全 文 :北方园艺2015(11):65~70 植物·园林花卉·
第一作者简介:韩鹰(1972-),女,江苏太仓人,硕士,副教授,现主要
从事园艺植物栽培生理等研究工作。E-mail:hygfx@126.com.
基金项目:江苏省科技支撑计划资助项目(BE2010337);苏州市科
技计划资助项目(SN201009);苏州农业职业技术学院科研基金资
助项目(200801)。
收稿日期:2015-01-19
DOI:10.11937/bfyy.201511017
路易斯安娜鸢尾对镉的积累特性及
对矿质元素吸收的影响
韩 鹰1,朱 旭 东1,邓 鹏2,陈 刚2
(1.苏州农业职业技术学院 园艺科技学院,江苏 苏州215008;2.扬州大学 生物科学与技术学院,江苏 扬州225009)
摘 要:以路易斯安娜鸢尾为试材,进行溶液培养,采用原子吸收法以及环境扫描电子显微
镜和X射线电子探针的方法,研究了0、100、500μM Cd浓度处理对路易斯安娜鸢尾Cd、N、P、K、S
等元素的吸收和积累特性的影响。结果表明:叶和根中Cd含量均随着Cd处理浓度的增加而增
加,叶的N含量呈明显的下降趋势。根的Cd积累量显著高于叶,基部茎节是Cd积累的主要场
所。经X射线电子探针分析,Cd胁迫显著抑制路易斯安娜鸢尾K的吸收,显著增加S的地上部
运输,高浓度Cd处理进一步影响P的吸收。
关键词:路易斯安娜鸢尾;镉(Cd);矿质元素;吸收;积累
中图分类号:S 682.1+9 文献标识码:A 文章编号:1001-0009(2015)11-0065-06
镉(Cd)是植物生长的非必需元素,许多植物具有从
水和土壤中摄取Cd并在体内积累的能力,当植物体内
Cd积累达到一定程度,就会表现出生长迟缓、植物矮小、
叶片黄化等毒害症状,高浓度的Cd对所有植物都有毒
害作用。不同植物对Cd的吸收、积累和抗性差异非常
大,而且同一种植物不同品种之间对Cd的累积与抗性
也有很大差异[1-3]。已有研究表明,许多水生植物可以
在组织中积累大量的重金属[4-9],具有植物修复环境重
金属污染的潜力。近几年,水生观赏植物例如黄菖蒲、
鸢尾、马蔺等鸢尾科植物被报道对重金属Cr、Cu、Pb、Cd
[5] 李雪萍,袁芳.大岩桐叶片扦插繁育技术的研究[J].江苏林业科技,
2006,33(6):16-17.
[6] 温放,李湛东.苦苣苔科(Gesneriaceae)植物研究进展[J].中国野生
植物资源,2006,25(1):1-6.
[7] 邱志敬,邹纯清,史正军,等.不同栽培基质对苦苣苔科植物生长的
影响[J].广东农业科学,2013(17):31-37.
[8] 王莉芳,黄仕训,周太久,等.广西唇柱苣苔属植物的引种栽培实验
[J].福建林业科技,2012,6(2):109-112.
Study on Plant Cuting of Gesneriaceae
QIU Zhi-jing1,2,ZOU Chun-qing2,TAN Xiao-long2,PENG Yang2,XIE Rui-xing2
(1.Shenzhen Key Laboratory of Southern Subtropical Plant Diversity,Fairylake Botanical Garden,Shenzhen &Chinese Academy of Sciences,
Shenzhen,Guangdong 518004;2.Fairylake Botanical Garden,Shenzhen &Chinese Academy of Sciences,Shenzhen,Guangdong 518004)
Abstract:The eficient cutting propagation methods were surveyed on the genera of Primulina,Hemiboea,Petrocosmea,
Lysionotus,Aeschynanthus,Saintpaulia,Sinningia,and Kohleria.The efect of four type of matrix composite were
analyzed comparatively.The growth characteristics of cutting plants of Gesneriaceae were summarized and the advantages
and disadvantages of various matrix were analyzed,and the most eficient cutting propagation method was found on every
genus in this paper.The results showed the most economical and convenient matrix formula in leaf cuttage was
vermiculite+perlite,and the most convenient matrix formula in branch cuttage was river sand+peat+vermiculite+
perlite matrix formula in the Gesneriaceae plant cutting.
Keywords:Gesneriaceae;cutting;matrix formula
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·园林花卉·植物 北方园艺2015(11):65~70
具有较强耐受和富集能力[10-14],因这些植物在环境中具
有观赏和富集的双重功效而倍受关注。一些学者进一
步研究了这些植物的重金属抗性机制及影响积累的外
界因素[15-17],并在我国浙江、江西等省取得了实际应用
成效。
路易斯安娜鸢尾(Iris hexagona)属鸢尾科(Iridaceae)
鸢尾属多年生宿根花卉,与黄菖蒲非常相近,原产于美
国路易斯安娜州,20世纪90年代我国开始进行品种引
进,已成为长江中下游植物资源中重要的一种水生花
卉。其主要表现为花大、花色丰富艳丽、花型多、水陆都
适宜生长,在冬季-8℃能保持叶片翠绿[18]。已有研究
表明,路易斯安娜鸢尾对重金属Cd也有较强的积累和
耐受能力[19],但是其耐受机理尚不清楚。现采用原子吸
收法以及环境扫描电子显微镜和X射线电子探针的方
法,研究了路易斯安娜鸢尾对Cd的积累特征及对其它
主要矿质元素吸收的影响,旨在进一步阐明路易斯安娜
鸢尾对重金属Cd的积累特性和耐受机制。
1 材料与方法
1.1 试验材料
供试材料为路易斯安娜鸢尾,待组织培养的路易斯
安娜鸢尾幼苗在大棚生长到高度为20cm左右,取回室
内水培盆栽。室温20℃,1/2Hoagland培养液培养,每隔
4d换1次培养液,每隔1d用NaOH调1次pH值,保
持在6.0左右,30d后转入不同处理。
1.2 试验方法
在幼苗培养液中,加入重金属CdCl2,2个Cd处理
浓度分别为100、500μM,以不加Cd处理为对照(CK),
每个处理4株苗,每个处理3次重复。第7天收样,先将
根系浸泡于20mM Na2-EDTA中15min,蒸馏水反复冲
洗干净,将叶与根(含基部茎节)分开,擦干水分后称其
鲜重,然后100℃杀青,置于80℃烘箱烘干至恒重,以测
定干重和各元素的含量。
1.3 项目测定
1.3.1 Cd和N绝对含量测定 用万能粉碎机或玛瑙
研钵磨成粉末,过40目筛后待用。称取适量,然后用
HNO3+HClO4(V∶V=87∶13)混合酸消煮完全,用
TAS-986原子吸收分光光度计测定Cd含量。N含量用
浓硫酸消化后,FOSS全自动定氮仪测定。
1.3.2 Cd、P、K和S相对含量的测定 取样(1)叶、(2)
基部茎节、(3)根表皮和皮层、(4)根维管柱共4个位点
(图1)。直接将样品用导电银胶粘在样品台上,用荷兰
飞利浦公司的XL-30型环境扫描电镜观察和能谱分析。
注:1:叶;2:基部茎节;3:根表皮和皮层;4:根维管柱。
Note:1:leave;2:basal stem;3:root epidermis and cortex;4:root vascular cylinder.
图1 路易斯安娜鸢尾X射线显微探针分析的位置
Fig.1 Location of I.hexagonafor X-ray electron probe microanalysis
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样品室的环境条件为:冷台温度选定5℃,样品室气压
4Torr,加速电压15kV。上述样品在扫描电子显微镜
下观察的同时,进行X射线电子探针显微分析。能谱仪
为美国 Thermo公司的 Kevex能谱仪,加速电压为
20kV,速流为0.15μA,样品倾角为0°,样品与探针间的
角度为33°,工作距离为10.0mm对样品进行点分析,测
定Cd、P、K和S元素的相对含量(以重量百分比,即
weight%表示)。
1.4 数据分析
试验数据在Excel软件下建立数据库,采用SPSS
17.0统计软件进行方差分析和差异显著性分析。
2 结果与分析
2.1 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾根叶干重和相对含水量
的影响
从表1可以看出,与对照相比,100、500μM Cd处理
7d后,根和叶的干重显著下降,叶干重分别是对照80.0%
和63.3%。根的生长对Cd处理更加敏感,经100μM Cd
和500μM Cd处理后分别是对照的69.4%和44.9%。
根和叶的含水量均随着Cd浓度的上升而显著下降。
表1 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾根叶干重和含水量的影响
Table 1 Efect of Cd stress on dry weight and water content of I.hexagonaseedlings
Cd浓度
Cd concentration/μM
叶干重
Leaf dry weight/(mg·株-1)
根干重
Root dry weight/(mg·株-1)
叶含水量
Leaf water content/(g·g-1)
根含水量
Root water content/(g·g-1)
0(CK) 967±117a 49±4.7a 8.09±0.91a 20.67±1.74a
100 774±159b 34±4.3b 6.59±0.74b 17.67±1.37b
500 612±50c 22±2.1c 4.60±0.63c 13.63±0.82c
注:数据为平均值±标准差,同一列不同小写字母表示它们之间有显著差异(P<0.05)。
Note:Values are mean±standard deviation;the diferent lowercase letters in the same columns stand for statistical significance in 0.05level.
2.2 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾根叶Cd含量的影响
由图2可知,路易斯安娜鸢尾经Cd处理后,路易斯
安娜鸢尾体内大量积累Cd,且根的积累量大大高于叶,
100μM Cd处理时根积累量达到183μg/g DW,是叶
内Cd含量的3倍多,500μM Cd处理时根积累量达到
784μg/g DW,是叶的7倍左右。
图2 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾根叶Cd积累的影响
Fig.2 Efect of Cd stress on Cd content in
leaf and root of I.hexagonaseedlings
2.3 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾根叶N含量的影响
从图3可以看出,随着Cd处理浓度的增加,叶的N
含量呈明显的下降趋势,但根的N含量仅在500μM Cd
处理时明显降低。
图3 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾
根叶N积累的影响
Fig.3 Efect of Cd stress on N content in
leaf and root of I.hexagonaseedlings
2.4 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾叶片Cd、P、K、S相对含
量的影响
由表2可知,随着Cd处理浓度的增加,叶的S、Cd
相对含量显著增加,而K的相对含量显著降低,P仅在
500μM Cd处理时显著增加。
表2 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾叶片Cd、P、K、S相对含量的影响
Table 2 Efect of Cd stress on relative contents of P,S,K,Cd in leaves of I.hexagona
Cd浓度
Cd concentration/μM
P相对含量
Relative content of P/%
S相对含量
Relative content of S/%
K相对含量
Relative content of K/%
Cd相对含量
Relative content of Cd/%
0(CK) 7.55±1.27b 4.70±0.59c 87.70±1.46a 0.04±0.01c
100 8.33±1.50b 8.06±1.78b 82.07±1.15b 1.53±0.34b
500 10.37±0.75a 10.67±0.85a 76.91±1.47c 2.03±0.22a
2.5 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾根各部位Cd、P、K、S相
对含量的影响
从表3可以看出,随着Cd处理浓度的增加,根维管
柱S、Cd相对含量增加,而K的相对含量降低,P没有显
著差异。经Cd处理后,除根表皮的Cd积累略有上升,
K略有下降外,P、S相对含量均无明显变化规律。根皮
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·园林花卉·植物 北方园艺2015(11):65~70
层Cd相对含量显著增加,P、S稍有增加但差异不显著,
而K的相对含量显著降低。随着Cd处理浓度的增加,
基部茎节P、S相对含量均有增加趋势,但差异不显著,
Cd相对含量显著增加,K的相对含量降低。与根的其
它部位相比,基部茎节Cd的相对含量比例要高出
很多。
表3 Cd胁迫对路易斯安娜鸢尾根各部位P、S、K、Cd相对含量的影响
Table 3 Efect of Cd stress on relative contents of P,S,K,Cd in diferent position of I.hexagonaroot
部位
Position
Cd浓度
Cd concentration/μM
P相对含量
Relative content of P/%
S相对含量
Relative content of S/%
K相对含量
Relative content of K/%
Cd相对含量
Relative content of Cd/%
根茎节
Basal stem
0(CK) 7.46±0.83b 10.43±0.74a 81.83±0.30a 0.26±0.17c
100 8.61±0.71b 10.92±1.83a 73.44±2.24b 7.02±0.16b
500 13.05±2.07a 11.53±0.22a 66.48±2.03c 9.17±0.99a
根维管柱
Root vascular cylinder
0(CK) 9.09±0.61a 5.34±1.16c 85.30±1.45a 0.25±0.03c
100 10.48±1.12a 9.71±1.07b 78.41±1.72b 1.38±0.15b
500 10.44±0.42a 11.34±1.15a 74.19±1.75c 4.02±0.43a
根皮层
Root cortex
0(CK) 10.31±0.80a 4.60±1.19a 84.54±1.25a 0.54±0.30c
100 11.52±2.87a 5.99±1.97a 80.81±1.48b 1.66±0.07b
500 12.01±1.39a 6.01±0.86a 78.50±0.82c 3.46±0.87a
根表皮
Root epidermis
0(CK) 9.24±0.29a 8.24±0.82a 82.01±0.81a 0.50±0.27b
100 8.94±2.62a 8.47±1.64a 77.78±3.42b 4.80±0.41a
500 7.61±1.80a 8.26±1.22a 78.21±2.57ab 5.91±1.28a
图4 路易斯安娜鸢尾幼苗基部膨大的茎节和成苗的根状茎
Fig.4 The sweled basal stems and rhizome of I.hexagona
3 讨论
对于大多数植物,叶内Cd浓度大于5~10μg/g DW
就可造成伤害[20],而一些重金属超积累植物则具有较高
的地下部向地上部转运分配能力[21-22],它们能在地上部
积累较高的重金属浓度而不表现毒害症状。已有研究
表明,一些鸢尾属的植物比如黄菖蒲、鸢尾、马蔺可以在
它们的地上部分积累较多的 Cd、Pb等其它重金
属[11-12,14,16]。在该研究中,路易斯安娜鸢尾经过7d的
100~500μM Cd处理后,根叶干重和相对含水量受到显
著影响,但路易斯安娜鸢尾对100μM Cd仍具有较强抗
性[9]。此时叶内的Cd含量达到64~98μg/g DW,表明
路易斯安娜鸢尾的地上部对Cd具有较高的积累能力。
这比Han等[11]关于普通鸢尾(Iris tectorum)和马蔺(Iris
lacteal var.chinensis)报道的数据要低,经过80mg/L
(714μM)Cd处理42d的马蔺和40mg/L Cd处理普通
鸢尾分别达到了529、232μg/g DW,而没有表现毒害症
状。这可能是因为不同植物的种类对Cd的吸收和积累
能力不同,也可能是因为试验条件的不同造成的。虽然
不同种类向地上部的转运能力有较大差异,但Cd和其
它重金属一般主要积累在根部[3,7,23],路易斯安娜鸢尾与
普通鸢尾和马蔺相似,与叶相比,根内积累的Cd浓度要
远高于叶,这是重金属转运限制的抗性特征之一[11]。
Han等[12]进一步研究发现Pb在鸢尾和马蔺根内
的亚细胞分布主要是沿着根尖细胞的细胞质膜。Zhou
等[17]研究表明,2 070mg/L Pb和1 000mg/L Cd处理
后,Cd和Pb主要积累在根尖皮层细胞的细胞壁上。
Caldelas等[24]观察水生观赏植物黄菖蒲受Cr毒害后的
细胞超微结构变化及Cr含量亚细胞分布,结果表明根
和根状茎在黄菖蒲Cr毒害发挥显著的功能,根表皮通
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北方园艺2015(11):65~70 植物·园林花卉·
过增厚细胞壁和积累Si来限制Cr的吸收,根状茎皮层
细胞通过增加液泡并积累Cr硫复合蛋白颗粒来降低毒
害。X射线扫描分析表明,Cr的最高含量存在于根的皮
层和根状茎的细胞质及细胞间隙。在根中Cr浓度依次
为皮层>表皮>维管柱,而在根状茎中Cr浓度分布比
较均一。在该试验中,利用环境扫描电子显微镜和X射
线电子探针分析Cd相对含量表明,除根表皮外,在叶、
基部茎节和根中Cd含量均随着Cd处理浓度的增加而
增加,基部茎节中比例最高。与其它植物不同,路易斯
安娜鸢尾基部有一个膨大的茎节,生长多年后还会形成
粗壮的根状茎。试验中的路易斯安娜鸢尾苗龄小,但基
部茎节已明显膨大,结果表明路易斯安娜鸢尾基部膨大
的茎节是Cd积累的主要场所。综合考虑生长速度、生
物量和观赏价值,路易斯安娜鸢尾具有潜在的去除湿地
和水体的Cd污染能力,其野外实践应用有待进一步
研究。
许多研究表明,Cd能影响植株对营养元素的吸收
和营养元素在植物体内的积累,这将导致植物体内营养
元素不足或营养元素间失去平衡,扰乱了植物的新陈代
谢,影响生长发育[25],植物体内营养元素的失调是植物
Cd毒害的重要原因之一[26]。国内外学者对小麦、玉米、
小白菜、黄瓜、番茄、黑麦草、紫苜蓿、白三叶等多种植物
做过Cd对矿质元素吸收影响的报道[27-29]。Cd通过运
输系统进入植物细胞的过程,与多种微量元素的吸收有
关,特别是Cd2+吸收的跨膜载体同时参与Ca2+、Fe2+、
Mg2+、Cu2+和Zn2+的吸收[30],这些元素之间的吸收就
会相互影响。一般来说N、K、Mg吸收会受到Cd的抑
制,P、S、Ca有较多促进吸收的报道,但因植物种类而有
所不同。该试验结果表明,路易斯安娜鸢尾经Cd胁迫
后,叶的N含量呈明显的下降趋势,但根的N含量仅在
500μM Cd处理时明显降低,Cd对N的吸收限制吸收
机制可能与NRT1和NRT2运输载体以及NO的形成
有关[31-32]。该研究经Cd、P、K、S相对含量的研究表明,
在100μM Cd胁迫条件下,叶内的K含量显著下降,Cd、
S含量显著上升;基部茎节、根表皮、皮层均表现K含量
显著下降,而P、S含量上升,但差异不显著,但根维管柱
中的S含量显著上升。在500μM Cd胁迫条件下,P的
相对含量在叶和基部茎节也显著增加。S元素是植物鳌
合肽(PCs)中的关键元素,其通过-SH鳌合细胞质中游
离态Cd,从而降低Cd对细胞质中功能蛋白的结合几
率,达到减轻Cd毒害的目的。最近几年,关于S在Cd
胁迫耐受机制中的作用越来越受到重视,已经证明S的
吸收、代谢途径会受到 Cd的严重影响[33-34]。Nocito
等[35-36]研究表明,为了保持足够高的GSH水平,Cd胁迫
后玉米需要通过根系吸收更多的S。该研究进一步证
实,Cd胁迫可以促进路易斯安娜鸢尾对S的吸收并且
主要向地上部积累。该研究还表明路易斯安娜鸢尾经
Cd胁迫后而K的吸收受到明显抑制,因为K是重要的
细胞渗透物质,这可能也是根叶相对含水量显著下降的
原因之一。综合以上研究,认为Cd胁迫对显著抑制路
易斯安娜鸢尾K的吸收代谢,显著增加S的地上部运
输,高浓度Cd胁迫进一步影响P的吸收,关于矿质元素
吸收特性和路易斯安娜鸢尾Cd耐性之间的相互关系有
待进一步研究。
参考文献
[1] Athur E,Crews I J,Morgan C.Optimizing plant genetic strategies for
minizing environmental contamination in the food chain[J].Internal Joumal of
Phytoremediation,2000,2(1):1-21.
[2] Oliver D P,Hannam R,Tiler K G.The efects of zinc fertilization on
cadmium concentration in wheat grain[J].Journal of Environmental Quality,
1994,23:705-711.
[3] Sanitádi Toppi L,Gabbrieli R.Response to cadmium in higher plants
[J].Environmental and Experimental Botany,1999,41:105-130.
[4] Hozhina E I,Khramov A A,Gerasimov P A,et al.Uptake of heavy
metals,arsenic,and antimony by aquatic plants in the vicinity of ore mining
and processing industries[J].Journal of Geochemical Exploration,2001,74:
153-162.
[5] Peng K J,Luo C L,Lou L Q,et al.Bioaccumulation of heavy metals by
the aquatic plants Potamogeton pectinatus L.and Potarnogeton malaianus
Miq.and their potential use for contamination indicators and in wastewater
treatment[J].Science of the Total Envrionment,2008,392:22-29.
[6] Samecka-Cymerman A,Kempers A J.Toxic metals in aquatic plants
surviving in surface water poluted by copper mining industry[J].Ecotoxicology
and Environmental Safety,2004,59:64-69.
[7] Sun H H,Wang Z Y,Gao P P.Selection of aquatic plants for phytore-
mediation of heavy metal in electroplate wastewater[J].Acta Physiologiae
Plantarum,2013,35:355-364.
[8] Wang C,Zhang S H,Wang P F.Salicylic acid involved in the regulation
of nutrient elements uptake and oxidative stress in Vallisneria natans
(Lour.)Hara under Pb stress[J].Chemosphere,2011,84:136-142.
[9] Zayed A,Gowthaman S,Terry N.Phytoaccumulation of trace elements
by wetland plants:I.Duckweed[J].Journal of Environmental Quality,1998,
27:715-721.
[10]原海燕,郭智,张开明,等.两种鸢尾属花卉幼苗对镉胁迫的生理抗
性研究[J].江苏农业科学,2006(5):63-64.
[11]Han Y L,Yuan H Y,Huang S Z,et al.Cadmium tolerance and accumulation
by two species of Iris[J].Ecotoxicology,2007,16:557-563.
[12]Han Y L,Huang S Z,Gu J G,et al.Tolerance and accumulation of lead
by species of Iris L[J].Ecotoxicology,2008,17:853-859.
[13]Caldelas C,Araus J L,Febrero A,et al.Accumulation and toxic efects
of chromium and zinc in Iris pseudacorus L[J].Acta Physiologiae Plantarum,
2012b,34:1217-1228.
[14]Zhang X B,Liu P,Yang Y S,et al.Phytore mediation of urban
wastewater by model wetlands with ornamental hydrophytes[J].Journal of
Environmental Sciences,2007,19:902-909.
[15]Han Y L,Huang S Z,Yuan H Y,et al.Organic acids on the growth,
anatomical structure,biochemical parameters and heavy metal accumulation of
Iris lacteavar.chinensis seedling growing in Pb mine tailings[J].Ecotoxicology,
2013,22:1033-1042.
96
·园林花卉·植物 北方园艺2015(11):65~70
[16]Zhong S Q,Shi J C,Xu J M.Influence of iron plaque on accumulation of
lead by yelow flag(Iris pseudacorus L.)grown in artificial Pb-contaminated
soil[J].Journal of Soil sand Sediments,2010,10:964-970.
[17]Zhou Y Q,Huang S Z,Yu S L,et al.The physiological response and
sub-celular localization of lead and cadmium in Iris pseudacorus L[J].
Ecotoxicology,2010,19:69-76.
[18]周玉珍,成海钟,张文婧,等.路易斯安娜鸢尾在苏州地区的引种与
结实性研究[J].北方园艺,2010(21):72-75.
[19]韩鹰,高岳,王薇,等.路易斯安娜鸢尾对重金属镉的吸收、积累及其
抗性的研究[J].扬州大学学报(农业与生命科学版),2014,35(1):76-80.
[20]White P J,Brown P H.Plant nutrition for sustainable development and
global health[J].Annals of Botany,2010,105:1073-1080.
[21]Lu L L,Tian S K,Yang X E,et al.Enhanced root-to-shoot translocation
of cadmium in the hyperaccumulating ecotype of Sedum alfredi[J].Journal
of Experimental Botany,2008,59:3203-3213.
[22]Zhao F J,Jiang R F,Dunham S J,et al.Cadmium uptake,translocation
and tolerance in the hyperaccumulator Arabidopsishaleri[J].New Phytologist,
2006,172:646-654.
[23]Liu C P,Shen Z G,Li X D.Accumulation and detoxification of cadmium
in Brassica pekinensis and B.chinensis[J].Biologia Plantarum,2007,51:116-
120.
[24]Caldelas C,Bort J,Febrero A.Ultrastructure and subcelular distribution
of Cr in Iris pseudacorus L.using TEM and X-ray microanalysis[J].Cel
Biology Toxicology,2012a,28:57-68.
[25]Ghnaya T,Nouairi I,Slama I,et al.Cadmium efects on growth and mineral
nutrition of two halophytes:Sesuvium portulacastrumand Mesembryanthemum
crystallimum[J].Journal of Plant Physiology,2005,162:1133-1140.
[26]Sandalio L M,Dalurzo H C,Gomez M,et al.Cadmium-induced changes in
the growth and oxidative metabolism of pea plants[J].Journal of Experimental
Botony,2001,52:2115-2126.
[27]Jail A,Selers F,Clarke J M.Efect of cadmium on growth and the uptake
of cadmium and other elements by durum wheat[J].Jouranl of Plant Nutrition,
1994,17:1839-1858.
[28]Moral R,Gonez I.Efect of cadmium on nutrient distribution,yield and
growth of tomato grown in soiless culture[J].Jouranl of Plant Nutrition,
1994,17(6):953-962.
[29]Wang M,Zou J H,Duan X C,et al.Cadmium accumulation and its
efects on metal uptake in maize(Zea mays L.)[J].Bioresource Technology,
2007,98:82-88.
[30]Clemens S.Toxic metal accumulation,responses to exposure and mechanisms
of tolerance in plants[J].Biochimie,2006,88:1707-1719.
[31]Gojon A,Nacry P,Davidian J C.Root uptake regulation:a central
process for NPS homeostasis in plants[J].Current Opinion in Plant Biology,
2009,12:328-338.
[32]Miler A J,Shen Q,Xu G.Freeways in the plant:transporters for N,P
and S and their regulation[J].Current Opinion in Plant Biology,2009,12:
284-290.
[33]Ernst W H O,Krauss G J,Verkleij J A C,et al.Interaction of heavy
metals with the sulphur metabolism in angiosperms from an ecological point
of view[J].Plant,Cel and Environment,2008,31:123-143.
[34]Gil S S,Tuteja N.Reactive oxygen species and antioxidant machinery in
abiotic stress tolerance in crop plants[J].Plant Physiology and Biochemistry,
2010,48:909-930.
[35]Nocito F F,Pirovano L,Cocucci M,et al.Cadmium-induced sulfate uptake
in maize roots[J].Plant Physiology,2002,129:1872-1879.
[36]Nocito F F,Lancili C,Crema B,et al.Heavy metal stress and sulfate
uptake in maize roots[J].Plant Physiology,2006,141:1138-1148.
Accumulation Characteristics of Cd and Influences of
Mineral Elements Absorptionin in Iris hexagona
HAN Ying1,ZHU Xu-dong1,DENG Peng2,CHEN Gang2
(1.Colege of Horticulture Science and Technology,Suzhou Polytechnic Institute of Agriculture,Suzhou,Jiangsu 215008;2.Colege of
Bioscience and Biotechnology,Yangzhou University,Yangzhou,Jiangsu 225009)
Abstract:Taking Iris hexagonaas test material,solution culture under 0,100,500μM Cd treatment was cultivated.The
absorption and accumulation characteristics of Cd,N,P,K,S in Iris hexagona were analysed by the methods of atomic
absorption spectrometry,environmental scanning electron microscope and X-ray electron probe microanalysis.The results
showed that the content of Cd in leaves and roots were increased along with the increase of Cd concentration while N
content in leaves was decreased.Cd accumulation in roots was significantly higher than that in leaves and the basal stem
section was the main site for Cd accumulation.X-ray electron probe microanalysis indicated that the absorption of K was
significantly inhibited and up-transportation of S was increased obviously under Cd stress in Iris hexagona.The
absorption of P was further afected by high Cd concentration.
Keywords:Iris hexagona;cadmium(Cd);mineral elements;absorption;accumulation
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