全 文 ：研究报告
2011年第 37卷第 10期(总第 286期) 45
不同营养方式对普通小球藻生长特性和细胞组成的影响*
曹云涛1，孔维宝1，2，葸玉琴1，李龙囡1，夏春谷2
1(西北师范大学生命科学学院，甘肃 兰州，730070)
2(中科院兰州化学物理研究所，羰基合成与选择氧化国家重点实验室，甘肃 兰州，730000)
摘 要 采用自养、异养和混合培养 3 种营养方式对普通小球藻进行了培养，分析了 3 种培养方式下小球藻的
生长曲线、比生长速率和产率、培养基中 pH 和葡萄糖的变化，测定了藻细胞的光合色素、蛋白质和油脂含量及
其产率。结果表明:混合营养条件下小球藻的比生长速率为自养的 4. 25 ～ 4. 43 倍、异养的 0. 78 ～ 1. 00 倍，产率
为自养的 5. 79 ～ 6. 27 倍、异养的 1. 11 ～ 1. 31 倍;混合营养条件下，单位体积小球藻培养液中总叶绿素、蛋白质和
油脂的产率分别为 3. 62 mg /(L·d)、53. 41 mg /(L·d)和 44. 65 mg /(L·d) ，均高于自养和异养培养。研究认
为，混合营养方式更加符合微藻生长的实际环境，是高密度、高含量活性物质培养微藻的理想方式，具有潜在的
应用价值。
关键词 普通小球藻，自养，异养，混合营养，生长特性，细胞组成
第一作者:硕士研究生(葸玉琴、夏春谷为通讯作者)。
* 国家杰出青年科学基金项目(No． 20625308)资助;西北师范大
学青年教师基金项目(NWNU － LKQN －09 － 20)资助。
收稿日期:2011 － 06 － 29，改回日期:2011 － 08 － 17
小球藻属绿藻门(Chlorophyta)绿藻纲(Chloro-
phyceae)绿球藻目(Chlorococcales)卵囊藻科(Oocys-
taceae)小球藻属(Chlorolla) ，是一类普生性单细胞藻
类［1］。常见的有蛋白核小球藻(C． pyrenoidosa)、椭
圆小球藻(C． ellipsoidea)、普通小球藻(C． vulgar-
is)等［2］。小球藻含丰富的蛋白质、脂质、多糖、食用
纤维、维生素、微量元素和活性代谢产物，具有降血
压、降血脂，抗动脉粥样硬化，增强免疫力，抗肿瘤以
及抗病毒感染等保健功能［3］。
小球藻除了可以利用光能和 CO2 进行光合自养
以外还可以利用一种或多种有机物作为能源和碳源
在黑暗中生长［4］，即进行异养繁殖，类似于细菌的发
酵。除此之外，它还可以在光照条件下，利用有机碳
源进行混合营养生长，而且生长速度和藻密度较高。
由于小球藻的这一特性及其较高的应用价值，异养和
混合营养方式成为微藻生物技术领域的研究热
点［5］。目前，有关小球藻培养的研究国内外主要集
中在自养和异养方面［6］，但是对自养、异养和混养三
者之间的比较研究，特别是较为系统地研究微藻的混
养特性的报道相对较少。本研究通过比较分析不同
营养模式下小球藻的生长特性和细胞组成的变化，以
期获得高密度培养小球藻的理想模式，为充分利用这
一微藻资源提供实验依据。
1 材料与方法
1. 1 材料与试剂
1. 1. 1 藻种
普通小球藻(Chlorella vulgaris) ，购自中科院水
生生物研究所淡水藻种库。
1. 1. 2 试剂
NaHCO3、葡萄糖、正己烷和培养基营养盐等均为
分析纯试剂。
1. 1. 3 SEM培养基
基础培养基为土壤浸出液培养基(g /L) :0. 250
NaNO3、0. 075 K2HPO4 · 3H2O、、0. 075 MgSO4 ·
7H2O、0. 025 CaCl2 · 2H2O、0. 175 KH2PO4、0. 025
NaCl、0. 005FeCl3· 6H2O，1. 0 mL Fe-EDTA、A5 溶液
(组分为:2. 860 H3BO3、1. 810 MnCl2·H2O、0. 222 Zn-
SO4·7H2O、0. 079 CuSO4· 5H2O、0. 390 Na2MoO4·
2H2O) :1. 0 mL /L、土壤浸出液:40. 0 mL /L。
1. 2 仪器与设备
TDL －5000B 低温冷冻离心机;LDZX － 40B1 型
立式自动电热压力蒸汽灭菌器，上海申安;电子天平，
日本岛津;恒温光照摇床，江苏太仓;超净工作台，江
苏苏净;日立 UV － 1800 可见紫外分光光度计;酸度
计，美国奥利龙;溶氧仪，上海雷磁;GY92 － 2D 超声
波细胞破碎仪，浙江宁波;旋转蒸发仪，河南巩义;电
热烘箱，上海一恒。
1. 3 实验方法
1. 3. 1 实验设计
实验分为自养、异养、混养 3 组，每组又根据不同
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碳源浓度设 2 个处理，3 个平行。所有处理均在 100
mL SEM培养基中接种 10mL 对数生长期藻液，各处
理分别添加不同碳源和光照处理(见表 1)。
表 1 实验设计表
自养
对照 Auto-1
混养
Mix-2 Mix-10
异养
Hete-2 Hete-10
培养基 NaHCO3 浓度 /(g·L －1) — 1. 0 — — — —
培养基葡萄糖含量 /(g·L －1) — — 2. 0 10. 0 2. 0 10. 0
光照 /(Lux) 2 500 2 500 2 500 2 500 — —
1. 3. 2 培养方法
调培养基 pH 至 7. 2 后分装，121℃高压灭菌 20
min(NaHCO3 经紫外灭菌后添加于冷却培养基中以
防分解和产生沉淀)。无菌条件下吸取对数生长期
的藻液 10 mL 接入 100 mL 培养液中，摇匀后置于光
照恒温摇床中培养，自养和混养组直接暴露于光下，
异养组用双层黑塑料袋遮光处理。培养温度为(25
± 1)℃，摇床转速为 120 r /min，光强度为 2 500
Lux，光周期为 12 L:12 D，培养 6 d。
1. 3. 3 测定方法
1. 3. 3. 1 藻密度测定方法
采用浊度比色法测定藻密度，每 12 h 从培养瓶
中取一定量藻液适当稀释后测 660 nm 处吸光值，根
据标准曲线［Y(g /L)= 0. 385 1 × A660 － 0. 017 (R
2 =
0. 996 7) ］计算质量浓度(g /L)。根据公式:μ =
［(lnX t － lnX0)/(t － t0) ］× 2. 303(其中 X0、Xt 分别为
对数生长期始末的吸光值，t、t0 为相对应的培养时
间)求比生长速率;并根据培养时间、密度和体积等
参数计算产率。
1. 3. 3. 2 pH值的测定
pH采用酸度计测定。每 48h于无菌条件下测定
各处理培养液中的 pH值。
1. 3. 3. 3 葡萄糖含量的测定
残糖含量的测定采用蒽酮比色法［7］，根据标准
曲线方程［Y(μg)= 321. 94 A620 + 0. 804(R
2 = 0. 999
4) ］计算葡萄糖含量。
1. 3. 3. 4 光合色素含量的测定
采用三波长比色法［8］。
1. 3. 3. 5 可溶性蛋白质含量的测定方法
采用考马斯亮蓝染色法［8］。培养结束后的藻液
在 4 000 r /min下离心 10 min，用无菌水洗涤藻泥 3
次，用 100 mmol /L NaCl 溶液稀释藻泥，并进行细胞
破碎(400 W，20 min，超声 5 s，间歇 1 s) ，破碎液于 4
000 r /min 离心 10 min 后取上清测定可溶性蛋白质
含量，根据标准曲线方程 ［Y(μg)= 92. 513 A595 －
0. 7613(R2 = 0. 9996) ］计算可溶性蛋白质含量。
1. 3. 3. 6 油脂含量的测定
采用正己烷提取-称重法。4 000 r /min 离心 10
min收集培养结束的藻液，蒸馏水洗涤 2 次，离心收
集藻泥并于 70℃烘干至恒重;将干藻体用小型研磨
器充分研磨至细粉，用正己烷反复抽提 5 次，每次振
荡提取 1h，合并提取液，45℃旋转蒸发回收溶剂后在
70℃烘干至恒重，称重计算油脂含量。
1. 4 数据统计与分析
所有实验组均设置 3 个平行，所列数据采用 Ex-
cel和 SPSS13. 0 统计分析，均为 3 次平行测定的平均
值，以平均值 ±标准偏差(Mean ± Std)表示。表中同
一行数据中不同字母代表在 a = 0. 05 水平上存在显
著性差异。
2 结果与分析
2. 1 不同营养方式对小球藻生长特性的影响
采用自养、异养和混合营养 3 种方式对小球藻进
行培养，在相同条件下对其生长过程中的动态变化进
行检测，结果见图 1。
图 1 不同培养方式对小球藻生长的影响
从图 1 可以看出，3 种营养方式中，异养和混合
营养的生长速率明显优于自养。而在异养和混养两
者中，后者又表现出一定的优势，尤其是在生长的稳
定期，异养方式因为能源物质消耗殆尽，进入衰退期，
而混养却生长强劲，增长速度平稳。这是由于混合营
养兼有自养和异养的特点，即在基质中葡萄糖消耗完
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以后小球藻可进行自养代谢，使得藻细胞继续生
长［9］。
碳源是影响小球藻生长的重要因素。从图 1 中
可以看出，对于每一种营养方式，较高浓度的碳源可
以在一定程度上提高小球藻的生长速度和生物量的
积累，而异养和混合营养在生长后期的差别也从另一
个方面说明葡萄糖作为碳源对小球藻生长有促进作
用，葡萄糖的存在可能弥补了气体碳源 CO2 供应的
不充足，并可能使细胞在碳源利用中节省所消耗的
ATP和 NADPH ［10 － 11］。光照作为另一个影响小球藻
生长的因素，其重要性在本实验中也得到证实。另外
在一个光暗培养周期中，光照条件下小球藻的生长也
略快于黑暗条件下。这说明光能够促进碳源的代谢
和能量的输送［12］，利于混合营养的进行。
由表 2 可以看出异养和混合营养的比生长速率
明显高于自养，分别是其 4. 25 ～ 5. 45 倍和 4. 25 ～
4. 28 倍，这也进一步说明了图 1 的结论。而从平均
产率来看，混合营养优势更加明显，其产率为 3 种营
养方式中最高，分别是自养、异养的 5. 79 ～ 6. 27 倍和
1. 11 ～ 1. 31 倍。因此，混合营养是获得小球藻高密
度、高产量、短周期培养的最佳营养方式。
表 2 不同营养方式对小球藻比生长速率及产率的影响
对照 Auto-1 Mix-2 Mix-10 Hete-2 Hete-10
比生长速率 / (μ) 0. 028 ± 0. 002a 0. 029 ± 0. 002b 0. 119 ± 0. 008c 0. 124 ± 0. 006d 0. 119 ± 0. 004c 0. 158 ± 0. 012e
藻密度 / (g·L －1) 0. 295 ± 0. 005a 0. 368 ± 0. 007a 1. 843 ± 0. 048c 2. 120 ± 0. 037d 1. 410 ± 0. 005b 1. 916 ± 0. 035c
平均产率(P)/［g·(L·d)－1］ 0. 049 ± 0. 001a 0. 061 ± 0. 001a 0. 307 ± 0. 008c 0. 353 ± 0. 006d 0. 235 ± 0. 001b 0. 319 ± 0. 006c
2. 2 不同的营养方式下培养基的 pH和葡萄糖含量
变化
pH是影响藻类生长代谢的重要因子之一，培养
基的 pH值会影响光合作用中 CO2 的可用性，在呼吸
作用中会影响微藻对有机碳源的利用效率，同时由于
pH 值直接影响细胞膜的渗透性，会影响微藻细胞对
培养液中离子的吸收和利用，以及代谢产物的再利用
性和毒性［13 － 14］。图 2 为不同营养方式下培养基中
pH的变化情况。
图 2 不同营养方式对小球藻培养基 pH值的影响
可以看出自养条件下培养基中 pH 总体处于增
长的趋势且一直保持在碱性范围。这是由于自养条
件下小球藻光合作用强烈，随着细胞的增殖而不断消
耗培养基中由 NaHCO3 产生的 CO2，导致 HCO3
－解
离。异养条件下 pH表现为先降后升，但变化范围不
大，这是因为小球藻在异养条件没有光能无法利用环
境中的 CO2，导致 CO2 积累，培养基酸性增加。而混
合营养 pH值介于自养和异养之间，并且有明显的升
降变化，这表明混合营养条件下，细胞的光合作用和
呼吸代谢强度存在相互竞争和补助，即呼吸代谢产生
的 CO2 会被光合途径中的 CO2 泵回收重新利用。混
合营养过程中培养基中 pH 的变化可能与葡萄糖代
谢副产物的某些小分子有机酸有关［15］。另外，碳源
浓度对 pH的影响也可从图 2 中体现出来，异养和混
养条件下较高浓度的碳源抑制了培养基中 pH 的上
升，自养条件下则表现为促进作用。
图 3 为混合营养和异养条件下培养基中葡萄糖
含量随培养时间的消耗情况。可以看出混合营养和
异养对培养基中葡萄糖的消耗趋势大体相当。但是
图 3 中也反映出混合营养和异养之间仍有轻微差异，
这可能是因为混合营养有光合作用和呼吸作用产生
的 CO2 回补效应，致使对葡萄糖的消耗不如异养强
烈。
图 3 培养过程中培养基中葡萄糖含量的变化
2. 3 不同营养方式对小球藻光合色素含量的影响
图 4 为不同营养方式下小球藻叶绿素 a、叶绿素
b、类胡萝卜素和总叶绿素含量的变化。由图 4 可知，
不同营养方式下自养方式积累的叶绿素 a、叶绿素 b
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和类胡萝卜素明显高于异养和混合营养方式;而异养
和混合营养相比较，后者光合色素的含量较高。但是
自养方式下小球藻的生物量很低，所以其光合色素总
量很低。实验中还发现异养条件下的藻液呈淡黄色，
这与小球藻在异养转化过程中出现叶绿素逐渐消失、
细胞呈黄化的现象有关［16］，也有报道称小球藻的营
养方式在从自养向异养转换过程中，细胞中叶黄素的
含量会增加［17］。
图 4(a)和图 4(b)为不同营养方式对小球藻细
胞中叶绿素 a和叶绿素 b 的影响。可以看出异养和
混合营养条件下单位质量小球藻细胞中叶绿素 a 和
叶绿素 b的含量均有所下降，其中异养下降的更为明
显。而在这两种营养方式下，培养基中葡萄糖浓度越
高叶绿素 a、b含量反而越低，这表明葡萄糖不利于光
合色素的合成，有机碳作为混养和异养的碳源可能对
微藻的光合活性造成一系列影响［18］。因为光照的原
因，自养和混合营养条件下叶绿素 a和叶绿素 b的含
量随小球藻细胞的生长和细胞数目的增多而提高，其
总量的积累也随之增多，而叶绿素 a 含量增加的更
快;而在异养条件下，小球藻中叶绿素 a、b 的含量表
现为下降，这是因为细胞不能在黑暗中合成叶绿素，
随着细胞分裂的进行，单个细胞内的叶绿素含量越来
越少［19］。图 4(c)为不同营养方式下小球藻中总叶
绿素含量的变化。由图看以看出，总叶绿素含量的变
化趋势和图 4(a)图 4(b)的相同。
图 4 不同营养方式对小球藻光光合色素含量的影响
由图 4(d)可知，不同营养方式对单位质量小球
藻中类胡萝卜素含量的影响也很明显，不同培养方式
中以自养条件下类胡萝卜素的含量最高，混合营养次
之。而在相同的培养方式条件下，碳源的浓度同样对
小球藻中类胡萝卜素的含量也有影响，表现为高浓度
葡萄糖轻微抑制类胡萝卜素的合成。
对不同营养方式下小球藻总叶绿素含量和产率
分析见表 3。可以看出，单位质量小球藻中总叶绿素
的含量和产率都以自养为最高，但是由于自养方式下
的细胞密度较低，故其总产量也较低，所以自养条件
下单位体积藻液中所含总叶绿素较混合营养的低，而
单位体积藻液中总叶绿素的产率以混合营养的最好。
所以混合营养条件下随着细胞密度增大，叶绿素浓度
也增加，叶绿素浓度与细胞密度变化大致存在相同的
变化趋势。
2. 4 不同营养方式对小球藻蛋白质含量的影响
表 4 中比较了不同营养方式下单位质量、单位体
积蛋白质含量以及产率的差异。从表 4 可以看出，单
位质量蛋白质含量以自养方式下为最高，达到
43. 28%，这与李师翁等的［20］研究结果相一致。但是
因自养生物量低的缘故，所以单位体积含量则表现为
最低;而混合营养方式因为其生物量大，细胞密度高，
其单位体积蛋白质含量在不同营养方式中为最高，相
应的其产率也为最高。细胞在生长的前期，主要是利
用培养液中的营养物质进行分裂繁殖，增加生物量。
当营养盐消耗将尽，生物量积累到一定程度后，细胞
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进人生长的平衡期，此时，开始大量分泌次级代谢产
物，胞内蛋白质的合成与积累主要在此期间进行［21］。
而混合营养方式因为自身的优点，能够在小球藻生物
量增加以后仍提供营养支持，延长平衡期，以利于胞
内蛋白的积累，所以混合营养同样也是高密度培养小
球藻的前提下获得高蛋白含量的最佳营养方式。
表 3 不同营养方式对小球藻叶绿素含量和产率的影响
营养方式
单位质量总叶素
浓度 /(mg·g － 1)
单位体积总叶绿素
浓度 /(mg·L －1)
单位质量产率
(P)/［mg·(g·d)－ 1］
单位体积产率
(P)/［g·(L·d)－ 1］
对照 31. 99 ± 0. 42d 9. 44 ± 0. 12b 5. 33 ± 0. 07d 1. 58 ± 0. 02b
Auto-1 33. 06 ± 1. 30d 12. 17 ± 0. 48c 5. 51 ± 0. 22d 2. 03 ± 0. 08c
Mix-2 11. 80 ± 0. 13c 21. 75 ± 0. 24d 1. 97 ± 0. 02c 3. 63 ± 0. 04d
Mix-10 6. 31 ± 0. 19b 13. 39 ± 0. 39c 1. 05 ± 0. 03b 2. 23 ± 0. 07c
Hete-2 7. 14 ± 0. 98b 10. 06 ± 1. 39b 1. 19 ± 0. 16b 1. 68 ± 0. 23b
Hete-10 3. 31 ± 0. 21a 6. 34 ± 0. 40a 0. 55 ± 0. 03a 1. 06 ± 0. 07a
表 4 不同营养方式对小球藻蛋白质含量和产率的影响
营养方式
单位质量蛋白质
含量 /(mg·g － 1)
单位体蛋白脂
含量 /(mg·L －1)
单位体积产率(P)/
［mg·(g·d)－ 1］
蛋白质含量 /%
对照 432. 84 ± 10. 43e 92. 20 ± 2. 22a 15. 37 ± 0. 37a 43. 29 ± 1. 04e
Auto-1 394. 74 ± 5. 56d 108. 56 ± 1. 53b 18. 09 ± 0. 26b 39. 48 ± 0. 56d
Mix-2 238. 45 ± 4. 72a 211. 74 ± 4. 19e 35. 29 ± 0. 70e 23. 85 ± 0. 47a
Mix-10 256. 39 ± 1. 07b 320. 48 ± 1. 34f 53. 41 ± 0. 22f 25. 64 ± 0. 11b
Hete-2 289. 85 ± 1. 76c 119. 71 ± 0. 73c 19. 95 ± 0. 12c 28. 99 ± 0. 17c
Hete-10 265. 82 ± 3. 04b 202. 55 ± 2. 32d 33. 76 ± 0. 39d 26. 58 ± 0. 30b
2. 5 不同营养方式对小球藻油脂含量的影响
表 5 为不同营养方式下小球藻油脂含量的比较，
从表 5 中可以看出，对于 3 种营养方式在单位质量、
单位体积和产率 3 个方面，混合营养条件下小球藻油
脂积累量为最高，并且明显优于自养和异养方式。尤
其是混合营养条件下，高浓度的碳源有利于油脂的积
累，其油脂含量达到 13%，产率也达到了 44. 65mg /
(L·d) ，这与有关报道相符合［22］。从其他 2 种营养
方式中也可以看出，高浓度的碳源对小球藻细胞中油
脂的积累有促进作用，这是因为碳源浓度的提高刺激
了小球藻的生长，使得小球藻油脂积累进程加快，产
率也得以提高。所以混合营养方式也是小球藻获得
高油脂含量的最佳培养方式。据桂林等［23］报道，采
用自养、异养和混合营养培养蛋白核小球藻时发现异
养条件下粗脂肪含量最高，这和本实验有出入。这可
能是由于藻种的不同或培养基不同的原因所致，因为
小球藻油脂含量的高低同时还受基质 pH、盐度、C /
N、营养盐等因素的影响［24 － 26］。
表 5 不同营养方式对小球藻油脂含量和产率的影响
营养方式
单位质量油脂
含量 /(mg·g － 1)
单位体积油脂
含量 /(mg·L －1)
产率(P)/
［mg·(L·d)－ 1］
油脂含量 /%
对照 67. 20 ± 1. 96a 19. 82 ± 0. 58 a 3. 30 ± 0. 10 a 6. 72 ± 0. 20 a
Auto-1 72. 25 ± 3. 89 ab 26. 59 ± 1. 4 3a 4. 43 ± 0. 24a 7. 22 ± 0. 39ab
Mix-2 94. 53 ± 11. 62b 174. 22 ± 21. 41c 29. 04 ± 3. 57 c 9. 45 ± 1. 16 b
Mix-10 126. 36 ± 9. 66c 267. 92 ± 20. 49 d 44. 65 ± 3. 42 d 12. 63 ± 0. 97 c
Hete-2 74. 80 ± 2. 43 ab 105. 46 ± 3. 43 b 17. 58 ± 0. 57 b 7. 48 ± 0. 24 ab
Hete-10 89. 70 ± 9. 43 ab 171. 88 ± 18. 07 c 28. 65 ± 3. 01 c 8. 97 ± 0. 94 ab
3 讨论
本文比较研究了自养、异养、混合营养不同培养
条件下，普通小球藻的生长特性和细胞组成，考察了
不同营养方式下小球藻的比生长速率及产率、培养过
程中培养基中 pH 和葡萄糖含量、光合色素含量、蛋
白质含量、油脂含量等方面的差异。结果表明，混合
营养培养是高密度，高生物活性物质培养小球藻的最
佳方式。在混合营养培养条件下小球藻的比生长速
率和产率为最大，单位体积所合成的光合色素含量
高，并且其蛋白质和油脂产率也较自养和异养方式下
的高。自养条件下单位质量的藻体可获得较高的光
合色素和蛋白质含量，但其最大的缺点是生物量太
低。虽然异养培养使小球藻生物量有了很大提高，但
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是异养型微藻的种类相对较少［4］。
目前小球藻大规模培养多使用开放式或封闭式
池塘培养系统(即自养方式) ，这种培养系统成本较
低，但自养方式下生物量太低，油脂含量也不高，且易
污染。异养培养小球藻为扩大其生产规模开辟了广
阔的前景，但是目前报道的异养微藻的种类相对较
少。研究表明，混合营养培养条件下小球藻的生物
量、光合色素、蛋白质和油脂产率相对较高，所以混养
方式为生产高密度、高品质微藻提供了一种理想模
式，而且混合营养方式更加符合微藻生长的实际环
境，可培养的微藻种类相对较多［27］，具有规模化生产
的潜在应用价值。
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The Effects of Different Nutrition Modes on Growth Characteristics
and Cell Components of Chlorella vulgaris
Cao Yun-tao1，Kong Wei-bao1，2，Xi Yu-qin1，Li Long-nan1，Xia Chun-gu2
1(College of Life Science，Northwest Normal University，Lanzhou 730070，China)
2(State Key Laboratory for Oxo Synthesis and Selective Oxidation，Lanzhou Institute of
Chemical Physics，Chinese Academy of Sciences，Lanzhou 730000，China)
ABSTRACT The growth curves，specific growth rates and productivities of Chlorella vulgaris were analyzed under
autotrophic，heterotrophic and mixotrophic cultivation，as well as the changes of pH values and glucose consumption
in medium，the contents and productivities of photosynthetic pigment，protein and lipid were investigated． The results
indicated that the specific growth rate of C． vulgaris under mixotrophic was to 4． 25 ～ 4． 43times than autotrophic and
0． 78 ～ 1． 00 times than heterotrophic，the productivity of C． vulgaris in mixotrophic was to 5． 79 ～ 6． 27 times than
autotrophic，and 1． 11 ～ 1． 31 times than heterotrophic cultivation． The values of C． vulgaris productivities for photo-
synthetic pigment (3． 62 mg / L． d) ，protein (53． 41 mg / L． d)and lipid (44． 65 mg / L． d)were obtained under
mixotrophic cultivation in per liters culture liquid，all kinds of value more than autotrophic and heterotrophic． The
present paper showed that the mixotrophy be more fit for the physical environments of the microalgae growth condi-
tions，and be suited to microalgae cultivation with high density and high content of bioactive substances．
Key words Chlorella vulgaris，autotrophy，heterotrophy，mixotrophy，growth characteristics，cell components
信
息
窗 赛默飞世尔科技引领高效液相色谱产业发展
2011 年 10 月 8 ～ 11 日，第二届大连国际色谱学术报告会及仪器展览会在中国大连隆重召开。赛默飞世尔科技
(以下简称:赛默飞)携多款产品及技术亮相此次展会，并以铂金赞助商的身份积极支持展会期间举办的“第三十七届国际高效
液相色谱及相关技术会议”。借此契机，赛默飞携同戴安一起加强与业界专家学者沟通交流，探讨高效液相色谱的各种方法及
其他补充的分离技术，共同促进和引领高效液相色谱在中国不断发展。
赛默飞于此次展会展出的戴安液相产品优谱佳 UHPLC +，引起了业内人士的广泛关注。同时展出的还有色谱相关的诸多
耗材及处理仪器，显示了赛默飞在色谱领域大而全的产品线及服务能力。中国高效液相色谱市场有着巨大的潜力。赛默飞需
要始终保持创新优势，不仅仅是加大对技术创新、产品更新上的投入，更要不断拓展产品范围，扩大公司规模。赛默飞与戴安强
强联合，开创色谱质谱分析技术新里程，进一步巩固赛默飞在色谱质谱领域的领先地位。
展会期间，赛默飞共进行了 3 个学术报告、一场技术交流报告、16 个墙报展，集中展示了双三元液相多维应用、在线 SPE能
力以及超高速液相技术，充分与来自各地的专家代表进行了深入广泛的交流，促进高效液相色谱在中国不断发展。欲了解更多
信息，请浏览公司网站:www． thermofisher． cn (来源:易美济公关公司)