 5 g，MgCl2·6H2O
0. 17 g，CaCl2 0. 03 g 和巴比妥 0. 2 g，超声振荡以
加速溶解，补三蒸水至 1 000 mL。常温避光保存。
AP缓冲液:取 0. 1 mol /L EGTA 溶液(分别称
取 EGTA 3. 8 g和 NaOH 0. 7 g，溶于三蒸水 100 mL
中)40 mL，加入 BBS 450 mL、MgCl2·6H2O 0. 2 g，
加三蒸水补足至 500 mL。以 1 mol /LNaOH溶液调
节 pH至 7. 5，避光保存。
2%绵羊红细胞(sheep red blood cell，SＲBC) :
取 Alsever 液保存的 SＲBC 适量，加 BBS 混匀，
3 000 r /min离心 5 min，弃上清液。洗涤至上层液
清澈，沉淀即为 100%的压积红细胞;取之，以 BBS
配制成 2% SＲBC悬液，4 ℃保存。
0. 5%兔红细胞(rabbit red blood cell，ＲＲBC) :
取适量 Alsever液保存的兔红细胞，AP缓冲液混匀
后，3 000 r /min，离心 10 min，洗涤至上清液无色，
弃上清液，沉淀即为 100%的压积红细胞，取之，以
AP缓冲液配制 0. 5% ＲＲBC悬液，4 ℃保存。
兔抗羊红细胞抗体(溶血素) :取溶血素适量，
加入 BBS配制成为 1∶ 2 000 溶液，4 ℃保存。
2. 2 补体制备
取豚鼠血清冻干粉 1 支，加入 BBS 1. 0 mL 复
溶后，加入 2% SＲBC约 0. 1 mL，轻轻吹打混匀后，
074
第 47 卷第 4 期 焦 杨，等:5 种马鞭草科药用植物的抗补体活性
3 000 r /min离心 5 min，用以除去豚鼠血清中可能
存在的抗羊红细胞抗体，避免实验误差［5］。取上
清液作为经典途径补体备用。
取健康成年男性志愿者(20 ～ 22 岁)静脉血
10 mL，4 ℃放置 1 h，凝固后 3 000 r /min 离心
5 min，取上清液，加入以 AP 稀释液洗涤后的
0. 5%兔红细胞约 2 mL，吹打混匀后，3 000 r /min
离心 10 min，取上清液作为旁路途径补体来源，
－ 20 ℃ 冰冻保存备用。
2. 3 供试品溶液的制备
分别称取水提取物约 3 mg，BBS 或 AP 缓冲
液 800 μL 溶解，作为 1 ∶ 1溶液(质量浓度约为
3. 75 g /L，50 ℃水浴助溶) ，加 BBS 或 AP 稀释液
倍比稀释为 1. 875，0. 937 5，0. 468 8，0. 234 4，
0. 117 2，0. 058 6，0. 029 3 g /L的水提取物溶液。
分别称取醇提取物约 3 mg，先加入 DMSO
20 μL超声溶解，再加入 BBS 或 AP 缓冲液 780 μL
溶解，作为 1∶ 1溶液(质量浓度约为 3. 75 g /L，50 ℃
水浴助溶) ，加 BBS或 AP稀释液倍比稀释为 1. 875，
0. 937 5，0. 468 8，0. 234 4，0. 117 2，0. 058 6，0. 029 3
g /L的醇提取物溶液。
2. 4 补体临界浓度测定［6－ 7］
取补体(豚鼠血清)0. 1 mL，加入等量 BBS 稀
释为 1∶ 1溶液，并进一步稀释成 1 ∶ 6，1 ∶ 12，1 ∶ 20，
1∶ 25，1∶ 30，1 ∶ 36，1 ∶ 40，1 ∶ 80，1 ∶ 160，1 ∶ 320 溶液。
分别取 1∶ 2 000 溶血素、2%，SＲBC 及各浓度补体
0. 1 mL 溶于 BBS 0. 3 mL 中，混匀，37 ℃ 水浴
30 min，4 ℃、5 000 r /min 离心 10 min。同时制备
空白溶液(2% SＲBC 0. 1 mL溶于 BBS 0. 5 mL)和
全溶血溶液(2% SＲBC 0. 1 mL 溶于三蒸水
0. 5 mL)。每管分别取上清液 0. 2 mL 于 405 nm
处测吸收度，计算每管溶血率。以补体稀释度为 X
轴，各稀释浓度补体造成的溶血百分率为 Y 轴作
图。选择达到相似高的溶血率的最低补体浓度为
经典途径临界补体浓度。
取人血清补体 0. 1 mL，加入 AP缓冲液配制成
1∶ 2溶液，进一步稀释成 1 ∶ 4，1 ∶ 8，1 ∶ 16，1 ∶ 32，
1∶ 64，1 ∶ 128，1 ∶ 256 溶液。分别取 0. 5% ＲＲBC
0. 2 mL及各浓度补体 0. 15 mL 溶于 AP 稀释液
0. 15 mL 中，混匀，37 ℃ 水浴 30 min，4 ℃ 下
5 000 r /min离心 10 min。同时制备空白和全溶血
溶液。分别取每管上清液 0. 2 mL 于 405 nm 处测
吸收度，计算溶血率。以补体稀释度为 X 轴，各稀
释浓度补体造成的溶血百分率为 Y 轴作图。选择
达到相似高的溶血率的最低补体浓度为旁路途径
临界补体浓度。
2. 5 抗补体活性测定［8］
取临界浓度的补体与供试品混匀，于 37 ℃预
水浴 10 min后，按照表 1 加入适量 BBS、溶血素和
2% SＲBC，混匀，37 ℃水浴 30 min后，5 000 r /min、
4 ℃条件下离心 10 min，每管分别取上清液 0. 2 mL
于 96 孔板，405 nm处测定吸收度。由于中药提取
物本身具有颜色，且无法在实验中除去，造成最终
体系的吸收度实际是由溶血吸收度和中药提取物
吸收度两部分构成。为了消除这一影响，将不同稀
释度的中药提取物与缓冲液混合，同样水浴离心测
吸收度作对照。实验同时设置补体组和全溶血组
(表 1)。将中药提取物组吸收度值扣除相应中药
提取物对照组吸收度值后计算溶血率。以中药浓
度对数值为横坐标，溶血率作为纵坐标。计算对经
典途径的抗补体活性(CH50)。
Table 1 Volume of components for hemolysis assay on the classical
pathway (mL)
Group BBS dH2O Complement Sample Hemolysin 2% SＲBC
Tested － － 0. 2 0. 2 0. 1 0. 1
Control 0. 4 － － 0. 2 － －
Complent 0. 2 － 0. 2 － 0. 1 0. 1
Hemolysis － 0. 5 － － － 0. 1
SＲBC:Sheep red blood cell
取临界浓度的补体与供试品混匀，于 37 ℃
混匀预水浴 10 min 后，加入 0. 5% ＲＲBC。将每
管置于 37 ℃水浴 30 min 后 5 000 r /min、4 ℃条
件下离心 10 min，分别取每管上清液 0. 2 mL 于
96 孔板，405 nm 处测定吸收度。将中药提取物
组吸收度值扣除相应中药提取物对照组吸收度
值后计算溶血率。以中药浓度对数值作为横坐
标，溶血率作为纵坐标作图。计算对旁路途径的
抗补体活性(AP50)。
Table 2 Volume of components for hemolysis assay on the alternative
pathway (mL)
Group APS dH2O Complent Sample ＲＲBC
Tested － － 0. 15 0. 15 0. 20
Control 0. 35 － － 0. 15 －
Complent 0. 15 － 0. 15 － 0. 20
Hemolysis － 0. 30 － － 0. 20
ＲＲBC:Ｒabbit red blood cell
174
学 报 Journal of China Pharmaceutical University 2016，47(4):469 － 473 第 47 卷
3 结 果
3. 1 补体临界浓度的确定
在经典途径补体稀释浓度为 1∶ 3 ～ 1∶ 25 时，溶
血率接近 100%，体系基本达到溶血(图 1)。为确
保体系能够全部溶血和提高药物筛选时方法的灵
敏度，所以选择 1∶ 25 稀释的豚鼠血清作为如下经
典途径筛选实验中所使用的补体浓度。
Figure 1 Hemolysis capacities of the different dilutions of sera of
guinea pig on the classical pathway (珋x ± s，n = 3)
在旁路途径补体稀释浓度为 1∶ 2 ～ 1 ∶ 8时，溶
血率接近 100%，体系基本达到溶血(图 2)。为确
保体系能够全部溶血和提高药物筛选时方法的灵
敏度，所以选择 1∶ 8稀释的人体血清作为以下旁路
途径筛选实验中所使用的补体浓度。
Figure 2 Hemolysis capacities of the different dilutions of sera of hu-
man on the alternative pathway (珋x ± s，n = 3)
3. 2 抗补体活性测试结果
如图 3、4 所示，5 种马鞭草科植物及不同提取
方式抗补体活性均有较大差异。大部分提取物在
经典途径均有较强的抑制溶血作用;但只有千解草
和尖尾枫水提取物及白花灯笼醇提取物在旁路途
径具有抑制溶血作用(表 3)。
—◆—Water extract of Pygmaeopremna herbacea;—■—Ethanol extract
of Clerodendrum fortunatum;—▲—Water extract of Clerodendrum fortu-
natum;— ×—Ethanol extract of Callicarpa longissima;—○—Water
extract of Callicarpa longissima;—●—Ethanol extract of Clerodendrum
philippinum;——Ethanol extract of Clerodendrum japonicum;—Hepa-
rin
Figure 3 Anti-complementary activities on the classical pathway of
five herbs and heparin (珋x ± s，n = 3)
—◆—Water extract of Pygmaeopremna herbacea;—■—Ethanol extract
of Clerodendrum fortunatum;—▲—Water extract of Callicarpa longissi-
ma;— ×—Heparin
Figure 4 Anticomplementary activities on the alternative pathway of
three herbs and heparin (珋x ± s，n = 3)
Table 3 Anticomplementary acivities of the extacts from five Verben-
aceae herbs in vitro (珋x ± s，n = 3)
Sample CH50 /(g /L) AP50 /(g /L)
Ethanol extract of Pygmaeopremna herbacea ＞ 0. 89 ＞ 2. 02
Water extract of Pygmaeopremna herbacea 0. 092 ± 0. 008 0. 533 ± 0. 033
Ethanol extract of Clerodendrum fortunatum 0. 088 ± 0. 006 0. 362 ± 0. 029
Water extract of Clerodendrum fortunatum 0. 074 ± 0. 003 ＞ 1. 35
Ethanol extract of Callicarpa longissima 0. 123 ± 0. 010 ＞ 1. 45
Water extract of Callicarpa longissima 0. 134 ± 0. 017 0. 758 ± 0. 031
Ethanol extract of Clerodendrum japonicum 0. 38 ± 0. 08 ＞ 1. 43
Water extract of Clerodendrum japonicum ＞ 0. 67 ＞ 1. 58
Ethanol extract of C. philippinum 0. 20 ± 0. 05 ＞ 1. 65
Water extract of C. philippinum ＞ 0. 65 ＞ 1. 37
Heparin 0. 019 ± 0. 003 0. 015 ± 0. 002
274
第 47 卷第 4 期 焦 杨，等:5 种马鞭草科药用植物的抗补体活性
4 讨 论
补体系统在机体抗感染第一线防御中起重要
作用，正常激活能够消灭外来微生物，清除体内损
伤或死亡的细胞和组织，对机体有保护作用;但过
度激活则不仅消耗大量补体成分，使机体抗感染能
力下降，而且在激活过程中产生了大量细胞活性物
质，启动炎症级联放大反应，使机体发生剧烈的炎
症反应甚至造成组织损伤，引起病理改变［9］。
近年来，相关研究者利用细胞溶血法筛选了鱼
腥草［10］、半枝莲［11］、野马追［12］等具有清热解毒作
用中药的抗补体活性，结果显示大部分清热解毒类
中药具有显著的抗补体活性，其清热解毒的功效与
其补体抑制活性密切相关。这一事实提示清热解
毒类中药极有可能是通过免疫系统发挥其药效，深
入的化学成分研究表明黄酮类、多糖类成分是清热
解毒类中药的主要药效物质基础［10－ 11，13－ 14］。
补体的活化过程表现为一系列丝氨酸蛋白酶
的级联酶解反应。由抗原-抗体复合物结合 C1q 启
动补体激活的途径称为经典途径。由病原微生物
(包括真菌、细菌、病毒感染细胞等)提供接触表面
直接激活 C3，在 B、D 和 P 因子参与下，形成 C5 ～
C9 膜攻击复合体的活化过程为旁路途径，不需要
抗体及可被激活。正常激活的补体系统具有免疫
调节作用，但是在病理状态下，补体被过度激活，可
引起补体功能紊乱，从而导致机体产生自身免疫疾
病，包括类风湿性关节炎、哮喘、红斑狼疮等［15－ 16］。
因此此类疾病常以补体活性的变化作为一项重要
的指标。
在本研究工作中，5 种马鞭草科植物提取物在
经典途径和旁路途径均表现出不同程度的抗补体
活性。千解草水提取物、白花灯笼水提取物和醇提
取物、尖尾枫水提取物和醇提取物、赪桐醇提取物
及臭茉莉醇提取物有较强的经典途径抗补体活性，
但仅千解草和尖尾枫水提取物及白花灯笼醇提取
物具有旁路途径抗补体活性，由此推测千解草和尖
尾枫的水提取物及白花灯笼醇的提取物不仅可以
有效抑制由抗原(antigen)-抗体(IgG，IgM)复合物
激活导致的补体系统紊乱，也可在抗体产生之前的
感染早期或初次感染即可发挥作用。研究结果提
示，上述 5 种马鞭草科药用植物的化学成分值得进
一步的深入研究。
参 考 文 献
［1］ China Flora editors committee of CAS． Flora Ｒepublicae Popu-
laris Sinicae(中国植物志) ［M］． Beijing:Science Press，1982，
65(1) :1.
［2］ Jia MＲ，Li XW． Chinese Folk Medicine(中国民族药志要)
［M］． Beijing:Chinese Medical Science and Technology Publish-
ing House，2005.
［3］ Dai B． Modern Chinese Yao Medicine(中国现代瑶药) ［M］．
Nanning:Guangxi Science and Technology Press，2008.
［4］ Wei W，Li XH，Zhang HQ，et al． Inflammatory Immune Pharma-
cology(抗炎免疫药理学) ［M］． Beijing:People s Medical
Publishing House，2005:21.
［5］ Cao LY，Liang ＲY，Pan XH，et al． Methods of avoiding hemolysis
in preparing serum complements of guinea pigs［J］． J Guangzhou
Univ Tradit Chin Med(广州中医药大学学报) ，2005，22(4) :
327 － 328.
［6］ Zhu HW． Anti-complementary constituents of Eucommia ulmoides
and Arnebia euchroma(杜仲和新疆紫草的抗补体活性研究成
分) ［D］． Shanghai:Fudan University，2008.
［7］ Ni FY． Studies on anti-complement activity constituents of Ｒhodi-
ola sachalinensis A． Bor(高山红景天抗补体活性研究) ［D］．
Suzhou:Soochow University，2013.
［8］ Guo L． Effect of Bupleurum smithii on complement and rat acute
lung injury(柴胡对补体和大鼠急性肺损伤的作用) ［D］．
Shanghai:Fudan University，2008.
［9］ Morgan BP． Measurement of Complement Hemolytic Activity，Gen-
eration of Complement Depleted sera，and Production of Hemolytic
Intermediates． Complement Methods and Protocols［M］． Canada:
Humana Press Inc，2000:61 － 72.
［10］ Jiang Y，Lu Y，Zhang YY，et al． The anti-complementingredient
and pharmacological effects of Houttuynia［C］． / /The 10th
national conference on medicinal plants and phytomedicines(第
十届全国药用植物及植物药学术研讨会) ，2011.
［11］ Wu Y，Wei HP，Wang JP． Anti-complement activity of polysac-
charide B3-PS2 purified from Herba Scutellariae Barbatae［J］．
Acta Pharm Sin (药学学报) ，2009，44(6) :615 － 619.
［12］ Zhu CJ． Study on the protective effect of Ｒabdosia japonica var．
glaucocalyx (Maxim．)Hara and Eupatorium lindleyanum DC．
On lipopolysaccharide-induced acute lung injury in mice(蓝萼香
茶菜和野马追对脂多糖诱导的小鼠急性肺损伤的保护作用)
［D］． Suzhou:Soochow University，2014.
［13］ Wu SQ． Studies on the constituents from Eupatorium lindleyanum
DC．(野马追的化学成分研究) ［D］． Suzhou:Soochow Univer-
sity，2012.
［14］ Chai XY，Wang L，Song Y，et al． Study on the flavonoids from
Lonicera confusa DC．［J］． J China Pharm Univ(中国药科大学
学报) ，2004，34(4) :299 － 304.
［15］ Lustep HL，Clark WM． Current status of neuroprotective agents in
the treatment of acute ischernic stroke［J］． Curt Neurol Neurosci
Ｒep，2001，1:13 － 18.
［16］ Ｒabinovici Ｒ，Yeh CG，Hillegass LM，et al． Ｒole of complement
in endotoxin /platelet-activating factor-induced lung injury［J］． J
Immunol，1992，149:1744 － 1750.
374