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水杨酸对温度胁迫下紫御谷幼苗生长及光合特性的影响



全 文 :第37卷 第2期 西 南 师 范 大 学 学 报 (自然科学版) 2012年2月
Vol.37  No.2  Journal of Southwest China Normal University(Natural Science Edition) Feb.2012
文章编号:1000-5471(2012)02-0066-06
水杨酸对温度胁迫下紫御谷
幼苗生长及光合特性的影响①
杨丙贤1, 龚 婷1, 马永甫2, 易小林1, 宗学凤1
1.西南大学 农学与生物科技学院 农业部生物技术与作物品质改良重点开放实验室,重庆400716;
2.重庆文理学院 生命科学与技术学院,重庆 永川402168
摘要:以紫御谷为材料,研究了水杨酸对温度胁迫(高温和低温)下紫御谷幼苗生长及光合特性的影响,结果表明:
①高温和低温胁迫显著降低了紫御谷幼苗的根冠比、根系活力、总根长和平均根直径,使根系生长受到抑制,而水
杨酸处理则提高了其根冠比、根鲜物质量、茎鲜物质量和根系活力;②高温胁迫显著降低了紫御谷叶片的叶绿素a、
总叶绿素质量分数和净光合速率,而水杨酸处理显著提高了紫御谷叶片的净光合速率.低温胁迫使紫御谷幼苗叶
片的净光合速率、气孔导度和蒸腾速率均显著低于常温对照,而水杨酸处理后,叶片的净光合速率、气孔导度和蒸
腾速率均有所升高.③高温胁迫下,紫御谷幼苗的初始荧光(Fo)、光化学量子效率(Fv/Fm)和光下PSⅡ实际光化学
效率(ΦPSⅡ)与常温对照相比差异不显著,而低温胁迫下的Fv/F和ΦPSⅡ则显著低于常温对照,喷施水杨酸后Fv/Fm和
ΦPSⅡ均低于低温处理组,且Fv/Fm 差异显著,由此推断低温胁迫可能使PSⅡ反应中心受到不可逆的损害.
关 键 词:紫御谷;高温胁迫;低温胁迫;水杨酸;生长;光合特性
中图分类号:Q949.71+4.2 文献标志码:A
正常情况下,植物体内各项代谢的生理生化过程都是比较稳定而协调的,当植物受到逆境胁迫时,植
物体内的各种代谢活动都会由于某种因素的影响而失调,使植物对逆境作出反应.光合器官是植物的敏感
部位,温度胁迫能直接影响光合机构的性能和活性[1].黄锦文等[2]发现高温胁迫下两种结缕草叶片的
Chla,Chlb和Car质量分数以及Chla/Chlb的比值均有不同程度的下降.有研究表明低温能降低植物的光
合效率、改变光合色素组成和抑制叶绿体发育等,因此提高植物光合器官的抗冷性有助于提高植物个体的
抗冷性[3].曹宁等[4]的研究证实,低温胁迫下玉米苗期根表面积、根体积和轴根长都明显低于常温处理;
低温胁迫减弱了玉米根系的生长,同时对地上部的生长有明显的抑制作用.
水杨酸(Salicylic acid,SA)被认为是植物对逆境反应的信号传导分子,可导致细胞内 H2O2 质量分数
上升[3,5],SA能够诱导相关蛋白(PR)基因表达,引发产生系统获得性抗性(Systemic resistance,SAR)[6],表
现在它可以通过改变活性氧代谢和信号传导途径增强植物抗冷性[7]、抗盐性[8]和抗高温性[9-10]等.刘伟
等[11]发现适宜体积分数的SA预处理对维持叶肉细胞较高的光合特性,缓解低温弱光对黄瓜光合速率的影
响可发挥积极的作用,低温弱光胁迫会使黄瓜幼苗的光合机构受到伤害,而适宜体积分数的SA预处理可
减轻其伤害程度.薛建平等[12]研究表明喷施0.15mmol/L的SA时,半夏叶片的叶绿素质量分数、胞间
CO2 质量分数提高最大,叶绿素能吸收和传递光能,CO2 是光合作用的原料,所以叶绿素质量分数和胞间
① 收稿日期:2010-09-30
基金项目:重庆市建委“十一五”科技基金资助项目(城科字2007第53号).
作者简介:杨丙贤(1986-),男,山东济南人,硕士,主要从事植物逆境生理学研究.
通信作者:宗学凤,副教授.
CO2 质量分数的提高有利于光合速率增大.
紫御谷Pennisetum glaucum,又名紫粟紫威Purple Majesty,系禾本科狼尾草属植物.作为观赏草的
一种,它株形修长、颜色奇特、美丽多姿,紫红的颜色尤显别致,其幼嫩花穗被切取后可在花展上创造出戏
剧化的效果.该品种可大面积栽培,用作花园背景或园林镶边效果极佳.紫御谷被引种到中国后,相关研
究较少.结合重庆市夏季高温,冬季寒冷的特点,本文研究了水杨酸对温度胁迫下紫御谷幼苗生长及光合
特性的影响,对增强紫御谷抗逆性具有重要的意义,同时为紫御谷在重庆地区的育苗种植提供参考,以期
能够进一步丰富重庆园林的草坪草地植被资源.
1 材料与方法
1.1 供试材料
供试材料为紫御谷,种子来源于美国泛美种子公司,进口.
1.2 培养和处理方法
以德国维特介质作为培养基质,选取饱满一致的紫御谷种子,在穴盘进行育苗.待幼苗长至7~9cm
时,选取长势一致的幼苗连同基质一同转移到盆钵(高10.5cm,直径11.5cm)里面,盆钵基质依然选用维
特介质,维特介质以波罗的海苔藓泥炭为主要原材料,结构稳定,持水性和通气性好,拥有优良的孔隙结
构,且有机质质量分数高,灰分质量分数少,能长时间保持介质特性一致.介质里添加特有肥料,每立方泥
炭添加1kg专用肥料.整个过程在西南大学农学与生物科技学院人工气候箱中进行,幼苗生长温度设定为
30℃/22℃(昼/夜),等长至6叶1心时,进行SA叶面喷施和温度胁迫处理.
温度处理:将长至6叶1心的紫御谷幼苗分为3组,每组3盆(3个重复),移入温度分别为45℃/37℃
(高温)、8℃/8℃(低温)和30℃/22℃(常温)的人工气候箱中.昼夜时间分别为12h,光照12 000lx,胁
迫处理期间均正常浇水.于胁迫的第7天,测定其根系活力、根冠比及光合指标.
SA处理:SA为分析纯,用蒸馏水溶解后配成0.5mmol/L的溶液,并调节pH值为6.8.在进行高温
和低温胁迫处理前24h,用0.5mmol/L的SA分别喷施叶面,对照幼苗喷施等体积的去离子水(H2O).
1.3 测定方法
光合色素质量分数采用分光光度法测定[13];株高采用常规方法测定;根冠比用公式计算:根冠比=地
下部干物质量/地上部干物质量;根系活力的测定采用 TTC法测定[14];采用Epson根系扫描仪及 Win-
RHIZO分析软件测定根总长、根总表面积、平均直径节点数和根体积等根系相关指标.
光合特性用美国LI-6400型便携式光合作用测定仪在天气晴朗的上午9:00开始,测定全展剑叶的光
合特性.测定光合特性时,使用普通叶室,面积为6cm2.使用红、蓝光源,光强为1 200μmol/(m
2·s),
温度为30℃,CO2 质量分数为空气中的质量分数,湿度为大气中的湿度.每组处理材料随机选取生长相对
一致的单株各5株,测定其净光合速率(Pn)、气孔导度(Gs)、胞间二氧化碳质量分数(Ci)和蒸腾速率
(Tr),每株重复测定2次,取平均值.参照冯大兰等[15]的方法,用LI-6400和荧光叶室6400-40(美国,
Li-Cor公司)测定材料的叶绿素荧光动力学参数.每份材料随机选取生长相对一致的单株各5株,测定其健
康剑叶的初始荧光(Fo)、PSⅡ的最大光能转化效率(Fv/Fm),光下实际光化学效率(ΦPSⅡ).计算公式为:
Fv/Fm=(Fm-Fo)/Fm;ΦPSII=(F′m-Fs)/F′m.
1.4 数据分析
采用Excel 2003和SPSS 13.0统计软件进行数据挖掘和分析.
2 结果与分析
2.1 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷根冠比、根鲜物质量、茎鲜物质量、株高和根系活力的影响
由表1可知,高温胁迫和低温胁迫极显著降低了紫御谷幼苗的根冠比和根系活力,同时也降低了紫御
谷幼苗的根鲜物质量、茎鲜物质量和株高,而SA处理能提高高温胁迫和低温胁迫下紫御谷幼苗的根冠比、
76第2期      杨丙贤,等:水杨酸对温度胁迫下紫御谷幼苗生长及光合特性的影响
根鲜物质量、茎鲜物质量和根系活力,说明高温和低温胁迫使紫御谷幼苗的生长受到抑制,而SA处理则
起到了一定的缓解作用.
表1 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷根冠比、根鲜物质量、茎鲜物质量、株高和根系活力的影响
材  料
根冠比
(干)
根鲜物质量
/g
茎鲜物质量
/g
株高
/cm
根系活力
/[mg·(g·h)-1]
常温对照 0.21+0.01A 1.21+0.10A 8.13+0.10A 47.20+2.20A 55.92+1.89A
高温处理 0.10+0.01B 0.58+0.03B 6.29+0.02AB  38.80+4.30A 40.70+1.45B
高温SA处理 0.23+0.03A 0.65+0.01BC  6.91+1.11AB  40.23+0.96A 50.39+1.88A
低温处理 0.11+0.01B 0.35+0.03C 7.00+0.88AB  38.33+2.9A 30.07+0.06D
低温SA处理 0.11+0.01B 0.40+0.05C 8.91+0.82A 43.17+2.29A 33.23+0.99C
  注:不同字母表示差异达到5%的显著水平.下同.
2.2 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷幼苗根系形态的影响
高温胁迫和低温胁迫使紫御谷根系的总根长和平均根直径较常温对照都显著地降低(表2),同时根总
表面积、根节点数及根体积等也不同程度地降低,说明高温胁迫抑制了根系的生长.而喷施SA后,高温胁
迫下根总长和根节点数分别上升了35.98%和11.01%,根总表面积、平均根直径和根体积则差异不大;而
低温胁迫下的根节点数则上升了51.30%.
表2 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷根系形态的影响
材  料
根总长
/cm
根总表面积
/cm2
根平均直径
/mm
根节点数/个 根体积/cm3
常温对照 244.14+7.54A 16.12+0.93A 0.27+0.018A 1 922.67+8.90B 0.13+0.05A
高温处理 139.16+8.36C 13.63+1.76A 0.19+0.021B 1 919.00+6.91B 0.06+0.02A
高温SA处理 189.24+9.28B 14.61+0.62A 0.18+0.005B 2 130.33+8.55A 0.06+0.01A
低温处理 99.24+4.43D 12.08+0.04A 0.21+0.022AB  707.66+8.74D 0.03+0.03A
低温SA处理 121.86+10.39CD 12.87+0.81A 0.20+0.007AB 1 070.66+5.14C 0.04+0.02A
2.3 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷光合色素质量分数的影响
由表3可知,和常温对照相比,高温处理显著降低了紫御谷叶片的叶绿素a和总叶绿素质量分数,而
胡萝卜素/叶绿素则显著高于常温对照,喷施SA后高温胁迫下的紫御谷幼苗叶片的叶绿素a和总叶绿素与
高温胁迫处理组没有显著差异.低温胁迫使紫御谷幼苗叶片的叶绿素a和胡萝卜素/叶绿素显著下降,喷施
SA显著提高了叶绿素a和叶绿素b的质量分数,而胡萝卜素/叶绿素则出现了显著下降的情况.
表3 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷光合色素质量分数的影响
材  料
叶绿素a
/(mg·g-1)
叶绿素b
/(mg·g-1)
总叶绿素
/(mg·g-1)
胡萝卜素
/(mg·g-1)
胡萝卜素/
叶绿素
常温对照 1.019+0.023A 0.329+0.001C 1.348+0.004A 0.190+0.000 2A 0.141+0.000 2B
高温处理 0.738+0.041B 0.244+0.013C 0.982+0.053B 0.155+0.009A 0.158+0.000 4A
高温SA处理 0.707+0.079B 0.242+0.028C 0.950+0.108B 0.146+0.015AB  0.154+0.001A
低温处理 0.895+0.076AB  0.319+0.028C 1.214+0.104A 0.099+0.012A 0.074+0.003C
低温SA处理 1.100+0.030A 0.553+0.005A 1.653+0.035A 0.101+0.011A 0.061+0.005D
2.4 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷幼苗光合参数的影响
由表4可知,在高温胁迫下,紫御谷幼苗叶片的净光合速率显著低于常温对照;而气孔导度和蒸腾
速率略高于常温对照,但差异不明显;胞间CO2 质量分数则显著高于常温对照;SA处理显著提高了紫
御谷叶片的净光合速率.低温胁迫下,紫御谷幼苗叶片的净光合速率、气孔导度和蒸腾速率均显著低于
常温对照;胞间CO2 质量分数则高于常温对照;SA处理后,叶片的净光合速率、气孔导度和蒸腾速率
均有所升高.
86 西南师范大学学报(自然科学版)     http://xbbjb.swu.cn    第37卷
表4 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷幼苗光合参数的影响
材  料
净光合速率
/[μmol·(m
2·s)-1]
气孔导度
/[mol·(m2·s)-1]
蒸腾速率
/[mol·(m2·s)-1]
胞间CO2 质量分数
/(μmol·mol
-1)
常温对照 12.067±0.09A 0.058 5±0.003A 1.597±0.043A 50.33±8.799C
高温处理 4.897±0.970C 0.069 2±0.008A 1.867±0.218A 265.00±9.504A
高温SA处理 6.670+0.588B 0.057 0+0.010A 1.567+0.242A 178.67+42.24B
低温处理 0.705±0.017D 0.004 3±0.000 2B 0.126±0.008B 120.00±21.00B
低温SA处理 1.543+0.013D 0.019 0+0.000B 0.530+0.000B 243.67+1.333A
2.5 水杨酸对温度胁迫下紫御谷叶绿素荧光动力学参数的影响
Fo表示PSII反应中心全部开放即原初电子受体全部氧化时的荧光水平,如果PSⅡ反应中心出现可逆
失活或不易逆转的破坏会引起Fo的增加,且Fo 增加量越多,受损伤程度就越严重[16-18].Fo 是已经暗适
应的光合机构全部PSⅡ中心完全开放时的荧光强度,它反映了PSⅡ天线色素受激发后的电子密度,与叶
片叶绿素质量分数有关[19].由表5可知,高温和低温胁迫处理使紫御谷的Fo降低,而SA处理能提高Fo,
但都低于常温对照,这应该是由于叶绿素质量分数降低造成的.
高温处理下紫御谷的光化学量子效率(Fv/Fm)和光下PSⅡ实际光化学效率(ΦPSⅡ)与对照相比没有较
大差异,喷施SA也未见明显差异出现.而低温处理下的Fv/Fm 和ΦPSⅡ则显著低于对照,说明低温对PSⅡ
反应中心产生了损害,其光能转化能力显著下降,导致了紫御谷光合能力的降低,喷施SA后Fv/Fm 和
ΦPSⅡ均低于低温处理组,且Fv/Fm差异显著,推断低温胁迫可能使PSⅡ反应中心受到不可逆的损害.
光化学淬灭系数(qP)反映的是用于光化学反应的光能部分[20].由表5可知,高温处理下的qP显著
高于对照,表明其用于光化学反应的光能部分明显提高,这也是紫御谷在高温逆境下实现自我适应调节的
一种方式,喷施SA后对比原高温组没有明显变化.低温处理下的qP较对照变化不明显,喷施SA后qP
则显著降低(表5).
表5 水杨酸(SA)对温度胁迫下紫御谷叶绿素荧光动力学参数的影响
材  料
初始荧光
(Fo)
光化学量子效率
(Fv/Fm)
光下PSⅡ实际光化学效率
(ΦPSⅡ)
光化学猝灭系数
(qP)
常温对照 68.933+3.13A 0.761+0.011A 0.728+0.003A 0.984+0.002B
高温处理 48.833+3.14A 0.775+0.008A 0.718+0.009A 0.993+0.001A
高温SA处理 57.533+5.805A 0.797+0.012A 0.735+0.011A 0.991+0.000 6A
低温处理 47.633+3.133A 0.677+0.024A 0.571+0.047B 0.981+0.003B
低温SA处理 53.900+11.89A 0.513+0.094B 0.565+0.000 8B 0.961+0.002C
3 讨  论
植物根系生长和生理特性是研究植物抗逆性的一个重要方面.从表观特征来看,温度胁迫对植物的影
响会在根系形态特征上表现出来,如根长、根质量和根体积等.根系是植物吸收、转化和储藏营养物质的
重要器官,其生长好坏直接影响到地上部分产量和植物的水土保持能力.在逆境胁迫条件下,植物可以通
过改变根系的形态和分布以适应环境胁迫.根冠比是衡量地下部与地上部是否协调的一个重要指标.本实
验研究发现,高温和低温胁迫下紫御谷的根系生理指标和形态指标均表现出不同程度的降低,其中总根长
和平均根直径降低显著,说明高温和低温胁迫抑制了紫御谷根系的生长,进而影响了整个紫御谷的生长.
SA处理后,高温胁迫下根总长和根节点数分别比高温处理上升了35.98%和11.01%,低温胁迫下的根节
点数和低温处理相比上升了51.30%,说明SA对紫御谷调节根系适应温度胁迫起到了积极的作用.
植物在受到高温、低温等逆境胁迫时,其光合作用的强度会发生变化.吴韩英等[21]认为,较轻的高温
胁迫通过气孔因素限制光合作用的进行,而严重的高温胁迫下光合作用的降低主要是由非气孔因素造成
的.许大全等[22]认为只有当Ci与Pn一起下降且气孔限制值增加时,Pn的下降才主要由气孔因素造成.
96第2期      杨丙贤,等:水杨酸对温度胁迫下紫御谷幼苗生长及光合特性的影响
孙宪芝等[23]对切花菊的高温研究发现,胁迫初期Gs持续下降,Pn的降低与Ci的上升同时发生,因此推
断该阶段高温逆境下菊花Pn的降低不是由气孔性因素造成的.胡春梅等[24]对不结球白菜进行的低温胁迫
研究,说明各个不结球白菜品系发生光抑制的主要原因不是气孔限制因素,而叶肉细胞光合活性下降可能
是引起叶片光抑制的主要因素.周建等[25]认为非气孔限制因子是抑制光合作用的一个重要因素,低温胁迫
降低了RuBPCase(核酮糖1,5-二磷酸羧化酶)活性,导致光合碳同化中的羧化作用减弱,使得光合机构发
生障碍甚至遭到破坏.本实验研究发现,紫御谷在低温胁迫7d时的Gs明显下降,Pn下降的同时Ci上升
明显,这与前人的研究结果一致,说明此时叶片光合速率的下降应该是由非气孔因素造成的.紫御谷在高
温胁迫的第7天,Pn较对照显著减少,Ci明显高于对照,其Gs和蒸腾速率(Tr)较对照略有增加,这证明
高温胁迫下光合速率降低是因非气孔因素所致的同时,还说明紫御谷在受到高温胁迫时进行了自身调节,
通过增大气孔导度和蒸腾速率来减少高温对自身叶片的灼伤.有关SA对逆境下植物光合功能调控机理方
面的研究报道较少[26].本文研究发现,喷施SA显著提高了高温胁迫下紫御谷的净光合速率,而低温胁迫
下紫御谷叶片的净光合速率、气孔导度和蒸腾速率在喷施SA后也有所升高,推断SA可能通过调节叶肉
细胞内与光合作用相关酶的活性和电子传递速率来达到调节紫御谷光合作用的目的.
参考文献:
[1] 刘 辉,郭延平,胡美君.杨梅光合作用的低温光抑制 [J].热带亚热带植物学报,2005,13(4):338-342.
[2] 黄锦文,陈冬梅,郑红艳.暖季型草坪草对高温胁迫的生理响应 [J].中国生态农业学报,2009,17(5):964-967.
[3] KRATSCH H A,WISE R R.The Ultrastructure of Chilingstress[J].Plant Cel Environ,2000,23(4):337-350.
[4] 曹 宁,张玉斌,闫 飞.低温胁迫对不同品种玉米苗期根系性状的影响 [J].中国农学通报,2009,25(16):
139-141.
[5] LUO Jian-ping,JIANG Shao-tong,PAN Li-jun.Enhanced Somatic Embryo Genesis By Salicylic Acid of Astragalus Ad-
surgens Pal:Relation Ship with H2O2 Production and H2O2 Metabolizing Enzyme Activities[J].Plant Sci,2001,
161(1):125-132.
[6] SHIRAS K,NAKAJIMA H,RAJASHEKAR K,et al.Salicylic Acid Potentiates an Agonist Dependent Gain Control
That Amplifies Pathogen Signal in the Activation of Defense Mechanisms[J].Plant Cel,1997,9(2):261-270.
[7] 吴能表.外源水杨酸对萝卜低温胁迫的缓解作用 [J].西南农业大学学报:自然科学版,2006,28(5):782-785.
[8] 王淑芳,杨雪清,田桂香.水杨酸对 NaCl胁迫下黄芩幼苗生长的影响 [J].西南师范大学学报:自然科学版,2006,
31(5):159-162.
[9] 许耀照,曾秀存,郁继华.水杨酸对高温胁迫下黄瓜幼苗叶绿素荧光参数的影响 [J].西北植物学报,2007,27(2):
267-271.
[10]胡丽涛,吴能表,陈凤娟.水杨酸对UV2B胁迫下黄瓜荧光特性和抗氧化力的影响 [J].西南师范大学学报:自然科学
版,2010,35(2):191-196.
[11]刘 伟,艾希珍,梁文娟.低温弱光下水杨酸对黄瓜幼苗光合作用及抗氧化酶活性的影响 [J].应用生态学报,2009,
20(2):441-445.
[12]薛建平,张爱民,方中明.水杨酸对半夏植株生长的影响 [J].中国中药杂志,2007,32(12):1134-1136.
[13]萧浪涛,王三根.植物生理学实验技术 [M].北京:中国农业出版社,2005:111-112.
[14]张志良,瞿伟菁.植物生理学实验指导 [M].北京:高等教育出版社,2003:39-41.
[15]冯大兰,刘 芸,钟章成.三峡库区消落带芦苇(Phragmites communis(reed))的光合生理响应和叶绿素荧光特性 [J].
生态学报,2008,28(5):2013-2021.
[16]SCHNETTGER B,CRITCHLEY C,SANTORE U J.Relationship Between Photo-Inhibition of Photosynthesis,D1
Protein Turnover and Chloroplast Structure:Effect of Protein Synthesis[J].Plant Cel Environ,1994,17(1):55-64.
[17]PASTENES C,HORTON P.Effect of High Temperature on Photosynthesis in Beans[J].Plant Physiol,1996,
112(3):1245-1251.
[18]DEMMIG-ADAMS B,ADAMS III W W W.Photoprotection and Other Responses of Plants To High Light Stress[J].
Ann Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,1992,43(1):599-626.
07 西南师范大学学报(自然科学版)     http://xbbjb.swu.cn    第37卷
[19]李 晓,冯 伟,曾晓春.叶绿素荧光分析技术及应用进展 [J].西北植物学报,2006,26(10):2186-2196.
[20]GENT Y B,BRIANTAIS J M,BAKER N R.The Relationship Between the Quantum Yield of Photosynt Hetic Electron
Transport and Quenching of Chlorophyl Fluorescence[J].Biochem Biophys Acta,1989,90(1):87-92.
[21]吴韩英,寿森炎,朱祝军.高温胁迫对甜椒光合作用和叶绿素荧光的影响 [J].园艺学报,2001,28(6):517-521.
[22]许大全.Photosynthetic Eficiency[J].上海:上海科学技术出版社,2002.
[23]孙宪芝,郑成淑,王秀峰.高温胁迫对切花菊“神马”光合作用与叶绿素荧光的影响 [J].应用生态学报,2008,19(10):
2149-2154.
[24]胡春梅,侯喜林.低温胁迫对不结球白菜光合及叶绿素荧光特性的影响 [J].西北植物学报,2008,28(12):2478-2484.
[25]周 建,杨立峰,郝峰鸽.低温胁迫对广玉兰幼苗光合及叶绿素荧光特性的影响 [J].西北植物学报,2009,29(1):
0136-0142.
[26]蔡 汉,李卫东,陈 颖.水杨酸预处理对低温胁迫下茉莉幼苗光合作用及相关生理特性的影响 [J].中国农业大学学
报:自然科学版,2007,12(5):29-33.
Effects of Salicylic Acid on the Growth and Photosynthesis Characters
of Purple Majesty(Pennisetum glaucum)During Temperature Stress
YANG Bing-xian1, GONG Ting1,
MA Yong-fu2, YI Xiao-lin1, ZONG Xue-feng1
1.School of Agronomy and Biotechnology,Southwest University,Key Laboratory of Biotechnology
 and Crop Quality Improvement,Ministry of Agriculture,Chongqing 400716,China;
2.School of Life Science and Technology,Chongqing University of Arts and Science,Yongchuan Chongqing 402618,China
Abstract:The effects of salicylic acid on the growth and photosynthesis of Purple Majesty(Pennisetum
glaucum)grown under high temperature stress and low temperature stress were studied.Both high and
low temperature stress resulted in significant reduction in root/shoot ratio,root activity,total length of
the root and average diameter of the root,while salicylic acid increased root/shoot ratio,root fresh
weight,stem-leaf fresh weight and the activity of root.High temperature stress reduced the contents of
chlorophyl a and total chlorophyl and net photosynthesis rate,while the salicylic acid treatment signifi-
cantly increased net photosynthesis rate.Compared with the normal temperature control group,low-tem-
perature stress significantly decreased net photosynthesis rate,stomatal conductance and transpiration
rate,and the salicylic acid treatment increased these indicators slightly.Compared with the normal tem-
perature control group,high temperature stress generated little effect on Fo,Fv/FmandΦPSⅡof the seed-
lings.Low temperature stress significantly reduced the Fv/FmandΦPSⅡ.Spray of salicylic acid on the
plants under the low-temperature,we found the Fv/FmandΦPSⅡstil reduced and inferred that theΦPSⅡ
may be irreversibly damaged under the low-temperature stress.
Key words:Purple Majesty(Pennisetum glaucum);high temperature stress;low temperature stress;sali-
cylic acid;growth;photosynthesis
责任编辑 夏 娟    
17第2期      杨丙贤,等:水杨酸对温度胁迫下紫御谷幼苗生长及光合特性的影响