全 文 :* 通迅作者,E-mail:zyl8802@163.com
收稿日期:2012-05-01;修回日期:2012-06-15
基金项目:内蒙古自然科学基金项目(2010MS0411);内蒙古民
族大学科研创新团队建设计划项目(NMD10-03)资助
作者简介:张浩(1982- ),男(汉族),内蒙古锡林浩特市人,内蒙
古民族大学硕士研究生,研究方向为牧草栽培与种质资源,E-mail:
hao8853320@foxmail.com.
文章编号:1673-5021(2012)06-0007-06
虉草种子休眠机理与休眠破除方法初探
张 浩,张永亮*,高 凯
(内蒙古民族大学农学院,内蒙古 通辽 028042)
摘要:种子休眠程度深、发芽率低是限制虉草栽培利用的重要因子。通过对3个年份采收的虉草种子发芽试
验、吸水率测定及种子萌发抑制物活性的生物鉴定,揭示虉草种子休眠机理;并利用植物激素、硝酸钾和有机溶剂浸
泡处理虉草种子,以探寻打破虉草种子休眠的最佳方法。结果表明:虉草种子休眠属于种皮吸水障碍、存在萌发抑
制物和胚生理休眠的综合性休眠,其中萌发抑制物是限制种子萌发的首要因素。用100mg/L GA3、100mg/L 6BA、
150mg/L KT或4g/L KNO3 浸泡虉草种子24h可显著提高其发芽势、发芽率和发芽指数,其中以4g/L KNO3 浸种
24h效果最好,平均发芽率可提高到91%,比对照高137%;其次是100mg/L GA3 浸种24h,平均发芽率为84%,比
对照高118%。
关键词:虉草;种子;休眠机理;破除休眠
中图分类号:Q945.35 文献标识码:A
虉草(Phalaris arundinacea L.)是多年生根茎
型禾本科草本植物。其耐寒、耐热、耐涝、耐干旱,
产草量高,是很有前途的饲用植物和能源植物[1]。
来源于西辽河平原的虉草具有较强的耐盐、耐碱
特性[2],既可无性繁殖,也可有性繁殖,是退化盐
碱草地植被重建的理想植物材料。但虉草种子休
眠期较长、休眠程度深,给种子建植人工草地带来
一定困难。种子休眠是植物本身适应环境和延续
生存的一种特性,是种子植物进化的一种稳定对
策。野生植物特别是原产温带的植物,其种子大
多有深而长的休眠[3]。种子休眠类型主要有胚休
眠(生理学休眠、形态学休眠、形态生理学休眠)、
种皮引起的休眠(机械性休眠、物理性休眠)、萌发
抑制物质引起的休眠、次生休眠和综合休眠五种
类型[4~7]。Matus-Ca’diz等 [8]研究表明对一年生
虉草(P.canariensis L.)种子采用手工去壳或用
0.01MKNO3 处理带壳种子能快速、有效的破除
种子休眠。Junttila等 [9]报道用0.01M KNO3 处
理虉草种子(光照、27℃)使发芽率提高45%。
Landgraff等[10]报道在无光照条件下用0.004M的
乙烯利处理虉草种子提高发芽率38%。本研究以
当地虉草种子为试验材料,对种皮透水性、发芽抑
制物质活性以及用GA3、KNO3 等试剂处理后的发
芽效果进行分析,探索虉草种子休眠原因及破除
休眠方法,以期为虉草在生产实践中的推广应用
提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
虉草种子分别于2009年7月3日、2010年6
月30日和2011年7月1日采于内蒙古民族大学试
验农场,在实验室内晾干后贮藏于冰箱冷藏室中
(4℃)备用。供试白菜籽为市售。
1.2 试验方法
1.2.1 种皮透水性测定
采用称重法测定种子的吸水性。取2010年采
集的虉草种子去掉内外稃后作为完整种子和用180
目砂纸擦破种皮的种子作为破皮种子分别放入
l00ml烧杯中。加入10ml蒸馏水(水温25℃)后放
入恒温培养箱中(温度25±1℃)。每隔2h取出种
子,用吸水纸吸干种子表面水分后在1/10000电子
天平上称重,然后再放回烧杯中继续吸水。如此反
复直至两次测定的值趋于恒重为止,重复3次,取
平均值。
吸水率=(浸种后质量-浸种前质量)/浸种前
质量×100%
—7—
第34卷 第6期
Vol.34 No.6
中 国 草 地 学 报
Chinese Journal of Grassland
2012年11月
Nov.2012
1.2.2 发芽抑制物质活性的生物鉴定
取2010年采集的虉草种子(包括种皮和内外
稃)1g研碎,放入100ml三角瓶中。分别加50ml蒸
馏水和50ml 80%甲醇浸泡24h(在60℃水浴锅中,
用封口膜封口)。然后蒸馏水浸提液直接定溶至
50ml。甲醇浸提液在60℃水浴锅中放置24h(去掉
封口膜)挥发去甲醇后用蒸馏水定溶至50ml;最后
各取3ml放入垫有一层滤纸的培养皿(直径11cm)
内使滤纸完全湿润。每皿摆放25粒白菜种子,3次
重复。对照分别用3ml蒸馏水湿润滤纸(对照1)和
3ml甲醇湿润滤纸后在20~22℃室温下放置24h
挥发去甲醇(对照2)。在28℃恒温培养箱中培养。
24h后统计发芽率(以幼根伸出长度大于种子直径
为发芽标准),72h后测量芽长。
内源物抑制率=(1-处理/对照)×100%
1.2.3 化学试剂处理
对不同年份(2009、2010和2011年)采集的虉草种
子分别用GA3(浓度100mg/L、200mg/L、300mg/L)、6-
BA(浓度 50mg/L、100mg/L、150mg/L)、KT(浓度
50mg/L、100mg/L、150mg/L)、KNO3(浓度2g/L、4g/L、
6g/L)和蒸馏水浸泡24h,浸泡温度25℃,浸泡后用
蒸馏水冲洗3遍。激素类药剂先用少量乙醇溶解
后用蒸馏水定溶。取6ml蒸馏水湿润发芽床(培养
皿内垫2层滤纸),每个培养皿内摆放100粒处理后
种子,以未浸泡的种子为对照,3次重复。在光照培
养箱内变温培养[15℃(16h)/25℃(8h光照)]。第
7d开始记录发芽情况,第21d结束。
发芽势=7d内发芽种子数/供试种子数×100%
发芽率=全部发芽种子数/供试种子数×100%
种子发芽指数(GI)=∑Gt/Dt,其中Gt是指
在t天时发芽种子数,Dt指相应的发芽天数。
1.2.4 有机溶剂处理
取2010年采集的虉草种子分别用石油醚、甲
醇、丙酮和无水乙醇分别浸泡6h、12h和24h,浸泡
温度25℃,处理后用蒸馏水冲洗3遍。然后将处理
后种子摆放在垫有2层滤纸的培养皿内,每皿100
粒种子,滤纸用蒸馏水湿润,3次重复。置于光照培
养箱中[15℃(16h)/25℃(8h)]变温培养,7d时统
计发芽势,21d时统计发芽率。
1.3 数据处理与统计分析
采用 Excel 2003统计分析和作图,用 DPS
数据处理软件进行标准差计算和 Duncan法多
重比较。
2 结果与分析
2.1 种皮透水性
对虉草破皮种子和完整种子进行吸水率测定结
果如图1所示。随着浸泡时间的延长,虉草种子吸
水率逐渐升高。在种子吸胀的24h前,吸水速度较
快,之后,种子的吸水速度放慢,并趋于稳定。破皮
种子的吸水要比完整种子的吸水更迅速,吸水率更
高。浸泡34h后,破皮虉草种子最大吸水率为26.47%,
而完整种子最大吸水率为8.91%,前者比后者高
66.34%。试验结果表明,虉草种子的种皮对种子的
透水性有一定的阻碍作用,表明种皮透水性差是引
起虉草种子休眠的一个原因。
图1 虉草种子吸水率曲线
Fig.1 Changes of soaking procedure of P.arundinaceaseed
2.2 发芽抑制物质活性的生物鉴定
用虉草种子浸提液分别处理白菜种子的发芽情
况如表1所示。甲醇浸提液处理的白菜种子发芽率
和芽长最小,内源物抑制率分别为20.63%和40%;
与对照2差异显著(P<0.05)。水浸提液处理的白
菜种子发芽率和芽长也受到明显抑制,内源物抑制
率分别为17.65%和33.33%,与对照1差异显著。
如果取6ml浸提液湿润垫有2层滤纸的发芽床,白
菜种子的发芽率均为0。试验表明,虉草种子中存
在萌发抑制物质,其中用甲醇浸提的抑制物质对种
子发芽抑制作用强于水浸提物质。由此可见,虉草
种子内部发芽抑制物质的存在是种子休眠的主要原
因之一。
2.3 化学试剂处理对种子发芽的影响
从表2和表3可以看出,不同储藏年限的虉草
种子,经化学试剂处理后发芽势和发芽率变化趋势
相似。在GA3、6BA、KT和KNO3 的不同浓度处理
—8—
中国草地学报 2012年 第34卷 第6期
表1 虉草种子水和甲醇浸提液对白菜种子萌发及幼苗的抑制作用
Table 1 The inhibitory activity of water and extracts of
P.arundinaceaseeds on seed germination and seedling of cabbage
处理
Treatment
发芽率
Germination
rate(%)
芽长
Length of
bud(cm)
对发芽率的
抑制率
Inhibitory rate
to germination
(%)
对芽长的
抑制率
Inhibitory
rate to
bud
(%)
对照1 91a 2.88a -- --
对照2 84ab 2.05b -- --
水浸提液 75bc 1.92b 17.65 33.33
甲醇浸提液 67c 1.23c 20.63 40.00
注:同列不同小写字母表示差异显著(P<0.05),下表同。
Note:Different letters in the same column mean significantly
different at 0.05level,the same as below.
中,分别以100mg/L GA3、100mg/L 6BA、150mg/L
KT和4000mg/L KNO3 处理的发芽势、发芽率和
发芽指数最高,与其余处理间(高浓度 KNO3 处理
的发芽势除外)差异均达到显著水平(P<0.05)。
三个采收年分的虉草种子平均发芽势、发芽率和发
芽指 数 均 以 4g/L KNO3 处 理 最 高,分 别 为
57.89%、91%和11.14,其次为100mg/L GA3 处
理,平均发芽势、发芽率和发芽指数分别分49.22%、
84%和10.34。GA3、6BA和 KNO3 三种试剂对虉
草种子发芽率均有促进作用,但高浓度6BA(150
mg/L)和低浓度KT(50mg/L)处理对种子萌发的
促进作用较小,与对照差异不显著,而显著低于蒸馏
水浸泡处理。蒸馏水浸种也能提高发芽率,但低于
适宜浓度的药剂处理。
表2 化学试剂处理对虉草种子萌发的影响
Table 2 Effect of soaking with different concentrations of chemical reagents on seed germination of P.arundinacea
处理
Treatment
发芽势
Germination potential(%)
2009 2010 2011
平均
mean
发芽率
Germination rate(%)
2009 2010 2011
平均
mean
对 照 36cd 33def 28ef 32cde 41g 39e 35f 39h
蒸馏水 416c 37cde 36cd 38c 57f 53d 51e 54g
GA3
(mg/L)
100 576b 47ab 44b 49b 91ab 82b 79ab 84b
200 31de 25fg 25fg 27ef 69de 71c 57e 66de
300 37cd 28fg 27ef 30def 73d 59d 53e 62ef
6BA
(mg/L)
50 37cd 39cd 32de 36cd 63ef 52d 59de 58fg
100 54b 47ab 41bc 48b 87bc 79bc 78b 81bc
150 21f 15h 13h 16h 49g 42e 37f 42h
KT
(mg/L)
50 19f 21gh 17h 19gh 41g 42e 38f 40h
100 28e 27fg 19gh 25fg 56f 53d 53e 54g
150 52b 43bc 37cd 44b 82c 74bc 71bc 76c
KNO3
(mg/L)
2000 33de 30ef 27ef 30def 72d 71c 66cd 70d
4000 68a 53a 52a 58a 96a 92a 86a 91a
6000 70a 48ab 52a 57a 84bc 74bc 76b 78c
2.4 有机溶剂浸种对种子发芽的影响
有机溶剂浸种对虉草种子发芽势和发芽率有明
显影响。从表4可以看出,虉草种子用丙酮、乙醇和
石油醚浸种6h以内,可显著提高种子发芽势和发芽
率,与对照种子差异显著(P<0.05)。浸种时间超
过6h,种子发芽势和发芽率显著下降。在四种有机
溶剂中丙酮浸种6h较果最好,虉草种子发芽势和发
芽率分别比对照高91.9%和64.1%;而甲醇浸种
6h对虉草种子有伤害,其发芽势和发芽率分别比对
照低41.9%和50.4%,浸种24h后发芽率降为0。
试验表明,甲醇浸种或丙酮、乙醇和石油醚浸种超过
6h均对种子产生伤害,发芽率显著降低。
3 讨论
通过对虉草种子的种皮透水性的观察,破皮虉
草种子最大吸水率为25.86%,而完整种子最大吸
—9—
张 浩 张永亮 高 凯 虉草种子休眠机理与休眠破除方法初探
表3 化学试剂处理对虉草种子发芽指数的影响
Table 3 Effect of soaking with different concentrations of chemical
reagents on seed germination index of P.arundinacea
处理
Treatment
发芽指数Germination index
2009 2010 2011 平均 mean
对 照 5.46 5.09 4.57 5.04g
蒸馏水 7.22 6.69 6.44 6.78e
GA3
(mg/L)
6BA
(mg/L)
KT
(mg/L)
KNO3
(mg/L)
100 11.38 10.07 9.56 10.34b
200 8.25 8.23 6.72 7.73d
300 9.04 6.64 6.39 7.36de
50 7.55 6.61 7.26 7.14de
100 10.84 9.45 9.12 9.80bc
150 5.52 4.61 3.95 4.69g
50 4.26 4.46 4.06 4.26g
100 6.22 6.16 5.36 5.91f
150 10.21 9.03 8.37 9.20c
2000 8.39 7.90 7.48 7.92d
4000 12.05 10.97 10.40 11.14a
6000 11.08 9.15 9.49 9.91bc
表4 有机溶剂浸种处理对虉草种子萌发的影响
Table 4 Effect of soaking with different concentrations of
organic solvents on seed germination of P.arundinacea
处 理
Treatment
发芽势
Germination potential(%)
6h 12h 24h
发芽率
Germination rate(%)
6h 12h 24h
对 照 25c 25a 25a 44c 44a 44a
甲 醇 14d 1c 0c 22d 3d 0d
乙 醇 42ab 19b 1c 66b 26c 3cd
石油醚 38b 22ab 7b 69ab 36b 10b
丙 酮 47a 19b 3bc 72a 36b 5c
水率为8.74%,前者比后者高66.20%,差异极显著
(P<0.01),说明种皮完整与否对其种子的透水性
有很大影响。何学青等[11]报道刺破羊草种皮的裸
种子较完整种子的萌发率、吸水速率、生活力分别由
对照的6%、63%、0%显著增加到60%、86%、94%。
吸水是萌发的首要环节,种子萌发是从种子吸胀开
始的。植物种子种皮太紧密,密封性好,含有蜡质、
胶质、粘质或革质化,使水分和氧气不易进入而导致
休眠,必须经过相应的处理才能正常发芽[12]。可见
虉草种子存在物理性的种皮休眠是导致种子发芽率
低的原因之一。
植物种子中存在萌发抑制物是导致种子休眠的
一个主要因素,抑制物可以存在于种子的种皮、胚或
者胚乳中。通过对虉草种子水浸提液和甲醇浸提液
对白菜种子萌发的影响试验表明,虉草种子含有发
芽抑制物是导致种子发芽率低的主要因素。但虉草
种子中主要含有哪些类发芽抑制物质尚有待进一步
研究。
胚的生理休眠主要是因为抑制剂(主要是
ABA)浓度过高,而促进剂如赤霉素(GA)、细胞分
裂素(CTK)和生长素(IAA)等浓度过低所致[13]。
许多研究表明,植物激素和硝酸钾可有效破除种子
休眠,提高种子发芽率。虉草种子用 100mg/L
GA3、100mg/L 6BA、150mg/L KT和4g/L KNO3
浸泡24h后可显著提高发芽势、发芽率和发芽指数,
其中以4g/L KNO3 浸种24h效果最好,三个年份
采收的种子平均发芽率可达到91.33%,比对照高
137%;其次是100mg/L GA3 浸种24h,平均发芽率
为84%,比对照高 118%;用 100mg/L 6BA 和
150mg/L KT处理种子平均发芽率分别比对照提高
了110%和96.58%,表明植物激素和硝酸钾可有效
破除虉草种子休眠,提高种子发芽率。低浓度 KT
(50mg/L)处理虉草种子发芽势和发芽率均显著低
于蒸溜水浸泡处理。这可能是因为低浓度的KT与
萌发抑制物质(如 ABA)共同存在时,表现为拮抗
作用,KT拮抗ABA抑制GA的效应[14]。
随着储藏年限的增加,2009年、2010年和2011
年采集的三批虉草种子,处理种子和对照种子发芽
势和发芽率均递增。2009年对照种子平均发芽率
为41%;2010年为39%;2011年的为35%。这可
能是因为种子生长促进激素(ZT、IAA、GA3)含量
随着储存时间的延长越来越高,而生长抑制激素
(ABA)含量越来越低[15]。新采收的虉草种子用
100mg/L GA3 处理后发芽率比对照提高123.6%。
据此,可以推断虉草种子存在胚的生理休眠。
有机溶剂(甲醇、乙醇、乙醚、丙酮、氯仿、甲醛、
对苯二酚等)对于种皮强迫休眠和胚休眠的种子都
有显著促进作用。30%丙酮处理结缕草种子20min
可使发芽率提高到90%[16]。防风种子采用石油醚、
乙醚、丙酮、乙醇浸种,发芽率均可以显著提高,但继
续延长浸种时间,有机溶剂会对种子产生毒害作用
而导致防风种子发芽率显著下降[7]。虉草种子采用
有机溶剂浸种后发芽率变化规律与防风种子相似,
采用石油醚、丙酮和乙醇浸种6h以内,均可以显著
—01—
中国草地学报 2012年 第34卷 第6期
提高种子发芽率,但继续延长浸种时间,种子发芽率
显著下降。甲醇浸种6h也会使虉草种子发芽率显
著降低。这可能是因为虉草种子中的GA3、IAA及
ABA三者均可被冷甲醇溶解提取,在降低发芽抑制
物质的同时,也减少了发芽促进物质数量,而激素的
平衡由抑制剂占优势向促进物占优势的变化是打破
休眠的决定因素[17]。
4 结论
4.1 虉草种子休眠属于综合性休眠,包括种皮休
眠、萌发抑制物休眠和胚生理休眠等多种因素,其中
萌发抑制物休眠和胚生理休眠是主要因素。
4.2 虉草种子用4g/L KNO3 溶液浸种24h,破除
休眠效果最好。用100mg/L GA3、100mg/L 6BA
或150mg/L KT浸种24h也可取得较好的破除休
眠效果。
参考文献(References):
[1] 张永亮,骆秀梅.虉草的研究进展[J].草地学报,2008,16(6):
659-666.
Zhang Yongliang,Luo Xiumei.Research progress of reed ca-
narygras[J].Acta Agrestia Sinic,2008,16(6):659-666.
[2] 张永亮,聂微微,任秀珍,等.复盐胁迫下二种虉草K+、Na+吸
收与运输的特点[J].中国草地学报,2010,32(3):28-33.
Zhang Yongliang,Nie Weiwei,Ren Xiuzhen,et al.Effects of
mixed saline stress on the absorption and transportation of K+
and Na+ of two reed canarygrass[J].Chinese Journal of
Grassland,2010,32(3):28-33.
[3] 孙杰,熊军波,刘永志,等.野牛草种子休眠原因分析[J].草地
学报,2009,17(5):665-669.
Sun Jie,Xiong Junbo,Liu Yongzhi,et al.Analysis on factors
causing the seed dormancy of Buchloe dactyloides(Nutt.)En-
gelm[J].Acta Agrestia Sinic,2009,17(5):665-669.
[4] Koornneef M,Bentsink L,Hilhorst H.Seed dormancy and ger-
mination[J].Current Opinion in Plant Biology,2002,43(1):
57-58.
[5] Bewley J D.Seed germination and dormancy[J].Plant Cell,
1997,9:1055-1056.
[6] Wolfgang Schutz.Ecology of seed dormancy and germination
in sedges(Carex)[J].Perspectives in Plant Ecology,Evolu-
tion and Systematics,2000,3(1):67-69.
[7] 周艳玲.防风种子休眠生理与栽培技术研究[D].哈尔滨:东北
林业大学,2009.
Zhou Yanling.Study on seed dormancy physiology and culture
technique of Saposhnikovia divaticata[D].Haerbin:Northeast
Forestry University,2009.
[8] Matus-Ca’diz M A,Hucl P.Rapid and effective germination
methods for overcoming seed dormancy in annual canarygrass
[J].Crop Sci.,2005,45:1696-1703.
[9] Junttila,O.,and Nilsen A.J.Stimulation of Phalaris seed
germination by respiratory inhibitors and oxidizing agents[J].
Z.Pflanzenphysiol.,1980,97:429-435.
[10] Landgraff,A,Juntila O.Germination and dormancy of reed
canary seeds(Phalaris arundinacea)[J].Plant Physiol.,
1979,45:96-102.
[11] 何学青,胡小文,王彦荣.羊草种子休眠机制及破除方法研究
[J].西北植物学报,2010,30(1):0120-0125.
He Xueqing,Hu Xiaowen,Wang Yanrong.Study on seed dor-
mancy mechanism and breaking technique of Leymus chinen-
sis[J].Acta Bot.Boreal.-Occident.Sin.,2010,30(1):0120-
0125.
[12] 杨期和,叶万辉,宋松泉,等.植物种子休眠的原因及休眠的多
形性[J].西北植物学报,2003,23(5):837-843.
Yang Qihe,Ye Wanhui,Song Songquan,et al.Summarization
on causes of seed dormancy and dormancy polymorphism[J].
Acta Bot.Boreal.-Occident.Sin.,2003,23(5):837-843.
[13] 江玲,万建民.植物激素 ABA和 GA调控种子休眠和萌发的
研究进展[J].江苏农业学报,2007,23(4):21-24.
Jiang Ling,Wan Jianmin.Advances in seed dormancy and
germination regulated by plant hormones ABA and GA[J].
Jiangsu Journal of Agrcuttural Science,2007,23(4):21-
24.
[14] 强妮花,惠伟.活性氮、活性氧及植物激素在种子休眠解除中
的作用及相互关系研究进展[J].植物生理学学报,2011,47
(7):655-660.
Qiang Nihua,Hui Wei.Research progress on the role and
correlations of reactive nitrogen species(RNS),reactive oxy-
gen species(ROS)and plant hormones in seed dormancy[J].
Plant Physiology Journal,2011,47(7):655-660.
[15] Bewley J D,Black M.Physiology and Biochemistry of Seeds
in Relation to Germination:Viability,Dormancy,and Envi-
ronmental Control[M].Berlin:Springer-Verlag,1982:258-
374.
[16] 宗俊勤,刘建秀.快速打破结缕草种子休眠方法的比较[J].
植物资源与环境学报,2005,14(2):32-34.
Zong Junqin,Liu Jianxiu.Studies on the method of rapidly
breaking dormancy of Zoysia japonica seed[J].Journal of
Plant Resources and Environmen,2005,14(2):32-34.
[17] 李蓉,叶勇.种子休眠与破眠机理研究进展[J].西北植物学
报,2005,25(11):2350-2355.
Li Rong,Ye Yong.Progresses in seed dormancy and dorman-
cy breaking mechanisms[J].Acta Bot.Boreal.-Occident.
Sin.,2005,25(11):2350-2355.
—11—
张 浩 张永亮 高 凯 虉草种子休眠机理与休眠破除方法初探
Preliminary Study on The Dormancy Mechanism and Dormancy
Breaking Methods in Phalaris arundinacea Seeds
ZHANG Hao,ZHANG Yong-liang,GAO Kai
(College of Agronomy,Inner Mongolia University for Nationalities,Tongliao 028042,China)
Abstract:Seed dormancy of Phalaris arundinaceais one of the most important factors limiting culture
and utilization.The seed dormancy mechanism was investigated by seed germination test,water absorption
rate test and inner germination inhibitory substance test,treating seeds of P.arundinacea with hormones
and KNO3and organic solvent were carried out to find the best dormancy breaking method.The results
showed that the reasons of seed dormancy were water absorption barrier by seed coat,physiological dor-
mancy and germination inhibitors existing in seed.It is comprehensive dormancy for P.arundinacea.
seeds,but germination inhibitors was the primary limit factor.Treatments of 100mg/L GA3,100mg/L
6BA,150mg/L KT and 4g/L KNO3for 24hours improved the germination rate of P.arundinacea seeds
significantly,but the best method was treating with 4g/L KNO3for 24hours,average germination rate was
91%,increased by 137%compared with control,and the second method was treating with 100mg/L GA3
for 24hours,average germination rate was 84%,increased by 118%compared with control.
Key words:Phalaris arundinacea L;Seed;Dormancy mechanism;Dormancy breaking
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中国草地学报 2012年 第34卷 第6期