全 文 :收稿日期:2013 - 03 - 20;修回日期:2013 - 04 - 07
基金项目:国家自然科学基金(41176144) ;国家海洋公益性行业科研专项经费项目(201205027) ;国家海洋公益性行业科研专项经费项目
(200905021 -3) ;山东省自然科学杰出青年基金资助项目 (JQ200914) ;广东省中国科学院全面战略合作项目(2011A090100040)
作者简介:邵明飞(1988 -) ,男,硕士研究生,研究方向,海洋藻类学及海洋微生物学。
doi∶10. 3969 / j. issn. 2095 - 1736. 2013. 04. 093
响应面法优化螺旋藻藻蓝蛋白的超声波提取工艺
邵明飞1,张宏宇2,4,杨金萍3,张允允2,刘兆普1,秦 松2
(1. 南京农业大学 资源与环境科学学院 江苏省海洋生物学重点实验室,南京 210095;
2. 中国科学院烟台海岸带研究所 生物资源实验室,烟台 264003;
3. 烟台大学 生命科学学院,烟台 264003;
4. 中国科学院研究生院,北京 100049)
摘 要:利用超声波破壁技术提取螺旋藻中的藻蓝蛋白,采用响应曲面法对工艺条件进行优化,模型决定系数(R2
= 99. 95%)表明模型的拟合性好,得到的最佳工艺条件为:液料比为 21 mL /g,超声波功率为 640W,超声时间为 14
min。此条件下藻蓝蛋白的得率为 10. 76%,与模型预测值 10. 77%相近。对超声波提取法、冻融法、恒温浸提法进
行比较研究,藻蓝蛋白的得率分别为 10. 76%、7. 89%、6. 57%,得知超声波提取法用时短、藻蓝蛋白得率高。
关键词:超声波提取;藻蓝蛋白;螺旋藻;响应曲面法;比较
中图分类号:TQ936. 2 文献标识码:B 文章编号:2095 - 1736(2013)04 - 0093 - 04
Optimization of the ultrasonic wave extraction technology of the phycocyanin
from Spirulina (Arthrospira)using response surface analysis
SHAO Ming-fei1,ZHANG Hong-yu2,4,YANG Jin-ping3,
ZHANG Yun-yun2,LIU Zhao-pu1,QIN Song2
(1. Key Laboratory of Marine Biology in Jiangsu,College of Resources and Environmental Sciences,Nanjing
Agricultural University,Nanjing 210095;2. Biological Resources Laboratory,Yantai Institute of Coastal Zone
Research,Chinese Academy of Sciences,Yantai 264003;3. College of Life Sciences,Yantai University,
Yantai 264003;4. Graduate University of Chinese Academy of Sciences,Beijing 100049,China)
Abstract:Ultrasound technology was used to extract phycocyanin from Spirulina platensis. The effects of processing parameters were
optimized by the response surface methodology (RSM). The high determination coefficient (R2 = 99. 95%)indicated that the mathe-
matical model was quite accurate to be applied to optimize phycocyanin extraction. The results of the optimization were described as fol-
lows:ratio of PBS to raw material 21 mL /g,ultrasonic power 640W,and extraction time 14 min. The yield of phycocyanin was
10. 76% under these conditions,which perfectly matched the predicted value (10. 77%). Comparison was made among three different
methods including ultrasonic wave extraction,freezing and thawing extraction and air incubating extraction. The phycocyanin yields
were 10. 76%,7. 89% and 6. 57%,respectively. Ultrasonic wave extraction method achieved a great reduction in time and got the
highest yield.
Keywords:ultrasonic wave extraction;phycocyanin;Arthrospiru (Spirulina)platensis;RSM (response surface methodology) ;com-
parison
藻蓝蛋白作为天然捕光色素蛋白,是由脱辅基蛋 白与藻蓝胆素(开链线性四吡咯)共价结合而成,其基
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本结构由 α 亚基(17000Da)和 β 亚基(19500Da)构成
单聚体(αβ) ,然后单聚体间通过连接肽构成三聚体
(αβ)3或者六聚体(αβ)6,α 亚基 84 位处的半胱氨酸
与 β亚基 84 位处、155 位处的半胱氨酸各通过硫醚键
共价连接藻蓝胆素[1,2]。藻蓝蛋白无毒、无致癌性,具
有抗氧化[3]、抗菌活性[4]、抗癌[5]、保肝护肝[6]、预防糖
尿病[7]、清除自由基[8]等生理活性,其不仅作为天然色
素、营养蛋白用于食品、化妆品行业,而且还可用作治
疗氧化性疾病的药物及生物医药研究的荧光标记
物[9]。藻蓝蛋白是螺旋藻中的一种天然蓝色色素蛋
白,占细胞干重的 10% ~ 20%。中国的螺旋藻养殖加
工技术已相当成熟,螺旋藻干粉年产近万吨,占世界总
产量的 50%以上,这为藻蓝蛋白的规模化制备提供了
原料基础。
诸多因素影响藻蓝蛋白的提取效果,其中细胞破
壁方法、液料比、浸提时间对藻蓝蛋白的提取效果影响
较为显著[10]。超声波破壁技术通过微喷射流和超微
束作用机制[11],处理物料破壁率高,目的物质提取效
果好,已成为高效提取生物活性物质的必要环节[12,13]。
本实验通过响应曲面模型对藻蓝蛋白的超声波提取工
艺进行优化,得到藻蓝蛋白的最佳提取条件,并将此法
与冻融法、恒温浸提法进行比较,得知超声波提取法用
时短、藻蓝蛋白得率高,适用于藻蓝蛋白的快速检测分
析。
1 材料与方法
1. 1 材料与仪器
螺旋藻粉,北海生巴达生物科技有限公司提供;所
有化学试剂均为分析纯,国药集团化学试剂有限公司;
水为去离子水。
TU-1901紫外可见分光光度计,北京普析通用有限
责任公司;DHP-9082电热恒温培养箱,上海一恒科学仪
器有限公司;KQ2200E 超声波清洗器,昆山市超声仪器
有限公司;BT125D电子天平,赛多利斯科学仪器(北京)
有限公司;JY92 -Ⅱ超声波细胞粉碎机,宁波新芝生物科
技股份有限公司;BCD-209FDG冷藏冰冻箱,青岛澳柯玛
股份有限公司;CT15RT高速台式冷冻离心机,上海天美
科学仪器有限公司;Design Expert software(Version 8. 0.
5. 0)Stat-Ease Inc.,Minneapolis,America。
1. 2 实验方法
1. 2. 1 提取与分析
称取一定量的螺旋藻粉,加入磷酸盐缓冲液(0. 1
mol /L,pH 值 7. 0,含有 0. 004 mol /L 的叠氮钠) ,混匀
后超声波处理,离心(15000 r /min,15 min) ,吸取 1 mL
上清液,用磷酸盐缓冲液定容至 100 mL,在 620 nm 与
652 nm处测定容量瓶中液体的吸光度,根据下式[14]计
算藻蓝蛋白的浓度:
PC =
A620 - 0. 474 × A652
5. 34
PC,藻蓝蛋白浓度;A620,样品在 620 nm 处的吸光
度;A652,样品在 652 nm处的吸光度。
根据下式计算藻蓝蛋白的得率:
Y = PC × V × nDB × 1000 × 100
Y,藻蓝蛋白得率;PC,藻蓝蛋白浓度;V,磷酸盐缓
冲液体积;n,稀释倍数;DB,螺旋藻粉重量。
1. 2. 2 优化试验设计
采用三因素的 Box-Behnken 设计(BBD)优化提取
工艺参数。根据单因素试验结果,规定了三个因素的
变动范围及中心点值(表 1)。BBD有 17 个析因点,其
中有五个重复的中心点(表 2)。采用 Design Expert 软
件分析实验数据,求解如下表达式:
Y = A0 +∑
3
i = 1
AiXi +
3
i = 1
AiiX
2
i +∑
2
i = 1
∑
3
j = 2
AijXiXj
Y,因变量即藻蓝蛋白得率;A0、Ai、Aii、Aij,模型系
数;Xi,Xj,因素水平。
表 1 Box-Behnken设计的因素与水平
Table 1 Factors and levels of Box-Behnken design
因素 代码
水平
- 1 0 1
液料比(mL /g) X1 15 20 25
超声波功率(W) X2 620 640 660
超声时间(min) X3 12 14 16
1. 2. 3 不同提取方法的比较
对 3 种不同藻蓝蛋白提取方法进行比较:冻融
法[15]、恒温浸提法[16]、本试验获得的超声波提取法。
2 结果与分析
2. 1 单因素试验
2. 1. 1 液料比对藻蓝蛋白得率的影响
超声波功率 600W,超声时间 14 min,研究不同液
料比对藻蓝蛋白得率的影响。如图 1 所示,当液料比
从 10 mL /g增大到 30 mL /g,藻蓝蛋白得率先升高后下
降。当液料比为 20 mL /g 时,藻蓝蛋白得率最高,为
10. 72%。曲文娟等也得到相似的实验结果,液料比为
20 mL /g时提取效果最好[17]。朱劼等研究结果表明,
粉量为溶剂量的 5%是最佳的提取参数[18]。本文试验
结果与 Sivleira 等的报道不一致,他们的研究结果表
明:液料比为 12. 5 mL /g 时,藻蓝蛋白提取浓度最
大[19]。这可能是由于所用螺旋藻原粉性质不同所致。
Sivleira等用的螺旋藻粉是将螺旋藻泥放于 40℃的烘
箱中烘 48 h得到的,本试验所采用的螺旋藻粉是螺旋
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藻泥喷雾干燥所得。
图 1 液料比对藻蓝蛋白得率的影响
Fig 1 Effect of different ratios of PBS to raw material on extraction yield
2. 1. 2 超声波功率对藻蓝蛋白得率的影响
液料比 20 mL /g,超声时间 14 min,研究不同超声
波功率对藻蓝蛋白得率的影响。当超声波功率从
400W增大到 640W时,藻蓝蛋白得率由 9. 93%升高为
10. 79%(图 2)。超声波功率增大导致细胞膜表面及
周围的空化泡破裂[20],产生大量的微裂缝及孔洞,促
进物质转移,藻蓝蛋白溶出量增加。当超声波功率从
640W继续增大到 800W 时,藻蓝蛋白得率逐渐降低。
这可能是由于功率的进一步增大,产生的热量无法及
时地散去,溶液温度过高引发藻蓝蛋白的结构受到破
坏而降解,导致得率下降。朱劼等试验结果表明,超声
波功率为 630W时,藻蓝蛋白提取效果最好[18]。然而,
曲文娟等研究结果为:1400W 是最优的超声波功
率[17]。
图 2 超声波功率对藻蓝蛋白得率的影响
Fig 2 Effect of different ultrasonic power on extraction yield
2. 1. 3 超声时间对藻蓝蛋白得率的影响
液料比 20 mL /g,超声波功率 600W,研究不同超
声时间对藻蓝蛋白得率的影响。当超声时间从 10 min
延长到 14 min时,藻蓝蛋白得率显著提高(图 3)。延
长超声时间可引发更多的空化泡破裂,更多的溶剂进
入细胞,促使物质转移[21]。当超声时间从 14 min继续
延长,藻蓝蛋白得率下降,可能是产生的热量不能及时
散去导致藻蓝蛋白分解。
图 3 超声时间对藻蓝蛋白得率的影响
Fig 3 Effect of different extraction time on extraction yield
2. 2 响应面法优化
采用 Design Expert软件对表 2 的实验结果进行回
归拟合,得到藻蓝蛋白得率对三个因素的多元二次回
归模型:
Y = 10. 73 + 0. 36X1 - 2. 5 × 10
-3 X2 - 0. 02X3 -
0. 85X21 - 0. 2X
2
2 - 0. 27X
2
3 + 0. 045X1X2 - 0. 015X2X3
表 2 Box-Behnken试验设计与试验结果
Table 2 Results of Box-Behnken design
试验编号 X1 X2 X3 藻蓝蛋白得率(%)
1 - 1 0 1 9. 25
2 0 0 0 10. 74
3 1 0 1 9. 93
4 0 0 0 10. 75
5 0 - 1 1 10. 25
6 - 1 - 1 0 9. 36
7 0 - 1 - 1 10. 26
8 - 1 1 0 9. 26
9 0 0 0 10. 72
10 0 0 0 10. 73
11 1 - 1 0 10. 01
12 0 0 0 10. 73
13 - 1 0 - 1 9. 29
14 1 1 0 10. 09
15 0 1 1 10. 22
16 1 0 - 1 9. 97
17 0 1 - 1 10. 29
从表 3 二次响应面回归模型的方差分析结果可
知,回归模型高度显著(P 值 < 0. 0001)、失拟项不显
著(P 值 = 0. 0834 > 0. 05)、R2 = 99. 95%、R2adj =
99. 89%、C. V. = 0. 18,这些数据表明回归方程拟合度
和可信度均很高,能很好地对最优工艺条件进行预测。
表 3 回归模型方差分析结果
Table 3 Analysis results of regression and variance
变异来源 平方和 自由度 均方 F值 p值
模型 4. 79 9 0. 53 1572. 29 < 0. 0001
残差 2. 370 × 10 -3 7 3. 386 × 10 -4
失拟项 1. 850 × 10 -3 3 6. 167 × 10 -4 4. 74 0. 0834
误差项 5. 200 × 10 -4 4 1. 300 × 10 -4
总和 4. 79 16
R2 = 99. 95%;R2Adj = 99. 89%;CV = 0. 18
表 4 回归方程系数显著性检测结果
Table 4 Significance of regression coefficients
变异来源 回归系数 自由度 标准误差 F值 p值 显著性
常数项 10. 73 1 8. 229 × 10 - 3
X1 0. 36 1 6. 505 × 10 - 3 2977. 81 < 0. 0001 **
X2 - 2. 5 × 10 - 3 1 6. 505 × 10 - 3 0. 15 0. 7122
X3 - 0. 02 1 6. 505 × 10 - 3 9. 45 0. 018 *
X12 - 0. 85 1 9. 2 × 10 - 3 23. 92 0. 0018 **
X22 - 0. 2 1 9. 2 × 10 - 3 0. 000 1. 0000
X32 - 0. 27 1 9. 2 × 10 - 3 2. 66 0. 1470
X1X2 0. 045 1 8. 967 × 10 - 3 8974. 55 < 0. 0001 **
X1X3 0. 000 1 8. 967 × 10 - 3 520. 08 < 0. 0001 **
X2X3 - 0. 015 1 8. 967 × 10 - 3 937. 07 < 0. 0001 **
*差异显著(P值 < 0. 05) ,**差异极显著(P值 < 0. 01)
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由回归方程系数显著性检测结果(表 4)可知,试
验中一次项 X1极显著、X2不显著、X3显著;二次项 X
2
1极
显著、X22不显著、X
2
3不显著;交互项均为极显著。
根据 Box-Behnken 试验结果作响应曲面图,考察
拟合的响应曲面的形状,分析液料比、超声波功率、超
声时间三者之间交互作用对藻蓝蛋白得率的影响,其
响应曲面如图 4、5、6 所示。
利用 Design Expert 软件对模型方程求解,得到响
应值藻蓝蛋白得率最大值为 10. 77%时,液料比、超声
波功率、超声时间相应值为 21. 05 mL /g、640. 35W、
13. 93 min。按照模型预测的最优条件,根据实际情
况,在液料比为 21 mL /g、超声功率为 640W、超声时间
为 14 min的工艺条件下进行验证性试验,得到的藻蓝
蛋白得率(10. 76 ± 0. 087)%(n = 3)和预测值吻合较
好,表明该模型工艺参数准确可靠,能较好地预测实际
情况。
2. 3 不同提取方法比较
从图 7 可知,超声波提取法藻蓝蛋白得率为
10. 76%,冻融法藻蓝蛋白得率为 7. 89%,恒温浸提法
藻蓝蛋白得率为 6. 57%。不同方法对螺旋藻细胞壁
的破坏程度不同,导致藻蓝蛋白溶出量各异。超声波
提取法半天即可完成测定工作,而另外两种方法所需
时间较长。
图 7 不同提取方法对藻蓝蛋白得率的影响
Fig 7 Effect of different extraction methods on extraction yield
3 结论
1)由单因素试验和 Box-Behnken 试验设计及分析
结果得到的超声波提取螺旋藻中藻蓝蛋白的最佳工艺
条件为:液料比为 21 mL /g、超声波功率为 640W、超声
时间为 14 min,此时藻蓝蛋白得率为 10. 76%。
2)对不同提取方法进行比较,结果表明,超声波提
取法操作时间短、藻蓝蛋白得率高。本方法适用于藻
蓝蛋白的快速检测分析。
参考文献:
[1]Eriksen N T. Production of phycocyanin-a pigment with applications
in biology,biotechnology,foods and medicine[J]. Applied Microbi-
ology and Biotechnology,2008,80(1) :1 - 14.
[2]Marx A,Adir N. Allophycocyanin and phycocyanin crystal structures
reveal facets of phycobilisome assembly[J]. Biochimica et Biophysi-
ca Acta (BBA)-Bioenergetics,2012,1827(3) :311 - 318.
[3]Gantar M,Simovic D,Djilas S,et al. Isolation,characterization and
antioxidative activity of C-phycocyanin from Limnothrix sp. strain 37
- 2 - 1[J]. Journal of Biotechnology,2012,159(1) :21 - 26.
[4]Murugan T. Antibacterial activity of C-phycocyanin against clinical i-
solates by disc diffusion method[J]. Journal of Pharmacy Research,
2012,5(6) :3020 - 3021.
(下转 99 页)
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对实验组 94 位学生进行无记名 PBL 教学效果问
卷调查,结果如表 2 所示。80% 以上的学生都认为
PBL教学有助于他们对相关知识的掌握,并能拓宽知
识面。同时他们也发现自己的综合素质,如自学能力、
团队协作能力、沟通和交流能力以及发现问题及解决
问题的能力也有所提高。
5 结语
为了提高教学质量,促进学生综合素质的提高,近
年来我们积极进行教学改革,结合微生物学课程特点,
将 PBL教学模式引入课堂,受到了学生的欢迎,获得了
很好的教学效果。实践结果表明,通过 PBL教学,学生
对微生物课程产生浓厚的兴趣,学习积极性和主动性
被激发,自主学习意识提高,同时学生的自学能力、合
作意识、沟通能力等综合素质也得到显著提升。PBL
是一种理想的教学方法,值得在微生物教学中推广。
参考文献:
[1]高 健,周建良,蒋本桂,等. 普通微生物学实验教学全面开放理
论的构建[J]. 当代教育理论与实践,2012,4(3) :113 - 114.
[2]吴 刚. 基于问题式学习模式(PBL)的述评[J]. 陕西教育 · 高
教,2012 (4) :1 - 7.
[3]蔡 青,谭俊珍,李春深,等. 生理学实验教学中应用 PBL教学法
的研究与实践[J]. 基础医学教育,2012,14(8) :584 - 586.
[4]刘永峰,李建科,朱彩平. PBL教学模式在食品营养学教学中的初
步应用与探索[J]. 农产品加工 · 学刊,2012 (8) :160 - 166.
[5]Schmidt HG,Rotgans JI,Yew EHJ. The process of problem-based
learning:What works and why[J]. Medical Education,2011 (45) :
792 - 806.
[6]楚晖娟,蒋清民,魏宏亮,等. PBL教学法在有机化学教学中的应
用策略[J]. 广东化工,2012,39(6) :262 - 263.
[7]Ciraj A M,Vinod P,Ramnarayan K. Enhancing activelearning in mi-
crobiology through case based learning:experiences from an Indian
medical school[J]. Indian Journal of Pathology and Microbiology,
2010,53(4) :729 - 733.
[8]俞 颖,李 晓,黄丽丽,等. 浅谈 PBL教学模式下教师的重要性
[J]. 西北医学教育,2012,20(1) :116 - 126.
[9]李 慧. 关于 PBL教学法的几点认识[J]. 神州,2012 (25) :64.
[10]熊友华. PBL教学模式对学生自主学习能力提高的思考与实践
[J]. 江苏科技信息,2011(6) :35 - 36.
[11]张长艳,李文军,董 彬,等.“PBL”教学模式在无机化学实验课
程中的应用[J]. 实验室研究与探索,2012,31(5) :135 - 137.
[12]曲均革,黄贝贝,龙正海,等. PBL 教学在高职院校食品微生物
课程中的应用[J]. 微生物学通报,2011,38(7) :1106 - 1111.
(上接 96 页)
[5]Gantar M,Dhandayuthapani S,Rathinavelu A. Phycocyanin induces
apoptosis and enhances the effect of topotecan on prostate cell line
LNCaP[J]. Journal of Medicinal Food,2012,15(12) :1091 -
1095.
[6]Nagaraj S,Arulmurugan P,Karuppasamy K,et al. Hepatoprotective
and antioxidative effects of C-phycocyanin in CCl4 induced hepatic
damage rats[J]. Academic Journal of Cancer Research,2011,4
(2) :29 - 34.
[7]Ou Y,Lin L,Yang X,et al. Antidiabetic potential of phycocyanin:
Effects on KKAy mice[J]. Pharmaceutical Biology,2013,(0) :1
- 6.
[8]Romay C,Gonzalez R. Phycocyanin is an antioxidant protector of hu-
man erythrocytes against lysis by peroxyl radicals[J]. Journal of
Pharmacy and Pharmacology,2000,52(4) :367 - 368.
[9]Antelo F S,Costa J A V,Kalil S J. Thermal degradation kinetics of
the phycocyanin from Spirulina platensis[J]. Biochemical Engineer-
ing Journal,2008,41(1) :43 - 47.
[10]Abalde J,Betancourt L,Torres E,et al. Purification and character-
ization of phycocyanin from the marine cyanobacterium Synechococ-
cus sp. IO9201[J]. Plant Science,1998,136(1) :109 - 120.
[11]Roberts W W. Cavitation:mechanism of histotripsy[M]. Imaging
and Focal Therapy of Early Prostate Cancer,Humana Press,2013,
331.
[12]Zhong K,Wang Q. Optimization of ultrasonic extraction of polysac-
charides from dried longan pulp using response surface methodology
[J]. Carbohydrate Polymers,2010,80(1) :19 - 25.
[13]Wang Y J,Cheng Z,Mao J W,et al. Optimization of ultrasonic-as-
sisted extraction process of Poria cocos polysaccharides by response
surface methodology[J]. Carbohydrate Polymers,2009,77(4) :
713 - 717.
[14]Bennett A,Bogorad L. Complementary chromatic adaptation in a
filamentous blue-green alga[J]. Journal of Cell Biology,1973,58
(2) :419 - 435.
[15]张薇君,郝纯彦. 出口螺旋藻粉中藻胆蛋白测定方法的研究
[J]. 光谱仪器与分析,1999,3:8 - 11.
[16]Yoshikawa N,Belay A. Single-laboratory validation of a method for
the determination of c-phycocyanin and allophycocyanin in Spirulina
(Arthrospira)supplements and raw materials by spectrophotometry
[J]. Journal of AOAC International,2008,91(3) :524 - 529.
[17]曲文娟,马海乐,张厚森. 钝顶螺旋藻藻蓝蛋白的脉冲超声辅
助提取技术[J]. 食品科技,2007,32(5) :135 - 139.
[18]朱 劼,董文杰,刘 佳. 超声波协同等电点沉淀法提取螺旋
藻藻胆蛋白工艺的优化[J]. 食品科学,2010,31(10) :146 -
150.
[19]Silveira S T,Burkert J F M,Costa J A V,et al. Optimization of
phycocyanin extraction from Spirulina platensis using factorial design
[J]. Bioresource Technology,2007,98(8) :1629 - 1634.
[20]Vinatoru M. An overview of the ultrasonically assisted extraction of
bioactive principles from herbs[J]. Ultrasonics Sonochemistry,
2001,8(3) :303 - 313.
[21]Chandrapala J,Oliver C M,Kentish S,et al. Use of power ultra-
sound to improve extraction and modify phase transitions in food pro-
cessing[J]. Food Reviews International,2013,29(1) :67 - 91.
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第 30 卷第 4 期
2013 年 8 月
生 物 学 杂 志
JOURNAL OF BIOLOGY
Vol. 30 No. 4
Aug,2013