全 文 :2016年5月 四川大学学报(自然科学版) May.2016
第53卷 第3期 Journal of Sichuan University(Natural Science Edition) Vol.53 No.3
投稿日期:2015-03-06
基金项目:国家自然科学基金(31171586);973计划(2015CB755700)
作者简介:潘翔飞(1988-),男,四川成都人,研究方向为植物遗传与分子生物学.E-mail:395327472@qq.com
通讯作者:杨毅.E-mail:yangyi528@vip.sina.com
doi:103969/j.issn.0490-6756.2016.05.032
Fibrilins突变体对拟南芥开花时间的影响
潘翔飞,钱 磊,何晓倩,刘志斌,李旭峰,杨 毅
(四川大学生命科学学院生物资源与生态环境教育部重点实验室,成都610064)
摘 要:本研究所使用突变体为fbn8和fbn1a为研究对象,以杂交的方法获得fbn1a/fbn8
双重突变体.对Fibrilins突变体在不同的环境下FBN1a、FBN8对开花时间调节的可能机制
进行初步探究.研究发现,Fibrilins突变体在长日照、短日照条件下均为早花,并且fbn1a/
fbn8双重突变体早花现象更为明显.说明FBN1a、FBN8有可能共同在开花途径中起到作用.
通过连续对突变体开花基因的检测发现,和单突变体相比,fbn1a/fbn8双重突变体中的FT、
SOC1、CO的基因表达量都大幅度增加,其中FT增加的更为明显,FLC减少也更为明显.而
与野生型相比较,这种现象单突变体fbn1a又要比fbn8更为明显.最后,通过检测了植株体
内H2O2含量的变化发现,与野生型比较fbn8、fbn1a和fbn1a/fbn8体内 H2O2含量升高程
度为20%、30%、50%.由实验结果推测Fibrilins可能通过影响体内 H2O2含量变化来参与开
花时间的改变.
关键词:开花调节;双重突变;开花关键基因;过氧化氢
中图分类号:Q37;Q945 文献标识码:A 文章编号:0490-6756(2016)03-0671-06
Fibrilins regulate the flowering time in Arabidopsis
PAN Xiang-Fei,QIAN Lei,HE Xiao-Qian,LIU Zhi-Bin,LI Xu-Feng,YANG Yi
(Key Laboratory of Bio-resources and Eco-enviroment of Ministry of Education,
Colege of Life Sciences,Sichuan University,Chengdu 610064,China)
Abstract:The fbn1a/fbn8double-mutant of Arabidopsis thaliana is acquired to study the effects of
flowering time.The spatiotemporal expression pattern for FBN1aand FBN8,responses of its mutant to
environmental factors,and its regulation of mechanism of flowering time were investigated.The mutants
flowered earlier than Col-0under long day(LD)or short day(SD)conditions.Moreover,the early
flowering time of fbn1a/fbn8double-mutant was more obvious.Gene FBN1aand FBN8may play a co-
operative role in control of flowering time.Compared with the single mutant,the expression levels of
SOC1、FT and CO in double-mutant is regulated by the continuous detection of key genes,whereas the
expression level of FLC decreased.H2O2in fbn8,fbn1aand fbn1a/fbn8increased 20%、30%、50%.So
we conclude that Fibrilin takes participate in flowering time by changing the H2O2content.
Key words:Flowering regulation pathways;Double-mutant;Arabidopsis thaliana;H2O2
1 引 言
高等植物开花是植物从营养生长向生殖生长
转换过程中最重要的过程,在这一过程中,植物顶
端分生组织从细胞内部的代谢途径到外部的表型
都会发生一系列的转折点[1].这也是开花基因在时
四川大学学报(自然科学版) 第53卷
间、空间顺序表达的结果.研究植物开花时间调节
分子机制对于调节植物发育和繁殖、提高作物产量
和品质都有主要意义.在模式植物拟南芥中,开花
启动至少受到了光周期途径、春化途径、自主途径
和赤霉素途径四条途径的调节与控制.各种途径之
间通过CO、FLC、FT、SOC1等主要的基因的互相
作用,从而调控拟南芥的开花时间[2].其他因素比
如基因染色质结构变化、环境等有待进一步研究.
Fibrilins它是由核基因编码的、和质体相关的
一种脂连接蛋白质,在面对植物对外界环境的适应
中起着非常重要作用[3].脱落酸(ABA)作为植物来
响应外界环境带来的胁迫的内源信号,对植物的抵
抗环境胁迫具有重要的意义[4].在目前拟南芥中发
现,Fibrilin受ABA诱导大量累积,参与多种非生物
胁迫,而在开花时间的研究中未见相关报道,因此我
们对其是否参与植物开花时间的调控进行了研究.
2 材料与方法
2.1 材 料
2.1.1 植株材料 本实验所用拟南芥野生型为
Col,由本实验室保藏.FIB1a的T-DNA插入突变
体fib1a(SALK_024528)和FIB8的T-DNA插入
突变体fib8(SALK_033497)的种子购自 ABRC
(the Arabidopsis Biological Resource Center,Ohio
State University,USA).
2.1.2 酶活测定试剂盒 本实验所用的考马斯
亮兰蛋白测定试剂盒、过氧化氢(H2O2)测定试剂
盒测定试剂盒均购于南京建成生物工程研究所
(http://www.njcbio.com/).
2.2 方 法
2.2.1 杂交方法以及双突变体的鉴定 选择相对
长势较好的母本,剪掉已经长出的长角果和已经开
了的花,其中植株抽苔10d或者是长角果已经产出
2~4h的时候做杂交效果最好[5].用镊子出去母本
的未开花的全部萼片、花瓣还有雄蕊.接下来在解剖
镜下将花粉涂布在母本的花柱上,保证父本的花粉
落在上面.最后分别培养.一般情况下,柱头授粉涂
布10h后柱头毛就要开始渐渐萎蔫,第二天观察,如
果母本的花柱没有失去水分萎缩,继续保持生长的
话,那么杂交成功.成功杂交的F1自交以后收货了
F2的种子[5].AT2G46910和AT4G04020基因引物
和T-DNA引物LB由北京六合华大基因科技公司
合成.
我们把AT2G46910的2对不同PCR引物分
别命名PCR1、PCR2,对 AT4G04020的另外2对
引物称为PCR3、PCR4.引物序列见表1.根据PCR
特异引物扩增有无特异性DNA条带,鉴定突变体
是否为纯合突变体.
表1 PCR引物
Table.1 Primers for PCR
引物名称 引物序列
AT2G46910(PCR1) LP:TGAGTCAATACTTCCATGGGC RP:ACTCCACTGAACAACATTCCG
AT2G46910(PCR2) RP:ACTCCACTGAACA ACATTCG LB:ATTTTGCCGATTTCGGAAC
AT4G04020(PCR3) LP:CTATCCAGGCCCATTTAGTCC RP:TCACCGGGAAATTAAACTTCC
AT4G04020(PCR4) RP:TCACCGGGAAATTAAACTTCC LB:ATTTT GCCGATTTC GGAAC
2.2.2 植物开花时间的统计方法以及开花基因的
表达分析 统计拟南芥在第一朵花形成时的莲座
叶和茎生叶的叶片数作为植物的开花时间指标,统
计的植物数量不低于30株.
2.2.3 实施荧光定量PCR 采用试剂盒提取总
RNA.琼脂糖凝胶电泳检测RNA质量以后反转成
cDNA.用软件Primer 5.0设计荧光定量PCR引
物.用SYBR Green染料,在仪器上进行操作.扩增
引物序列见表2.
2.2.4 酶活测定 称取生长两周的拟南芥幼苗
0.2g,加入1.8mL pH7.5磷酸盐缓冲液(0.1mol/
L)充分研磨整株植物,按南京建成过氧化氢(H2
O2)测定试剂盒测定方法进行测定.
3 结果与分析
3.1 fbn1a和fbn8双重突变体鉴定
对杂交得到F1代挑选7株提取基因组DNA
进行扩增.图1中A看出,对AT4G04020基因,选
取的7株植物除了4与6以外的株系都是杂合子.
从图1中B得知,对AT2G46910基因,7个株系都
是杂合子.筛选出来的杂合体自交收种,挑选22株
提基 因 组 扩 增,图 1 中 C 可 以 得 到 对 于
AT4G04020,突变体株系2、6、11、12、16、19、20、21
是纯合子,对AT2G46910扩增进一步进行筛选.
276
第3期 潘翔飞,等:Fibrilins突变体对拟南芥开花时间影响
表2 qPCR引物
Table.2 Primers for qPCR
引物名称 引物序列
ACT
F:GACTCACTGCCACTTCTG
R:CGCCATTAAACCCTTCCA
FLC
F:TCTCCTCCGGCGATAACCT
R:GCATGCTGTTTCCCATATCGAT
FT
F:CAACCCTCACCTCCGAGAATAT
R:TGCCAAAGGTTGTTCCAGTTGT
SOC1
F:CTTCTAAACGTAAACTCTTGG
R:CCTCGATTGAGCATGTTCCTAT
CO
F:CATTAACCATAACGCATACATTTC
R:TCCGGCACAACACCAGTTT
由图1中D可知,1、4、5为纯合子.综合图C和D可
知,F2中1、4、5为fbn1a/fbn8为双重突变纯合体.
PCR1、PCR2引物初步筛选,图1中C可以得到基因
AT4G04020,突变体株系2、6、11、12、16、19、20、21
是纯合子,接下来对基因 AT2G46910的PCR3和
PCR4目的片段进行扩增从而进一步进行筛选纯合.
对它们分株提取基因组 DNA作为模版,分别以
PCR1、PCR2、PCR3、PCR4为引物做PCR扩增反映,
由图1中D可知,对于AT2G46910突变体株系1、
4、5为纯合子.综合图3和图4可知,F2中1、4、5为
fbn1a/fbn8为双重突变纯合体.综合图C和图D,
F2中1、4、5为fbn1a/fbn8为双重突变体.
图1 双重突变体植株电泳结果
A.B F1代突变体植株PCR1、PCR2和PCR3、PCR4电泳结果;
C.D F2代突变体植株PCR1、PCR2和PCR3、PCR4电泳结果
Fig.1 Electrophoresis pattern of double-mutant
A.B Electrophoresis pattern of PCR1、PCR2and PCR3、PCR4products of F1;
C.D Electrophoresis pattern of PCR1、PCR2and PCR3、PCR4products of F2
3.2 fbn1a和fbn8突变体以及fbn1a/fbn8双
突变体开花表型
将拟南芥野生型、fbn1a、fbn8突变体以及
fbn1a/fbn8双突变体种在长日照和短日照条件下,
统计植株的开花时间以及莲座叶.如图2所示,相对
于野生型,fbn1a、fbn8突变体以及fbn1a/fbn8双突
变体无论是在长日照和段日照的条件下都表现出早
花,并且三种突变体在长日照比段日照的开花明显
要早的多,说明该突变体对光周期产生反应.其中在
长日照的条件下,fbn1a、fbn8开花时间比野生型要
早,莲座叶数目更多,但是fbn1a/fbn8双突变的开
花时间比起他们对应的单突变体明显更加提前.
376
四川大学学报(自然科学版) 第53卷
图2 突变体在不同光照条件下开花情况
A.B.C各植株在长日照条件(LD)的开花表形,开花时间统计分析;D.E.F各植株在长日照条件(SD)的开花表形,开花时间统计
分析
Fig.2 Daylength effects on Flowering
A、B、C Flowering of wild-type and mutant plants and Flowering time measurements.They were measured by days to bolting and by
total leaf numbers at flowering.Plants were grown either in long days(LD,16hlight and 8hdark);D、E、F Flowering of wild-type
and mutant plants and Flowering time measurements.They were measured by days to bolting and by total leaf numbers at flowering.
Plants were grown in short days(SD,8hlight and 16hdark)
3.3 fbn1a和fbn8突变体以及fbn1a/fbn8双
突变体对开花基因的影响
将拟南芥野生型、fbn1a、fbn8突变体以及
fbn1a/fbn8双突变体种在长日照和短日照条件下,
统计植株的开花时间以及莲座叶.如图2所示,相对
于野生型,fbn1a、fbn8突变体以及fbn1a/fbn8双突
变体无论是在长日照和段日照的条件下都表现出早
花,并且三种突变体在长日照比段日照的开花明显
要早的多,说明该突变体对光周期产生反应.其中在
长日照的条件下,fbn1a、fbn8开花时间比野生型要
早,莲座叶数目更多,但是fbn1a/fbn8双突变的开
花时间比起他们对应的单突变体明显更加提前.
3.4 fbn1a和fbn8突变体fbn1a/fbn8双突变
体中H2O2与开花时间的调控
Lokhande等研究了来自不同纬度的4种拟南
芥后发现 H2O2 含量越高,则开花越早[6];因此这
暗示出 H2O2 很可能是拟南芥体内成花诱导的一
个重要因子[7].在植物开花时期,连续测定植物体
内H2O2含量的变化结果图4显示,在开花前18d、
21d、24d的时候,col、fib8、fib1a、fbn1a/fbn8双
突变体中 H2O2含量随着时间推移都有略微的升
高,但是其中明显能够发现在fib1a、fbn1a/fbn8
双突变体 H2O2含量高于col、fib8而且双突变中
的 H2O2 含 量 是 最 高 的,fib1a 次 之.这 与
476
第3期 潘翔飞,等:Fibrilins突变体对拟南芥开花时间影响
Lokhande等人的研究也是相吻合的.
图3 植株不同开花时期的不同基因表达情况
A、B、C、D分别代表各植株中基因CO、SOC1、FLC、FT的不同表达情况
Fig.3 The different gene expression in plant different flowering period
A.B.C.D The mRNA expression levels of CO、SOC1、FLC and FT was detected by quantitative real-time PCR on 18days,21days
and 24days
图4 植株在开花不同时期体内 H2O2含量测定
Fig.4 Determination of H2O2in plant different flowering
period
4 讨 论
在合适的时间完成开花转型是植物实现生殖
发育所必需的[8].这也是植物在长期进化过程中形
成的对环境条件的一种适应[9].高等植物中Fibril-
lins参与植物响应氧化胁迫的调控,定位于叶绿体
质体小球,叶绿体又是产生和消除活性氧的重要的
植物器官[10],H2O2 很可能是拟南芥体内成花诱导
的一个重要因子[11].所以对col、fib8和fib1a的
开花时间进行了研究.构建了fib8和fib1a的双
重突变体观察开花时间,发现二者在开花途径中可
能共同起着作用.
本研究分析的FBN1a基因和FBN8基因突变
导致植物早花,由上述的结构推测FBN1a基因和
FBN8基因可能确实在开花途径中起到作用,并且
它们是一个开花的抑制子参与开花调节.突变体无
论是在LD或者SD条件下,都要比野生型早开花,
而且双突变体开花最早,说明突变体在光周期的开
花途径中受到了一定的影响[12],双突变体表现得
最为严重.因此,无论是长日照还是段日照条件下,
Fibrilin基因有可能延迟拟南芥的开花时间,并且
FBN1a基因、FBN8基因有可能共同来参与拟南芥
的开花途径,来调节开花时间[13].
本研究还表明,FBN1a基因和FBN8基因的
缺失导致了开花的提前,是通过调节了开花基因
FT和FLC mRNA的表达来实现的,一方面的话
是抑制了开花促进因子FT、CO、SOC1的表达,另
576
四川大学学报(自然科学版) 第53卷
外一方面是增加了开花抑制因子FLC的表达.当
两个基因同时突变掉以后开花促进因子FT、CO、
SOC1的表达情况显著提升并且FLC的表达情况
也是显著降低.因此FBN1a基因和FBN8基因是
通过调节主要开花基因的表达水平参与拟南芥开
花时间的调控的.可以看出在双突变体中的各种基
因表达变化情况更为明显,有可能FBN1a基因和
FBN8基因共同调控开花途径.
“H2O2 促进拟南芥开花”的假说中提到植物
体内的 H2O2 含量越高,那么植物开花越早.
Fibrilins定位于叶绿体,而叶绿体又是产生和消
除活性氧的重要的植物器官[14].于是我们测定了
fbn1a和fbn8突变体以及fbn1a/fbn8双突变体
在开花时间的体内 H2O2含量的变化,也正如假说
提到的一样,FBN1a基因和FBN8基因他们能够
有效的清除体内 H2O2,但是突变缺失以后叶绿体
功能受到损伤,突变体体内的 H2O2含量积累从而
导致了开花的提前.双重突变体的叶绿体受损更加
严重,从而导致了体内 H2O2积累最为明显,最终
导致了开花最早.
本研究证明了FBN1a基因和FBN8基因参加
了重要的开花基因FT、CO、SOC1、FLC的表达,
并且二者有可能在开花网络的起着调控作用,为进
一步Fibrilins家族在拟南芥开花调控网络中的作
用和位置,阐明了植物开花机理及其在农业生产上
的具有重要的意义.
参考文献:
[1] 李俪,罗志鹏,赵淑清.拟南芥开花时间调控的整合
途径 [J].植物生理学通讯,2007,10(5):43.
[2] 曾群,赵仲华.拟南芥开花时间调控的信号途径
[J].遗传,2006,28(8):1030.
[3] 赵竹露,黄瑾,藤蕾,等.Fibrilin转基因油菜的再
生及其光合特性的检测 [J].四川大学学报:自然科
学版,2009,46(1):228.
[4] Yang Y,Sulpice R,Himmelbach A,et al.Fibrilin
accumulation is regulated by ABI2and is involved in
abscisic acid-mediated photoprotection[J].Proc Natl
Acad Sci U S A,2006,103(15);6061.
[5] 吴晓丹,张立军,白雪梅,等.杂交方法获得的拟
南芥蔗糖转运蛋白基因SUC3/SUC5双突变体及其
PCR鉴定 [J].植物生理学通讯,2006,42(6):
1073.
[6] Cao Y,Dai Y,Cui S,et al.Histone H2Bmonou-
biquitination in the chromatin of FLOWERING LO-
CUS C Regulates Flowering Time[J].The Plant
Cel,2008,20(14):2587.
[7] Lokhande S D,Ogawa K,Tanaka A,et al.Effect
of temperature on ascorbate peroxidase activity and
flowering of Arabidopsis thaliana ecotypes under
different light conditions[J].Journal of Plant Phys-
iology,2003,160:57.
[8] Kim H J,Hyun Y,Park J Y,et al.A genetic link
between cold responses and flowering time through
FVE in Arabidopsis thaliana [J]Nature genetics,
2004,36(2):868.
[9] 张素芝,左建儒.拟南芥开花时间调控的研究进展
[J].生物化学与生物物理进展,2006,33(4):301.
[10] Laurie R E,Diwadkar P,Jaudal M,et al.The
Medicago FLOWERING LOCUS T Homolog,Mt-
FTa1,is a key regulator of flowering time1 [J]
Plant Physiology,2012,156(12):1006.
[11] Kim S Y,Yu X,Michael S D.Regulation of CON-
STANS and FLOWERING LOCUS T Expression in
Response to Changing Light Quality1 [J].Plant
Physiology,2008,148(4):269.
[12] Schutzendubel A,Pole A.Plant responses to abiot-
ic stresses:heavy metal-induced oxidative stress and
protection by mycorrhization[J].Journal of Experi-
ment Botany,53(372):1351.
[13] Julia F,Vadim D,Bothwel J H F,et al.Reactive
oxygen species produced by NADPH oxidase regu-
late plant cel growth [J].Nature,2003,422
(6930):422.
[14] Singh D K,McNelis T W.Fibrilin protein func-
tion:the tip of the iceberg[J].Cel Review,2011,
16(8):23.
676