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［2］Sharma A K，Singh I． Spectrophotometric trace determination of iron
in food，milk，and tea samples using a new bis － azo dye as analytical
reagent［J］． Food Analytical Methods，2009，2(3) :221 － 225．
［3］高楼军，柴红梅． 催化甲基紫褪色光度法测定茶叶中的微量铁
［J］． 光谱实验室，2013，30(1) :234 － 237．
［4］葛笑兰，谢秀娟，张振新． 甲基橙 －亮绿体系动力学光度法测定
茶叶中痕量铁［J］． 分析科学学报，2010，26(3) :367 － 369．
［5］Farhat Y，Aleem Ｒ，Anwar J，et al． Determination of iron and manga-
nese in tea samples by flame atomic absorption spectroscopy［J］．
Journal of the Chemical Society of Pakistan，2000，22(2) :94 － 97．
［6］董宏博，崔桂花，赵文秀． 茶叶中锰、铁、锌、铬等 10 种微量元素
的快速测定［J］． 广东微量元素科学，2012，19(8) :34 － 37．
［7］梁 多，黄 敏，王一凡． 原子吸收光谱法测定五种茶叶中的铁、
锰元素［J］． 广东化工，2013，40(15) :180 － 181．
［8］蒋天智，吴铭强，周 志，等． FAAS法测定原生态茶叶中的微量铁
［J］． 安徽农业科学，2008，36(26) :11399 － 11400．
［9］代 钢，敖登高娃． 2，4 －二氯苯基荧光酮 － Triton X － 100 荧光
熄灭法测定中草药、茶叶中的微量 Fe［J］． 光谱学与光谱分析，
2004，24(7) :848 － 850．
［10］王功平，练梦南，黄锁义． 分光光度法测定桂西茶叶中铁的含量
［J］． 广东微量元素科学，2005，12(8) :57 － 59．
［11］陈祥海，李树梅，黄锁义． 分光光度法测定野菜中铁的含量［J］．
微量元素与健康研究，2005，22(6) :37 － 38．
帅丽乔娃，郑国栋，张清峰，等． 菝葜提取物的抗氧化作用［J］． 江苏农业科学，2015，43(9) :346 － 349．
doi:10． 15889 / j． issn． 1002 － 1302． 2015． 09． 112
菝葜提取物的抗氧化作用
帅丽乔娃，郑国栋，张清峰，黎冬明
(江西农业大学江西省天然产物与功能食品重点实验室，江西南昌 330045)
摘要:研究菝葜不同溶剂提取物的抗氧化活性，以 2，6 －二叔丁基 － 4 －甲基苯酚(BHT)为阳性对照，测定菝葜
50%乙醇提取物中的石油醚相、三氯甲烷相、乙酸乙酯相、正丁醇相、水相，以及浓度为 0． 2 ～ 1． 2 mg /mL时，菝葜 50%
乙醇提取物清除·OH、O －2·、DPPH·、ABTS
+·能力、总抗氧化能力。结果表明，各萃取物均有不同程度的抗氧化活
性，且与质量浓度呈量效关系，不同极性提取物中抗氧化能力大小为:乙酸乙酯相 ＞正丁醇相 ＞水相 ＞醇提物 ＞石油
醚相 ＞三氯甲烷相;当 BHT 浓度为 1． 2 mg /mL 时，对·OH、DPPH·、O －2·、ABTS
+ ·清除率分别为 63． 52%、
60. 41%、70． 35%、92． 17%，亚铁还原能力(FＲAP)值为(151． 57 ± 0． 16)mmol /g;而 1． 2 mg /mL 乙酸乙酯相对·OH、
DPPH·、O －2·、ABTS
+·的清除率分别为 58． 73%、66． 46%、73． 17%、95． 84%，FＲAP值为(186． 25 ± 0． 21)mmol /g;除
清除·OH外，在其他抗氧化效果方面，乙酸乙酯比 BHT更好。以上结果表明，菝葜乙酸乙酯层中抗氧化物质的活性
最强，且抗氧化活性与乙酸乙酯萃取物呈量效关系。
关键词:菝葜;萃取物;抗氧化作用
中图分类号:Q946． 91 + 9;Ｒ284． 1 文献标志码:A 文章编号:1002 － 1302(2015)09 － 0346 － 04
收稿日期:2014 － 09 － 14
基金项目:国家“863”计划(编号:2013BAD10B04) ;国家自然科学基
金(编号:31160320)。
作者简介:帅丽乔娃(1989—) ，女，江西南昌人，硕士研究生，研究方
向为天然产物的分离提取。E － mail:405907750@ qq． com。
通信作者:郑国栋，博士，副教授，研究方向为天然产物的分离提取、
功能 食 品 等。 Tel: (0791)83813420;E － mail:zrs150716 @
aliyun． com。
菝葜为百合科植物菝葜(Smilax china L．)的干燥根茎，
别称金刚藤、金刚树等，主要分布在长江以南地区。菝葜的
根、茎、叶均可入药，其中根茎作为中药使用更为常见。菝葜
根茎中含有皂苷、黄酮、鞣质、生物碱、氨基酸、糖、多元酚等多
种成分［1］，具有活血化瘀、抗菌消炎、清热利湿、强筋壮骨、补
气活血等功效［2］。
自由基过多或清除过慢，会加速机体的衰老进程并诱发
各种疾病，一些抗氧化剂能够有效地清除自由基，从而能够预
防或治疗这些疾病。但是研究发现，过量食用这类物质对人
体健康不利，因此寻找安全、可靠的抗氧化物质成为近年来世
界各国研究的重点内容之一。目前，许多来自天然植物中的
提取物被证明具有良好的抗氧化活性［3］，它们不仅可以通过
清除自由基起到抗衰老的作用，而且还有吸收放射性物质毒
害的能力，对辐射损伤器官具有良好的防护作用，是具有广泛
开发前景的天然抗氧化剂［4］。
目前，关于菝葜提取物抗氧化活性的研究还不是很多，菝
葜甲醇提取物在高浓度时具有 1，1 －二苯基 － 2 －三硝基苯
肼(DPPH)自由基清除能力(IC50 = 7． 4 g /mL )和细胞生存保
护能力;进一步研究表明，菝葜乙酸乙酯、正丁醇、水提取物均
有很强的 DPPH自由基清除能力［5］。赵钟祥等从菝葜中分离
得到了 3 个芪类化合物、9 个天然多酚类化合物，对其进行抗
氧化活性检测结果表明:这些化合物均具有较强的抗氧化活
性，能有效清除 DPPH自由基［6］。前人研究的抗氧化指标都
比较单一，本试验的抗氧化指标为清除· OH、O －2·、
DPPH·、ABTS［2，2 －联氮 －二(3 －乙基 －苯并噻唑 － 6 －磺
酸)二铵盐］自由基能力，以及总抗氧化能力，种类更多，数据
更全面，可为菝葜作为新型天然抗氧化剂的开发利用提供理
论依据。
—643— 江苏农业科学 2015 年第 43 卷第 9 期
1 材料与方法
1． 1 材料与试剂
菝葜购自江西省南昌市药材店(产地:南昌市湾里) ，粉
碎后过 40 目筛，得到菝葜粉末。2，6 －二叔丁基 － 4 －甲基苯
酚(BHT)、无水乙醇、福林酚、碳酸钠、亚硝酸钠、硝酸铝、氢
氧化钠、双氧水、水杨酸、硫酸亚铁、三氯化铁、过硫酸钾、盐
酸、乙酸钠、冰乙酸、三羟甲基氨基甲烷(Tris)、邻苯三酚均为
分析纯，购自天津市永大化学试剂开发中心。没食子酸、芸香
苷购自成都曼思特公司。DPPH、2，4，6 －三吡啶基 － S －三嗪
(TPTZ)、ABTS购自美国 Sigma公司。
1． 2 试验仪器
KQ －500B型高功率数控超声波清洗器，昆山市超声波
仪器有限公司;BS224S 型电子天平，赛多利斯科学仪器(北
京)有限公司;SP － 754PC 型分光光度计，上海光谱仪器有限
公司;HH －6 数显恒温水浴锅，国华电器有限公司。
1． 3 试验方法
1． 3． 1 萃取物的制备［7］和总酚、总黄酮的测定 取菝葜粉
末 1 kg，用 50%乙醇超声提取后，分别用石油醚、三氯甲烷、
乙酸乙酯、正丁醇萃取，减压浓缩、冷冻干燥后得 6 种萃取物，
即醇提物(未经萃取的 50%乙醇提取物)、水相物(4 种溶剂
萃取后的水溶液浓缩干燥所得)、乙酸乙酯萃取物、正丁醇萃
取物、三氯甲烷萃取物、石油醚萃取物。测定各极性提取物的
总酚［8］、总黄酮含量［9］，结果见表 1。
表 1 不同萃取相的总酚、总黄酮含量(x ± s，n =3)
样品萃取相
总酚含量
(mg /g)
总黄酮含量
(mg /g)
石油醚相 26． 7 ± 0． 1aA 22． 3 ± 0． 2aA
三氯甲烷相 24． 1 ± 0． 2aA 19． 6 ± 0． 3aA
乙酸乙酯相 451． 3 ± 3． 7bB 404． 1 ± 1． 5bB
正丁醇相 326． 9 ± 2． 2cC 289． 4 ± 0． 6cC
水相物 184． 5 ± 1． 3dD 172． 2 ± 2． 8dD
醇提物 149． 8 ± 3． 2eE 137． 9 ± 3． 6eE
注:同列数据后标有不同小写、大写字母分别表示差异显著
(P ＜ 0． 05)、极显著(P ＜ 0． 01)。表 2 同。
1． 3． 2 抗氧化能力测定方法
1． 3． 2． 1 清除羟自由基能力的测定［10］ 在试管中依次加入
2 mL 9 mmol /L FeSO4 溶液、2 mL 9 mmol /L水杨酸溶液、2 mL
不同浓度(0． 2、0． 4、0． 6、0． 8、1． 0、1． 2 mg /mL)的提取物溶
液，最后加入 2 mL 8． 8 mmol /L H2O2 启动整个反应;37 ℃水
浴 30 min后，以蒸馏水为参比，在 510 nm 下测定吸光度 D1，
用蒸馏水代替水杨酸测定其吸光度 D2，以蒸馏水代替样液测
定其吸光度 D0，用 0． 2、0． 4、0． 6、0． 8、1． 0、1． 2 mg /mL BHT溶
液对·OH的清除率作为对比。计算公式如下:羟自由基清
除率 =［1 －(D1 － D2)/D0］× 100%。
1． 3． 2． 2 清除 DPPH自由基能力的测定［11］ 制备 DPPH 溶
液:称取 DPPH 样品 0． 01 g，用无水乙醇溶解并定容至
250 mL，即得到浓度为 0． 04 mg /mL的 DPPH 溶液，置于 4 ℃
冰箱备用。将 2 mL 上述浓度的提取物溶液与等体积 DPPH
混合、摇匀，放置于黑暗中 30 min 后，于 517 nm 下测定吸光
度值 Di。将 2 mL不同浓度的样液与无水乙醇等体积混合于
试管中，摇匀，测定吸光度为 Dj(用以扣除样品本身对吸光度
测定的干扰)。以蒸馏水与无水乙醇混合液测得的吸光度作
为空白对照 Dd，用 BHT溶液对 DPPH 的清除率作为对比，相
关计算公式为:DPPH自由基清除率 =［1 －(Di － Dj)/Dd］×
100%。
1． 3． 2． 3 清除超氧阴离子能力的测定［12］ 取 4． 5 mL 浓度
为 0． 05 mmol /L、pH值为 8 的 Tris － HCl缓冲溶液，于 20 ℃水
浴中进行预热，20 min 后分别加入 1 mL 不同浓度提取液、
0． 4 mL 浓度为 0． 5 mmo1 /L 的邻苯三酚溶液，充分混匀后于
25 ℃ 水浴中反应 5 min，然后加入 1 mL 浓度为 8 mol /L 的
HCl溶液终止反应。最后在 299 nm 处测定吸光度 Dk1;空白
对照则以蒸馏水代替样品液，测定吸光度 Dk2。以 BHT 溶液
对 O －2·的清除率作为对比，相关计算公式为:超氧阴离子自
由基清除率 =(1 － Dk1 /Dk2)× 100%。
1． 3． 2． 4 清除 ABTS自由基能力的测定［13］ 将 5 mL浓度为
7 mmol /L的 ABTS溶液与 88 μL浓度为 2． 45 mmol /L的过硫
酸钾溶液混合反应，制备 ABTS 自由基溶液，使用前将
ABTS +· 溶液在室温下黑暗中放置 12 ～ 16 h，并将 ABTS +·
溶液用无水乙醇稀释到吸光度测定值为 0． 70 ± 0． 02(734 nm
条件下)。在试管中加入 0． 15 mL 不同浓度的提取液，再加
入 2. 85 mL的 ABTS自由基工作液溶液，振荡摇匀，于室温避
光静置 1 min，在 734 nm 处测定其吸光度值 Ds;同法，在
0． 15 mL 无水乙醇中加入 2． 85 mL ABTS自由基工作液混匀，
在 734 nm处测定吸光度 Do。用 BHT 溶液对 ABTS
+·的清
除率作为对比，相关计算公式为:
ABTS自由基清除率 =(1 － Ds /Do)× 100%。
1． 3． 2． 5 抗氧化能力测定［14］ 亚铁还原能力(FＲAP)反应
液配制方法:300 mmol /L 乙酸钠缓冲液(pH 值 3． 6)、
10 mmol /L TPTZ溶液(40 mmol /L HCl 为溶剂)、20 mmol /L
FeCl3 溶液，三者体积比为 10 ∶ 1 ∶ 1。反应液现配现用，在使
用前放置在 37 ℃的水浴中保温。分别吸取 0． 5、1． 0、1． 5、
2. 0、2． 5、3． 0 mmol /L的 FeSO4 标准液，加入 3 mL FＲAP工作
液，再加入 0． 3 mL超纯水，混匀，于 37 ℃下准确反应 30 min，
于 593 nm 处测定其吸光度 D593 nm，用超纯水调零，以 FeSO4
的浓度(mmol /L)为横坐标、D593 nm为纵坐标绘制标准曲线。
分别移取 0． 2 mL 不同浓度提取液于试管中，加入 3． 8 mL
FＲAP 工作液，混匀后在 37 ℃下反应 30 min，测吸光度，各试
验组均做 3 次平行，取均值。根据反应后的吸光度，在标准曲
线上求得相应 FeSO4 的浓度(mmol /L) ，定义为 FＲAP 值。以
BHT溶液测定的 FＲAP值作对比。
1． 3． 3 数据分析 采用 DPS 7． 5 版分析软件中的 Duncans
新复极差法对总酚、总黄酮含量、清除各自由基的数据进行差
异显著性分析。
2 结果与分析
2． 1 对·OH自由基的清除作用
羟基自由基是目前所知活性氧中对生物体毒性最强、危害
最大、并有非常高反应速率的一种自由基，几乎来不及扩散就
与碰到的分子发生反应，使细胞坏死或突变;因此，研究羟基自
由基的清除作用是研究抗氧化性中十分重要的一部分。本试
验原理是 H2O2 与 Fe
2 +发生 Fenton反应，生成具有很高活性的
—743—江苏农业科学 2015 年第 43 卷第 9 期
羟自由基，能与水杨酸反应产生可用分光光度法测量的羟基化
合物 2，3 －二羟基苯甲酸，但若加入清除羟自由基功能的物
质，便会与水杨酸竞争，从而使有色产物生成量减少。
从图 1 可以看出，在试验浓度范围内，菝葜各极性提取物
对·OH均有一定的清除作用，并在试验浓度范围内呈量效
关系;其中乙酸乙酯萃取相清除率最大，提取物浓度为
1． 2 mg /mL时，其清除率达到了 58． 73%，仍然小于同浓度下
的 BHT(清除率 63． 52%) ;当提取物浓度低于 0． 8 mg /mL时，
清除率均不超过 50%。这与乙酸乙酯层多酚、黄酮含量最高
有关，因为多酚、黄酮有很好的抗氧化活性［15 － 16］。整体看出，
清除·OH的强弱顺序为:BHT ＞乙酸乙酯相 ＞正丁醇相 ＞水
相 ＞醇提物 ＞石油醚相 ＞三氯甲烷相。
2． 2 对 DPPH自由基的清除作用
DPPH·是一种稳定的以氮为中心的质子自由基，含有 3
个苯环，乙醇溶液呈紫色，在 517 nm处有最大吸收波长，当有
清除剂时，清除剂提供 1 个电子与 DPPH·的孤对电子配对，
使溶液颜色变淡、吸光度变小，如果被测物能够较好地清除
DPPH·，表明该物质能够降低氧自由基、烷基自由基等的浓
度，阻断脂质的过氧化反应。因此，对 DPPH·清除率的高低
是天然抗氧化剂筛选的指标之一。
从图 2 可以看出，在试验浓度范围内，菝葜各极性提取物
对 DPPH·均有一定的清除作用，并且随其浓度的增加，能力
也逐渐增强。其中乙酸乙酯相比其他萃取相清除 DPPH自由
基能力更强，乙酸乙酯萃取相甚至比同浓度的 BHT清除率更
高，当提取物浓度为 1． 2 mg /mL 时，乙酸乙酯相的清除率达
到了 66． 46%，而 BHT清除率为 60． 41%，这与乙酸乙酯层黄
酮、多酚含量最高有关。整体看出，清除 DPPH·的强弱顺
序:乙酸乙酯相 ＞ BHT ＞正丁醇相 ＞水相 ＞醇提物 ＞石油醚
相 ＞三氯甲烷相。
2． 3 对超氧阴离子的清除作用
在生物体内氧化还原反应中，有 2% ～ 5%的氧变成超氧
阴离子，这种阴离子会产生超氧阴离子自由基，这种自由基随
着生命活动代谢而产生，其氧化能力很强，机体发生氧中毒往
往是由这种自由基的毒性导致。因此清除超氧阴离子自由基
的能力也是检验抗氧化物质活性的主要指标。
从图 3 可以看出，在试验浓度范围内，菝葜各萃取相对
O －2·均有一定的清除作用，且随其浓度的增加清除率逐渐增
大。当提取物浓度为 1． 2 mg /mL，石油醚相、三氯甲烷相、乙
酸乙酯相、正丁醇相、水相、醇提物、BHT 对 O －2·清除率分别
为 47． 61%、43． 95%、73． 17%、67． 54%、62． 39%、59． 48%、
70． 35%，乙酸乙酯相清除能力超过了同浓度的 BHT。整体上
看出，清除 O －2·的强弱顺序:乙酸乙酯 ＞ BHT ＞正丁醇 ＞水
相 ＞ 50%乙醇 ＞石油醚 ＞三氯甲烷。
2． 4 对 ABTS自由基的清除作用
ABTS与一定浓度的过硫酸钾在室温暗处反应 12 ～ 16 h，
ABTS经氧化后生成相对稳定的蓝绿色的 ABTS +·，抗氧化
剂与 ABTS +·反应后使其溶液褪色，溶液吸光度降低，吸光
度越低，表明所检测物质的总抗氧化能力越强。
从图 4 可以看出，在试验浓度范围内，菝葜各极性提取物
对 ABTS +·均有一定的清除作用，且随其浓度的增加清除率
逐渐增大。当提取物浓度为 1． 2 mg /mL 时，石油醚相、三氯
甲烷相、乙酸乙酯相、正丁醇相、水相、醇提物、BHT 对
ABTS +· 的清除率分别为 42． 46%、35． 94%、95． 84%、
89. 91%、82． 48%、78． 62%、92． 17%，乙酸乙酯相比其他极性
提取物表现出更好的清除能力;当提取物浓度为 0． 4 mg /mL
时，BHT清除能力强于乙酸乙酯相;提取物浓度大于等于
0． 6 mg /mL 后，乙酸乙酯相清除能力明显增强，并逐渐超过了
BHT。可能由于乙酸乙酯层的黄酮、多酚含量比其他萃取相
—843— 江苏农业科学 2015 年第 43 卷第 9 期
高，因此清除 ABTS + ·的能力也更强。整体看出，清除
ABTS +·的强弱顺序:乙酸乙酯相 ＞ BHT ＞ 正丁醇相 ＞ 水
相 ＞醇提物 ＞石油醚相 ＞三氯甲烷相。
2． 5 总抗氧化能力测定
Fe3 + － TPTZ可被还原物质还原为二价铁离子形式，溶液
呈现出明显的蓝色，并在 593 nm 处具有强烈吸收，根据吸光
度的大小计算样品抗氧化活性的强弱，FＲAP 值越大，抗氧化
能力越强。
根据 FeSO4 的浓度，得线性方程为:y = 0． 206 3x + 0． 047
(r = 0． 999 2)。测得不同极性成分反应吸光度(D)后，在标
准曲线上求得相应 FeSO4 的浓度(μmol /L) ，定义为 FＲAP
值。从表 2 可以看出，在试验浓度范围内，菝葜不同极性成分
的 FＲAP值与浓度呈量效关系，FＲAP 值越大，其抗氧化活性
越强;Fe3 +还原抗氧化能力强弱顺序为:乙酸乙酯相 ＞ BHT ＞
正丁醇相 ＞水相 ＞醇提物 ＞石油醚相 ＞三氯甲烷相。
表 2 菝葜不同萃取相总抗氧化能力(x ± s，n =3)
溶剂
不同浓度提取物的 FＲAP值(mmol /g)
0． 2 mg /mL 0． 4 mg /mL 0． 6 mg /mL 0． 8 mg /mL 1． 0 mg /mL 1． 2 mg /mL
石油醚 6． 92 ± 0． 02fF 17． 51 ± 0． 15fF 29． 48 ± 0． 01eE 40． 74 ± 0． 17eE 60． 25 ± 0． 01eE 64． 53 ± 0． 01eE
三氯甲烷 3． 63 ± 0． 19gG 10． 39 ± 0． 21gG 22． 95 ± 0． 01fF 35． 38 ± 0． 06fF 47． 94 ± 0． 01fF 55． 18 ± 0． 04fF
乙酸乙酯 36． 14 ± 0． 02aA 44． 26 ± 0． 02aA 63． 72 ± 0． 14aA 106． 33 ± 0． 05aA 141． 61 ± 0． 18aA 186． 25 ± 0． 21aA
正丁醇 25． 39 ± 0． 04cC 35． 15 ± 0． 07cC 46． 48 ± 0． 02cC 83． 29 ± 0． 06cC 112． 58 ± 0． 02cC 137． 89 ± 0． 24cC
水 17． 86 ± 0． 01dD 29． 36 ± 0． 11dD 38． 74 ± 0． 01dD 74． 21 ± 0． 01dD 86． 81 ± 0． 06dD 92． 52 ± 0． 13dD
50%乙醇 14． 85 ± 0． 12eE 24． 61 ± 0． 11eE 36． 29 ± 0． 23dD 66． 85 ± 0． 22eE 81． 32 ± 0． 05eE 89． 94 ± 0． 01eE
BHT 29． 83 ± 0． 03bB 39． 97 ± 0． 02bB 54． 81 ± 0． 02bB 91． 96 ± 0． 08bB 127． 43 ± 0． 23bB 151． 57 ± 0． 16bB
3 结论
菝葜各萃取相均有一定抗氧化能力，且随着浓度的增加，
抗氧化活性增强，这是因为各萃取相均含有多酚、黄酮类，多
酚、黄酮是植物中主要的抗氧化物质，并且随着萃取相浓度的
增加，抗氧化活性也增强，其总酚、总黄酮含量最高的乙酸乙
酯层抗氧化能力最强。抗氧化活性强弱顺序:乙酸乙酯相 ＞
正丁醇相 ＞水相 ＞醇提物 ＞石油醚相 ＞三氯甲烷相，这说明
菝葜中的抗氧化活性物质最多存在于乙酸乙酯相中。当浓度
为 1． 2 mg /mL时，BHT 对·OH、DPPH·、O －2·、ABTS
+·清
除率分别为 63． 52%、60． 41%、70． 35%、92． 17%，FＲAP 值为
(151． 57 ± 0． 16)mmol /g;乙酸乙酯相对· OH、DPPH·、
O －2·、ABTS
+·清除率分别为 58． 73%、66． 46%、73． 17%、
95． 84%，FＲAP 值为(186． 25 ± 0． 21)mmol /g。除了清除
·OH，其他的乙酸乙酯相的抗氧化效果相比 BHT好。
试验结果充分证实了菝葜的乙酸乙酯萃取相有较强的抗
氧化活性，这对于利用菝葜开发天然抗氧化功效因子提供了
依据。但由于本试验仅是在体外进行研究，而生物体内的氧
化代谢是很复杂的，因此还有待于从生物体内源抗氧化酶系
活性、生物大分子氧化代谢产物水平的角度来进一步研究菝
葜的抗氧化作用机制。
参考文献:
［1］Zhang Q F，Guo Y X，Shangguan X C，et al． Antioxidant and anti －
proliferative activity of Ｒhizoma Smilacis Chinae extracts and main
constituents［J］． Food Chemistry，2012，133(1) :140 － 145．
［2］Khan I，Nisar M，Ebad F，et al． Anti － inflammatory activities of
sieboldogenin from Smilax china Linn．:experimental and computa-
tional studies［J］． Journal of Ethnopharmacology，2009，121(1) :
175 － 177．
［3］吴雪辉，张喜梅，李廷群，等． 板栗花粗提物的抗氧化活性研究
［J］． 现代食品科技，2008，24(1) :14 － 16，19．
［4］Benvenuti S，Pellati F，Melegari M，et al． Polyphenols，anthocyanins，
ascorbic acid，and radical scavenging activity of rubus，ribes，and
aronia［J］． Journal of Food Science，2004，69(3) :C164 － C169．
［5］Lee S E，Ju E M，Kim J H． Free radical scavenging and antioxidant
enzyme fortifying activities of extracts from Smilax china root［J］．
Experimental ＆ Molecular Medicine，2001，33(4) :263 － 268．
［6］赵钟祥，金 晶，方 伟，等． 菝葜多酚类成分抗氧化活性的研究
［J］． 医药导报，2008，27(7) :765 － 767．
［7］季志平，苏印泉． 杜仲叶提取物的抑菌活性研究［J］． 林产化学
与工业，2008，28(1) :63 － 66．
［8］Xu J G，Tian C Ｒ，Hu Q P，et al． Dynamic changes in phenolic
compounds and antioxidant activity in oats (Avena nuda L．)during
steeping and germination［J］． Journal of Agricultural and Food
Chemistry，2009，57(21) :10392 － 10398．
［9］迟玉新，窦德强． 楮实子与构树叶中总黄酮含量测定［J］． 中国
现代中药，2008，10(11) :16 － 17．
［10］Zheng W，Wang S Y． Oxygen radical absorbing capacity of phenolics
in blueberries，cranberries，chokeberries，and lingonberries［J］． Jour-
nal of Agricultural and Food Chemistry，2003，51(2) :502 －509．
［11］黄莉娟，胡 蝶，张 萍，等． 柑橘的抗氧化活性研究［J］． 现代
食品科技，2012，28(4) :399 － 401．
［12］Cheung Y C，Siu K C，Liu Y S，et al． Molecular properties and
antioxidant activities of polysaccharide － protein complexes from
selected mushrooms by ultrasound － assisted extraction［J］． Process
Biochemistry，2012，47(5) :892 － 895．
［13］Kang W Y，Wang J M． In vitro antioxidant properties and in vivo
lowering blood lipid of Forsythia suspense leaves［J］． Medicinal
Chemistry Ｒesearch，2010，19(7) :617 － 628．
［14］康文艺，李彩芳，张 丽． 卷丝苣苔和勐醒芒毛苣苔抗氧化活
性研究［J］． 天然产物研究与开发，2009，21(3) :470 － 472．
［15］Hossain M A，Ｒahman S． Total phenolics，flavonoids and antioxidant
activity of tropical fruit pineapple［J］． Food Ｒesearch International，
2011，44(3) :672 － 676．
［16］Vignoli J A，Bassoli D，Banassi M T． Antioxidant activity，polyphe-
nols，caffeine and melanoidins in soluble coffee:the influence of pro-
cessing conditions and raw material［J］． Food Chemistry，2011，124
(3) :863 － 868．
—943—江苏农业科学 2015 年第 43 卷第 9 期