免费文献传递   相关文献

Physiological responses of sugar beet (Beta vulgaris) to drought stress during vegetative development period under drip irrigation.

滴灌甜菜叶丛生长期对干旱胁迫的生理响应


在人工控水条件下,于叶丛生长期设置0~40 cm土层含水量为70%田间持水量、50%田间持水量和30%田间持水量3个处理,研究干旱胁迫下甜菜叶片相关生理性状的变化.结果表明: 甜菜叶丛生长期中度缺水处理(50%田间持水量)的补偿指数最大,甜菜叶片丙二醛(MDA)含量、相对电导率、过氧化氢酶(CAT)活性及可溶性糖含量均在复水后24 h产生补偿效应,脯氨酸产生的补偿效应在复水后48 h,过氧化物酶(POD)未发生补偿效应.酶促活性氧清除系统以CAT反应最为灵敏.因此,在甜菜叶丛快速生长期,当土壤含水量下降至田间持水量的50%时应及时进行补充灌溉,促使叶片产生补偿效应,从而降低干旱胁迫对甜菜产量和含糖量的影响.

Sugar beet (Beta vulgaris cv. Beta 356) was subjected to drought stress during vegetative development by maintaining the soil water content in the 0-40 cm soil depth at 70%, 50% or 30% of field capacity to study the physiological traits of the leaves. Results showed that the compensation index was the highest in the 50% field capacity treatment. Malonaldehyde (MDA) content, relative conductivity, catalase (CAT) activity, and soluble sugar content began to increase 24 h after rehydration. Proline content began to increase 48 h after rehydration. In contrast, no compensation effect was observed in peroxidase (POD) activity after rehydration. Among the active oxygen-scavenging  enzymes, CAT was most sensitive to drought stress. Supplemental irrigation should be carried out promptly when the soil water content dropped to 50% of field capacity during vegetative development. Rehydration could promote self-repair functions in leaves, thus reducing the effects of drought on sugar beet yield and sugar content.


全 文 :滴灌甜菜叶丛生长期对干旱胁迫的生理响应
李阳阳1  耿青云2  费  聪1  樊  华1∗
( 1石河子大学农学院, 新疆石河子 832003; 2塔城地区农业技术推广中心, 新疆塔城 834700)
摘  要  在人工控水条件下,于叶丛生长期设置 0 ~ 40 cm 土层含水量为 70%田间持水量、
50%田间持水量和 30%田间持水量 3个处理,研究干旱胁迫下甜菜叶片相关生理性状的变化.
结果表明: 甜菜叶丛生长期中度缺水处理(50%田间持水量)的补偿指数最大,甜菜叶片丙二
醛(MDA)含量、相对电导率、过氧化氢酶(CAT)活性及可溶性糖含量均在复水后 24 h 产生补
偿效应,脯氨酸产生的补偿效应在复水后 48 h,过氧化物酶(POD)未发生补偿效应.酶促活性
氧清除系统以 CAT反应最为灵敏.因此,在甜菜叶丛快速生长期,当土壤含水量下降至田间持
水量的 50%时应及时进行补充灌溉,促使叶片产生补偿效应,从而降低干旱胁迫对甜菜产量
和含糖量的影响.
关键词  滴灌; 甜菜; 水分亏缺; 生理特性
Physiological responses of sugar beet (Beta vulgaris) to drought stress during vegetative
development period under drip irrigation. LI Yang⁃yang1, GENG Qing⁃yun2, FEI Cong1, FAN
Hua1∗ ( 1 College of Agronomy, Shihezi University, Shihezi 832003, Xinjiang, China; 2Tacheng
Agricultural Technology Extension Center, Tacheng 834700, Xinjiang, China) .
Abstract: Sugar beet (Beta vulgaris cv. Beta 356) was subjected to drought stress during vegeta⁃
tive development by maintaining the soil water content in the 0-40 cm soil depth at 70%, 50% or
30% of field capacity to study the physiological traits of the leaves. Results showed that the compen⁃
sation index was the highest in the 50% field capacity treatment. Malonaldehyde (MDA) content,
relative conductivity, catalase (CAT) activity, and soluble sugar content began to increase 24 h
after rehydration. Proline content began to increase 48 h after rehydration. In contrast, no compen⁃
sation effect was observed in peroxidase (POD) activity after rehydration. Among the active oxygen
scavenging enzymes, CAT was most sensitive to drought stress. Supplemental irrigation should be
carried out promptly when the soil water content dropped to 50% of field capacity during vegetative
development. Rehydration could promote self⁃repair functions in leaves, thus reducing the effects of
drought on sugar beet yield and sugar content.
Key words: drip irrigation; sugar beet; water deficit; physiological characteristics.
本文由国家自然科学基金项目(31260299)、教育部科学技术研究重
点项目(212201)、新疆生产建设兵团博士基金项目(2014BB012)和
国际合作项目(2010DFA32520)资助 This work was supported by the
National Natural Science Foundation of China ( 31260299), the Key
Science and Technology Project of Chinese Ministry of Education
(212201), Doctoral Program of Higher Education of Xinjiang Production
and Construction Corps (2014BB012) and the International Cooperation
Project (2010DFA32520).
2015⁃05⁃13 Received, 2015⁃10⁃27 Accepted.
∗通讯作者 Corresponding author. E⁃mail: fanhua@ shzu.edu.cn
    干旱胁迫条件下,作物的生理生化代谢活动会
发生一系列适应性改变[1-4],不超过适应范围的缺
水将对作物增产更为有利[5],其中缺水补偿效应在
作物不同生长阶段表现各异[6] .甜菜叶片维管束和
栅栏组织发达,是耐旱性较强的直根系作物.缺水可
增加甜菜叶片中脯氨酸和可溶性糖含量,这些高浓
度的化合物并不影响甜菜的正常代谢过程[7],累积
的脯氨酸会削弱糖分结晶,导致带色组分形成,从而
影响甜菜含糖量[2] .同时,植物体内酶促活性氧清除
系统在一定程度上可降低缺水后活性氧自由基对细
胞膜产生的伤害,保护叶绿体,调节作物生长过
程[8] .甜菜缺水后叶片过氧化物酶(POD)和过氧化
氢酶(CAT)活性增加,但块根产量降低[9] .如果将甜
菜生育前、中、后期土壤水分分别控制在 70%、85%、
55%田间持水量(FC),则其水分利用效率最高[10] .
然而也有研究表明,不同程度缺水均可降低甜菜产
量与含糖量,当缺水程度达到田间持水量的 50%
应 用 生 态 学 报  2016年 1月  第 27卷  第 1期                                            http: / / www.cjae.net
Chinese Journal of Applied Ecology, Jan. 2016, 27(1): 201-206                    DOI: 10.13287 / j.1001-9332.201601.021
时,甜菜减产 25%[11] .尽管前人已经对干旱胁迫下
甜菜叶片生理特性及需水规律进行了一些研究,但
有关甜菜叶丛快速生长期不同程度缺水后的补偿效
应,以及该补偿效应下甜菜叶片生理的响应机制尚
不清楚.为此,本研究选取甜菜水分敏感期开展控水
试验,从叶片生理角度确定滴灌甜菜缺水后产生补
偿效应的阈值范围,为干旱区滴灌甜菜高产优质节
水栽培提供科学依据.
1  研究地区与研究方法
1􀆰 1  研究区概况
试验于 2013年 4—10 月和 2014 年 4—10 月两
年在新疆石河子大学农学院实验站 ( 45° 19′ N,
86°3′ E)进行,海拔 450.8 m,年平均气温 7.5 ~ 8.2
℃,日照时数 2318~2732 h,无霜期 147~191 d,年降
雨量 180~ 270 mm,年蒸发量 1000 ~ 1500 mm,属典
型的温带大陆性气候.试验区土壤为灌溉灰漠土,质
地为重壤,耕层土壤全氮 0.89 g·kg-1,速效磷 0􀆰 02
g·kg-1,速效钾 0.25 g·kg-1,碱解氮 0􀆰 06 g·kg-1,
pH 7.3,土壤有机质 13.25 g·kg-1,耕层土壤容重
1􀆰 6 g·cm-3,田间持水量为 18%(质量含水量),地
下水埋深>5 m.
1􀆰 2  试验设计
试验材料为甜菜,品种为“Beta 356”.在甜菜叶
丛快速生长期 (出苗后 40 ~ 70 d)设置轻度亏缺
(70%田间持水量,对照)、中度亏缺(50%田间持水
量)、重度亏缺(30%田间持水量)3 种土壤水分控制
下限,当测定的土壤含水量降到设定范围内即对该
小区灌水至田间持水量.灌水量由灌水定额计算公
式确定[12],计算公式为:
m= 10ρbH(βi-β j)
式中:m为灌水量(mm);ρb 为该时段土壤计划湿润
层内土壤容重 ( g· cm-3 );H为计划湿润层深度
(cm),本试验计划湿润层深度为 40 cm;βi为目标含
水量(田间持水量乘以目标相对含水量);β j为灌前
土壤含水量.灌水量由水表记录.由于在实际操作过
程中很难控制灌水下限,所以每个处理均设一个
5%范围值(占田间持水量的百分比).
采用膜下滴灌方式种植甜菜,行距为 50 cm,株
距为 20 cm.滴灌带配置模式为“1管 2”,即 1条毛管
控制 2行甜菜.小区面积 4 m×12 m,小区间设 1 m
隔离区,随机区组排列,3 次重复.为了保证出苗,在
播种后均滴水至土壤饱和含水量,于出苗后 45 d 通
过控制灌水量进行干旱胁迫处理,至出苗后 75 d 叶
丛快速生长期结束.
1􀆰 3  测定项目与方法
于叶丛快速生长期每日 9:00—10:00 用 Water⁃
mark ( Irrometer Company, Riverside, CA)张力计监
测土壤墒情.该值可以反映土壤含水量状况,测定范
围为-2 ~ 0 bar( -200 ~ 0 kPa),0 bar 表示土壤处于
饱和含水量状态,-2 bar表示土壤极度干旱.
在各处理复水历时 0 、24 、48 、72 h 4 个时间
段,用剪刀剪取植株上部完全展开叶片,一部分材料
带回实验室测定丙二醛(MDA)和电导率,另一部分
材料用锡箔纸包裹放于液氮罐内,用于过氧化物酶
(POD)、过氧化氢酶(CAT)、脯氨酸可溶性糖的分
析.MDA 含量采用硫代巴比妥酸法,电导率采用电
导率仪法,POD 活性采用愈创木酚法,脯氨酸含量
采用磺基水杨酸法,可溶性糖含量采用蒽酮比色法
测定[13-14] .
补偿指数(C i)指各指标在胁迫解除后与对照
相比的恢复程度,可反映甜菜补偿效应的大小.计算
公式为:
C i =(Xr-XCK) / XCK
式中:Xr为胁迫解除后指标实测值;XCK为对照相应
指标实测值.若 C i为正值则存在补偿现象,若 C i为负
值则说明某项指标在胁迫解除后不存在补偿现
象[15] .本试验以 T1为对照,计算 T2、T3处理各生理指
标的补偿指数.
1􀆰 4  数据处理
用 SPSS 12.0 软件进行数据的统计分析,用单
因素方差分析(one⁃way ANOVA)和最小显著差异法
(LSD法)比较不同数据组间的差异(α = 0.05),用
Origin 8.5软件作图.
2  结果与分析
2􀆰 1  不同水分处理耕层土壤水势分布
叶丛快速生长期 0 ~ 40 cm 土层平均土壤水势
为-150 ~ -5 kPa.轻度水分亏缺下(T1处理),0 ~ 40
cm土层内土壤水势波动幅度较小;重度水分亏缺下
(T3处理),0~40 cm土层内土壤水势波动剧烈.土壤
水势随着土层深度的增加而降低,灌水前后 0 ~ 20
cm土层内形成的土壤水势差明显低于 20 ~ 40 cm
土层内形成的土壤水势差,但在 40 ~ 60 cm 土层不
明显(图 1).
2􀆰 2  不同水分处理甜菜叶片丙二醛和相对电导率
的变化
甜菜叶片MDA含量随着水分亏缺强度的增加
202 应  用  生  态  学  报                                      27卷
图 1  不同土壤水分状况下 0~60 cm土层水势变化
Fig.1  Changes of soil water potential in 0-60 cm under different soil water conditions.
T1: 70%田间持水量 70% of field capacity; T2: 50%田间持水量 50% of field capacity; T3: 30%田间持水量 30% of field capacity. 下同 The same
below.
而增大,处理间表现为 T3> T2> T1 .滴水前 T3处理叶
片 MDA含量显著高于 T1和 T2处理,复水后 24 和 48
h 3个处理间叶片 MDA 含量达到显著差异,至复水
后 72 h,T2和 T3处理间叶片 MDA 含量无显著差异.
与滴水前相比,复水后各处理叶片 MDA 含量均增
加,但增加量随着复水时间的延长无显著变化.各处
理甜菜叶片电导率与 MDA 含量变化趋势相同,即
随着水分亏缺强度的增加而增大.复水后各处理叶
片电导率均增加,增加量随着复水时间的延长无明
显变化(图 2).表明叶丛生长期不同程度干旱胁迫
均会增加甜菜叶片膜脂过氧化作用,干旱胁迫程度
越高,膜系统受到的破坏越大.
2􀆰 3  不同水分处理甜菜叶片保护酶活性变化
滴水前和复水后 24 h,甜菜叶片 POD活性随着
图 2  不同水分状况下甜菜叶片膜透性
Fig.2  Membrane permeability of sugar beet leaves under dif⁃
ferent soil water conditions.
水分亏缺强度增加呈现先升高后下降的趋势,处理
间表现为 T2> T3> T1 .复水后 48 和 72 h,甜菜叶片
POD活性随着水分亏缺强度的增加不断升高,处理
间表现为 T3> T2> T1 .滴水前,叶片 CAT活性与水分
亏缺程度呈现相反的变化趋势,处理间表现为 T1 >
T2> T3 .复水后叶片 CAT活性略有增加,其中复水后
24~48 h,T2处理叶片 CAT 活性略低于 T1和 T3处
理,至复水后 72 h,处理间叶片 CAT 活性差异不显
著(图 3).表明不同程度水分亏缺条件下,甜菜叶片
均产生了一定清除活性氧的能力.
2􀆰 4  不同水分处理甜菜叶片渗透调节物质含量的
变化
滴水前,各处理叶片脯氨酸含量无显著差异,复
水后各处理叶片脯氨酸含量显著增加,其中复水后
图 3  不同水分状况下甜菜叶片抗氧化酶活性
Fig.3  Antioxidant enzyme activities of sugar beet leaves under
different soil water conditions.
3021期                          李阳阳等: 滴灌甜菜叶丛生长期对干旱胁迫的生理响应           
图 4  不同水分状况下甜菜叶片渗透调节物质
Fig. 4   Osmotic adjustment substances of sugar beet leaves
under different soil water conditions.
24 h,T2处理叶片脯氨酸含量略低于 T1和 T3处理,至
复水后 48和 72 h,处理间叶片脯氨酸含量差异不显
著.甜菜叶片可溶性糖含量随着水分亏缺强度的增
加呈现先升后降的趋势,处理间表现为 T2> T1> T3 .
与滴水前相比,复水后各处理叶片可溶性糖含量均
有所增加,增加量随着复水时间的延长而增大(图
4).表明不同程度水分亏缺条件下,甜菜体内正常的
蛋白质合成受到抑制,但在复水后得到恢复,其中,
T2较 T1和 T3处理恢复的速度快.
2􀆰 5  不同水分处理甜菜各生理指标补偿指数的变化
补偿指数可以量化不同水分亏缺下作物复水后
的补偿效应.水分亏缺解除后,植物的补偿效应既有
其内在的生理机制,同时受外界因素的影响,主要与
胁迫时间和胁迫强度有关.不同程度水分亏缺后复
水甜菜各生理指标的补偿指数各异(图 5),其中,甜
菜叶片的 MDA、相对电导率、CAT 及可溶性糖均在
复水后 24 h产生补偿效应,且 T1> T2 .渗透调节物质
脯氨酸在复水后 48 h产生补偿效应,存在一定的滞
后性,且 T1 > T2 .而 POD 在缺水后复水未发生补偿
效应.
图 5  不同水分状况下甜菜叶片各生理指标补偿指数
Fig.5  Compensation index of physiological indices of sugar beet leaves under different soil water conditions.
RC: 相对电导率 Relative conductivity; SS: 可溶性糖 Soluble sugar.
402 应  用  生  态  学  报                                      27卷
3  讨    论
丙二醛(MDA)含量的高低在一定程度上能反
映脂膜过氧化水平[4]、膜结构受害程度以及植物的
自我修复能力[16],相对电导率与细胞膜透性呈正相
关[2] .本研究表明,甜菜叶片 MDA 含量在不同缺水
强度下均增加,增加量随缺水程度的提高而上升,这
与梁新华等[17]关于甘草根系 MDA含量随干旱胁迫
程度增强而升高的结论一致.补充灌溉后各处理甜
菜叶片 MDA含量并未下降.甜菜叶片相对电导率随
缺水程度的提高而增加,补充灌溉后各处理相对电
导率略有降低,这与 Liu 等[18]有关玉米干旱胁迫复
水后相对电导率下降的结果一致.从补偿指数可以
看出,甜菜叶丛生长期不同强度缺水后复水,可在一
定程度上修复受损的膜系统,从而提高叶片组织的
自我保护能力.
当干旱胁迫导致植物代谢紊乱,发生膜脂过氧
化使质膜遭到损害时,POD和 CAT可分解植物体内
多余的活性氧,减轻植物受到的伤害[19-20],对保护
植物具有重要作用[21] .干旱胁迫下,植物体内抗氧
化酶活性和种类增加以提高其适应能力[22-23],但增
加的程度因植物种类和品种而异[24] .本研究中,甜
菜叶片 POD活性在中度缺水处理下最高,复水后略
有下降,至复水后 48 h 重度缺水处理的 POD 活性
显著高于其他处理,这与张仁和等[25]对玉米叶片在
干旱胁迫下 POD活性先升后降的结果一致.甜菜叶
片 CAT活性随缺水程度的增加而降低,复水前后中
度缺水处理 CAT活性无明显变化,而重度缺水处理
CAT活性在复水后 48 h才恢复到对照水平.而梁新
华等[17]研究发现,甘草叶片 CAT 活性随干旱胁迫
程度的增加持续上升,这可能与不同植物的抗旱能
力差异有关.从补偿指数可以看出,中度水分亏缺后
复水,可迅速激发甜菜叶片 CAT 活性;重度水分亏
缺后复水,甜菜叶片 CAT 活性受到严重抑制,至复
水后 72 h 才产生较强的补偿效应,这与张文辉
等[26]在栓皮栎上得出的恢复效果受胁迫时间和胁
迫强度影响的结果一致.
干旱胁迫下,植物体主要通过渗透调节来主动
降低渗透势从而维持体内水分平衡和细胞间膨压基
本不变,渗透调节是植物从胁迫环境中获得有效水
分的主要手段[27] .这些渗透调节物质包括可溶性
糖、脯氨酸、游离氨基酸等,而且抗旱性越强,积累量
越大[28-29],但严重干旱时则可能下降[30-31] . Chołuj
等[7]研究表明,干旱胁迫下甜菜大部分器官中脯氨
酸含量均增加,只有在幼嫩叶片中脯氨酸含量下降.
本研究中,甜菜叶丛生长期不同程度缺水均会抑制
叶片中脯氨酸和可溶性糖的合成,并在复水后显著
增加,且增加程度在中度水分亏缺处理下达到最大,
这可能与所取不同部位的甜菜叶片有关.从补偿指
数可以看出,中度水分亏缺后复水,可激发甜菜叶片
脯氨酸和可溶性糖产生较强的补偿效应.
综上所述,甜菜叶丛生长期中度缺水处理下叶
片细胞膜透性产生的补偿效应最大,酶促活性氧清
除系统是甜菜抵御干旱逆境胁迫的重要机制,并以
CAT反应最为灵敏.渗透调节物质中脯氨酸产生的
补偿效应存在一定滞后性.因此,甜菜叶丛生长期的
土壤水分下限应该控制在 50%田间持水量,否则会
对甜菜造成伤害,从而影响其生长.然而,除叶丛生
长期外,甜菜产量还受到块根膨大期和糖分积累期
土壤水分的影响,如何通过调控其他生育时期的土
壤水分,使甜菜达到高产与节水的双重目标需要进
一步研究.
参考文献
[1]  Bray EA. Molecular responses to water deficit. Plant
Physiology, 1993, 103: 1035-1040
[2]  Monreal JA, Jimenez ET, Remesal E, et al. Proline
content of sugar beet storage roots: Response to water
deficit and nitrogen fertilization at field conditions. Envi⁃
ronmental and Experimental Botany, 2007, 60: 257 -
267
[3]  Zhou L (周  磊), Gan Y (甘  毅), Ou X⁃B (欧晓
彬), et al. Progress in molecular and physiological
mechanisms of water⁃saving by compensation for water
deficit of crop and how they relate to crop production.
Chinese Journal of Eco⁃Agriculture (中国生态农业学
报), 2011, 19(1): 217-225 (in Chinese)
[4]  Hodges DM, Delong JM, Fomey CF, et al. Improving
the thiobarbituric acid⁃reactive⁃substance assay for esti⁃
maing lipid peroxidationin plant tissues containing
anthocyanin and other interfering compounds. Planta,
1999, 207: 604-611
[5]  Shan L (山  仑), Kang S⁃Z (康绍忠), Wu P⁃T (吴
普特). Water⁃Saving Agriculture in China. Beijing:
China Agriculture Press, 2004 (in Chinese)
[6]  An Y⁃Y (安玉艳), Liang Z⁃S (梁宗锁). Staged stra⁃
tegy of plants in response to drought stress. Chinese Jour⁃
nal of Applied Ecology (应用生态学报), 2012, 23
(10): 2907-2915 (in Chinese)
[7]  Chołuj D, Karwowska M, Ciszewska A, et al. Influence
of long⁃term drought stress on osmolyte accumulation in
sugar beet (Beta vulgaris L.) plants. Acta Physiologiae
Plantarum, 2008, 30: 679-687
[8]  Monk LS, Fagersted KV, Crawford RM. Oxygen toxicity
and superoxide dismutase as an antioxidant in physiolo⁃
gical stress. Physiologia Plantarum, 1989, 76: 456 -
459
[9]  Saeed S, Davood H, Dariush F, et al. Response of an⁃
5021期                          李阳阳等: 滴灌甜菜叶丛生长期对干旱胁迫的生理响应           
tioxidant enzyme activities and root yield in sugar beet to
drought stress. International Journal of Agriculture and
Biology, 2011, 13: 357-362
[10]  Fabeiro C, de Santa Olalla FM, Lopez R, et al. Produc⁃
tion and quality of the sugar beet (Beta vulgaris L.) cul⁃
tivated under controlled deficit irrigation conditions in
a semi⁃arid climate. Agricultural Water Management,
2003, 62: 215-227
[11]   Tognetti R, Palladino M, Minnocci A, et al. The re⁃
sponse of sugar beet to drip and low⁃pressure sprinkler
irrigation in Southern Italy. Agricultural Water Manage⁃
ment, 2003, 60: 135-155
[12]  Han Z⁃J (韩占江), Yu Z⁃W (于振文), Wang D (王
东), et al. Effects of regulated deficit irrigation on water
consumption characteristics and water use efficiency of
winter wheat. Chinese Journal of Applied Ecology (应用
生态学报), 2009, 20(11): 2671-2677 (in Chinese)
[13]  Li H⁃S (李合生). Principles and Techniques of Plant
Physiological and Biochemical Experiment. Beijing:
Higher Education Press, 2000 (in Chinese)
[14]  Zhang Z⁃L (张志良), Qu W⁃Q (瞿伟菁). Experiment
Guide of Plant Physiology. Beijing: Higher Education
Press, 2003 (in Chinese)
[15]  Wang D (王  丁), Yang X (杨  雪), Han H⁃P (韩
鸿鹏), et al. The impact of drought and rewatering on
water transportation process of Robinia pseudoacacia L.
seedlings. Journal of Nanjing Forestry University (南京
林业大学学报), 2015, 39(1): 67-72 (in Chinese)
[16]  Yordanova RY, Christov KN, Petrova LP. Antioxidative
enzymes in barley plants subjected to soil flooding.
Environmental and Experimental Botany, 2004, 51: 93-
101
[17]  Liang X⁃H (梁新华), Shi D⁃G (史大刚). Effect of
drought stress on the content of malondialdehyole and
activity of cell defense enzymes in Glycyrrhiza glabra
seedlings roots. Agricultural Research in the Arid Areas
(干旱地区农业研究), 2006, 24(3): 108-110 ( in
Chinese)
[18]  Liu C, Li ZT, Yang KJ, et al. Effects of water stress
and subsequent rehydration on physiological characte⁃
ristics of maize (Zea mays) with different drought tole⁃
rance. Plant Physiology Journal, 2005, 51: 702-708
[19]  Yan B, Dai Q, Lin X, et al. Flooding induced mem⁃
brane damage, lipid oxidation and activated oxygen gen⁃
eration in corn leaves. Plant and Soil, 1996, 179: 261-
268
[20]  Jiang D (姜   东), Tao Q⁃N (陶勤南), Zhang G⁃P
(张国平). Effect of waterlogging on senescence of flag
leaf and root of wheat Yangmai. Chinese Journal of
Applied Ecology (应用生态学报), 2002, 13 ( 11):
1519-1521 (in Chinese)
[21]  Farooq M, Wahid A, Kobayashi N, et al. Plant drought
stress: Effects, mechanisms and management. Agronomy
for Sustainable Development, 2009, 29: 185-212
[22]  Guo W⁃Q (郭文琦), Chen B⁃L (陈兵林), Liu R⁃X
(刘瑞显), et al. Effects of nitrogen application rate on
cotton leaf antioxidant enzyme activities and endogenous
hormone contents under short⁃term water logging at flo⁃
wering and boll⁃forming stage. Chinese Journal of Applied
Ecology (应用生态学报), 2010, 21(1): 53-60 ( in
Chinese)
[23]  Qi W (齐   伟), Zhang J⁃W (张吉旺), Wang K⁃J
(王空军), et al. Effects of drought stress on the grain
yield and root physiological traits of maize varieties with
different drought tolerance. Chinese Journal of Applied
Ecology (应用生态学报), 2010, 21(1): 48-52 ( in
Chinese)
[24]  Xie X⁃Y (谢小玉), Ma Z⁃L (马仲炼), Bai P (白
鹏), et al. The morphological and physiological respon⁃
ses of hot pepper ( Capsicum annuum L.) to drought
stress with different intensity during blossom and fruit
period. Acta Ecologica Sinica (生态学报), 2014, 34
(13): 3797-3805 (in Chinese)
[25]  Zhang R⁃H (张仁和), Zheng Y⁃J (郑友军), Ma G⁃S
(马国胜), et al. Effects of drought stress on photosyn⁃
thetic traits and protective enzyme activity in maize see⁃
ding. Acta Ecologica Sinica (生态学报), 2011, 31
(15): 1303-1311 (in Chinese)
[26]  Zhang W⁃H (张文辉), Duan B⁃L (段宝利), Zhou J⁃
Y (周建元). Water relations and activity of cell defense
enzymes to water stress in seedlings leaves of different
provenances of Quercus varioilis. Acta Phytoecologica
Sinica (植物生态学报), 2004, 28(4): 483-490 ( in
Chinese)
[27]  Hasegawa PM, Bressan RA, Zhu JK, et al. Plant cellu⁃
lar and molecular responses to high salinity. Annual Re⁃
view of Plant Physiology and Plant Molecular Biology,
2000, 51: 463-499
[28]  Chaves MM, Oliveira MM. Mechanisms underlying plant
resilience to water deficits: Prospects for water⁃saving
agriculture. Journal of Experimental Botany, 2005, 55:
2365-2384
[29]  Cai K⁃Z (蔡昆争), Wu X⁃Z (吴学祝), Luo S⁃M (骆
世明), et al. Influences of different degrees of water
stress at heading stage on rice yield and osmolytes in
leaves and roots. Acta Ecologica Sinica (生态学报),
2008, 28(12): 6148-6158 (in Chinese)
[30]  Pinheiro C, Chaves MM, Ricardo CP. Alterations in
carbon and nitrogen metabolism induced by water deficit
in the stems and leaves of Lupinus abuls L. Journal of
Experimental Botany, 2001, 52: 1063-1070
[31]  Patakas A, Nikolsou N, Zioziou E, et al. The role of or⁃
ganic solute and ion accumulation in osmotic adjustment
in drought⁃stressed grapevines. Plant Science, 2002,
163: 361-367
作者简介  李阳阳,女,1991年生,硕士研究生. 主要从事作
物生理生态研究. E⁃mail: 643831266@ qq.com
责任编辑  张凤丽
李阳阳, 耿青云, 费聪, 等. 滴灌甜菜叶丛生长期对干旱胁迫的生理响应. 应用生态学报, 2016, 27(1): 201-206
Li Y⁃Y, Geng Q⁃Y, Fei C, et al. Physiological responses of sugar beet (Beta vulgaris) to drought stress during vegetative development
period under drip irrigation. Chinese Journal of Applied Ecology, 2016, 27(1): 201-206 (in Chinese)
602 应  用  生  态  学  报                                      27卷