土地整理保证了我国耕地总量的动态平衡和占补平衡,已成为实现国土资源集约利用的主要手段,但整治过程中的强度扰动会对土壤质量产生一定的影响.为了解土地整理对土壤微生物多样性的影响,采用PLFA法研究了土地整理1年(Z1a)、4年(Z4a)后土壤微生物群落多样性的变化.结果表明: 与未整理(Z0)相比,土地整理1年后,土壤pH值提高了14.6%,土壤有机碳质量分数降低了65.4%;各菌群磷脂脂肪酸PLFAs含量和相对丰度均显著下降(P<0.05),下降幅度达43.4%~63.7%和25.2%~53.9%;真菌/细菌(F/B)显著下降(P<0.05),降低了35.9%,而革兰氏阳性菌/革兰氏阴性菌(G+/G-)升高明显,增加了56.1%,均与有机碳的降低和pH值的升高有显著相关关系;土壤微生物多样性Shannon指数和均匀度指数(E)均显著下降,Z0与Z1a、Z4a之间的差异达显著水平;土地整理4年后,表征土壤微生物群落多样性的各指标相比整理1年的样地有所提升,但与未整理样地仍有显著差异.综上,土地整理显著影响着土壤微生物群落的组成,降低了土壤生态系统的稳定性.
Land consolidation has become a main means of achieving the intensive use of land resources, which ensures the dynamic equilibrium and requisitioncompensation balance of the total cultivated land in China. However, the intensive disturbance during the land consolidation may affect the soil quality. In order to investigate the effect of land consolidation on soil microbial diversity, we studied the changes of soil microbial community diversity after 1year and 4year land consolidation by using PLFA method. The results indicated that compared with no consolidation (Z0), for land consolidation after 1a (Z1a), the soil pH value increased by 14.6%, the soil organic carbon content decreased by 65.4%, the phospholipid fatty acids content and relative abundance of all the microflora decreased significantly (P<0.05) by 43.4%-63.7% and 25.2%-53.9%, respectively, and the ratio of fungi/bacteria (F/B) decreased significantly by 35.9% (P<0.05), while the ratio of Grampositive bacteria/Gramnegative bacteria (G+/G-) increased significantly by 56.1%. These were significantly related to the increased pH value and the decrease of organic carbon content. The Shannon index and evenness index (E) of soil microbial diversity were significantly decreased, with significant differences observed among Z0 and Z1a, Z4a. After 4-year land consolidation, the indices characterizing soil microbial community diversity were improved compared with those after 1-year land consolidation. In summary, the land consolidation could significantly affect the composition of soil microbial communities, and decrease the stability of the soil ecosystem.
全 文 :土地整理对土壤微生物群落多样性的影响
叶 晶1,3 何立平2 李东宾2 余敏芬2 吴家森1∗
( 1浙江农林大学浙江省森林生态系统碳循环与固碳减排重点实验室, 浙江临安 311300; 2浙江省宁波市林场, 浙江宁波
315440; 3临安市板桥镇农业公共服务中心, 浙江临安 311301)
摘 要 土地整理保证了我国耕地总量的动态平衡和占补平衡,已成为实现国土资源集约利
用的主要手段,但整治过程中的强度扰动会对土壤质量产生一定的影响.为了解土地整理对
土壤微生物多样性的影响,采用 PLFA 法研究了土地整理 1 年(Z1a)、4 年(Z4a)后土壤微生
物群落多样性的变化.结果表明: 与未整理(Z0)相比,土地整理 1 年后,土壤 pH 值提高了
14.6%,土壤有机碳质量分数降低了 65.4%;各菌群磷脂脂肪酸 PLFAs含量和相对丰度均显著
下降(P<0.05),下降幅度达 43.4% ~ 63.7%和 25.2% ~ 53.9%;真菌 /细菌(F / B)显著下降(P
<0.05),降低了 35.9%,而革兰氏阳性菌 /革兰氏阴性菌(G+ / G-)升高明显,增加了 56.1%,均
与有机碳的降低和 pH值的升高有显著相关关系;土壤微生物多样性 Shannon 指数和均匀度
指数(E)均显著下降,Z0与 Z1a、Z4a之间的差异达显著水平;土地整理 4年后,表征土壤微生
物群落多样性的各指标相比整理 1年的样地有所提升,但与未整理样地仍有显著差异.综上,
土地整理显著影响着土壤微生物群落的组成,降低了土壤生态系统的稳定性.
关键词 土地整理; 土壤有机碳; 土壤微生物群落多样性
本文由宁波市林业局项目(2013L08)和浙江省森林生态系统碳循环与固碳减排重点实验室开放项目(FCLAB2015008)资助 This work was sup⁃
ported by the Project of Ningbo Forestry Bureau, China (2013L08) and the Open Project of Zhejiang Provincial Key Laboratory of Carbon Cycling in Fo⁃
rest Ecosystems and Carbon Sequestration, China (FCLAB2015008).
2015⁃08⁃10 Received, 2016⁃01⁃15 Accepted.
∗通讯作者 Corresponding author. E⁃mail: jswu@ zafu.edu.cn
Effect of land consolidation on soil microbial community diversity. YE Jing1,3, HE Li⁃ping2,
LI Dong⁃bin2, YU Min⁃fen2, WU Jia⁃sen1∗ ( 1Zhejiang Provincial Key Laboratory of Carbon Cyc⁃
ling in Forest Ecosystems and Carbon Sequestration, Zhejiang A&F University, Lin’ an 311300,
Zhejiang, China; 2Ningbo Forest Farm, Ningbo 315440, Zhejiang, China; 3Agricultural Service
Center of Banqiao Town, Lin’an 311301, Zhejiang, China) .
Abstract: Land consolidation has become a main means of achieving the intensive use of land re⁃
sources, which ensures the dynamic equilibrium and requisition⁃compensation balance of the total
cultivated land in China. However, the intensive disturbance during the land consolidation may af⁃
fect the soil quality. In order to investigate the effect of land consolidation on soil microbial diversi⁃
ty, we studied the changes of soil microbial community diversity after 1⁃year and 4⁃year land conso⁃
lidation by using PLFA method. The results indicated that compared with no consolidation (Z0),
for land consolidation after 1a (Z1a), the soil pH value increased by 14.6%, the soil organic car⁃
bon content decreased by 65.4%, the phospholipid fatty acids content and relative abundance of all
the microflora decreased significantly (P<0.05) by 43.4%-63.7% and 25.2%-53.9%, respective⁃
ly, and the ratio of fungi / bacteria (F / B) decreased significantly by 35.9% (P<0.05), while the
ratio of Gram⁃positive bacteria / Gram⁃negative bacteria (G+ / G-) increased significantly by 56.1%.
These were significantly related to the increased pH value and the decrease of organic carbon con⁃
tent. The Shannon index and evenness index (E) of soil microbial diversity were significantly de⁃
creased, with significant differences observed among Z0 and Z1a, Z4a. After 4⁃year land consolida⁃
tion, the indices characterizing soil microbial community diversity were improved compared with
those after 1⁃year land consolidation. In summary, the land consolidation could significantly affect
the composition of soil microbial communities, and decrease the stability of the soil ecosystem.
Key words: land consolidation; soil organic carbon; soil microbial community diversity.
应 用 生 态 学 报 2016年 4月 第 27卷 第 4期 http: / / www.cjae.net
Chinese Journal of Applied Ecology, Apr. 2016, 27(4): 1265-1270 DOI: 10.13287 / j.1001-9332.201604.011
土地整理( land consolidation)是我国土地资源
紧缺性日益突出的形势下,国家为保障粮食安全和
生态安全而提出的、以提高土地资源有效利用为目
的的重要举措[1] .根据国土资源部制定公布的《全国
土地整治规划》 [2],2001—2010 年,通过土地整治,
全国已累计补充耕地 276.1 ´104 hm2,到 2015 年全
国将通过土地整治再补充耕地 160 ´104 hm2 .因此土
地整理保证了耕地总量的动态平衡和占补平衡,已
成为实现国土资源集约利用的主要手段.
随着土地整理的开展,相关部门和研究人员已
十分关注土地整理对土壤质量的影响,土地整理后,
土壤有效磷、速效钾和活性有机碳明显降低,pH 值
明显升高[3],土壤有效态铁、锰、铜、锌、硼的含量均
下降,其中有效铁较整理前减少 72.7%[4],整理区土
壤容重和紧实度增高 1.34、484 倍[5],新增耕地土壤
的有效养分及有机碳比较缺乏[6];土地整理后不同
区域生态服务价值总量下降了 10.5% ~33.1%[7],耕
地景观破碎度升高[8];随着土地整理年限的推移,
土壤质量各指标均有一定的提高[9] .由于不同项目
区自然社会经济条件、土地整理措施和管理方式不
同,因此所得结果存在较大的差异甚至相反,同时现
有研究偏重于土壤理化性质的分析,而对土壤微生
物的影响则鲜有报道.
土壤微生物群落是土壤生物区系中最重要的功
能组分之一,是土壤生态系统变化的预警及敏感指
标,指示着土壤质量的变化[10] .目前磷脂脂肪酸
(phospholipid fatty acid,PLFA)分析被广泛应用于土
壤微生物群落多样性的研究.PLFA是活体微生物细
胞膜的重要组分,不同微生物的磷脂具有特异性,通
过对土壤微生物 PLFA 的分析,可以定量地反映不
同类群微生物生物量、总生物量和微生物群落结
构[11] .因此,本文采用 PLFA 分析法,研究了不同土
地整理年限土壤微生物群落多样性的变化,旨在揭
示土地整理对土壤生态系统和土壤质量的影响,为
评估土地整理的效果提供科学依据.
1 研究区域与研究方法
1 1 研究区概况
研究区位于浙江省宁波市林场 ( 29° 38′—
29°48′ N, 121°13′—121°58′ E),属于中亚热带湿润
季风气候,四季分明,光照充足,雨量充沛.冬夏季风
交替明显,夏季凉爽,最高气温不超过 31 ℃,最热月
平均气温为 23.9 ℃;冬季寒冷,最低气温达-14 ℃,
年平均气温 11.8 ℃,年降水量约 2000 mm,年平均
相对湿度为 83%.园区内母岩为砂砾岩,土壤以黄壤
为主[12] .土地整理区原有立地类型为黄山松(Pinus
taiwanensis)疏林,林分平均胸径 14.5 cm,平均树高
9.0 m,密度 180株·hm-2,郁闭度 0.15,主要灌木有
檵木( Loropetalum chinense)、映山红 (Rhododendron
simsii)、微毛柃 ( Eurya hebeclados) 等,盖度 70%.
2009—2012年,根据有关政策及规划,将黄山松疏
林地改造开垦为耕地,在整理过程中坡地改造为梯
田,表土层剥离、心土层裸露,土壤扰动强烈.
1 2 样品采集与测定
1 2 1样品采集 2013年 10月,根据土地整理区的
地形地貌、土壤类型特征、土地利用方式和整理项目
的现状,分别选择土地整理年限为 1 年(Z1a)、4 年
(Z4a)和未整理区(Z0)的代表性样地各 4 个(即 4
次重复).Z0为黄山松疏林,即在土地整理区域范围
内未被开垦的原生植被样地;Z1a 的样地为 2012 年
新整理,未种植任何植物;Z4a 的样地为 2009 年整
理,已种植苗木,种类有南方红豆杉(Taxus wallichi⁃
ana var. mairei)、日本扁柏(Chamaecyparis obtusa)
等,平均株高 0.8 m,平均地径 2.0 cm,密度 30000
株·hm-2,每年施用复合肥 ( N ∶ P 2 O5 ∶ K2 O =
15 ∶ 15 ∶ 15)600 kg· hm-2 .在各样地中,按“ S”型
布点,分别采集 5 个 0 ~ 20 cm 土壤样品,将其分别
混合,除去动植物残体和石块等杂质,然后采用四分
法分取样品 1 kg左右装入塑料袋中,密封保存于冰
盒并迅速带回实验室. 采集的新鲜土样在实验室内
一分为二,其中 1 份过 2 mm 土壤筛后直接用于微
生物群落结构分析;另 1 份自然风干后用于土壤基
本理化性质的测定.
1 2 2土壤微生物群落磷脂脂肪酸生物标记分析
采用 Bossio等[13]的方法进行脂类提取和磷脂脂肪酸
分析:土样用体积比为 1 ∶ 2 ∶ 0.8的氯仿 ∶ 甲醇 ∶ 柠
檬酸缓冲液振荡提取总脂类,SPE 硅胶柱分离得到
磷脂脂肪酸,碱性甲酯化后,用 Agilent 6890N 气相
色谱仪分析 PLFA 的成分,内标为正十九烷酸甲酯
(19:0).色谱条件:HP⁃5 柱 ( 25. 0 m × 200 μm ×
0. 33 μm),进样量 1 μL,分流比 10 ∶ 1,氮气(N2)
流速 0 8 mL·min-1 .二阶程序升高柱温:170 ℃起
始,5 ℃·min-1升至 260 ℃,而后以 40 ℃·min-1升
至310 ℃,维持 1.5 min.脂肪酸成分通过 MIDI Sher⁃
lock 微生物鉴定系统 ( Version 4. 5, MI⁃DI, Inc.,
Newark, DE)进行.然后利用土壤微生物特定 PLFA
的含量和碳内标 19:0 的浓度来计算各微生物生物
量.单个 PLFA的含量采用 nmol·g-1干土进行描述.
6621 应 用 生 态 学 报 27卷
本研究采用 PLFA i14:0、i15:0、a15:0、i16:0、
i17:0 和 a17:0 表征革兰氏阳性菌 ( Gram⁃positive
bacteria, G+);16:1ω7c、cy17:0、18:1ω7c、cy19:0 表
征革兰氏阴性菌 ( Gram⁃negative bacteria, G- ) [14];
i14:0、 i15:0、 a15:0、15:0、 i16:0、16:1ω7c、17:0、
i17:0、 a17: 0、 cy17: 0、 18: 1ω7c、 cy19: 0 表征细
菌[15];18:1ω9c 和 18:2ω6c 表征真菌[16];丛枝菌根
真菌则由 16:1ω5c代表[17];放线菌群落由 Me16:0、
Me17:0、Me18:0 指示[14];原生动物由 20:4w6、9、
12、15c表征[18] .
1 2 3土壤基本理化性质分析 有机碳用重铬酸
钾⁃外加热法;pH值用酸度计法(水土比为 2.5 ∶ 1);
碱解氮用碱解扩散法;有效磷用盐酸⁃氟化铵浸提⁃
钼锑抗比色法;速效钾用乙酸铵浸提⁃火焰光度
法[19] .
1 3 数据处理
采用 SPSS 13.0对数据进行描述统计和正态检
验,然后进行单因素方差分析,并用 LSD 法进行多
重比较(α= 0.05).
2 结果与分析
2 1 土地整理对土壤理化性质的影响
从表 1可以看出,土地整理后,土壤 pH 值显著
提高,而土壤有机碳含量显著下降,碱解氮、有效磷
和速效钾等含量的变化并不明显.与 Z0 相比,土地
整理 1年后,土壤 pH 值上升了 0.6 个单位,提高了
14.6% ( P < 0. 05),土壤有机碳含量下降 17 52
g·kg-1 ,降低了65.4%(P<0.05) .随着整理年限的
表 1 土地整理对土壤理化性质的影响
Table 1 Impacts of land consolidation on soil physical and chemical properties
处理
Treatment
pH 有机碳含量
Soil organic
carbon content
(g·kg-1)
碱解氮含量
Alkali⁃hydrolyzable
nitrogen content
(mg·kg-1)
有效磷含量
Available phosphorus
content
(mg·kg-1)
速效钾含量
Available potassium
content
(mg·kg-1)
Z0 4.1 ±0.1b 26.81 ±2.64a 60.74 ±8.11a 0.69 ±0.02a 63.05 ±7.69a
Z1a 4.7 ±0.2a 9.29 ±3.16b 48.25 ±16.25a 0.52 ±0.45a 52.21 ±11.32a
Z4a 4.6 ±0.2a 9.35 ±2.53b 54.74 ±17.63a 1.31 ±1.25a 64.35 ±17.61a
Z0: 未整理 No consolidation; Z1a:整理后 1年 After 1⁃year land consolidation; Z4a:整理后 4年 After 4⁃year land consolidation. 同列不同小写字母表
示处理间差异显著(P<0.05) Different small letters in the same column meant significant difference among treatments at 0.05 level.下同 The same below.
图 1 土壤微生物磷脂脂肪酸含量
Fig.1 Phospholipid fatty acids content of soil microbe.
Z0: 未整理 No consolidation; Z1a: 整理后 1年 After 1⁃year land con⁃
solidation; Z4a: 整理后 4 年 After 4⁃year land consolidation; B: 细菌
Bacteria; F: 真菌 Fungi; A: 放线菌 Actinomycetes; AMH: 丛枝菌根
真菌 Arbuscular mycorrhizal hyphae; P: 原生动物 Protozoon. 不同小写
字母表示处理间差异显著(P<0.05) Different small letters meant signifi⁃
cant difference among treatments at 0.05 level.下同 The same below.
延长,土壤理化性质变化不明显,Z4a 与 Z1a 之间的
差异不显著(P>0.05).
2 2 土地整理对土壤微生物群落 PLFAs的影响
土地整理后各菌群磷脂脂肪酸 PLFAs 均发生
了显著的变化(图 1).土壤细菌、真菌、放线菌、丛枝
菌根真菌和原生动物的 PLFAs 量均显著下降(P
<0 05),与 Z0相比,土地整理 1 年后下降幅度分别
达 43.4%、65.6%、54.1%、63.7%和 57.3%;土地整理
4年后,各菌群 PLFAs含量略有回升,但与整理 1 年
后之间没有显著性差异(P>0.05).
2 3 土地整理对土壤微生物群落结构的影响
土地整理后土壤微生物的群落结构发生了显著
变化(图 2、3).从图 2可以看出,与 Z0 相比,土地整
理 1 年后,不同菌群 PLFA 的相对丰度均显著下降
(P<0.05),降低的幅度为 25.2% ~53.9%,其中真菌
降幅最大,而革兰氏阳性菌降幅最小.土地整理 4 年
后,各菌群 PLFAs 的相对丰度略有升高,但与 Z1a
之间没有显著性差异(P>0.05).
与 Z0 相比,土地整理 1 年后,土壤真菌 /细菌
(Fungi / Bacteria,F / B)显著下降(P<0.05),降低了
3 5.9%,而革兰氏阳性菌 /革兰氏阴性菌(G+ / G-)明
76214期 叶 晶等: 土地整理对土壤微生物群落多样性的影响
图 2 土壤微生物群落磷脂脂肪酸相对丰度
Fig.2 Relative abundance of phospholipid fatty acids of soil
microbial community.
G-: 革兰氏阴性菌 Gram⁃negative bacteria; G+: 革兰氏阳性菌 Gram⁃
positive bacteria. 下同 The same below.
图 3 土壤 F / B与 G+ / G-比较
Fig.3 Comparison of F / B and G+ / G- in soil.
F / B: 真菌 /细菌 Fungi / Bacteria.
显增高(P<0.05),增加了 56.1%.土地整理 4 年后,
F / B有所上升,而 G+ / G-略有下降,但与 Z1a 之间的
差异并不显著(P>0.05).
2 4 土地整理对土壤微生物多样性指数的影响
土地整理后,土壤微生物多样性指数显著下降
(表 2).Shannon 指数大小顺序为 Z0>Z4a>Z1a,Z0
与 Z1a、Z4a之间的差异达显著水平(P<0.05);土壤
微生物均匀度指数(E)与 Shannon 指数的变化规律
表现一致,即 Z0 与 Z1a、Z4a 之间具有显著性差异
(P<0.05).
2 5 土壤微生物磷脂脂肪酸含量与土壤养分的相
关性
土壤不同菌群磷脂脂肪酸含量与养分因子间的
相关分析(表 3)表明,土壤真菌、放线菌、菌根真菌
和原生动物与土壤 pH 值呈显著或极显著负相关,
与土壤有机碳呈显著或极显著正相关;土壤真菌、放
线菌和原生动物与有效磷呈显著或极显著负相关.
细菌与不同土壤养分及各菌群与土壤碱解氮、速效
钾的相关性不显著.
表 2 不同处理土壤微生物功能多样性指数
Table 2 Indexes of soil microbial functional diversity un⁃
der different treatments
处理
Treatment
Shannon指数
Shannon index
均匀度指数
Evenness index
Z0 3.735±0.075a 0.979±0.012a
Z1a 3.216±0.054b 0.928±0.001b
Z4a 3.358±0.078b 0.946±0.024b
表 3 土壤微生物磷脂脂肪酸含量与土壤肥力因子的相关性
Table 3 Corretation analysis of phospholipid fatty acid
biomarker contents and fertility factors in soil
变量
Variable
B F A AMF P
pH -0.509 -0.935** -0.667* -0.673* -0.654*
有机碳
Soil organic
carbon
0.589 0.919** 0.806** 0.883** 0.903**
碱解氮
Alkali⁃hydrolyzable
nitrogen
0.571 0.419 0.170 0.003 0.146
有效 磷 Available
phosphorus
-0.513 -0.670* -0.580* -0.570 -0.832**
速效钾
Available potassium
-0.245 -0.223 -0.154 -0.193 -0.070
B: 细菌 Bacteria; F: 真菌 Fungi; A: 放线菌 Actinomycetes; AMH:
丛枝菌根真菌 Arbuscular mycorrhizal hyphae; P: 原生动物 Protozoon.
3 讨 论
土地整理后,土壤细菌、真菌、放线菌、丛枝菌根
真菌和原生动物的 PLFAs 含量显著降低(图 1),不
同菌群 PLFA的相对丰度也显著下降(图 2),这与
可利用性养分含量(土壤有机碳含量)的降低密切
相关,除细菌外,其他 4 类菌群的 PLFAs 含量与土
壤有机碳含量之间具有极显著正相关关系(表 3).
相关分析也表明,不同土壤微生物的 PLFAs 含量与
养分的可利用性呈现正相关[20],特别是土壤中有机
碳的差异往往导致了微生物群落组成的变异[21] .土
地整理过程中富含有机碳的表土层(0~15 cm)被剥
离,露出心土层,土壤有机碳含量显著下降(表 1),
从而导致不同菌群 PLFAs 含量也随着下降(图 1),
这与微生物组成差异与土壤中可利用性碳含量有关
的研究结果一致[22] .
土壤中的微生物以细菌和真菌为主,占土壤微
生物生物量的 90%左右,丰富的土壤有机碳是真菌
生长的良好环境[23],土地整理后有机碳显著下降
(表 1),不利于真菌生长;另外,逐渐升高的土壤 pH
值(表 1),也不利于真菌生长[24] .本研究结果表明,
真菌 PLFAs含量与土壤有机碳含量之间有极显著
正相关,而与土壤 pH 值之间的关系为极显著负相
8621 应 用 生 态 学 报 27卷
关(表 3).F / B 可以反映真菌和细菌相对含量的变
化和 2个种群的相对丰富程度,它们的比值反映出
所在土壤体系中有机物质的质量,在农田生态系统
中,其比值越高,表明生态系统越稳定[25] .土地整理
后,F / B显著下降(图 3),说明土地整理降低了土壤
生态系统的稳定性.
土壤细菌可分为 G+和 G-两大类群,节杆菌等
G+对环境胁迫如饥饿的耐受能力强于假单胞菌等
G-,在贫营养的环境中生长较快[26] .高比例的 G+被
认为是土壤环境从富营养向寡营养转变,G+ / G-反
映了细菌群落结构的变化[27],G+ / G-升高与土壤有
机碳质量下降有密切关联[28] .土地整理后,由于土壤
有机碳的数量(表 1)和质量的降低,G+ / G-明显升高
(图 3),随着土地整理年限的延长及人为经营,各种
土壤养分有所提高,整理 4年后,G+ / G-略有降低.
4 结 论
土地整理后土壤各菌群 PLFAs含量和相对丰度
均显著下降,这与土壤有机碳的明显降低紧密相关;
F / B显著下降,而 G+ / G-升高明显,均与有机碳的降
低和 pH值的升高有关.土地整理显著影响着土壤微
生物群落的组成,降低了土壤生态系统的稳定性,随
着整理年限的延长,土壤微生物质量有所提高.
参考文献
[1] Luo M (罗 明), Zhang H⁃Y (张惠远). Land conso⁃
lidation and its ecological and environmental impacts.
Resources Science (资源科学), 2002, 24(2): 60-63
(in Chinese)
[2] Ministry of Land and Resources (国土资源部). The
National Land Development and Consolidation Planning
(2011-2015). Beijing: Ministry of Land and Re⁃
sources, 2013 (in Chinese)
[3] Ye Y⁃M (叶艳妹), Wu C⁃F (吴次芳). Influence of
land consolidation on soil characteristics and the techno⁃
logy of soil reconstruction. Journal of Zhejiang University
(Agriculture & Life Sciences) (浙江大学学报:农业与
生命科学版), 2002, 28(3): 267-271 (in Chinese)
[4] Hua Y (华 颖), Wang Z⁃F (王子芳), Gao M (高
明), et al. Impact of land consolidation on soil available
microelements. Journal of Soil and Water Conservation
(水土保持学报), 2014, 28(5): 253-257, 274 ( in
Chinese)
[5] Meng H⁃S (孟会生), Wang J (王 静), Guo J⁃K
(郭建奎), et al. Preliminary study on physical proper⁃
ties of soil compact in land consolidation in Loess Pla⁃
teau. Chinese Agricultural Science Bulletin (中国农学通
报), 2009, 25(24): 549-552 (in Chinese)
[6] Yang J (杨 尽), Liu L (刘 莉), Sun C⁃M (孙传
敏), et al. Soil components and fertility improvement of
added cultivated land. Transactions of the Chinese Society
of Agricultural Engineering (农业工程学报), 2008,
24(7): 102-105 (in Chinese)
[7] Wang J (王 军), Yan S⁃C (严慎纯), Yu L (余
莉), et al. Evaluation of ecosystem service value and
strategies for ecological design in land consolidation:A
case of land consolidation project in Da’ an City, Jilin
Province, China. Chinese Journal of Applied Ecology
(应用生态学报), 2014, 25(4): 1093-1099 (in Chi⁃
nese)
[8] Deng J⁃S (邓劲松), Wang K (王 珂), Li J (李
君), et al. Impacts of farmland consolidation on farm⁃
land landscape. Chinese Journal of Applied Ecology (应
用生态学报), 2006, 17(1): 41-44 (in Chinese)
[9] Xu C (徐 畅), Gao M (高 明), Xie D⁃T (谢德
体), et al. Effect of land consolidation history on soil
quality of purple hilly region. Transactions of the Chinese
Society of Agricultural Engineering (农业工程学报),
2009, 25(8): 242-248 (in Chinese)
[10] Wang M (王 淼), Qu L⁃Y (曲来叶), Ma K⁃M (马
克明), et al. Response of soil microbial community
composition to vegetation types. Acta Ecologica Sinica
(生态学报), 2014, 34(22): 6640 - 6654 ( in Chi⁃
nese)
[11] Wang W⁃X (王卫霞), Shi Z⁃M (史作民), Luo D (罗
达), et al. Characteristics of soil microbial biomass and
community composition in three types of plantations in
southern subtropical area of China. Chinese Journal of
Applied Ecology (应用生态学报), 2013, 24 ( 7):
1784-1792 (in Chinese)
[12] Miao G⁃L (苗国丽), Wang W⁃B (王卫兵), Chen K⁃
C (陈开超), et al. Landscape quality assessment of
Simingshan National Forest Park. Journal of Zhejiang
Forestry Science and Technology (浙江林业科技),
2012, 32(3): 76-80 (in Chinese)
[13] Bossio DA, Scow KM. Impacts of carbon and flooding on
soil microbial communities: Phospholipid fatty acid pro⁃
files and substrate utilization patterns. Microbial Ecolo⁃
gy, 1998, 35: 265-278
[14] Zogg GP, Zak DR, Ringelberg DB, et al. Compositional
and functional shifts in microbial communities due to soil
warming. Soil Science Society of America Journal, 1997,
61: 475-481
[15] Frostegard A, Baath E. The use of phospholipid fatty
acid analysis to estimate bacterial and fungal biomass in
soil. Biology and Fertility of Soils, 1996, 22: 59-65
[16] Federle TW. Microbial distribution in soil⁃new tech⁃
niques / / Megusar F, Gantar M, eds. Perspectives in
Microbial Ecology. Ljubljana: Slovene Society for Micro⁃
biology, 1986: 493-498
[17] Olsson PA. Signature fatty acids provide tools for deter⁃
mination of the distribution and interactions of mycorrhi⁃
zal fungi in soil. FEMS Microbiology Ecology, 1999,
29: 303-310
[18] Yu S (俞 慎), He Z⁃L (何振立), Chen G⁃C (陈国
潮), et al. Soil chemical characteristics and their im⁃
pacts on soil microflora in the root layer of tea plants
96214期 叶 晶等: 土地整理对土壤微生物群落多样性的影响
with different cultivating ages. Acta Pedologica Sinica
(土壤学报), 2003, 40(3): 433-439 (in Chinese)
[19] Lu R⁃K (鲁如坤). Soil and Agricultural Chemistry
Analysis. Beijing: China Agricultural Science and Tech⁃
nology Press, 2000 (in Chinese)
[20] Steinweg JM, Plante AF, Conant RT, et al. Patterns of
substrate utilization during long⁃term incubations at dif⁃
ferent temperatures. Soil Biology and Biochemistry,
2008, 40: 2722-2728
[21] Harrison KA, Bardgett RD. Influence of plant species
and soil conditions on plant⁃soil feedback in mixed
grassland communities. Journal of Ecology, 2010, 98:
384-395
[22] Ekelund F, Ronn R, Christensen S. Distribution with
depth of protozoa, bacteria and fungi in soil profiles from
three Danish forest sites. Soil Biology and Biochemistry,
2001, 33: 475-481
[23] Holtkamp R, Kardol P, Van der Wal A, et al. Soil food
web structure during ecosystem development after land
abandonment. Applied Soil Ecology, 2008, 39: 23-34
[24] Rousk J, Baath E, Brookes PC, et al. Soil bacterial and
fungal communities across a pH gradient in an arable
soil. The ISME Journal, 2010, 4: 1340-1351
[25] De Vries FT, Hoffland E, Van Eekeren N, et al. Fun⁃
gal / bacterial ratios in grasslands with contrasting nitro⁃
gen management. Soil Biology and Biochemistry, 2006,
38: 2092-2103
[26] Djukic I, Zehetner F, Watzinger A, et al. In situ carbon
turnover dynamics and the role of soil microorganisms
therein: A climate warming study in an alpine ecosys⁃
tem. FEMS Microbiology Ecology, 2013, 83: 112-124
[27] Frostegard A, Baath E, Tunlio A. Shifts in the structure
of soil microbial communities in limed forests as revealed
by phospholipid fatty acid analysis. Soil Biology and Bio⁃
chemistry, 1993, 25: 723-730
[28] Kourtev PS, Ehrenfeld JG, Haggblom M. Experimental
analysis of the effect of exotic and native plant species on
the structure and function of soil microbial communities.
Soil Biology and Biochemistry, 2003, 35: 895-905
作者简介 叶 晶,男,1989 年生,硕士.主要从事农业技术
推广工作. E⁃mail: 925285568@ qq.com
责任编辑 肖 红
叶晶, 何立平, 李东宾, 等. 土地整理对土壤微生物群落多样性的影响. 应用生态学报, 2016, 27(4): 1265-1270
Ye J, He L⁃P, Li D⁃B, et al. Effect of land consolidation on soil microbial community diversity. Chinese Journal of Applied Ecology,
2016, 27(4): 1265-1270 (in Chinese)
0721 应 用 生 态 学 报 27卷