全 文 ：植物生态学报 2011, 35 (3): 330–336 doi: 10.3724/SP.J.1258.2011.00330
Chinese Journal of Plant Ecology http://www.plant-ecology.com
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收稿日期Received: 2010-06-04 接受日期Accepted: 2010-11-22
* 通讯作者Author for correspondence (E-mail: hutx001@yahoo.com.cn)
西南地区麻疯树天然种群遗传多样性的等位酶变异
张 炜1,2 罗建勋2 辜云杰2 胡庭兴1*
1四川农业大学林学院, 四川省林业生态工程省级重点试验室, 四川雅安 625014; 2四川省林业科学研究院, 成都 610081
摘 要 为了揭示麻疯树(Jatropha curcas)天然种群的遗传多样性和遗传结构, 采用聚苯烯酰胺凝胶垂直平板电泳技术, 对
采自四川、云南、贵州3个省的10个麻疯树天然种群的叶片样本进行了同工酶分析。7个酶系统10个位点的检测结果表明: 麻
疯树种群水平上的遗传多样性较高, 每位点平均等位基因数为2.428 6, 多态位点百分率为97.14%, 平均期望杂合度为0.396 4。
种群间遗传分化系数为0.041 3, 种群间总的基因流较高, 为5.808 9, 种群间遗传一致度较高(Shannon信息指数为0.921 7–
0.995 3)。非加权类平均法(UPGMA)聚类结果显示, 10个种群的遗传距离与地理距离相关性不显著。麻疯树天然种群具有较
低程度的遗传分化、较高的基因流, 种内及种群内多样性丰富, 这为麻疯树优良品种的选育提供了良好的遗传基础。
关键词 同工酶, 遗传多样性, 麻疯树
Allozyme variation of genetic diversity in natural populations of Jatropha curcas germplasm
from different areas in southwest China
ZHANG Wei1,2, LUO Jian-Xun2, GU Yun-Jie2, and HU Ting-Xing1*
1Key Laboratory of Forestry Ecological Engineering of Sichuan Province, College of Forestry, Sichuan Agricultural University, Ya’an, Sichuan 625014,
China; and 2Sichuan Academy of Forestry, Chengdu 610081, China
Abstract
Aims Our objectives was to investigate the genetic structure and diversity of ten natural populations of Jatropha
curcas.
Methods Seven loci encodings were detected by vertical polyacrylamide gel electrophoresis.
Important findings The genetic diversity of J. curcas was high at the species level with a mean number of al-
leles per locus of 2.428 6, percentage of polymorphic loci of 97.14% and a mean expected heterozygosity of 0.396 4.
A low level of genetic differentiation among populations (0.041 3) and a high estimate of gene flow (5.808 9)
were detected together with a high level of genetic identity among populations (0.921 7–0.995 3). Unweighted
pair-group mean arithmetic cluster analysis suggested that the genetic distances among populations were weakly
correlated with their geographic distances. The results provided a good genetic base to select varieties.
Key words allozyme, genetic diversity, Jatropha curcas

对于麻疯树(Jatropha curcas)遗传多样性的研
究国外近年来开展得比较多, 研究者们有的利用种
子表型和含油率的性状(Kaushik et al., 2007), 单引
物扩增反应(SPAR)标记技术, 有的采用提取佛波酯
通过高效液相色谱法测定生化指标的方法, 以及随
机扩增多态性DNA (RAPD)标记、简单重复序列区
间(ISSR)标记、简单重复序列(SSR)、序列特异性扩
增区(SCAR)标记(Basha et al., 2009)、扩增片段长度
多态性(AFLP)标记(Tatikonda et al., 2009)等方法分
析麻疯树种源遗传多样性。国内麻疯树的研究主要
集中在麻疯树各器官化学成分的分析、种子加工、
育苗造林技术以及毒蛋白等方面的研究, 分子水平
遗传多样性方面的报道很少, 仅见表型性状研究
(罗建勋等, 2008, 2009; 辜云杰等, 2009)、ISSR标记
(何玮等, 2007; 向振勇等, 2007; 欧文军等, 2009)分
析麻疯树遗多样性。但到目前还未见在等位酶(同工
酶)水平上系统研究麻疯树天然种群遗传变异的报
道。
表型性状极易受环境条件影响, 用于研究种群
遗传结果不可靠。同工酶技术为了解种群内的遗传
变异、研究种群遗传学提供了有力的工具, 它是在
种群、种甚至属的水平上研究生物遗传多样性的重
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要方法, 也是植物系统和进化研究必不可少的手
段, 以其共显性表达、重复性强、费用较低廉、操
作简便等优点, 在种群遗传、分子进化等方面具有
DNA标记不可替代的作用。
本研究对来自云南、四川2个省区的具有地理
代表性的10个麻疯树种群的遗传多样性进行分析,
分析7种酶系统7个位点上21个等位基因的遗传变
异。
1 材料和方法
1.1 采样及样品处理
试验材料来自10个种群, 各种群的地理位置和
样本数量详见表1。分单株采集, 每个地区随机选取
30个具有代表性的单株, 每株采取的嫩叶迅速放到
冰盒带回实验室作为试验材料, 尽快提取酶液放入
–80 ℃冰箱保存。
1.2 同工酶电泳
等位酶分析采用聚苯烯酰胺凝胶垂直平板电
泳技术(王中仁, 1996), 得到分离良好、谱带清晰的
酶系统, 试验采用的酶系统见表2。切胶、染色与酶
谱判读依据Soltis等(1983)、Wendel和Weeden (1989)
与王中仁(1996)的原则和方法。
1.3 酶谱的判读和分析
酶谱的分析和判读参考(葛颂, 1989; 陈少瑜等,
2001)文献, 由此获得7种酶的基因位点和等位基
因。
1.4 同工酶分析及数据处理
以各基因座的等位基因频率为基本数据, 利用
BIOSYS_11.7和POPGENE1.3232软件处理和运算
(Swofford & Selander, 1989; Yeh et al., 1997), 计算
方法参见文献(葛颂, 1989)。用下述8个遗传参数做
遗传学方面的分析研究: (1)多态基因位点百分率
(proportion of polymorphic loci, P); (2)平均每个基因
位点的等位基因数(mean number of alleles per locus,
A); (3)平均每个基因位点的等位基因的有效数目
(mean effective number of alleles per locus, Ae); (4)平
均杂合性的预期值(mean expected heterozygosity,
He); (5)平均杂合性的观察值(mean observed het-
erozygosity, Ho); (6)每个基因座位的杂合度(H); (7)
固定指数(F); (8) Shannon信息指数。
2 结果和分析
2.1 等位基因频率和等位基因分化
通过对10个种群13个酶系统(谷草转氨酶GOT、
莽草酸脱氢酶SHDH、6-磷酸葡萄糖脱氢酶6PGD、
丙氨酸氨基肽酶AAP、磷酸葡萄糖变位酶PGM、 磷
酸葡萄糖异构酶PGI、苹果酸脱氢酶MDH、亮氨酸
氨基肽酶LAP、谷氨酸脱氢酶GDH、苹果酸酶ME、
甲基萘醌还原酶MNR、乙醇脱氢酶ADH和淀粉酶
DIA)的筛选, 选定7种分离良好、酶带清晰的酶系统
(GOT、SHDH、6PGD、AAP、PGM、PGI、MNR)。
根据不同酶谱带在个体和种群中的分布, 最终确定
了7个基因位点, 发现21个等位基因, 等位基因频
率的分布见表3。每个种群检测到的等位基因及其
数目不同, SB检测到的最多,等位基因数为17个,
HPZ检测到16个, PJ、LB、FY、XSBN、HL次之, 等
位基因数为15个, YL、YNPE为14个, 最少的种群为
LS, 等位基因数为13个, 平均每个种群检测到的等

表1 麻疯树采样种群的地理位置和样本量
Table 1 Geographic locations and sample size of Jatropha curcas populations
种群代号
Population code
采样地
Seed collection site
经纬度
Longitude and latitude
海拔
Altitude (m)
水系
River system
家系数量
No. of families
LS 卢水 Lushui 98°08′ E, 25°08′ N 850 怒江 Nujiang River 30
SB 双柏 Shuangbo 101°51′ E, 25°49′ N 1 066 红河 Honghe River 30
YNPE 普洱 Puer 100°59′ E, 22°42′ N 1 300 澜沧江 Lancang River 30
XSBN 西双版纳 Xishuangbanna 100°80′ E, 22°35′ N 1 000 澜沧江 Lancang River 30
PJ 坡脚 Pojiao 102°55′ E, 26°74′ N 1 080 金沙江 Jinsha River 30
FY 泸西 Luxi 103°76′ E, 24°52′N 1 100 南盘江 Nanpan River 30
LB 雷波 Leibo 103°62′ E, 28°21′ N 960 金沙江 Jinsha River 30
HPZ 花棚子 Huapengzi 101°55′ E, 26°22′ N 983 金沙江 Jinsha River 30
HL 会理 Huili 101°55′ E, 26°10′ N 943 金沙江 Jinsha River 30
YL 金河 Jinhe 101°51′ E, 27°42′ N 1 200 雅砻江 Yagong River 30
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表2 7种酶系统和每个酶系统检测到的位点数
Table 2 Seven enzyme systems assayed and No. of loci detected in each enzyme system
酶系统
Enzyme system
缩写
Abbreviation
标准代号
EC No.
位点数
No. of loci
谷草转氨酶 Glutamic-oxalacetic transaminase GOT (E.C.2.6.1.1) 2
莽草酸脱氢酶 Shikimate acid dehydrogenase SHDH (E.C.1.1.1.25) 1
6-磷酸葡萄糖脱氢酶 Phosphoglucose dehydrogenase 6PGD (E.C 1.1.1.44) 2
丙氨酸氨基肽酶 Alanine aminopeptidase AAP (E.C.3.4.11. I) 2
磷酸葡萄糖变位酶 Phosphogluco mutase PGM (E.C.5.4.2.23) 3
磷酸葡萄糖异构酶 Phosphogluco isomerase PGI (E.C.5.3.1.9) 4
甲基萘醌还原酶 Menadione reductase MNR (E.C.1.6.99.2) 7



表3 10个麻疯树种群等位基因的频率分布
Table 3 Allele frequencies in ten natural populations of Jatropha curcas
种群 Population
位点
Locus
等位基因
Allele 金河
YL
坡脚
PJ
花棚子
HPZ
雷波
LB
法依
FY
双柏
SB
版纳
XSBN
普洱
YNPE
会理
HL
卢水
LS
平均
Mean
AAP-1 A 0.725 0.675 0.650 0.750 0500 0.675 0.600 0.750 0.550 0.650 0.652
B 0.275 0.325 0.350 0.250 0.500 0.325 0.400 0.250 0.450 0.350 0.348
SHDH A 0.300 0.350 0.300 0.600 0.600 0.775 0.600 0.500 0.525 0.325 0.487
B 0.675 0.500 0.500 0.400 0.400 0.175 0.400 0.500 0.450 0.675 0.467
C 0.025 0.150 0.200 0.000 0.000 0.050 0.000 0.000 0.025 0.000 0.045
GOT-2 A 0.425 0.375 0.325 0.350 0.350 0.350 0.300 0.400 0.325 0.275 0.347
B 0.575 0.625 0.675 0.650 0.650 0.650 0.700 0.600 0.625 0.725 0.647
PGI-4 A 0.625 0.500 0.450 0.550 0.475 0.525 0.575 0.500 0.550 0.550 0.530
B 0.375 0.500 0.500 0.375 0.475 0.350 0.425 0.500 0.450 0.450 0.440
C 0.000 0.000 0.050 0.075 0.050 0.125 0.000 0.000 0.000 0.000 0.030
6PGD-1 A 1.000 0.600 0.700 0.875 0.875 0.750 0.650 0.800 0.750 1.000 0.800
B 0.000 0.400 0.300 0.125 0.125 0.250 0.350 0.200 0.250 0.000 0.200
MNR-3 A 0. 250 0.175 0.175 0.200 0.175 0.150 0.200 0.275 0.250 0.175 0.177
B 0.750 0.825 0.825 0.800 0.825 0.850 0.800 0.725 0.750 0.825 0.797
PGM-2 A 0.700 0.875 0.850 0.700 0.825 0.650 0.700 0.625 0.575 0.675 0.718
B 0.300 0.125 0.150 0.300 0.175 0.325 0.300 0.375 0.425 0.325 0.280
C 0.000 0.000 0.000 0.000 0.000 0.025 0.000 0.000 0.000 0.000 0.002
基因频率平均值
Mean value of gene frequency
0.397 0.412 0.412 0.412 0.412 0.412 0.412 0.412 0.409 0.412 0.410
等位基因数
Number of alleles
14 15 16 15 15 17 15 14 15 13 14.9
种群代号见表1。位点缩写见表2。
Abbreviations of populations see Table 1. Abbreviations of loci see Table 2.


位基因数均值为14.9个, 各位点的等位基因频率从
0.000 0–1.000 0不等, 从99%水平的多态基因座比
例来看, 所有基因都是多态的(表3)。
2.2 种级和种群水平的遗传多样性
种群在单位点的遗传多样性差异是评价其整
体遗传多样性变异的基础, 从分析结果看(表4), 种
群间在各单位点杂合度上均有差异。如在GOT-2位
点内期望杂合度相差较小, 为0.40, 而在6PGD-1位
点的观测杂合度差异则达到了0.80。各位点的种群
平均期望(观测)杂合度也有较大变异, He变化在
0.395 (MNR-3)至0.710 (PGI-4)之间, Ho变化在0.265
(PGI-4)至0.605 (MNR-3)之间 , AAP-1、SHDH、
GOT-2、PGI-4位点的期望杂合度平均值都超过了
0.50。
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表4 10个麻疯树天然种群的遗传多样性
Table 4 Genetic diversity in ten natural populations of Jatropha curcas
种群
Population
个体
Individual
等位基因数
Number of alleles
多态位点百分率 P Shannon信息指数 I 观测杂合度 Ho 期望杂合度 He
LS 30 2.0 (0.2) 85.7 0.546 2 0.493 (0.092) 0.382 (0.065)
SB 30 2.1 (0.1) 100.0 0.642 5 0.600 (0.080) 0.440 (0.051)
YNPE 30 2.3 (0.2) 100.0 0.665 8 0.600 (0.076) 0.443 (0.050)
XSBN 30 2.1 (0.1) 100.0 0.608 8 0.564 (0.090) 0.413 (0.043)
PJ 30 2.1 (0.1) 100.0 0.596 4 0.529 (0.091) 0.407 (0.050)
FY 30 2.4 (0.2) 100.0 0.659 8 0.550 (0.089) 0.432 (0.040)
LB 30 2.0 ( 0.0) 100.0 0.628 2 0.679 (0.060) 0.449 (0.023)
HPZ 30 2.0 (0.0) 100.0 0.624 5 0.629 (0.055) 0.446 (0.027)
HL 30 2.1 (0.1) 100.0 0.662 0 0.679 (0.068) 0.472 (0.023)
YL 30 1.9 ( 0.1) 85.7 0.521 2 0.471 (0.091) 0.368 (0.066)
平均 30 2.1 (0.1) 97.1 0.615 5 0.579 (0.079) 0.425 (0.043)
种群代号见表1。括号内为标准误差。
He, mean expected heterozygosity; Ho, mean observed heterozygosity; I, Shannon information index; P, proportion of polymorphic loci. Abrreviations
of populations see Table 1. Brackets for standard error.



表5 麻疯树10个种群的单位点杂合度
Table 5 Observed heterozygosity at single locus detected in ten populations of Jatropha curcas
种群 Population 位点
Locus
杂合度
Heterozygosity 金河
YL
坡脚
PJ
花棚子
HPZ
雷波
LB
法依
FY
双柏
SB
版纳
XSBN
普洱
YNPE
会理
HL
卢水
LS
平均值
Mean
AAP-1 Ho 0.450 0.350 0.300 0.500 0.400 0.350 0.200 0.500 0.100 0.400 0.355
He 0.550 0.650 0.700 0.500 0.600 0.650 0.800 0.500 0.900 0.600 0.645
SHDH Ho 0.600 0.300 0.200 0.200 0.200 0.550 0.200 0.300 0.150 0.550 0.325
He 0.400 0.700 0.800 0.800 0.800 0.450 0.800 0.700 0.850 0.450 0.675
GOT-2 Ho 0.350 0.250 0.350 0.300 0.300 0.300 0.400 0.200 0.250 0.450 0.315
He 0.650 0.750 0.650 0.700 0.700 0.700 0.600 0.800 0.750 0.550 0.685
PGI-4 Ho 0.250 0.300 0.200 0.100 0.250 0.500 0.150 0.300 0.300 0.300 0.265
He 0.750 0.700 0.800 0.900 0.050 0.950 0.850 0.700 0.700 0.700 0.710
6PGD-1 Ho 1.000 0.200 0.400 0.750 0.750 0.500 0.300 0.600 0.500 1.000 0.600
He 0.000 0.800 0.600 0.250 0.250 0.500 0.700 0.400 0.500 0.000 0.400
MNR-3 Ho 0.500 0.650 0.650 0.600 0.650 0.700 0.600 0.450 0.600 0.650 0.605
He 0.500 0.350 0.350 0.400 0.350 0.300 0.400 0.550 0.400 0.350 0.395
PGM-2 Ho 0.400 0.750 0.700 0.600 0.750 0.700 0.400 0.250 0.350 0.350 0.525
He 0.600 0.250 0.300 0.400 0.250 0.300 0.600 0.750 0.650 0.650 0.475
Ho 0.507 0.400 0.400 0.436 0.471 0.514 0.321 0.371 0.321 0.528 0.427 平均值
Mean He 0.493 0.600 0.600 0.564 0.429 0.550 0.679 0.628 0.678 0.471 0.569
种群代号见表1。位点缩写见表2。Ho、He见表4。
Abbreviations of populations see Table 1. Abbreviations of loci see Table 2. Ho, He see Table 4.


2.3 种群的遗传分化与基因流
麻疯树10个种群在7个位点的F统计量及其分
解值和Nm值见表6。种群间的遗传分化系数(Fst)在不
同位点间的差异较大, 变化范围为0.008 (GOT-2)–
0.105 (6PGD-1),平均为0.042, 表明仅有4.2%的变异
存在于麻疯树种群间, 95.8%的变异存在于种群内,
种群内的遗传变异是麻疯树总变异的主要来源。
根据基因分化系数估算得到麻疯树种群间的
基因流(Nm)变化范围, 从6PGD-1位点的2.1204到
GOT-2位点的31.3408, 位点间差异很大。种群间所

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表6 麻疯树天然种群F统计量及基因流
Table 6 Estimated F-statistics and gene flow in natural population of Jatropha curcas
位点 Locus Fis Fit Fst Nm
AAP-1 –0.462 2 –0.422 3 0.027 3 8.920 6
SHDH –0.365 0 –0.245 9 0.087 2 2.615 7
GOT-2 –0.512 6 –0.500 6 0.007 9 31.340 8
PGI-4 –0.506 9 –0.486 8 0.013 3 18.552 9
6PGD-1 –0.397 4 –0.250 0 0.105 5 2.120 4
MNR-3 –0.234 9 –0.223 0 0.009 6 25.692 8
PGM-2 –0.221 1 –0.167 7 0.043 7 5.467 3
Mean –0.397 7 –0.340 0 0.041 3 5.808 9
Fis, 单个种群水平近交系数; Fit, 总种群水平近交系数; Fst, 种群间遗传分化系数; Nm, 基因流。位点缩写见表2。
Fis, inbreeding coefficient at individual population level; Fit, inbreeding coeffcient at total population level; Fst, population differentiation; Nm, gene
flow estimated from Fst = 0.25(1 –Fst)/Fst. Abbreviations of loci see Table 2.


表7 麻疯树种群间的遗传距离D (对角线下方)及遗传一致度I (对角线上方) (Nei, 1978)
Table 7 Genetic distances (below diagonal) and genetic identities (above diagonal) among populations of Jatropha curcas (Nei,
1978)
种群代号
Population code YL PJ HPZ LB FY SB XSBN YNPE HL LS
YL **** 0.943 6 0.956 1 0.973 9 0.955 2 0.921 7 0.943 4 0.977 7 0.961 7 0.990 9
PJ 0.058 1 **** 0.995 3 0.958 1 0.961 7 0.941 2 0.975 3 0.964 5 0.959 1 0.945 0
HPZ 0.044 9 0.004 7 **** 0.964 1 0.969 9 0.941 8 0.972 1 0.967 6 0.962 8 0.962 4
LB 0.026 4 0.042 8 0.036 5 **** 0.979 3 0.983 3 0.980 7 0.990 2 0.980 0 0.974 3
FY 0.045 8 0.039 0 0.030 5 0.020 9 **** 0.969 4 0.979 3 0.968 1 0.977 6 0.966 8
SB 0.081 5 0.060 6 0.059 9 0.016 9 0.031 1 **** 0.981 0 0.965 3 0.970 7 0.928 4
XSBN 0.058 3 0.025 0 0.028 3 0.019 5 0.020 9 0.019 2 **** 0.979 3 0.989 5 0.953 8
YNPE 0.022 6 0.036 1 0.033 0 0.009 8 0.032 4 0.035 3 0.021 0 **** 0.987 2 0.975 6
HL 0.039 0 0.041 8 0.037 9 0.020 2 0.022 7 0.029 7 0.010 5 0.012 9 **** 0.968 7
LS 0.009 1 0.056 6 0.038 3 0.026 0 0.033 7 0.074 3 0.047 3 0.024 8 0.031 8 ****
种群代号见表1。
Populations codes see Table 1.


有位点的Nm估计值较高, 为3.0472, 与麻疯树种群
间遗传分化程度较小相一致(表6)。
配子贡献度(Fit)和固定指数(Fis)分别代表总体
水平和单个种群内个体间近交的指标, 10个种群的
Fit和Fis所有位点均为负值, 总种群的Fit和Fis也均为
负值, 分别为–0.397 7和–0.340 0 (表6), 表明无论在
总体水平还是种群内个体间, 麻疯树种群都表现为
杂合体过量的现象。
2.4 种群间的遗传距离与聚类分析
根据Nei (1972)的方法计算出遗传一致度I和遗
传距离D (表7)。各种群的I较高, 变幅为0.921 7–
0.987 2, 而D的变化范围为0.004 7–0.081 5, 进一步
比较发现云南普洱与云南双柏种群之间的I最高而
D最近(I = 0.995 3, D = 0.004 7), LS与FY的I最低而
D最远(I = 0.921 7, D = 0.081 5)。
以Nei (1972)遗传距离进行UPGMA聚类分析
(图1), 结果显示, 麻疯树10个种群分为2组: 在第1
组中, YL与LS两种群聚在一起形成一组, 在第2组



图1 麻疯树种群的Nei’s遗传距离UPGMA聚类图。种群代
号同表1。
Fig. 1 UPGMA dendrogram of Jatropha curcas populations
based on Nei’s genetic distance. Population codes see Table 1.
张炜等: 西南地区麻疯树天然种群遗传多样性的等位酶变异 335

doi: 10.3724/SP.J.1258.2011.00330
的8个种群中PJ与HPZ先聚在一起, LB与SB种群先
聚在一起, XSBN与HL和YNPE先聚在一起, 然后三
者再聚在一起, 再与FY聚在一起, 最后与聚在一起
的两个种群PJ与HPZ聚成一组。
3 讨论
3.1 麻疯树种群遗传多样性
通过同工酶标记对10个天然种群的研究发现:
10个种群在物种水平的多态百分率(PPB)为97.1%,
与何玮等(2007)用ISSR标记对麻疯树种群遗传多样
性研究结果中PPB为97.04%趋于一致, 表明麻疯树
种群的遗传多样性处于丰富的水平。10个麻疯树种
群的He为0.396 4。根据Hamrick (1989), 热带树木的
He为0.211, 针叶树种的为0.207, 双子叶植物的为
0.113, 所有植物的为0.141。这一结果表明, 西南地
区的麻疯树具有较高的遗传多样性。
3.2 麻疯树种群间的遗传关系
比较麻疯树的种群分布(表1)和根据Nei’s遗传
距离的UPGMA聚类图(图1), 发现两个种群间PJ和
HL的地理距离最近, 在聚类图上却分布在两支上,
而地理距离相对较远的盐源金河YL和云南卢水LS
种群却聚在了一起。分析表明种群间的遗传距离与
地理距离无明显的相关关系。Hamrik (1990)认为,
种群的地理分布和遗传多样性分布没有直接的相
关性, 本研究结果支持这一结论。
3.3 麻疯树遗传多样性保护和树种改良
种群间的Fst平均为0.042, 表明仅有4.2%的变
异存在于麻疯树种群间, 95.8%的变异存在于种群
内, 说明这些种群内的遗传变异是麻疯树总变异的
主要来源, 种群内杂合程度相当高, 说明有可能存
在自花授粉不育现象。从DNA分子水平来看, 遗传
距离的变幅越大, 说明其遗传分化越大、遗传多样
性越高, 遗传背景越复杂, 这对麻疯树优良品种的
选育极为有利。种群间基因流动大, 有利于该物种
的进化和扩展, 但同时在育种中要防止花粉等的飘
污等。从同工酶遗传变异研究结果可以看出, 麻疯
树遗传改良策略主要要利用种群间的遗传变异, 开
展优良种源的选择和利用; 同时也要充分利用种群
内的遗传变异, 开展优良单株的选择和利用, 筛选
高油、高产和多抗的无性系优良品种。
致谢 国家“十一五”科技支撑计划项目(2007BAD-
50B01-01)和四川省育种攻关项目(2006YZGG-10)
资助。
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责任编委: 葛 颂 责任编辑: 李 敏